Name: 乳癌のマウスモデルにおいて腫瘍微小環境における薬剤応答のイメージングを生きる (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: 学ぶ マウス乳癌モデルにおける抗腫瘍薬の浸透と治療応答を単一細胞解像度でリアルタイムイメージングする方法。スピニングディスク共焦点顕微鏡を用いて細胞死や腫瘍間質相互作用の変化を可視化し、がん治療の効率性を評価する。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我々は、技術的なサポートのために、J.とJ. Cappellani秋に感謝します。この作品は、米国国立がん研究所（U01 CA141451）、スターがんコンソーシアム、治療のためのスーザンG. Komen、乳がん、MEに乳癌に対するマンハセット女性連合と戦うためにロングアイランド2日で歩くと、からの資金によってサポートされていました議会監督乳がん研究プログラム、米国からESNESNに対する事前博士フェローシップはまた、生物科学のワトソン·スクール·オブ·レスリーC.クイック、ウィリアム·ランドルフ·ハースト財団フェローシップの受賞者です。 HAAは、ノルウェーの研究評議会（160698/V40及び151882）、および南東部地域保健機関（2007060）からの資金によって支えられている。

<ol><li>Egeblad, M., Nakasone, E. S., Werb, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumors+as+organs%3A+complex+tissues+that+interface+with+the+entire+organism%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Cell%22%5BJournal%5D)">Tumors as organs: complex tissues that interface with the entire organism.</a> Dev. Cell. 18, 884-901 (2010).</li>
<li>Ahn, G. -O., Tseng, D., Liao, C. -H., Dorie, M. J., Czechowicz, A., Brown, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+Mac-1+%28CD11b%2FCD18%29+enhances+tumor+response+to+radiation+by+reducing+myeloid+cell+recruitment%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Inhibition of Mac-1 (CD11b/CD18) enhances tumor response to radiation by reducing myeloid cell recruitment.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 8363-8368 (2010).</li>
<li>Tlsty, T. D., Coussens, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+stroma+and+regulation+of+cancer+development%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Tumor stroma and regulation of cancer development.</a> Annu. Rev. Pathol. 1, 119-150 (2006).</li>
<li>DeNardo, D. G., Brennan, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leukocyte+complexity+predicts+breast+cancer+survival+and+functionally+regulates+response+to+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Discov%22%5BJournal%5D)">Leukocyte complexity predicts breast cancer survival and functionally regulates response to chemotherapy.</a> Cancer Discov. 1, 54-67 (2011).</li>
<li>Nakasone, E. S., Askautrud, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+tumor-stroma+interactions+during+chemotherapy+reveals+contributions+of+the+microenvironment+to+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Imaging tumor-stroma interactions during chemotherapy reveals contributions of the microenvironment to resistance.</a> Cancer Cell. 21, 488-503 (2012).</li>
<li>Kim, J. B., Stein, R., O'Hare, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+in+vitro+tissue+culture+models+of+breast+cancer--+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Breast+Cancer+Res.+Treat%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional in vitro tissue culture models of breast cancer-- a review.</a> Breast Cancer Res. Treat. 85, 281-291 (2004).</li>
<li>Gilbert, L. A., Hemann, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+damage-mediated+induction+of+a+chemoresistant+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">DNA damage-mediated induction of a chemoresistant niche.</a> Cell. 143, 355-366 (2010).</li>
<li>Pittet, M. J., Weissleder, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Intravital imaging.</a> Cell. 147, 983-991 (2011).</li>
<li>Lohela, M., Werb, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+imaging+of+stromal+cell+dynamics+in+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Genet.+Dev%22%5BJournal%5D)">Intravital imaging of stromal cell dynamics in tumors.</a> Curr. Opin. Genet. Dev. 20, 72-78 (2010).</li>
<li>Boissonnas, A., Fetler, L., Zeelenberg, I. S., Hugues, S., Amigorena, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+cytotoxic+T+cell+infiltration+and+elimination+of+a+solid+tumor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of cytotoxic T cell infiltration and elimination of a solid tumor.</a> J. Exp. Med. 204, 345-356 (2007).</li>
<li>Breart, B., Lemaître, F., Celli, S., Bousso, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+imaging+of+intratumoral+CD8%2B+T+cell+cytotoxic+activity+during+adoptive+T+cell+therapy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Two-photon imaging of intratumoral CD8+ T cell cytotoxic activity during adoptive T cell therapy in mice.</a> J. Clin. Invest. 118, 1390-1397 (2008).</li>
