Name: 皮質ニューロンにおける経験依存性分子の変化の in vivo二光子イメージングにおける (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 7 s
Description: 学ぶ in vivo二光子イメージング法により、個々の皮質ニューロンにおける経験依存性ARC遺伝子発現の分子変化をリアルタイムで追跡する方法です。GFPレポーターとノックインマウスを用いて、神経可塑性のメカニズム解明に貢献します。

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著者らは支援を撮影のため手術の撮影機器、D.クォンに対して、L. Belluscioに感謝したいと思い、ビデオのためのK.劉はすべてのバックグラウンド·ミュージックのための支援を、編集、およびK.マクラウド。 KWは学内研究プログラムのNIMH課や遺伝子、認知と精神病プログラムの寛大な支援を認めている。この仕事はNIMH学内研究プログラム（VC、YY SMKW）と学内の臨床および生物学的研究プログラムのNIAAA課（VC、RMC、DML）によってサポートされていました。

後述の実験手順は、メンタルヘルス動物のケアと使用委員会の国立研究所によって承認され、 実験動物の管理と使用のための健康ガイドの国立研究所に合わせてあった。 1。術前準備<ol><li>無菌手術前にホットビーズ滅菌器ですべてのツールをきれいにし、70％エタノールで手術部位を掃除し、きれいなドロップ布を下に置く。滅菌手袋を着用してください。 intraperitonially 0.02ミリリットル/ gであり、与えられた時に作りたての1.2パーセントAVERTIN溶液で動物を麻酔。あるいは、受動スカベンジャー回路付きノーズコーン、誘導のための5％、メンテナンスのために1.5％、イソフルランを通してガスと麻酔。完全鎮静状態を確保するためにテールやつま先ピンチを使用して麻酔レベルをチェックします。 </li><li>無菌の眼軟膏を用いて動物の目をカバーし、作りたてのデキサメタゾンを注入する（0.2 mg / kg）及びカルプロフェン（5 mg / kg）をsubcutaneousl脳の腫れや炎症を防ぐために、11 yである。耳の間の頭蓋骨の上の毛を剃ると、ベタジンスクラブと70％エタノール3交互綿棒で皮膚を消毒する。 </li><li> earbarsと定位手術の段階で動物をマウントし、37℃に設定動物下水循環加熱パッド付き℃、定期的に動物の麻酔レベルをチェックし、必要に応じてオリジナルの麻酔量を補う。 </li><li>エリアを麻痺させるために、頭皮の皮膚の下に0.5％Marcaineの200μlを注入します。皮膚を切開し、頭蓋骨の上に皮弁を取り外します。骨膜を取り外し、きれいな綿棒でその領域を乾燥させます。 </li></ol> 2。慢性頭蓋窓手術<ol><li>穏やかに興味のある脳領域にわたって3〜5ミリメ​​ートルの直径の円を概説する0.5ミリメートルバリで高速歯科用ドリルを使用します。定期的にクリーン綿棒と滅菌0.9％食塩水と離れて明確な骨塵で掘削地点を濡らす。骨、出血した場​​合、gを使用するelfoamはブリードをブロットおよびそれが停止するのを待つように滅菌生理食塩水に浸漬した。 </li><li>最後の骨の層に到達すると、先の細いピンセットで骨の島を持ち上げて外します。ウィンドウは骨縫合を超えた場合に、骨の一番下の棚に硬添付ファイルが発生する可能性があります。骨弁が持ち上げられるように、これらは、優しく除去しなければならない。 </li><li>ロールは、その表面をきれいにし、停止するために、任意の硬膜出血を待つさらさ硬膜の上にそっとゲル発泡体を湿らせた重要なステップは：すべての硬膜出血が停止するまで、先に進まないでください。頭蓋窓の中に閉じ込めになる血液は、通常不透明なウィンドウにつながる。 </li><li>関心領域は、硬膜は、特に厚さは場所の下にある場合、その上に硬膜を除去することが必要な場合があります。このような場合は、優しく、非常に微細鉗子で下PIAから硬膜を分離し、細かい鉗子の別のペアで持ち上げる硬膜の小さな切開を行い、その後、カットエッジをつかみ、そっと硬膜を分割します。硬膜が薄くても強いので、硬膜の無傷のエッジを持つ脳をスライスしないように注意してください。 </li><li>無菌ACSFまたは滅菌生理食塩水で洗い流してください。 </li><li>硬膜またはPIA経由で滅菌ガラスカバースリップ（3-5 mm）を築く重要なステップ：大幅頭蓋骨カーブを囲む場合は、硬膜またはPIAは地域でカバースリップとの密接な接触をすることはないだろうスペースを埋めるためにKwiksil 12接着剤を使用それが画像化されることはありません。 </li><li>エラストマーの接着剤とガラスカバースリップの端をカバーするためにシアノアクリレートゲルを使用しています。 。任意シアノアクリレートゲルが脳表面に触れないように注意してください：シアノアクリレートゲル、またはkrazyglueと歯科用セメント混合物と全露出頭蓋骨重要なステップをカバーしています 。 </li><li>頭蓋骨の反対側の端にあるカスタムメイドの金属頭部固定バーを埋め込む。 </li><li>ケトプロフェン、5 mg / kgを、foのintraperitonial注射後、暖かい回復室に動物を戻すrの疼痛管理。手術後2日以上鎮痛剤を続行します。 </li><li>術後の回復の2週間後には、（誘導の場合は5％、保守のための1.5％）イソフルランで動物を麻酔し、頭部固定用フレームを使用してカスタムメイドの顕微鏡ステージでそれをマウントし、光学的透明度のために頭蓋窓をチェック青色光と照明の下で。脳表面の血管の明瞭さは頭蓋窓の質の高い指標である。血管エッジがはっきりと定義されている場合、ウィンドウが使用可能である可能性が高い。 2週間の術後の回復時間は、手術から回復するために動物のための十分な時間を確保することをお勧めします。頭蓋窓は一般的にクリアして、改善するこの時期に、と硬膜の肥厚や頭蓋骨の再生、ウィンドウの画質を劣化させるまで数ヶ月に付加週間の光学的に透明なままです。 </li></ol> 3。二光子顕微鏡を行動プロトコルおよびレーザー<ol><li>明確なcと動物ranial窓は環境刺激にさらされたり、行動のトレーニングセッションを行い、その後、最大アーク-GFP発現時にその後結像される。行動プロトコルを開始する前に、動物は、ベースラインアーク-GFPの発現レベルでの日々の変動を最小限にするために一貫性のあるホームケージ環境で保たれるべきである。 </li><li>興味のある脳領域に応じて、行動訓練や環境刺激パラダイムを開始します。例えば、動物が日連続で異なるビジュアルな環境にさらされることができ、視覚野10に刺激特異的応答を識別するための視覚的な刺激の後に毎日結像される。 </li><li>ニューロンにおけるアーク-GFPの蛍光は、通常は2時間刺激した後にそのピークレベルに達する。実験のタイムラインは、そのピーク蛍光レベルでのニューロンにおけるアーク-GFP発現の検出を容易にするために最適化することができる。 </li><li>行動訓練セッションまたはenvironmenta後にlの刺激が完了すると、（誘導の場合は5％、保守のための1.5％）イソフルランで動物を麻酔し、二光子顕微鏡でヘッド固定用フレームを使用してカスタムメイドの顕微鏡ステージで動物をマウントします。 </li><li>動物の頭の位置が頭蓋骨に注入された金属棒を使って、ステージに直接接続し、ヘッド固定用フレームに固定されています。イソフルランと酸素が継続的にノーズコーンを介してマウスに供給される。体温は加熱パッドを使用して維持されます。 </li><li>顕微鏡の検出器は、暗い​​部屋で二光子レーザー走査を行うことで、周囲の光から保護されていることを確認します。イメージングのための20倍または25倍（開口数1.05）水​​浸レンズを使用しています。まず、落射蛍光照明の下で、将来像の位置合わせのためのCCDカメラを使って、対象の脳領域の上表面の血管パターンの画像を取得する。 </li><li> 3次元画像スタックを取得するためにスキャン二光子レーザーを起動します。オリンパスFV1000MPEの多光子顕微鏡は、我々のセットアップで使用されています。二光子レーザーの励起波長は920 nmに設定されており、客観から出射されるレーザのパワーが約50 mWで設定されています。放出される蛍光を同時に標本の近くに配置し外部2チャンネルphotomutiplier検出システムを使用して、緑と赤のチャネル（570nmでのダイクロイックミラー、495から540 nmと570から625 nmにおけるバリアフィルタ）で検出される。組織の自家蛍光は、チャンネル13、14の両方に表示され、一方の円弧GFP蛍光は唯一、緑のチャンネルに表示されます。 </li><li>典型的な画像スタックは約320x320x100μmの寸法（幅×長さ×深さ）が0.5μm/ピクセルの水平方向の解像度、と3μm/ピクセルの垂直方向の解像度を持っています。 </li><li>画像スタックを取得した後、そのホームケージに動物を返す。次の行動やイメージングセッションまで動物を乱すことがありません。 desirとして日間にわたる行動やイメージング手順を繰り返しエド。同じ画像の場所に戻って方向付けるために以前に取得した脳表面の血管画像を使用しています。 </li></ol>

