Name: の定位注入マイクロRNA発現マウス海馬CA1領域にレンチウイルスと行動アウトカムの評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-06-10T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 6 s
Description: 学ぶマウス海馬CA1領域へのレンチウイルス定位注入法とmicroRNA発現による認知行動変化の評価手法。この効率的な遺伝子導入技術は神経科学と行動研究に有用です。

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この研究は、脳科学のためのエドモンドとリリー·サフラセンター（SBフェローシップ）、イスラエル科学財団（HSにグラント第11分の378、）と科学のためのドイツのイスラエル財団の遺産遺産バイオメディカル·サイエンス·パートナーシップ·プログラムによってサポートされています研究開発（GIF）（HSにグラント号1093-32.2/2010、）。

1。レンチウイルスの準備<ol><li> 90％コンフルエンスにHEK-293FT細胞を成長させる。 </li><li>無血清DMEMにトランスフェクション変化細胞培地の日に1 mMのグルタミンおよび50 mg / mlのペニシリン - ストレプトマイシンを補充した。 </li><li> pLKO.1-Puroのベクターで、キャリア9として1 mg / mlのポリエチレンイミン10μlのを使用して、デルタR8.2およびVSV-G部分及び利息のmiRNAをコードするプラスミドを細胞に共トランスフェクション。 </li><li> 0.45μmのフィルターを通過フィルタ、24時間と48時間のトランスフェクション後にパッケージ化されたレンチウイルスを収集します。 </li><li> 2時間と15°-70℃、アリコートと店舗℃で、70,000×gでの遠心分離を使用したレンチウイルスを集中</li><li>希釈したウイルス製剤（ウェルあたりベクトル1〜10 -6ミリリットル）とHEK-293T細胞に感染させることにより、ウイルス力価を測定します。結果として力価（1ml当たり約1×10 9感染性粒子が推奨され、最低）がGEの発現のために評価される興味のあるね、ピューロマイシン選択を使用して、カウントを蛍光細胞を通してウイルスをGFPを発現を定量することによって。 </li></ol>レンチウイルスの準備の詳細なプロトコルのために10を参照してください。 2。手術のための動物の準備<ol><li>外科医の服装は、手術ガウン、滅菌手袋、キャップとマスクを含める必要があります。 </li><li>動物を秤量し、各薬物に指定されたように、動物の体重に比例した量で、ケタミンの混合物のIP-注射でそれを麻酔。ケタミン/キシラジン混合物については、80〜200 mg / kgでケタミンおよび7-20 mg / kgをキシラジンの用量範囲は、通常のマウスのために使用される。 </li><li>動物は完全に麻酔になるまで待ってから、手足を延長して、指で押すことによって、動物の後肢に撤退反射の欠如のために確認してください。 </li><li>ボックスに指定されている痛みの軽減のために、、Rimadylを皮下動物を注入。 Rymadilの典型的な用量範囲は5-10 mgのです。 </li><li>安定した体温を維持し、軟膏と目を潤すために加熱パッドに動物を配置します。 </li><li>トリミングマシンと両耳の間の領域を剃る。 </li><li>ベタジンで皮膚を消毒する。 </li></ol> 3。スカルと掘削の露出<ol><li>動物の耳のすぐ前方の隙間にロッドを調整することによって、stereotact内側に動物を配置します。 </li><li>耳の間の約1.5センチ前後切開を行い、手術クランプ（serfines）とそれを開いたままにメスを使用してください。 </li><li>冠状縫合と矢状縫合の交点まで綿棒で頭蓋骨の表面をきれいにする、すなわちブレグマとコロナとラムダ縫合の交点、すなわちラムダ、表示されます。 </li><li>すべての3つの軸で、ブレグマポイントへstereotactが保有するシリンジの先端を、指す。座標を書き留める。この点はゼロ経口としてみなされるすべての3つの軸のint。 </li><li>平面的な動きが頭蓋骨に傷をして正しい場所に注射器ヘッドを移動させないように、縦軸に注射器を持ち上げます。内側/横軸で、前方/後方の軸で±1.8 -2腹/背軸に-1.5：海馬CA1注射以下は、mm単位でブレグマを基準とした座標を必要とする。 </li><li>それは頭蓋骨に触れるまで、シリンジの先端を下げて、マーカーでスポットをマークします。刺す避けるために戻ってシリンジを取り外し。 </li><li>だけ細かい穴あけを使用頭蓋骨に浅い穴を開けます。ので、軟部組織の下にドリルしていきませんドリラーをしっかりホールド。あなたは他のと安定さ片手でかつ短パルスで掘削することでこれを防ぐことができます。 </li></ol> 4。レンチウイルスの注射<ol><li>濃縮されたレンチウイルス溶液0.5mlを撤回。 </li><li>穴のすぐ上の注射器を置き、REAまでゆっくりと垂直に下げるCHES頭蓋骨の表面。非常にゆっくりと脳に注射器を下げ続ける。このステップでは、いくつかの出血は必ずしも失敗浸透を示すものではありませんその発生する可能性があります。出血が発生した場合は綿棒でそれを掃討。 </li><li> 0.02ミリリットル/分（0.5μLを25分に注入されるであろう）にデジタルポンプを設定し、注入を開始します。スロー注入は効果的な組織の中にウイルスの拡散や逆流を防止することができます。いくつかのシリンジタイプで元の座標と注入するに後退前0.5mmの余分な深さのために注射器を挿入することを検討してください。 </li><li>注入が完了した後に材料が注射器によって形成された道に戻って後退するのではなく脳内に広がることができるように追加の5分間待ちます。 </li><li>非常にゆっくりとシリンジを取り外し、バックフローを監視する。逆流は、この段階で観察された場合、注入された材料の一部が失われたであろう。 </li></ol> 5。傷のシーリングおよびリカバリ<ol><li>シール番目eはhistoacrylが巻か。目にhistoacrylの漏洩を避けるようにしてください。 </li><li>脱水を避けるために、1mlの予熱された生理食塩水で動物の腹腔内（IP）注射する。 </li><li>加熱されたパッドの上に配置されている回復ケージに動物を配置します。それがさらに1時間回復しながら動物を見てください。 </li></ol>体重減少、食欲不振、脱力/不能飼料または水を得るために、瀕死状態又は感染の場合には、動物の安楽死を行うべきである。齧歯動物の安楽死の許容方法はバルビツール酸塩、吸入麻酔薬、CO 2、CO、または全身麻酔と一緒に塩化カリウムです。 4〜6週間後、動物のナビゲーションメモリはモリス水迷路で評価されて評価します。レンチウイルスは、通常の射出球内でほとんどの細胞に感染します。 6。モリス水迷路における行動アセスメント<ol><li> Mで動物を訓練オリス水迷路。正確なトレーニングとテストのプロトコルのために11を参照してください。各試行の後、乾いたタオルで動物を乾燥、そのケージにそれを交換し、タンク内の水をリフレッシュ。 </li><li>毎日3日間連続、4試験のためモリス水迷路の動物をテストします。 、東西·南北の二日目：西南毎日例の初日のため、変更するために迷路の4方向（北、南、東と西）のそれぞれで迷路に動物を挿入 - 北東。各試行の後に動物を拭きます。 </li><li>試験中に試験はそのようなNoldus追跡システムなどの追跡システムで動物を追跡​​します。 </li><li> 12 回目のテストの試験の後、1分間のプラットフォームずに水タンクに動物を挿入します。これは、動物が取っている検索戦略を分析するために使用される。 </li><li> 12で提案されているようにデータを分析します。 </li></ol>

<ol><li>Siegel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+functional+screen+implicates+microRNA-138-dependent+regulation+of+the+depalmitoylation+enzyme+APT1+in+dendritic+spine+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">A functional screen implicates microRNA-138-dependent regulation of the depalmitoylation enzyme APT1 in dendritic spine morphogenesis.</a> Nature Cell Biology. 11, 705-716 (2009).</li>
<li>Jin, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biochemical+and+genetic+interaction+between+the+fragile+X+mental+retardation+protein+and+the+microRNA+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Biochemical and genetic interaction between the fragile X mental retardation protein and the microRNA pathway.</a> Nature Neuroscience. 7, 113-117 (2004).</li>
<li>Simon, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+microRNA+miR-1+regulates+a+MEF-2-dependent+retrograde+signal+at+neuromuscular+junctions%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The microRNA miR-1 regulates a MEF-2-dependent retrograde signal at neuromuscular junctions.</a> Cell. 133, 903-915 (2008).</li>
<li>Consiglio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+gene+therapy+of+metachromatic+leukodystrophy+by+lentiviral+vectors%3A+correction+of+neuropathology+and+protection+against+learning+impairments+in+affected+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">In vivo gene therapy of metachromatic leukodystrophy by lentiviral vectors: correction of neuropathology and protection against learning impairments in affected mice.</a> Nature Medicine. 7, 310-316 (2001).</li>
<li>Jakobsson, J., Lundberg, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lentiviral+vectors+for+use+in+the+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy%3A+The+Journal+of+the+American+Society+of+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Lentiviral vectors for use in the central nervous system.</a> Molecular Therapy: The Journal of the American Society of Gene Therapy. 13, 484-493 (2006).</li>
<li>Berson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic-associated+loss+of+hnRNP-A%2FB+in+Alzheimer%27s+disease+impairs+cortical+splicing+and+cognitive+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+Molecular+Medicine%22%5BJournal%5D)">Cholinergic-associated loss of hnRNP-A/B in Alzheimer's disease impairs cortical splicing and cognitive function in mice.</a> EMBO Molecular Medicine. , (2012).</li>