<li>Engelhardt, J. J., Boldajipour, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marginating+dendritic+cells+of+the+tumor+microenvironment+cross-present+tumor+antigens+and+stably+engage+tumor-specific+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Marginating dendritic cells of the tumor microenvironment cross-present tumor antigens and stably engage tumor-specific T cells.</a> Cancer Cell. 21, 402-417 (2012).</li>
<li>Brown, E., McKee, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+imaging+of+collagen+and+its+modulation+in+tumors+in+vivo+using+second-harmonic+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Dynamic imaging of collagen and its modulation in tumors in vivo using second-harmonic generation.</a> Nat. Med. 9, 796-800 (2003).</li>
<li>Wyckoff, J. B., Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+visualization+of+macrophage-assisted+tumor+cell+intravasation+in+mammary+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Direct visualization of macrophage-assisted tumor cell intravasation in mammary tumors.</a> Cancer Res. 67, 2649-2656 (2007).</li>
<li>Yuan, F., Salehi, H. A., Boucher, Y., Vasthare, U. S., Tuma, R. F., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+permeability+and+microcirculation+of+gliomas+and+mammary+carcinomas+transplanted+in+rat+and+mouse+cranial+windows%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Vascular permeability and microcirculation of gliomas and mammary carcinomas transplanted in rat and mouse cranial windows.</a> Cancer Res. 54, 4564-4568 (1994).</li>
<li>Jain, R. K., Munn, L. L., Fukumura, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+tumour+pathophysiology+using+intravital+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Dissecting tumour pathophysiology using intravital microscopy.</a> Nat. Rev. Cancer. 2, 266-276 (2002).</li>
<li>Egeblad, M., Ewald, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+stromal+cell+dynamics+in+different+tumor+microenvironments+by+spinning+disk+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Visualizing stromal cell dynamics in different tumor microenvironments by spinning disk confocal microscopy.</a> Dis Model Mech. 1, 155-167 (2008).</li>
<li>Cheng, N., Lambert, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammary+Transplantation+of+Stromal+Cells+and+Carcinoma+Cells+in+C57BL%2F6J%5BTitle%5D)+AND+%22Mice.+J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Mammary Transplantation of Stromal Cells and Carcinoma Cells in C57BL/6J.</a> Mice. J. Vis. Exp. (54), ee2716(2011).</li>
<li>Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEwald%2C+AJ+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc%22">Cold Spring Harb. Protoc</a>. 2011, pdb.prot5563(2011).</li>
<li>Sounni, N. E., Dehne, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stromal+regulation+of+vessel+stability+by+MMP14+and+TGFbeta%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Stromal regulation of vessel stability by MMP14 and TGFbeta.</a> Dis. Model Mech. 3, 317-332 (2010).</li>
<li>Magness, S. T., Bataller, R., Yang, L., Brenner, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+dual+reporter+gene+transgenic+mouse+demonstrates+heterogeneity+in+hepatic+fibrogenic+cell+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">A dual reporter gene transgenic mouse demonstrates heterogeneity in hepatic fibrogenic cell populations.</a> Hepatology. 40, 1151-1159 (2004).</li>
<li>Motoike, T., Loughna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Universal+GFP+reporter+for+the+study+of+vascular+development%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Universal GFP reporter for the study of vascular development.</a> Genesis. 28, 75-81 (2000).</li>
<li>Fukumura, D., Xavier, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+induction+of+VEGF+promoter+activity+in+stromal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Tumor induction of VEGF promoter activity in stromal cells.</a> Cell. 94, 715-725 (1998).</li>
<li>Sugimoto, H., Mundel, T. M., Kieran, M. W., Kalluri, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+fibroblast+heterogeneity+in+the+tumor+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Biol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Identification of fibroblast heterogeneity in the tumor microenvironment.</a> Cancer Biol. Ther. 5, 1640-1646 (2006).</li>
<li>Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Dynamic, long-term in vivo imaging of tumor-stroma interactions in mouse models of breast cancer using spinning-disk confocal microscopy. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEwald%2C+AJ+%22+Cold+Spring+Harb.+Protoc%22"> Cold Spring Harb. Protoc</a>. 2011, pdb.top97(2011).</li>
</ol>

