Name: 蛍光灯と組み合わせることで染色体の複製タイミングその場ハイブリダイゼーション (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 17 min 14 s
Description: 学ぶ染色体複製タイミング解析法。BrdU取り込みと蛍光in situハイブリダイゼーションを組み合わせ、哺乳類細胞の染色体複製タイミングを定量的に評価します。同一細胞内で再配列染色体と正常染色体を直接比較し、ゲノム安定性の理解に貢献します。

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この作品は、米国国立がん研究所、CA131967からの助成金によってサポートされていました。

1。 BrdUの取り込み（末端標識） <ol><li> BrdUの添加する前に、150mmの組織培養ディッシュ24時間で約70％コンフルエンスに細胞をプレート。 </li><li>収穫前に適切な時点で20μg/ mlののBrdU（Sigma）を含有する新鮮な完全培地でメディアを交換してください。時間セルの長さは、BrdUによる培地で培養する細胞の種類や種によって異なりますが、一般的にG2期は2〜5時間（ 図1）が続きます。 </li></ol> 2。単層細胞培養物の染色体の収穫<ol><li>プレートから培地を取り出して、15 mlコニカル遠心管に10ミリリットルを収集します。残りのメディアを捨ててください。 </li><li> 10ミリリットル正矢[またはHBSS（シグマ）]で一回細胞を洗浄します。 </li><li>板に正矢（またはHBSS）で5ミリリットル、0.25％トリプシンを追加します。細胞がプレートから分離されるまで室温でインキュベートする。 </li><li>ステップ2.1からのメディアの10ミリリットルを含むチューブにトリプシン処理した細胞懸濁液を追加します&lt;/ LI&gt; <li>細胞を沈殿させ、10分間、400×gで遠心分離します。メディアプラス細胞ペレットを0.5mlのを残して、上清を吸引します。 </li><li>パスツールピペットでピペッティングでよく細胞を再懸濁する。 </li><li>低張液を3滴追加（を0.075のKCl（Sigma社）を37℃に温め ）、パスツールピペットを用いて細胞懸濁液を混ぜる。 0.5ミリリットル低張液を追加し、パスツールピペットを用いて再び混ぜる。 5ミリリットルに低張液​​の量を持参し、再度混ぜる。細胞の種類に応じて20から45分、37℃でインキュベートする。 </li><li> 10分間、400×gで遠心分離します。メディアプラス細胞ペレットを0.5mlのを残して、上清を吸引します。 </li><li>優しくチューブをフリックすることによって、細胞ペレットを再懸濁します。浸透腫れ細胞はこの時点では壊れやすいとなりますので、注意が細胞膜を破壊しないように注意するべきです。 </li><li>カルノア固定液3滴（1:3氷酢酸：メタノール）を追加します;優しくパスツールpipettとペッティング電子。優しくパスツールピペットでピペッティングして0.5 mlの固定液と混ぜる。 5mlに固定液の量を持参し、穏やかにパスツールピペットでピペッティングにより再び混ぜる。固定された細胞は、数ヶ月のために-20℃で暗所に保存することができます。 </li><li>遠心分離し、ステップ2.8のように吸引します。 </li><li>新鮮な固定液で細胞ペレットを再懸濁し、ペレットとadd〜10xのカルノア固定液の容積を推定する。 </li><li>ぬれた、氷のように冷たい顕微鏡スライド上に細胞懸濁液を滴下して追加します。〜45°の角度でスライドを保持し、細胞懸濁液は、スライドの表面上を流れるようになります。ペーパータオルの上で平らなスライドや洪水固定でスライドを下にして置き、空気乾燥することができます。倒立顕微鏡を用いて細胞分裂スプレッドの存在のためのスライドを確認してください。 </li></ol> 3。 RNase処理とエタノール脱水<ol><li> 37＆ドでインキュベートし、10μgの/スライドごとに2×SSCでmlのRNase A（シグマ）の代わりに200μlのグラム、Cで1時間。 </li><li>洗浄は、3分間ずつ室温で2×SSC、pH7.0で3回スライドします。 </li><li> 3分間ずつ室温でエタノール（シグマ）シリーズ（70％、90％、100％）を使用してスライドを脱水する。 </li><li>空気は、室温でスライドを乾燥させてください。 </li></ol> 4。 in situハイブリダイゼーションのBACプラス染色体に特異的なセントロメア列挙プローブ（CEP）、または全染色体塗料用のプローブのカクテルの調製<ol><li> BAC / CEP同時ハイブリダイゼーションのために、プレハイブリダイゼーションのために2つの別々のプローブのカクテルを用意してください。我々は、より少ないバックグラウンドと高いシグナル強度の異なるジェンの結果で個別BACおよびCEPのプローブをプレハイブリダイズすることを見出した。我々はまた、個々のフォスミドもBACクローンの代わりに使用することができることを見出した。後述のカクテル処方は、単一のスライド用のボリュームを表します。同じプローブを用いて、複数のスライドを処理する場合は、単にボリュームを上げるappropr<html> iately。 * BAC DNAプローブのカクテル： 11.5μlのハイブリダイゼーション緩衝液（50％ホルムアミド（シグマ）/ 2×SSC /デキストラン硫酸（Sigma社製））を2μlのdH 2 O のdH 2 Oに2.5μlのBAC/Cot1 DNA（プロトコルのラベリングについては下記を参照）15μlの合計体積 * CEPプローブカクテル： 7μlのCEPのハイブリダイゼーション緩衝液（65％Formamide/2x SSC /デキストラン硫酸）を2μlのdH 2 O 1μlのCEP/Cot1のDNA（スペクトラムOrange/Cy3/Texas赤で標識し購入）を10μlの合計体積 * 3：02比率を25μl/スライドとミックスプローブカクテルでCEPのプローブを用いてミックスのBACプローブを変性し、プレハイブリダイゼーション（ステップ5.1）の後。 OR </li><li>チューブに全染色体ペイントプローブのアリコートを20μl/スライド（Cy3/Texas赤）。変性およびプレハイブリダイゼーションのステップに進みます。 </li></ol>&quot;&gt; 5。スライドおよびプローブ変性と in situハイブリダイゼーション <ol><li> 75℃で変性プローブカクテル（S）℃で10分間。 COT1 DNAが反復配列にハイブリダイズするようにして染色体を分裂中期後続のハイブリダイゼーションを防止するために可能にするために30分間37℃で事前にハイブリダイズする。 </li><li> 72少なくとも70％Formamide/2x SSC、pH7.0中コプリンジャーに変性スライド℃で 3分間インキュベートする。 </li><li>すぐに3分間ずつ4でコプリンジャーにエタノールシリーズ（70％、90％、100％）℃を通してスライドを脱水する。 </li><li>スライドは、室温で空気乾燥させてください。 </li><li> 45〜プリ暖かいスライド°Cプローブプリhybridzation（ステップ5.1）の最後の10分間ウォーマースライド上。必要に応じて事前にハイブリダイズしたプローブのカクテルをミックスし、各スライドに25 ulを加える;優しくゴムセメントを持つすべてのエッジに沿って、各スライド及びシールにカバースリップを置く。蒸発を防ぐために加湿チャンバー中で37℃で一晩インキュベートする。 </li></ol><ol><li> 3分ごとに38から40°Cで50パーセントformamide/2x SSC、pHは7.0でコプリンジャー3回でスライドを洗浄します。洗浄の温度はプローブ間で異なる場合があります。高いバックグラウンドハイブリダイゼーションがある場合は、洗浄の温度を上げることができます。信号が微弱でないと背景がない場合は逆に、あなたはこれらの洗浄の温度を下げることができます。 </li><li>洗浄は、室温でのPN緩衝液中の1時間をスライド 3分間、およびBrdUの検出のステップに進みます。 </li></ol> 7。 BrdUの検出<ol><li>暗闇の中で、室温で10分間（200μL/スライド）のPNMバッファを持つブロックをスライドする。 </li><li>ペーパータオルの上にエッジをオンにすることでスライドを排出します。 37℃で30分間、PNMバッファに抗BrdU-FITC（50μg/ mlのロシュ社またはミリポア）100μLを°C。 </li><li> 3分間ずつ室温でPNバッファにスライドを3回洗浄します。 </li><li>ドレインペーパータオルの上にエッジをオンにすることにより、一度に1スライド上の過剰のPNバッファ。 