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</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

ここで説明するin vivoイメージング法で生きている動物で、複数の日にわたってニューロンの同じセットでアーク遺伝子発現変化の反復検査が可能になります。それは様々な行動の経験に応じて、個々のニューロンにおける神経可塑性関連分子動力学に関する情報を取得するための効率的かつ汎用性の高い方法です。そのようなin situハイブリダイゼーションおよび免疫染色のように標準的な組織化学的方法は、単一セルの解像度3を達成しますが、複数日にわたって同じニューロンにおける遺伝子発現の変化を追跡する能力を欠いていることができます。生物発光は、磁気共鳴、または核イメージング法は、適切な記者15を通って同じ動物における遺伝子発現の変化を追跡しますが、個々のニューロンにおける発現レベルを区別するために空間分解能が不足していることができます。このように、遺伝子発現の変化を測定するためには、他の既存の手法では、空間分解能と時間的なCOVの両方に一致...

<table border="1"><tbody><tr><td> 機器の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td> FV1000多光子レーザー走査顕微鏡</td><td>オリンポス</td><td> FV1000MPE </td><td>イメージング</td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td> Omano </td><td> 555V107 </td><td>手術</td></tr><tr><td>マウスに対する定位手術の段階</td><td>ハーバード装置</td><td> 726335 </td><td>手術</td></tr><tr><td> 20Xまたは25X水浸対物レンズ</td><td>オリンポス</td><td> XLPL25XWMP </td><td>イメージング</td></tr><tr><td>ヘッド固定用フレーム付き顕微鏡ステージ</td><td>カスタムメード</td><td> N / A </td><td>イメージング</td></tr><tr><td>ファイン鉗子</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 11251から20 </td><td>手術</td></tr><tr><td>歯科用ドリルバリ</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 19007から05 </td><td>手術</td></tr><tr><td> CCDカメラ</td><td> QImaging </td><td> QICAM 12ビット</td><td>イメージング</td></tr></tbody></table>

皮質ニューロンにおける経験依存性分子の変化の in vivo二光子イメージングにおける

In Vivo Two-photon Imaging Of Experience-dependent Molecular Changes In Cortical Neurons