著者らは、開示する利害の対立がありません。全ての動物実験は、動物実験委員会の承認されたプロトコールに従って行った。

in vivoでの全身療法に対する腫瘍の応答は、微小環境は急性期反応と再発5の両方に影響を与えるように、in vitroで癌細胞のものと大幅に異なる可能性があります。 生体内での化学療法抵抗性経路における explicatingへの最大の障害の一つは、がん細胞とその微小環境との相互作用の複雑さである。具体的には、固形腫瘍は、がんや抗がん治療中に起こる細胞死の間質細胞、一つの成分の摂動、バランスを開発しているので、組織の組織に劇的な効果をもたらすことができます。 ここで提供される生体内イメージング技術は、抗がん剤による治療中に生きている、麻酔したマウスの腫瘍内の癌細胞間質の相互作用の直接可視化することができます。我々は（17を参照相対限られた侵入深さを持って回転するディスク共焦点顕微鏡を使用</）&gt;（商標）が、我々の手術や標識技術は、顕微鏡、他のタイプでも使用できます。これらの実験から取得されたムービーは、蛍光強度の変化（ 例えば、細胞死の標識された人口や誘導の浸透のために）、細胞運動、注射剤の分布（血管漏出を追跡する場合など ）、共同を含むプロセスを追跡するために使用することができます蛍光シグナル5,12,17,20の局在。 我々6時間以上にわたって日常的にイメージしたマウスと、18時間以上のイメージングを行った。これは、これらを長時間連続して麻酔下でマウスを維持する必要があります。適切な麻酔で、我々の動物の90％以上が6時間を生き残るため、そして約80％が18時間かけて生き残る。長期的な麻酔を行う方法の詳細については、以前に19が発表されている。我々の経験では、5つの要因が重要である：uは、生理的血中酸素飽和度レベルを維持し、脱水を避け、低体温症を避けるイソフルラン用加湿キャリアガスを歌い、彼らは痛みの兆しを見せないものに麻酔の最下位レベルに動物を保ちます。体温を維持するために、我々は（38℃）加熱された毛布の下にマウスを保つ。脱水症状を避けるために、我々は全体のイメージング手順を通して生理食塩水の ipの少量を注入する。生理的血中酸素飽和度レベルを維持するために、我々はキャリアガス中の酸素21％（というより一般的に使用される100％）で始まります。時間を実験に - - これは、私たちはマウスの場合、吸入酸素濃度を増加させることができる血中酸素飽和度の低下を示しています。我々の経験では、そのような時間（30-40％へなど）で吸入酸素濃度を増加させることはほぼ必ず追加のイメージングの時間を可能にする動物を安定します。麻酔の最適レベルは1から1.5パーセントイソフルランと400-450/minの60-65/minとパルスレートの呼吸率の結果で達成ほとんどのマウス用です。私たちのイメージング実験では、主にトランスジェニックマウスモデルを使用し腫瘍が単一の撮像セッション中に複数のx、yの位置に並列に腫瘍の進行の異なる段階で複数の病変のイメージングを可能にする、多発性であるでs（MMTV-PyMTとC3 [1]-タグ）。これは、ステージ依存治療応答を特定することを目的とした実験に関してマウス·ツー·マウス変動に関する懸念を減少させ、イメージングに必要な動物の数を減らすことができます。 MMTV-PyMTモデル（および他の自発的ながんモデル）に比べて生体内イメージング中に行うことができる腫瘍病変の病理学的病期分類が異なっているが、生体内イメージング中に認識され、あまり詳細なことができるプログレッシブ病理組織段階を経る組織切片5,17。がん細胞は、通常、進行した腫瘍から分離されるとは対照的に、移植モデルは、最高の後期段階の腫瘍を反映する傾向がある。このようなモデルは、このように、腫瘍間質を勉強するより適している様々な段階の間に、これらの相互作用の違いよりも後期の腫瘍の相互作用。 我々はどのように治療することにより誘導される細胞死した後に発生するイメージの核構造変化の例を示す。抗がん治療の非存在下では、この標識戦略が代わりに解明、その場で画像の細胞分裂に使用されるかもしれません、例えば、どのように細胞増殖および休眠性は微小環境に影響されます。将来的には、ミトコンドリアの成分の蛍光標識は、アポトーシス細胞死中に発生する画像ミトコンドリアの変化にそれが可能になるかもしれません。 このプロトコルでは、我々はまた、示されているどのようにイメージ療法後の癌細胞の免疫細胞の相互作用をしますが、他の微小環境の成分の例はまた、可視化して画像化することができる。ストローマコンポーネントの既存のトランスジェニックレポーターライン（ 例えば 。、FSP1-EGFP 17αSMA-RFP 21、COL1A1-EGの線維芽細胞のものが含まれFP 21）または血管系の細胞（ 例えば、Tie2シグナル-GFP 22; VEGF-GFP 23）。 生体内イメージングは生体内化学療法後の投与で発生する相互作用およびプロセスをリアルタイムに可視化することができます。現在利用可能な技術では、我々は治療反応にどのように影響するかを骨髄細胞理解する上で主要な進歩を遂げている、腫瘍微小環境は非常に複雑であるため、しかし、主要な進歩はまだ環境媒介薬剤耐性の基礎をなす過程に機構的に掘り下げて調査を開始するために必要とされる。それでも必要な最も重要な進歩の一つは、特定の細胞集団のためのより良いマーカーの同定である。良いマーカーの重要性はよく乳房腫瘍の微小環境、線維芽細胞や免疫細胞の最も顕著な間質細胞成分の2で示されている。 α-平滑筋アクチン（αSMA）が頻繁に識別するために使用され線維芽細胞が、タンパク質はまた、血管平滑筋細胞と筋上皮細胞24で表される。 αSMA-GFPレポーターマウスが存在するものの、このように、特定の細胞型を決定することは、生体内イメージング実験の間に、次であることは困難である。同様に、c-fmsのプロモーター下で発現など、EGFPのような単一の蛍光マーカーは、多くの場合、免疫細胞の複数の亜集団12,17を識別します。一つは理想的に特定の細胞型を同定するために単一のマーカーを使用したいと思いますが、このように、基礎生物学の複雑さは、このアプローチを使用する場合の主要な課題となっています。 この問題に対する一つの部分的な解決策は、さらに同じ蛍光レポーターを発現する細胞の亜集団を区別するために、注射ラベルを使用することです。例えば、蛍光デキストランは、マクロファージによって取り込まれるとc-FMS-EGFPおよびFSP1-EGFPトランスジェニックレポーターマウスでラベル付けされ、マクロファージの集団を標識することができる<sup&gt; 17。蛍光プローブに結合した抗体はまた、特定の集団を（C-FMS-EGFPレポーター17で標識した骨髄細胞のGR1陽性人口など ）を識別するために使用されている。 理由やその方法、腫瘍は、動物の大規模コホートを必要とする様々な時点で採取した組織から派生投与された治療、または組織学的シリーズへの対応について少しメカニズムに関する情報を提供するキャリパーを測定することにより生成された腫瘍の応答曲線とは異なり、私たちの技術は、直接的、定量化可能な情報を提供します細胞死のダイナミクスにと小さなコホートにおける癌細胞と間質細胞の相互作用について。したがって、ここで報告された手順を使用することの利点は、それがリアルタイムで無傷腫瘍微小環境のコンテキスト内で薬剤応答に動的な情報を提供することである。このような情報は、治療応答5を駆動基礎プロセス重要な洞察につながることができます&lt;/&gt;（商標）。