20μlのDAPI /退色マウンティング溶液（Invitrogen）を追加します。 ペーパータオルでスライドをカバーし、気泡や過剰マウントソリューションを強制的にカバースリップを下に押します。画像解析に進みます。 </li></ol> 8。画像をキャプチャし、BrdUの取り込みを定量化<ol><li>画像はオリンパスBX61蛍光顕微鏡オリンパスCCDカメラ、100xの目的は、自動フィルターホイールとCytovisionソフトウェア（アプライドイメージング）で撮影されています。 BrdUはFITCフィルターを用いて捕獲され、染色体塗料（テキサスレッド、メタシステムまたはCytocell）、BACの（Cy3）とCEP（Vysisスペクトラムオレンジ）プローブは、テキサスレッドまたはCy3フィルタを使用してキャプチャされ、DAPIはDAPIフィルター（参照して撮影した図2、図3）。 </li><li>興味のある個々の染色体は、BAC / CEPまたは染色体特異ペイントプローブ（ 図2Bおよび3B）で識別されます。活用Cytovisionソフトウェアは、関心のある各染色体が全体として中期スプレッドから&quot;カットアウト&quot;ですが、ラインが長いアーム（ 図2Cと3C）への短腕から染色体の長さ方向に沿って通って引き込まれる。 Cytovisionソフトウェアは、各染色体の長さ方向に沿ってピクセル強度プロファイルを定量化するために使用されます。 Cytovisionソフトウェアは、画素が占める面積を計算し、各単離染色体上でのBrdUまたはDAPI信号によって表されるピクセルの強度を定量化します。各染色体によって表される平均ピクセル強度は、その後の総画素数を（ 表1、図4）を得るためにこれらの画素が占める面積で乗算されます。また、このプロトコルは、染色体の最新の複製領域の可視化を可能にします。したがって、BrdUの取り込みの縞状パターンが積極的に複製する染色体領域、およびchromos間の複製タイミングの違いを検出することができるOMEのペアがこのバンドパターン（ 図2及び図3）の違いと見られている。最後に、結合パターンの違いは、相同染色体または染色体腕4間のレプリケーションのタイミング差の推定を可能にし、各染色体6,7、のために知られている複製タイミングのマップと比較することができます。例えば、二つの第6染色体の図3Aのは第6染色体4の正常な複製タイミングと比較した場合、&gt; 2時間の横縞模様の違いを表示します。 また、ここで説明したものと同様の手順が正常に非アクティブとアクティブX染色体8,9間の非同期複製タイミングの研究のために使用されてきました。アクティブおよび非アクティブなX染色体はX染色体塗料を用いて同定した。画像は皮肉mFISHソフトウェア（Vysis）とX染色体によって占め画素数と蛍光ラによって占有さのピクセル数を用いて得たbeled BrdUはその後、NIHイメージ（使用して計算された<a href="http://rsb.info.nih.gov/nihimage" target="_blank">http://rsb.info.nih.gov/nih-image/index.htmlを</a> ）。 </li></ol> 9。蛍光標識したBAC DNAのニック翻訳（Vysis） <ol><li>冷やし微量遠心管に、以下のプローブミックスを追加します。 のdH 2 Oで70μlの（4μgのDNA） 10μlの0.2 mMのdUTPをオレンジまたはグリーン 20μlの0.1 mMのdTTPを 20μlの10xのニック変換バッファ 40μlのNTのdNTPの（マイナスのdTTP） 40μlのニックトランスレーション酵素 200μlの総量 インキュベート@ 16℃のCO / N 70℃で加熱することにより反応を停止℃で10分間。氷上で5分間冷やします。 </li><li>プローブミックスに以下を加えることで、エタノールでDNAを沈殿させる。 200μlのプローブ溶液 48μlの3 M NaOAc 160μlのCot1DNA（0.25μgの/ UL） 1200μlの100％EtOHを</li><li> O / N〜10分間-80℃で保存</li><li> iをスピン20分間12,000 xgで冷n。 EtOHをオフデカント。 70％EtOHで1回洗浄します。前と同じようにスピン。 EtOHをオフデカント。空気だけでエタノールが蒸発するまで乾燥させます。 BAC DNAの100 ng /μlにの最終濃度を40μlのdH 2 Oに再懸濁する。 </li></ol>

