2012年10月31日
複数のバイオマーカー候補のハイスループットの検証は凍結/融解サイクルを最小限に抑え、貴重な血漿検体を使用するために、シーケンシャルELISA法により行うことができる。ここでは、連続して6つの異なる検証血漿バイオマーカーのELISAを実行する方法を示し 1月3日移植片対宿主病(GVHD)の 4同じ血漿試料に。
次の実験の全体的な目標は、プロテオミクスによって発見された多数の新規バイオマーカーを効率的に分析するために、ハイスループットシーケンシャルElizaを使用することです。これは、最初にソースプレートにサンプルを追加することで達成され、ソースプレートを使用して各バイオマーカーの希釈を作成し、テスト間で回収された血漿を保存できます。次に、患者サンプル中のタンパク質の濃度を決定するために、各タンパク質に対してEliza'sを実行します。
最終的には、急性移植片対宿主疾患の臨床症状の発症時のこれらのバイオマーカーのタンパク質レベルの上昇を評価できます。この手法が既存の方法と比較した場合の主な利点は、シーケンシャルアナライザーが、オーバーマルチプレックスプラットフォームでは必ずしも利用できない複数の新規タンパク質を分析できることです。この技術の意味は、急性移植片対宿主疾患の診断にまで及びます。
この方法で検証されたバイオマーカーは、現在、臨床治療のために研究されています。この方法は、心的外傷後の詩的幹細胞移植の合併症についての洞察を提供することができます。また、肺移植、合併症、肺がんなど、診断用血液検査が役立つ可能性のあるあらゆる疾患に対するバイオマーカーの発見や検証にも応用できます。
実験の前日に、思考血漿アリコートサンプルを15、300 RCF、摂氏4度で10分間スピンダウンし、底部の血栓と上部の脂質を血漿から分離するために、複数のステップが一貫して行われることが重要であるため、この方法の視覚的なデモンストレーションは重要です。次に、各サンプルから150マイクロリットルの原液血漿を、事前定義されたマップに従って手動ピペッティングすることにより、96ウェルVボトムプレートにプレートします。プレートをParaformで包み、摂氏4度の人間の部屋に最大72時間置きます。
次に、2つの受容体αおよびヒト成長因子をILに再溶解希釈した後、HGF各抗体の50マイクロリットルアリコートを各96ウェルの高結合ハーフウェルプレートの各ウェルにメーカー仕様プレートあたりに捕捉抗体を捕捉する。次に、これらのプレートをプレートシーラーで密封し、摂氏4度で一晩インキュベートします。今度は、メーカーのプロトコルに従ってメーカーのコーティング緩衝液と3 84ウェルmaxorプレートの各ウェルに溶液の25マイクロリットルをプレート化し、reg 3アルファを希釈します。
その後、このプレートも実験の初日に摂氏4度で密封して保管します。まず、IL 2受容体αテストプレートを洗浄し、TBSのブロットでブロックします。標準を再構成した後、製造元のプロトコルに従って8点の標準曲線を設定します。
次のプレート、50マイクロリットルの原液血漿と各標準液の50マイクロリットルをソースプレートからELIZAテストプレートに二重に。次に、密封されたプレートを室温で、300 RPMに設定されたプレートローテーターでインキュベートします。2時間後、IL 2受容体αELIZAテストプレートから血漿を回収し、希釈されていない血漿ソースプレートに戻します。.