腫瘍の成長1のための適切な環境を維持するために支援する癌細胞と間質成分（細胞および非細胞の両方）：固形腫瘍は大きく二つの区画で構成されています。これらの間質成分は乳房2-5のものを含む癌の多くの種類の開発、進行、および転移に重要な役割を果たしています。間質環境はまた、治療応答2,4,5に影響を与えます 。このように、がん細胞は無傷微小環境のコンテキスト内で、従来と新しい治療法にどのように反応するかを決定することは、がんの生物学の理解を促進し、現在の治療戦略を改善するために重要である。さらに、癌細胞間質の相互作用は、治療の投与後にどのように変化するかを定義することは、腫瘍再発の生物学を理解するために重要です。 器官型共培養システムは、腫瘍間質の相互作用を研究するために有用であった<s6&gt;までが、それは現在利用可能な方法が正常に免疫細胞の血管機能及び募集に関し、特に、in vitroで無傷の腫瘍微小環境を再現できないことは明らかである。実際、in vitroで観察される治療に対する癌細胞の応答は、しばしば微小環境が損なわれていない5、 インビボにおいて観察されたものとは大きく異なっている。したがって、腫瘍間質の相互作用と治療反応に与える影響を研究するためのin vivoモデルでより良い臨床的に関連する機構7を反映しているかもしれない 。 in vivoでの抗癌治療への応答を研究するための主な手段は、腫瘍の大きさと処理された動物または患者由来組織の組織学的評価の測定をしてきた。しかし、過去20年間の顕微鏡と蛍光レポーターの進歩は、細胞間および細胞内プロセスの可視化を有効にしているライブ、麻酔動物では、高解像度（生体内イメージング）8時。これらの生体顕微鏡技術は、空間的および時間的に携帯とサブ携帯解像度8,9で腫瘍間質の相互作用の in vivo動態の解剖のために特に有益であることが証明された。 生体内イメージングによって解明されたプロセスは、抗腫瘍T細胞の細胞毒性10,11、T細胞および骨髄細胞12、治療の13以下のコラーゲン組成と組織の変化のダイナミクス、マクロファージ依存性癌細胞の脈管内への侵入および転移との間の相互作用を含む14、および血管透過性15。 生体内イメージングのための3つの主要な要件があります。これらは、適切な準備と露出イメージングのための組織の、関心の組織成分の蛍光標識し、ペアになって顕微鏡カメラsを含む16枚の画像を取得することができるystem。これらの要件に対処するために使用される最も一般的な方法は次のとおりです。1）異所性製剤（ 例 、耳や目の軌道の接種）、恒久的なイメージングウィンドウ、または体外製剤（ 例 、背部皮膚フラップ）、2）トランスジェニック蛍光レポーターとラベル組織成分に蛍光注射剤、3）多光子共焦点顕微鏡システムは、それぞれ9、光電子増倍管または電荷結合素子（CCD）カメラとペア。我々は、蛍光レポーターをコードする導入遺伝子を発現する麻酔動物でのイメージングのための鼠径部乳腺を公開するための外科的に準備された皮弁モデルを使用します。画像は4レーザースピニングディスク共焦点顕微鏡システム17とペア激化CCD（ICCD）カメラを使用して12から40時間の期間にわたって得られる。この方法でイメージングは、私たちはステージ依存CH、in vivoでの薬物分布のように、このようなプロセスを学ぶことができましたemotherapeutic応答、化学療法誘発性細胞死のタイプ、および骨髄細胞の挙動5。 我々は、抗がん治療と乳癌のマウスモデルにおける腫瘍間質の相互作用に対する癌細胞応答の生体内イメージングのためのプロトコルを提供する。このプロトコルは、単一の撮像セッションで40時間までの期間のトランスジェニックおよび移植両モデルにおけるトランスジェニックおよび注射用蛍光ラベルの多種多様な癌細胞と間質成分の両方の行動や死を追跡するために使用することができます。