<ol><li>Payer, B., Lee, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((X+chromosome+dosage+compensation%3A+how+mammals+keep+the+balance%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">X chromosome dosage compensation: how mammals keep the balance.</a> Annu. Rev. Genet. 42, 733-772 (2008).</li>
<li>Breger, K. S., Smith, L., Turker, M. S., Thayer, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ionizing+radiation+induces+frequent+translocations+with+delayed+replication+and+condensation%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Ionizing radiation induces frequent translocations with delayed replication and condensation.</a> Cancer Research. 64, 8231-8238 (2004).</li>
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<li>Stoffregen, E. P., Donley, N., Stauffer, D., Smith, L., Thayer, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+autosomal+locus+that+controls+chromosome-wide+replication+timing+and+mono-allelicexpression%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">An autosomal locus that controls chromosome-wide replication timing and mono-allelicexpression.</a> Hum. Mol. Genet. 20, 2366-2378 (2011).</li>
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<li>Diaz-Perez, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+deletion+at+the+mouse+Xist+gene+exposes+trans-effects+that+alter+the+heterochromatin+of+the+inactive+X+chromosome+and+the+replication+time+and+DNA+stability+of+both+X+chromosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">A deletion at the mouse Xist gene exposes trans-effects that alter the heterochromatin of the inactive X chromosome and the replication time and DNA stability of both X chromosomes.</a> Genetics. 174, 1115-1133 (2006).</li>
<li>Salic, A., Mitchison, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chemical+method+for+fast+and+sensitive+detection+of+DNA+synthesis+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A chemical method for fast and sensitive detection of DNA synthesis in vivo.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 2415-2420 (2008).</li>
<li>Schlesinger, S., Selig, S., Bergman, Y., Cedar, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allelic+inactivation+of+rDNA+loci%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Allelic inactivation of rDNA loci.</a> Genes Dev. 23, 2437-2447 (2009).</li>
<li>Mitelman Database of Chromosome Aberrations in Cancer. , Available from:
		