経験に応じて変更することが脳の能力は、健康な脳機能に不可欠であり、この過程で異常が脳障害の1,2の様に貢献しています。より良い脳の回路は、動物の経験に反応するメカニズムを理解するために生きている動物で、長期間にわたってニューロンの指定されたセットの中で経験依存分子の変化を監視する機能が必要です。経験と関連した神経活動は神経細胞1,2における遺伝子発現の変化を引き起こすことが知られているが、そのような変化を検出する方法のほとんどは、複数日にわたって同じニューロンの繰り返し観測を許可していないか、または個々のニューロン3を観察するのに十分な解像度を持っていない、4。ここでは、以上の個々の皮質ニューロンにおける経験依存性の遺伝子発現の変化を追跡するために遺伝的にコードされた蛍光レポーターを用いた in vivo二光子顕微鏡に組み合わせた方法を記載する<html>日々の経験のコース。 定評のある経験依存性遺伝子の一つが活性調節細胞骨格関連タンパク質（ARC）は5,6です。アークの転写は急速であり、非常に激化神経活動3により誘導され、そのタンパク質産物は、グルタミン酸受容体との長期的なシナプス可塑性7のエンドサイトーシスを調節する。アークの発現は広く3特定の行動に関与する神経回路をマッピングするための分子マーカーとして使用されてきた。これらの研究の大部分では、アーク式は固定の脳切片におけるin situハイブリダイゼーションや免疫組織化学によって検出した。これらのメソッドはArcの発現が調べていなかったアーク発現の細胞パターン日間反復または一味違った体験の複数のエピソードに変更される可能性がありますどのように、行動の経験の後、興奮性ニューロンのサブセットに局在していたことが明らかになっていますが。 ntentが&quot;&gt; 生体内では 2光子顕微鏡は、生きている脳8,9における経験依存的細胞の変化を調べるための強力な方法を提供しています。2光子顕微鏡による生きた神経細胞におけるアーク式の検査を有効にするには、我々は、以前に生成されたノックをGFPレポーターが内因性アークプロモーター10の制御下に置かれているマウス系統インチこのプロトコルでは、生きた動物におけるニューロンのアンサンブルにおける経験依存アーク-GFPの発現パターンを追跡するための手術の準備と撮像法について説明していますこの方法では、慢性頭蓋窓は最初の利息の皮質領域にわたってアーク-GFPマウスに移植した。これらの動物は、その後、繰り返し数日間にわたって所望の行動パラダイム後の2光子顕微鏡で撮像した。このメソッドは、帳簿動物に一般的に適用することができる経験依存性分子の変化の他の蛍光レポーター4。

<html>このプロトコルは、生きた動物の個々の皮質ニューロンにおける経験依存的分子の変化を追跡する方法について説明します。慢性頭蓋ウィンドウが最初に遺伝子発現の蛍光レポーターを運ぶマウスへの関心の皮質領域上に作成されます。二光子顕微鏡は、その後、個々のニューロンにおける行動的に誘発され分子の変化を観察して、複数の日にわたってニューロンの同じセットでこのように変化します（ 図1）を追跡するために、様々な行動パラダイムと結合することができる。 アーク-GFPマウスでは、アーク遺伝子発現における経験依存的変化は確実にこのプロトコルを使用して、複数の日のための個々の皮質ニューロンで撮像することができる。トランスジェニックアーク-GFPノックインマウス即時型初期遺伝子Arcの内因性プロモーター（ 図2）の制御下で不安定に緑色蛍光タンパク質（d2EGFP、タンパク質半減期約2時間）を発現する。 ontentは&quot;&gt;慢性頭蓋のウィンドウについて説明した過去のプロトコルが成功した頭蓋窓手術11を<...

ニューロンにおける経験依存的分子変化は行動の課題に応じて適応する脳の能力のために不可欠である。アン<em生体内で&gt;</em&gt; 2光子イメージング法は、遺伝的にコードされた記者を通じて、個々の皮質ニューロンにおけるそのような分子の変化の追跡を可能にする、ここで説明されます。

The brain's ability to change in response to experience is essential for healthy brain function, and abnormalities in this process contribute to a variety ...