<table border="1"><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td> 試薬 </td></tr><tr><td> MMTV-PyMTマウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td> 2374 </td><td></td></tr><tr><td> C3（1） - タグマウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td> 13591 </td><td></td></tr><tr><td> ACTB-ECFPマウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td> 3773 </td><td></td></tr><tr><td> ACTB-H2B-EGFPマウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td> 5418 </td><td></td></tr><tr><td> 1×PBS </td><td>自社製</td><td></td><td></td></tr><tr><td> 2 MDデキストラン、フルオレセイン結合</td><td>インビトロジェン</td><td> D-7137 </td><td> 1×PBS中に希釈し1 mg / mlの;のdH 2 O（4 mg / mlで、-20℃で保存）で再構成</td></tr><tr><td> 10 kDのデキストラン、のAlexa Fluor 647共役</td><td&gt;インビトロジェン</td><td> D-22914 </td><td> 1×PBS中に希釈し1 mg / mlの;のdH 2 O（4 mg / mlで、-20℃で保存）で再構成</td></tr><tr><td>ドキソルビシン塩酸塩</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 44583 </td><td> 4℃のdH 2 O、ストア内の再構成℃、1×PBS中に希釈</td></tr><tr><td> Isothesia（イソフルラン） </td><td>バトラーアニマルヘルスサプライ</td><td> 029450 </td><td> 250ミリリットル</td></tr><tr><td>ヨウ化プロピジウム</td><td>インビトロジェン</td><td> P3566 </td><td> 1 mg / mlで、希釈1時15分1×PBS中</td></tr><tr><td>窒素</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>酸素</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 機器 </td></tr><tr><td> 18G×1½ &quot;レギュラーベベル針</td><td> BD </td><td> 305196 </td><td></td></tr><tr><td> μManager </td><td>ヴァーレ·ラボは、UCSF </td><td> <a href="www.micro-manager.org" target="_blank">www.micro-manager.org</a> </td><td>オープンソースソフトウェア</td></tr><tr><td>アルコール消毒綿</td><td> BD </td><td> 326895 </td><td> 70％イソプロピルアルコールスワブ</td></tr><tr><td>麻酔システム</td><td>分子イメージング製品、（株） </td><td></td><td></td></tr><tr><td>カバーガラス</td><td>コー​​ニング</td><td> 2940-245 </td><td>第1½、24x50ミリメートル、70％イソプロパノールで消毒ワイプ</td></tr><tr><td> Curityガーゼのスポンジ（無菌） </td><td>ケンドール</td><td> 6939 </td><td></td></tr><tr><td>ガラス顕微鏡スライド</td><td>コー​​ニング</td><td> 2948-75x25 </td><td>予備洗浄、予備洗浄されていない場合、70％イソプロパノールで消毒ワイプ</td></tr><tr><td>硬化細かいハサミ</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 14090から11 </td><td> 2ペア、ステンレス鋼、鋭い鋭い先端、ストレートチップ、26ミリメートルのカッティングエッジは、11 cmの長さ</td></tr><tr><td>熱せられた毛布</td><td> Gaymarインダストリーズ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ホットビーズ滅菌器</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 18000から45 </td><td>使用前に30分程度の電源をオンにして&gt; 200でツールを殺菌℃で30秒間</td></tr><tr><td> Imaris </td><td>ビットプレン</td><td> <a href="www.bitplane.com" target="_blank">www.bitplane.com</a> </td><td></td></tr><tr><td>クレイジーグルー</td><td>エルマーの製品</td><td> KG484 </td><td></td></tr><tr><td>研究所テープ（½ &quot;） </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>実験室でのテープ（1 &quot;） </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>蓋に発泡スチロール出荷クーラー</td><td></td><td></td><td>これは、外科的なプ​​ラットフォームとして使用されます</td></tr><tr><td>ミクロ解剖鉗子</td><td> Roboz </td><td> RS-5153 </td><td> 1x2の歯は、わずかなカーブ、0.8ミリメートルチップ幅、4 &quot;長さ</td></tr><tr><td>ミクロ解剖鉗子</td><td> Roboz </td><td> RS-5135 </td><td>鋸歯、わずかなカーブ、0.8ミリメートルチップ幅、4 &quot;長</td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td></td><td></td><td>スピニングディスク共焦点は、XYZピエゾステージ、epifluourescence capablility 17,25 </td></tr><tr><td>顕微鏡ステージインサート</td><td>適用された科学計測</td><td></td><td>カスタムには、2つの円形のイメージングポートと、作製した</td></tr><tr><td> MouseOxオキシメータ、ソフトウェア、およびセンサー</td><td> STARRライフサイエンス</td><td> <a href="www.starrlifesciences.com" target="_blank">www.starrlifescience</a>s.com </td><td></td></tr><tr><td>ナルゲンスーパーVersi-ドライラボsoakers </td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> 74218から00 </td><td>外科プラットフォームを裏打ちするために四分のにカット</td></tr><tr><td>噴霧器</td><td>ソルターラボ</td><td> 8901 </td><td>ガスを加湿するために使用される;肺組織の炎症を防ぐ</td></tr><tr><td>スリップオンチップ使い捨てツベルクリンシリンジ（1ミリリットル） </td><td> BD </td><td> 309659 </td><td></td></tr><tr><td> Surflo翼の輸液セット</td><td>テルモ</td><td> SV-23BLK </td><td> 23G X¾ &quot;超細い針、12&quot;のチューブ</td></tr><tr><td>ベタジンスプレー</td><td>パデューファーマ</td><td> BASP3H </td><td></td></tr></tbody></table>