	 <a target="_blank" href="http://cgap.nci.nih.gov/Chromosomes/Mitelman">http://cgap.nci.nih.gov/Chromosomes/Mitelman</a> (2006).</li>
<li>Branzei, D., Foiani, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+checkpoint+response+to+replication+stress%5BTitle%5D)+AND+%22DNA+Repair+%28Amst%29%22%5BJournal%5D)">The checkpoint response to replication stress.</a> DNA Repair (Amst). 8, 1038-1046 (2009).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

染色体スプレッドの調製は、ここで説明する正常な複製タイミングのアッセイのための重要なステップです。低張処理に先立っコルセミド前処理工程を含めることは、周波数と有糸分裂細胞の広がりを助けることができる。我々は通常、収穫前に1から3時間colcemdiに細胞を公開し、10μg/ mlの最終濃度でコルセミド使用します。しかし、コルセミド前処理工程を含めることは、G2の長さを変更することがあり、その結果、染色体3の凝縮の見かけの複製タイミングと状態を変更することがあります。 この手順は、細胞周期の継続時間に依存BrdUのインキュベーション、の長さを変えることによって、さまざまな種類の細胞や種に適用することができます。ほとんどのヒトとマウスの細胞株では、G2期は通常、3から6時間であるため、BrdUの治療は、この範囲にある。 BrdUへの代替手段は、5 - エチニル2&#39;deoxyuridine（EDU）と、その使用方法とその後の検出である蛍光アジドと&quot;クリックケミストリー&quot;反応10。 eduの検出方式はBrdUの検出方...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td>抗BrdU-FITC </td><td>ロシュミリポア</td><td> 11202593001 MAB326F </td><td> 50μg/μLの</td></tr><tr><td>ニックトランスレーションキット</td><td>アボット分子（Vysis） </td><td> 07J00-0001 </td><td></td></tr><tr><td>スペクトラムオレンジdUTPを</td><td>アボット分子（Vysis） </td><td> 02N33-050 </td><td></td></tr><tr><td> CEP </td><td>アボット分子（Vysis） </td><td>変化する</td><td></td></tr><tr><td> LSI / WCPハイブリダイゼーションバッファー</td><td>アボット分子（Vysis） </td><td> 06J67-011 </td><td></td></tr><tr><td> CEPのハイブリダイゼーションバッファー</td><td>アボット分子（Vysis） </td><td> 07J36-001 </td><td></td></tr><tr><td>染色体パイNTS </td><td>メタシステムグループ</td><td> D-14NN-050-TR </td><td></td></tr><tr><td>オリンパスBX61蛍光顕微鏡</td><td>オリンポス</td><td> BX61TRF-1-5 </td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡イメージングソフトウェアシステム</td><td>アプライドイメージング</td><td> Cytovision 3.93.1 </td><td></td></tr><tr><td>デジタルカメラ</td><td>オリンポス</td><td> UCMAD3 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> in situハイブリダイゼーションのレシピで ホルムアミドソリューション 70パーセントFormamide/2x SSC 35ミリリットルホルムアミド*（シグマ） 10ミリリットル10倍のSSC 5ミリリットルD 2 H 2 O HClでpH7.0に（シグマ） *これは、-20℃で保管されていることホルムアミドを使用することが重要です。長時間の室温貯蔵ではギ酸とpHワットを生成します病気低すぎるかも。 50パーセントFormamide/2x SSC 25mlのホルムアミド（シグマ） 10ミリリットル10倍のSSC 15ミリリットルのdH 2 O HClでpH7.0に（シグマ） 20×SSC、4 L 702グラムのNaCl（シグマ） 358グラムのNaクエン酸（シグマ） ボリュームへのdH 2 O PNバッファ[0.1MのNaP0 4 0.1％NP_40（シグマ）] 0.1M溶液リン酸ナトリウムのそれぞれを（フィルター滅菌し、500mlアリコートで保存）してください。 、0.1MのNaH 2 PO 4、1L 13.8グラムのNaH 2 PO 4（シグマ）： ボリュームへのdH 2 O 、0.1MのNaH 2 PO 4、1L </strオング&gt; 14.2グラムのNaH 2 PO 4（シグマ） ボリュームへのdH 2 O。 PN：0.1 MのNaH 2 PO 4と0.1Mの2 HP0 NA 4 pHは8.0のpHを調整する。殺菌フィルタリングおよびNP-40の1 mlを加える。 PNMは50ミリリットル 1.25グラム無脂肪ドライミルク（シグマ） 25ミリリットルのPN緩衝液（上記レシピ） 絶えず撹拌しながら15〜20分間混ぜる。 10分間、400×gで2回スピン。上清を使用し、析出した乳蛋白質を乱さないように注意してください。 </td></tr></tbody></table>

蛍光灯と組み合わせることで染色体の複製タイミング<em&gt;その場</em&gt;ハイブリダイゼーション

Chromosome Replicating Timing Combined with Fluorescent In situ Hybridization

哺乳類のDNA複製は、時間的なレプリケーション·プログラムに続いて、S期に異なる時点で染色体に沿って、複数のサイトで開始されます。複製タイミングの仕様は、エピジェネティックな修飾に敏感な組織特異的、発達的な手がかりによって規制ダイナミックなプロセスであると考えられている。しかし、どこで、DNA複製が染色体に沿って開始したときに調節メカニズムはよくわかっていないままです。相同染色体は通常、同期複製は、しかし、この規則には注目すべき例外があります。例えば、女性の哺乳動物細胞内で2本のX染色体の一つがX不活性1として知られるプロセスを通じて後期複製になります。 2〜3時間であると推定複製タイミングでこの遅延に伴い、遺伝子の大部分は、転写一つのX染色体上に沈黙なる。また、X不活性化の中心地として知られ、離散シス作用性遺伝子座は、目を含めて、このX不活化工程を調節全体の不活性X染色体上の遅延複製タイミングの電子誘導。また、癌細胞では、細胞内に存在する特定の染色体再配列は、電離放射線にさらされる染色体全体に影響を及ぼす2,3&gt; 3時間の複製タイミングで大幅な遅延が表示されます。我々の研究室から最近の研究では、離散と混乱シス作用性染色体全体の4に影響を与える非常に遅く複製表現型常染色体の遺伝子座の結果を示します。追加された&#39;染色体工学&quot;の研究では、すべての哺乳類の染色体は、個々の染色体の適切な複製タイミング5を制御離散シス作用性遺伝子座が含まれていることを示唆し、この異常な複製タイミングの表現型には多くの異なる染色結果に影響を与え、特定の染色体再配列を示す。 ここでは、蛍光in situハイブリダイゼーションと組み合わせた染色体複製タイミングの定量分析のための方法を提示する。このメソッドは、同じセル内の相同染色体間で複製タイミングの直接比較を可能にし、6から適応されました。さらに、このメソッドは、染色体全体に影響を与える複製タイミングの変化と相関染色体再編成の明確な識別を可能にします。この方法では、最近開発されたハイスループットマイクロアレイまたは相同対立遺伝子が再編成と非再配列染色体上に存在を区別することはできませんシーケンスプロトコルの上で利点があります。ここで説明する方法は、単一細胞を評価するためだけでなく、それは、集団中の細胞の一部のみに存在する染色体再配列で染色体複製タイミングの変化を検出することができます。