ニューロンにおける依存性分子変化の経験は、脳が行動上の課題に反応して適応する能力に不可欠です。ここでは、遺伝的にコードされたレポーターを介して個々の皮質ニューロンにおけるそのような分子変化の追跡を可能にするin vivo 2光子イメージング法が記載されている。確立された経験豊富な依存遺伝子の1つは、活性調節細胞骨格関連タンパク質またはアークです。ARCの転写は、神経細胞の活動の激化によって急速かつ高度に誘導される 2つの光顕微鏡による生きたニューロンのアーク発現の検査を可能にするために、我々は、GFPレポーターが内因性アークプロモーターの制御下に置かれたノックインマウスラインを利用する。このプロトコルは、生きた動物のニューロン集団における経験された従属性アークGFP発現パターンを追跡するための外科的調製物およびイメージング手順を説明しています。まず、この技術に必要な動物の準備について説明します。アークGFP動物は頭蓋窓手術を受け、約2週間で手術から回復します。次に、頭蓋窓の品質がチェックされ、それを介してニューロンを画像化できる場合、動物は行動および2つの光子イメージング実験の開始まで準環境に置かれます。次に、これらの動物を2つの写真顕微鏡で繰り返し画像化します。数日間かけて目的の行動パラダイムが完成したら、ホットビーズ滅菌器ですべてのツールを洗浄します。無菌手術の前に、70%エタノールで手術部位を洗浄し、清潔なドロップクロスを置きます。腹腔内 1.2 ミリリットル/グラムで与えられる 1.2% エバートン溶液で動物を麻酔します。尻尾またはつま先をつまんで麻酔レベルを確認し、完全な鎮静を確保します。動物の目を滅菌眼軟膏で覆い、デキサメタゾン0.2ミリグラム/キログラムとカルプロフェン5ミリグラム/キログラムを皮下に注射します。.耳の間の頭蓋骨の上の髪を剃り、ベタジンスクラブと70%エタノールの3つの交互の綿棒で皮膚を滅菌し、動物を定位固定手術段階で動物にマウントします 動物の下に水循環加熱パッドが付いた耳バーで37度に設定された。動物の麻酔レベルを定期的にチェックし、必要に応じて元の麻酔薬の投与量を補充します。頭皮の皮膚の下に200マイクロリットルの0.5%マルカインを注入して、その領域を麻痺させ、皮膚を切開し、頭蓋骨の上の皮膚フラップを取り除きます。骨膜を取り外し、清潔な綿棒でその部分を乾かします。0.5ミリメートルのバリが付いた高速デンタルドリルを使用して、ニーズに応じて、関心のある脳領域に直径3〜5ミリメートルの円の輪郭を緩やかに描きます。滅菌済みの0.9%生理食塩水で掘削部位を定期的に濡らし、清潔な綿棒で骨の粉塵を取り除きます。骨から出血した場合は、滅菌生理食塩水にあらかじめ浸したジェルフォームを使用して出血を拭き取り、出血が止まるのを待ちます。最後の骨層に到達したら、先端の細かい鉗子で骨の島を持ち上げて取り除きます。骨の一番下の棚に硬膜の付着部があるかもしれません。窓が骨縫合糸と交差している場合は、これらをそっと取り除く必要があります。骨のフラップが持ち上げられたら、露出した硬膜の上に湿らせて泡をそっとゲル化して表面をきれいにし、硬膜出血が止まるのを待ちます。あなたの関心領域が硬膜が特に厚い場所の下にある場合、その上の硬膜を取り除く必要があるかもしれません。その場合は、非常に細い鉗子で硬膜を下のPIAからそっと分離します。持ち上げた硬膜に別の細い鉗子で小さな切開をします。次に、切り口をつかみ、デュラをそっと分割します。硬膜は細いですが強度が高いので、硬膜の無傷のエッジで脳をスライスしないように注意してください。関心のある領域から離れて作業するときは、滅菌 A CSF または滅菌生理食塩水でその領域をたっぷりとすすいでください。周囲の頭蓋骨が露出した硬膜または軟膜の周りで大きく湾曲している場合は、クイックセル接着剤を使用して、画像化されない領域の窓カバースリップと密接に接触しないスペースを埋めます。次に、滅菌ガラスカバーを硬膜またはピアの上にそっと置きます。エラストマー接着剤とガラスの端を覆うために、佐野アクリルゲルを使用します。カバースリップ。露出した頭蓋骨全体を佐野シアノアクリレートゲルまたはクレイジーグルーと歯科用セメントの混合物で覆います。カスタムメイドの金属製ヘッド固定バーを頭蓋骨の反対側に埋め込みます。