乳癌のマウスモデルにおいて腫瘍微小環境における薬剤応答のイメージングを生きる

Live Imaging of Drug Responses in the Tumor Microenvironment in Mouse Models of Breast Cancer

腫瘍微小環境は、腫瘍の開始、進行、転移、抗癌治療に対する反応において重要な役割を果たしている。三次元共培養システムは頻繁に薬剤応答における役割を含め、腫瘍間質の相互作用を解明するために使用されます。しかし、無傷の微小環境における生体内で発生する相互作用の多くは完全にin vitroでの設定で、これらの中で複製することはできません。このように、リアルタイムでこれらのプロセスの直接可視化は、治療に対する腫瘍の応答を理解し、がん細胞およびこれらの応答に影響を与えることができる間質間の相互作用を同定する際に重要なツールとなっている。ここでは、直接薬物分布、癌細胞応答および乳癌モデルにおける全身療法の投与後、腫瘍間質相互作用の変化を観察するために生きている、麻酔したマウスのスピニングディスク共焦点顕微鏡を使用するための方法を提供する。我々はlabeliするための手順について説明しngの異なる腫瘍成分、治療応答を観察するための動物の治療、最大40時間までのイメージングのための腫瘍組織を露出させるための外科的処置。このプロトコルから得られた結果は、薬剤浸潤、癌細胞死と間質細胞遊走などの過程を画像解析ソフトを用いて評価することができるタイムラプス映画、です。

我々は、抗癌治療への応答のイメージングのための方法を説明<em生体内で&gt;</em&gt;と単一細胞の解像度で。

The tumor microenvironment plays a pivotal role in tumor initiation, progression, metastasis, and the response to anti-cancer therapies. Three-dimensional ...