ヒトの6番染色体の複製タイミング解析の例を図2に示します。 6q16.1に位置ASAR6遺伝子4の欠失を含む細胞は、5時間のBrdUにさらされる有糸分裂細胞のために収穫し、6番染色体ペイントプローブ（Vysis）で魚やBrdUの取り込みのために処理した。 2 6の、第6染色体の一つのために&gt; 2時間の複製タイミングの遅延と一致している間にBrdUのバンドパターンに有意差があることに注意してください[前の6番染色体の横縞模様複製タイミングのために4を参照してください削除]。また、DAPI染色の同様の分析（ 図2D）に比べてBrdUの取り込み（ピクセル）の合計金額に著しい差がある。 ヒトの6番染色体の複製タイミング解析のもう一つの例を図3に示します。 samを含むセル4は、 図2は 5時間のBrdUにさらされた場合、有糸分裂細胞のために採取し、示されており、第...

染色体の複製タイミングの解析のための定量的な方法が記載されている。この方法は、蛍光との組み合わせでBrdUの取り込みを利用<em&gt;その場で</em&gt;哺乳類の染色体の複製タイミングを評価するためのハイブリダイゼーション（FISH）。この技術は、同じセル内に再配置および再配置非染色体の直接比較することができます。

Mammalian DNA replication initiates at multiple sites along chromosomes at different times during S phase, following a temporal replication program. The ...

この実験手法は、BRDUの取り込みと蛍光in situハイブリダイゼーションを組み合わせたもので、哺乳類染色体の複製タイミングを定量的に解析するために用いられます。まず、生存細胞にBRDUを取り込ませ、中期染色体を回収します。次に、個々の複製染色体を特定するため、DNA FISHと連続的なBrdU抗体染色を組み合わせて実施します。続いて、顕微鏡を用いて、個々の有糸分裂像におけるFISHシグナルとBrdU取り込みの画像をキャプチャします。CytoVisionソフトウェアを使用して、各単離染色体上のBrdUまたはDAPIシグナルによって表されるピクセルの面積と強度を算出します。この結果により、個々の再構成染色体およびそのホロセントロマーにおけるBRDU取り込み量を定量化し、比較することができます。本手法は個々の細胞を評価するため、近年開発されたハイスループットのマイクロアレイやDNAシーケンシングプロトコルと比較して、細胞集団の一部にのみ存在する染色体再構成における複製やタイミングの変化を検出することが可能です。また、本手法により、同一細胞内に存在する相同染色体間の直接的な比較が行えます。また、染色体複製に影響を及ぼす染色体再編成を明確に同定する能力も備えています。本手順を実演する全染色体のタイミングは、私の研究室のリサーチアソシエイトであるLeslie Smithが担当します。細胞を150 mmの組織培養ディッシュに、およそ70%のコンフルエンスで播種し、適切な温度の細胞インキュベーター内で24時間培養してください。回収前のポイント。10 µg/mLのBRDUを含む新鮮な完全培地で培地を補充します。BRDU含有培地で細胞を培養する期間は、細胞の種類や種によって異なります。通常、G2期は2時間から5時間の間です。プレートから培地を除去し、10 mLを15 mLコニカルチューブに保存します。細胞を10 mLのPBSで洗浄し、残りのPBSを吸引除去します。次に、0.25% trypsinを5 mL加え、細胞がプレートから剥離するまで室温でインキュベートします。細胞を回収し、懸濁液をあらかじめ用意しておいた10 mLの培地に移します。遠心分離により細胞をペレット化し、培地を0.5 mLだけ残してすべて吸引します。パステールピペットを用いて細胞を十分に再懸濁し、細胞を浸透的に膨張させるために37°Cに温めた75 mMの塩化カリウムを3滴加え、パステールピペットで細胞懸濁液を混ぜ合わせます。次に、低張液をさらに0.5 mL加えます。低張液の総量を5 mLにし、ピペッティングにより混合します。細胞の種類に応じて、細胞懸濁液を37°Cで20〜45分間インキュベートします。細胞を懸濁状態に保つため、チューブを傾けてインキュベートしてください。その後、400 ×gで10分間遠心分