疼痛管理のためにケトプロフェン5ミリグラム/キログラムの腹腔内注射後、動物を温かい回復室に戻します。.術後 2 日間鎮痛剤を続けます。術後回復の2週間後、ISOフッ素で動物に麻酔をかけます。導入用5%、メンテナンス用1.5%。頭部固定フレーム付きのカスタムメイドの顕微鏡ステージに取り付け、頭蓋窓の光学的透明度を確認します。ブルーライトによる照明下では、脳表面の血管の透明度は、頭蓋窓の品質を強く示しています。エッジが明確に定義されている場合、ウィンドウは使用可能である可能性が高くなります。行動プロトコルを開始する前に、動物を一貫したホームケージ環境に保管して、日々の変動を最小限に抑える必要があります。ベースラインアークでは、GFP発現レベルは、関心のある脳領域に応じて行動訓練または環境刺激パラダイムを開始します。例えば、動物を連続して異なる視覚環境に曝露して、視覚野弧内のニューロンの特徴的な集団を画像化することができ、ニューロンのGFP蛍光は通常、刺激の2時間後にそのピークレベルに達する。実験のタイムラインは、ピーク蛍光レベルでのニューロンにおけるARC GFP発現の検出を容易にするために最適化することができます。行動訓練セッションまたは環境刺激が完了した後、ISOフッ素で動物に麻酔をかけます 導入のために5%、維持のために1.5%。動物を頭部固定フレーム付きのカスタムメイドの顕微鏡ステージに取り付けます。2光子顕微鏡では、動物の頭部の位置は、頭蓋骨に埋め込まれた金属棒を使用してステージに直接接続する頭部固定フレームに固定されます。ISOフッ素と酸素は、ノーズコーンを介してマウスに連続的に供給されます。体温は加熱パッドを使用して維持されます。顕微鏡検出器が周囲光から保護されていることを確認してください。暗室で2光子レーザースキャンを行うことにより、20 xまたは25 x 1.05の開口数水浸レンズを使用してイメージングします。まず、落射蛍光照明下で、CCDカメラで脳の関心領域上の表面血管パターンの画像を取得します。将来の画像アライメントのために、2光子レーザースキャンを開始して3D画像スタックを取得します。2光子レーザーの励起波長は920ナノメートル、出力は約50ナノメートルに設定されています。ミリワットで放出された蛍光は、緑と赤の両方のチャネルアークで同時に検出されます。GFP蛍光は緑色チャネルにのみ現れますが、組織自家蛍光は両方のチャネルに現れます。一般的な画像スタックの寸法は、約 320 x 300、20 x 100 マイクロメートル、水平解像度 0.5 マイクロメートル/ピクセル、垂直解像度 3 マイクロメートル/ピクセルです。画像スタックを取得したら、動物をホームケージに戻します。次の行動およびイメージングセッションまで動物を邪魔しないでください。必要に応じて、行動とイメージングの手順を数日にわたって繰り返します。以前に取得した脳表面の血管画像を使用して、同じイメージング位置に向きを戻します。この技術の強みは、同じニューロンセットのアーク遺伝子発現変化を数日間にわたって調べることができることです。生きている動物で。標準的なHISTOCHEMICAL法では、シングルセルの分解能を達成できますが、同じニューロンの遺伝子発現変化を数日間にわたって追跡することはできません。磁気共鳴や核イメージングなどの他のイメージング手法では、個々のニューロンをイメージングするための解像度が不足しています。そのため、遺伝子発現の変化を測定する他の既存の方法は、ここで説明するイメージング方法の空間分解能と時間的カバレッジの両方に匹敵することはできません。この手順の重要なステップは、頭蓋窓手術です。脳への外傷やガラスカバースリップの下に血液が残らないように、細心の注意を払って実行する必要があります。硬膜は必要に応じて取り外すことができます。この手順を使用した脳内の最大イメージング深度は、頭蓋窓の明瞭さ、顕微鏡のセットアップ、および蛍光レポーターの明るさに依存することに注意してください。このin vivoイメージングプロトコルは、さまざまな行動経験に応答して個々のニューロンの神経可塑性に関連する分子動力学に関する情報を取得するための効率的で汎用性の高い方法であり、他の経験豊富な制御遺伝子の蛍光レポーターを保有するトランスジェニックマウスに一般的に適用できる可能性があります。