この手順の全体的な目標は、治療薬の投与に対する薬物の浸透と治療反応をリアルタイムで追跡することです。これは、最初に動物を薬物で治療することによって達成されます。次に、腫瘍を含む鼠径乳腺が皮膚フラップを作成することにより露出します。次に、マウスを顕微鏡段階に移し、血中酸素飽和度と脈拍数を測定し、液体と薬物または色素の投与のための留置ラインを挿入します。最後に、タイムラプス画像を取得して、後で分析します。最終的には、マウス乳腺腫瘍の回転椎間板共焦点顕微鏡法を通じて、薬物に応答した細胞死または腫瘍間質の相互作用の変化を示す結果を得ることができます。この方法は、腫瘍のさまざまな間質成分が治療への反応にどのように影響するかなど、腫瘍微小環境分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。開始する前に、薬物投与とイメージングの一般的なスケジュールについて書かれたプロトコルを参照してください。ホットビーズ滅菌器の電源を入れ、摂氏200度以上に到達させます。歯付き鉗子、鋸歯状の鉗子、はさみ2組などの手術器具を石鹸と水で洗った後、ホットビーズ滅菌器を使用して少なくとも30秒間滅菌します。それから彼らに任せてください。涼しい。手術プラットフォームとして使用する発泡スチロールの蓋の上にラボソーカーを置きます。実験用テープを使用して、麻酔システムに線付きのノーズコーンをラボソーカーに貼り付け、特定の18ゲージを1インチ半の針でテープを介してノーズコーンの両側の発泡スチロール蓋に貼り付けて、ノーズコーンを所定の位置に固定します。ベタジン滅菌ガーゼを取っておきます。2つの70%イソプロパノールは、顕微鏡スライド、瞬間接着剤、および4枚の半インチ幅のラボテープを拭きます。動物を誘導室で麻酔した後、深く呼吸しているときに、腹側を上にしてマウスをゆっくりと手術台に移します。高圧を避けるために、麻酔ラインを手術台に開いてから、麻酔ラインを誘導室に閉じます。イソフルランの濃度を4%から2.5%に減らすフットパッドピンチを実行して、麻酔の深さが手術に十分であることを確認してください。動物が反応しない場合は、4枚の実験用テープを使用して手足を手術台に固定し、電気カミソリを使用して腹面から毛を取り除きます。70%イソプロパノールワイプを使用し、続いて滅菌ガーゼにベタジンを塗布して、はさみと歯の鉗子を使用して動物の腹面を消毒します。尿道の約3ミリメートル上から剣状突起まで皮下腹側正中線切開を行います。はさみや鋸歯状の鉗子で腹膜に穴を開けたり、切り裂いたりしないように注意してください。画像化する腫瘍を含む鼠径乳腺で腹腔から皮膚を穏やかに剥離したまま付着したまま。マウスをステージに置いたときに腫瘍の大部分が平らになるように、また後肢によって妨げられないように、ガラス顕微鏡スライドを皮膚フラップに当てます。顕微鏡スライドが適切に配置されたら、瞬間接着剤を使用してスライドを皮膚の外面に取り付けます。動物の手足を固定している実験用テープをはがします。顕微鏡ステージへの麻酔ラインを開き、次に手術台への麻酔ラインを閉じます。動物を顕微鏡ステージに素早く移す 動物を移し替えたら、麻酔ラインとノーズコーンを位置決めして固定し、マウスが麻酔をかけたままで快適な位置にあることを確認します。イソフルランの濃度を1.5%に下げる腫瘍を露出させて、腫瘍が顕微鏡ステージのガラスで覆われたイメージングポートの1つの上部と中央に配置されるようにします。滅菌PBS生理食塩水またはヨウ化プロピジウムを含む生理食塩水を含む1ミリリットルのシリンジに取り付けられた翼付き注入セットを備えた留置腹腔内ラインを挿入します。.腹腔内ラインを挿入したら、動物に100マイクロリットルの生理食塩水とヨウ化プロピジウムを注入し、イメージングセッションが完了するまで1時間ごとに50マイクロリットルの生理食塩水をヨウ化プロピジウムに注入し続けます。接眼レンズを使用して、腫瘍が正しく配置され、顕微鏡スライドと腹腔内ラインに優しくテープで留められていることを確認します。スライドは、組織への血流が妨げられないように十分に緩く固定する必要があります。顕微鏡のスライドをテープで留めると、動物の呼吸によってもたらされる画像アーティファクトを最小限に抑えてタイムラプス画像を取得できます。オープンソースソフトウェアのmicromanagerを使用して、IRISまたはその他の画像解析ソフトウェアを使用して生データをコンパイルおよび分析します。蛍光標識DExT鎖は、組織への薬物送達の代理マーカーとして使用できます。ここに示されているのは、乳がん細胞の青色蛍光タンパク質を発現するマウスに注入されたfitzy標識2メガダルトンデキストランIVの到着です。薬物が腫瘍に到着した後、血管外漏出と拡散を画像化して、血管内半減期と薬物分布を決定できます。ここでは、乳がん細胞に青色蛍光タンパク質を発現し、骨髄系細胞に緑色蛍光タンパク質を発現するマウスにLOR標識10キロダルトンデキストランIVを注入した際の血管外漏出と分布を示しています。イメージングは、がん細胞が受ける細胞死の種類に関する情報を提供できます。ここでは、壊死またはアポトーシスを示す構造核変化が、ヒソン2bに結合した緑色蛍光タンパク質を発現するマウスで観察されます。ドキソルビシン治療後、化学療法によって誘発されるがん細胞死は、免疫細胞の腫瘍への反応性動員を頻繁にもたらします。これは、乳がんと骨髄細胞にそれぞれ青色と緑色の蛍光タンパク質を発現するマウスのドキソルビシンによる急性治療に対するこの間質反応の例です。ここでは、化学療法に対する全体的な間質反応を視覚化するだけでなく、特殊な間質反応も視覚化できます。この壊死性細胞材料による壊死性細胞材料の食作用は、習得すると示される。この手法は30〜60分で完了し、適切に実行すれば動物を12〜40時間画像化できます。

live-imaging-drug-responses-tumor-microenvironment-mouse-models

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

卵巣癌の同所性動物モデルは、より良い人間の病気を複製し、従って、癌の進行と治療に対する腫瘍の反応の理解を高める。マウスモデルでは、ルシフェラーゼを発現する卵巣腫瘍細胞のintrabursal注射を受け取ります。治療は、経口胃管栄養法により投与される。腫瘍の成長はによって監視されています...