chromosome-replicating-timing-combined-with-fluorescent-situ

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

出典: Schumacher, D.、Sogaard-Andersen, L. 成長遅い社会細菌 ミクソコッカス・ザンサスの 完全な栄養細胞周期の蛍光生細胞イメージング。ジャーナル・ヴィジョンズ Exp.

蛍光標識細菌における染色体分離のタイムラプスイメージング

in situハイブリダイゼーション （FISH）、 蛍光は、細胞内でのそれらの天然環境中の核酸の検出を可能にする。ここでは、マウス胚性幹細胞におけるX染色体不活性化を研究するために使用することができるFISHによるRNAおよびDNAの合成、同時検出のためのプロトコルを記載している。...

組み合わせたDNA-RNA蛍光<em&gt;その場で</em&gt;ハイブリダイゼーション（FISH）差別雌マウス胚性幹細胞におけるX染色体の不活性化を研究するために、

私たちは、免疫蛍光と組み合わせた簡単にカスタマイズできる鎖特異的蛍光in...

クイック蛍光その場でハイブリダイゼーションプロトコル

ここでは、スライドマウント染色体上の反復ヘテロクロマティック配列を可視化するために、蛍光DNAのin situハイブリダイゼーション(DNA...

蛍光DNAための簡単​​な方法<em&gt;その場で</em&gt;ぺしゃんこ染色体へのハイブリダイゼーション

ここでは、大腸菌の複製フォークを失速させ崩壊させるための、部位特異的で可逆的なin...

サイトを誘導する具体的なレプリケーション閉塞中<i&gt; E。大腸菌</i&gt;蛍光プレッサーオペレータシステムの使用

&gt;jove_content&lt;ここでは、細胞の単離からシーケンシング結果の基本解析まで、ゲノムワイドな哺乳類の複製タイミングをマッピングするための比較的迅速でシンプルなアプローチについて説明します。代表的な複製プログラムのゲノムマップは、プロトコルに従って提供されます。...

DNA含有量測定法による哺乳類の複製タイミングのゲノムワイドな決意

記載されている RNAその場で交配のプロトコルでは、全体のショウジョウバエの胚または切り裂かれたティッシュで RNA の検出をことができます。96 ウェル マイクロ...

ショウジョウバエの胚とパスチラミドシグナル信号増幅を利用した生体表面の高解像度蛍光In Situハイブリダイゼーション

この原稿は、 Xを生成するための詳細な方法を提示-染色体腕プローブおよび実行する蛍光その場で交配 (魚) の妹の状態を調べるに染色分け体結束の prometaphase...

Prometaphase の腕凝集度と中期の状態を監視する蛍光In Situハイブリダイゼーション (魚) を使用して私はショウジョウバエの卵母細胞

この単一分子蛍光その場で交配のプロトコルは、栄養生長と減数分裂中出芽酵母の RNA...

単一分子蛍光In-situハイブリダイゼーション (smFISH) における出芽酵母の栄養増殖と減数分裂

このプロトコルは、mRNA合成および分解のインビボ運動を測定するための一分子蛍光をその場所でのハイブリダイゼーション(smFISH)での適用について説明する。...

Situハイブリダイゼーションにおける2色単分子蛍光を用いた 大腸菌 における空間と時間におけるmRNA運動学の探査

このプロトコルは、事前埋め込みEdU-ストレプトアビジン-ナノゴールド標識とChromEMTの組み合わせを採用した、構造的に保存されたクロマチンin in situにおける...

電子断層撮影による超構造保存クロマチン中の複製ドメインのイメージング

学ぶ染色体複製タイミング解析法。BrdU取り込みと蛍光in situハイブリダイゼーションを組み合わせ、哺乳類細胞の染色体複製タイミングを定量的に評価します。同一細胞内で再配列染色体と正常染色体を直接比較し、ゲノム安定性の理解に貢献します。

蛍光灯と組み合わせることで染色体の複製タイミング

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