in-vivo-two-photon-imaging-experience-dependent-molecular-changes

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

新皮質のマイクロ回路のネットワークのダイナミクスを理解するために、それは同時に、神経細胞の多数のアクティビティを記録することが不可欠です。のin...

レイヤーin vivoでの2光子カルシウムイメージングマウスの2 / 3

マウス脊柱を安定させ、繰り返し実行するために低侵襲プロトコル...

二光子顕微鏡を用いたマウス脊髄の in vivoイメージングで

出典: Mizuno, H., et al. In Vivo 新生児マウスの皮質ニューロンの2光子イメージング J. Vis. Exp.

マウスの子犬の神経形態をイメージングするための2光子顕微鏡法

出典:Kamei, R., et al.、マウス海馬におけるミクログリアのIn vivo慢性二光子イメージング。J. Vis. 経験。(2022年)このビデオは、海馬CA1(Cornu ammonis 1)と歯状回におけるミクログリアダイナミクスのin...

マウス海馬におけるミクログリアダイナミクスのin vivo二光子イメージング

方法は新皮質の所定の機能、マイクロドメインにおける蛍光色素でニューロンを標識に記載されている。まず、内因性シグナル光学イメージング、機能マップを得るために使用されます。その後、2光子顕微鏡は、マップのミクロドメイン内でラベルとイメージニューロンに使用されます。...

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生きている動物のTime-lapse imaging...

二光子<em&gt; in vivoで</em&gt;間引き頭蓋骨の準備を使用して、マウス皮質における樹状突起棘のイメージング

このビデオは、Thy1-GFPトランスジェニックラインのin vivo...

同時2光子<em&gt;インビボ</emマウス脳梁膨大後部皮質におけるシナプス入力とシナプス後ターゲットの&gt;イメージング

生体内で新生仔マウスの大脳皮質ニューロンの 2 光子イメージング

この方法は、生きているマウスの海馬への光学的アクセスを可能にする慢性的な調製を記述する。この調製は、数週間の期間にわたって神経構造可塑性および活性誘発細胞可塑性の縦方向光学イメージングを行うために使用することができる。...

生きたマウスにおける後部海馬CA1の縦方向2光子イメージング

本稿では、精密制御手術と二光子顕微鏡を用いて、マウス海馬CA1の静止ミクログリアをin vivo...

インビボ マウス海馬におけるミクログリアの慢性二光子イメージング

学ぶ in vivo二光子イメージング法により、個々の皮質ニューロンにおける経験依存性ARC遺伝子発現の分子変化をリアルタイムで追跡する方法です。GFPレポーターとノックインマウスを用いて、神経可塑性のメカニズム解明に貢献します。

皮質ニューロンにおける経験依存性分子の変化の in vivo二光子イメージングにおける

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