生体イメージングおよび卵巣癌の同所性マウスモデルにおける治療的処置の

骨転移の実験的マウスモデルは、ルシフェラーゼを発現する乳腺腫瘍細胞の心臓内の送達後に設立されました。開発腫瘍と溶骨性病変の結果は、生物発光とマイクロCT画像を縦方向にモニターした。...

生物発光とマイクロCTイメージングで腫瘍転移と溶骨性病変の監視

低酸素誘導因子-1αの活性の生物発光イメージングは​​、乳がんの脳転移のマウスモデルにおける頭蓋内腫瘍の低酸素症の開発を監視するために適用されます。...

マウスモデルにおける乳がんの脳転移の腫瘍の低酸素動態の in vivo生物発光イメージングに

我々は侵襲的な表現型への微小環境に影響を与える進行中の乳房の腫瘍細胞と他の細胞間の相互作用をリアルタイムでライブセルイメージングのための3D共培養モデルを開発しました。これらのモデルは、パラクリン誘起分解、ケモカイン/サイトカインと侵襲性に関与するキナーゼ経路を標的とする薬剤の臨床画面として使用できます。...

腫瘍の4DライブセルイメージングのためのMAMEモデル：微小環境の相互作用に影響を与える悪性進行

源：マリーナ・アランテス・ラディッキ1、ビクター・カルロス・メロ1、ヴィクトリア・パス・マチャド1、マルシア・クリスティーナ・オリベイラ・ダ・ロシャ1、ジャクリーン・ヴァス・デ・オリベイラ1、ルアナ・クリスティーナ・カマルゴ1,2、ルイス・アレクサンドル・ミュールマン1、リカルド・ベンテス・アゼベド1、ソニア・ナイル・バオ1、ジョアン・パウロ・フィゲイロ・ロンゴ11ブラジリア大学生物科学研究所 2ブラジリア大学心理学研究所基礎心理プロセス学科このビデオでは、ルシフェラーゼ発現乳房腺癌細胞を雌マウスに注射し、生物発光シグナルをモニタリングして原発性および転移性腫瘍の増殖を経時的に評価することにより、in...

雌マウスモデルにおける乳房腫瘍進行の生物発光イメージング

同所性乳癌原発腫瘍モデルおよび原発腫瘍の外科的除去が記載されている自然転移を生成するために、マウスの寿命を延長します。腫瘍の増殖および進行をモニターし、ルシフェラーゼ蛍光イメージングにより定量化されます。...

自発的乳がん転移の同所性マウスモデル

このプロトコルは、単一細胞の解像度で、生体内で 、リアルタイムで多細胞相互作用の延長タイムラプスイメージングを実行するための多光子顕微鏡の使用を記載しています。...

腫瘍微小環境におけるリアルタイム多細胞ダイナミクスの拡張タイムラプス生体内イメージング

本研究は、緑色蛍光タンパク質および生物発光シグナルの検出と定量的分子検出技術の統合によって腫瘍負荷を正確に評価するための高度なプロトコルをプリセットする。...

交感性乳癌モデルを用いたトリプルネガティブ乳癌の研究

ここでは、種々の乳癌細胞株におけるルシフェラーゼおよび緑色蛍光タンパク質発現を伴う非侵襲的モニタリング法について説明する。このプロトコルは、マウスにおける腫瘍形成および転移性コロニー形成をリアルタイムでモニターする技術を提供する。...

生物発光を用いたマウスにおける乳がん増殖および転移性コロニー形成のモニタリング

この原稿は、同所注射された乳房腫瘍からの自然肺転移の確立および縦断的成長モニタリングの方法論を説明しており、転移カスケードのすべての段階での介入に適しています。...

インビボ 同所注射された乳房腫瘍細胞の自然肺転移を測定するためのイメージング

ここでは、動物モデルにおける転移性乳がんへのRNAオリゴマーを運ぶ磁性酸化鉄ナノ粒子の in vivo...

マウス乳がん転移におけるナノ薬物蓄積のモニタリング

学ぶ マウス乳癌モデルにおける抗腫瘍薬の浸透と治療応答を単一細胞解像度でリアルタイムイメージングする方法。スピニングディスク共焦点顕微鏡を用いて細胞死や腫瘍間質相互作用の変化を可視化し、がん治療の効率性を評価する。

乳癌のマウスモデルにおいて腫瘍微小環境における薬剤応答のイメージングを生きる

さらに動画を探す