次に、製造元のプロトコルに従ってEIAを完了した後、豊富な3つのアルファエリザの450〜570ナノメートルに設定されたプレートリーダーを使用して各ウェルの光学密度を読み取り、最初に10マイクロリットルの希釈されていないプラズマを別のビューボトムソースプレートに移し、次にメーカー提供の90マイクロリットルを各ウェルに希釈バッファーを追加して、1〜10希釈ソースプレートを作成します。Reg three alpha Elizaを完了した後、メーカーのプロトコルに従って、384ウェルプレートにストップ溶液を追加し、450〜620ナノメートルに設定されたプレートリーダーを使用して各ウェルの光学密度を読み取ります。エレファントとtn FFRを再溶解して希釈した後、メーカー仕様ごとに1つの捕捉抗体を、それぞれの96ウェル高結合ハーフウェルプレートの各ウェルに50マイクロリットルの捕捉抗体をコード化します。
次に、密封されたテストプレートを、エレファントプレートの場合は室温で、TN FFR one プレートの場合は摂氏4度で一晩インキュベートします。ILを完了した後、2つの受容体αエリザは、60マイクロリットルの原液血漿を新しいソースプレートに移します。次に、PBS中の1%BSAの60マイクロリットルで各ウェルに1〜2希釈したプラズマソースプレートを作成します。
次に、HGFテストプレートをTBSのBLOTTOで洗浄してブロックし、8点標準曲線希釈を設定します。プレートを洗浄した後、ブロッキングステッププレート50マイクロリットルに続いて、EISAテストプレート上の各標準液の1〜2希釈血漿のアリコートを複製します。次に、密封されたプレートを室温で一晩インキュベートし、プレートローテーターを300 RPMに設定します。
翌朝、HGF Elizaテストプレートから1〜2希釈した血漿を回収し、1〜2希釈したプラズマソースプレートに戻します。EIAを完了した後、製造元のプロトコルに従って、実験の2日目に450〜570ナノメートルに設定されたプレートリーダーを使用して、各ウェルの光学密度を読み取ります。まず、10マイクロリットルの原液血漿を新しいソースプレートに移し、次にPBS中の1%BSAを190マイクロリットルに移して、1〜20個の希釈プラズマを200マイクロリットルにします。
次に、象を完成させた後、エリザは、製造元のプロトコルに従って、450〜570ナノメートルに設定されたプレートリーダーを使用して光学密度を読み取ります。TN FFRの1つのために、Elizaは最初に1から20の源の版に1%BSAおよびPBSの25マイクロリットルを1つの井戸ごとの1から25の薄めさせた血しょうの125マイクロリットルに得る加える。次に、製造元のプロトコルに従ってTN FFR 1 EIAを完了した後、I-L-H-E-I-Aの最初の転送のために450〜570ナノメートルに設定されたプレートリーダーを使用して各ウェルの光学密度を読み取り、新しいソースプレートに1〜2個の希釈プラズマの60マイクロリットルを新しいソースプレートに、次に各ウェルに180マイクロリットルのIL8希釈剤を追加して、1〜6個の希釈プラズマソースプレートを作成します。
次に、メーカーのプロトコルに従ってILH Elizaを完了した後、450〜570ナノメートルに設定されたプレートリーダーを使用して各ウェルの光学密度を読み取ります。最後に、すべてのイライザが完成したら、未使用のトークプラズマを思考のエロクアに交換し、将来の使用のために凍結します。このグラフでは、最初の reg three α 胃腸移植片対宿主疾患のバイオマーカーレポートでテストされた 1084 人の患者に対応する reg three α 濃度を測定する 7 つの異なる ELIZA プレートの標準曲線の光学密度が示されています。プレート間の一貫した光学密度が示され、実験間で一貫したタンパク質濃度測定が保証されます。
血漿サンプル中のタンパク質の濃度は、サンプルの光学密度を標準曲線の光学密度と比較することによって計算しました。ロボットのようにクリーンなハンドリングプラットフォームを使用することで、再現性をさらに向上させると同時に、ElizaやCreative Formのウェルプレートを稼働させることで、プラズマの使用量を減らすことができます。この手順を計画する際には、最初に希釈されていないプラズマであるEISを実行して、開発後の実験で回収して使用できるようにすることが重要です。
この技術は、プロテオミクスの分野の研究者が、シーケンシャルElizasの普遍的な使用を通じて、関心のあるあらゆる疾患における候補バイオマーカーを探索する道を開きました。このビデオを見れば、少量の血漿を使用し、フリーサイクルを最小限に抑えながら、シーケンシャルEを使用して複数のバイオマーカーを検証する方法について十分に理解できるはずです。
この研究は、移植片対宿主病(GVHD)に関連する複数の血漿バイオマーカーを検証するための高スループットの連続ELISA法を示しています。凍結融解サイクルを最小限に抑えることで、この技術は貴重な血漿サンプルの効率的な分析を可能にします。
Validating multiple plasma biomarkers from limited, irreplaceable patient samples is a critical bottleneck in translational biomarker discovery for acute graft-versus-host disease (GVHD). A high throughput sequential ELISA approach enables efficient, reproducible quantification of candidate biomarkers while conserving precious plasma volume and minimizing pre-analytical variability. This supports early-phase target validation and mechanistic de-risking by providing reliable, multiplex-compatible data from clinically relevant sample types.
The sequential ELISA method fits within the biomarker validation continuum, moving from discovery proteomics through targeted verification to preclinical and clinical correlation, particularly when sample volume and stability are limiting factors.