<li>Haramati, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA+as+repressors+of+stress-induced+anxiety%3A+the+case+of+amygdalar+miR-34%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%3A+The+Official+Journal+of+the+Society+for+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">MicroRNA as repressors of stress-induced anxiety: the case of amygdalar miR-34.</a> The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 31, 14191-14203 (2011).</li>
<li>Shaltiel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+microRNA-132+mediates+stress-inducible+cognitive+deficits+through+its+acetylcholinesterase+target%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Structure+%26+Function%22%5BJournal%5D)">Hippocampal microRNA-132 mediates stress-inducible cognitive deficits through its acetylcholinesterase target.</a> Brain Structure & Function. , 10-1007 (2012).</li>
<li>Boussif, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+vector+for+gene+and+oligonucleotide+transfer+into+cells+in+culture+and+in+vivo%3A+polyethylenimine%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">A versatile vector for gene and oligonucleotide transfer into cells in culture and in vivo: polyethylenimine.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92, 7297-7301 (1995).</li>
<li>Mendenhall, A., Lesnik, J., Mukherjee, C., Antes, T., Sengupta, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Packaging+HIV-+or+FIV-based+lentivector+expression+constructs+%26+transduction+of+VSV-G+pseudotyped+viral+particles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Packaging HIV- or FIV-based lentivector expression constructs & transduction of VSV-G pseudotyped viral particles.</a> J. Vis. Exp. (62), e3171(2012).</li>
<li>Nunez, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morris+Water+Maze+Experiment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Morris Water Maze Experiment.</a> J. Vis. Exp. (19), e897(2008).</li>
<li>Bromley-Brits, K., Deng, Y., Song, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morris+water+maze+test+for+learning+and+memory+deficits+in+Alzheimer%27s+disease+model+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Morris water maze test for learning and memory deficits in Alzheimer's disease model mice.</a> J. Vis. Exp. (53), e2920(2011).</li>
<li>Regev, L., Ezrielev, E., Gershon, E., Gil, S., Chen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+approach+for+intracerebroventricular+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Genetic approach for intracerebroventricular delivery.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107, 4424-4429 (2010).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

レンチウイルスの定位注入は、アップまたは異なる遺伝子やmiRNAのダウンレギュレーションの両方の生体内評価のための比較的迅速な方法である。主な選択肢ははるかに面倒で時間のかかる技法その後直接レンチウイルス注射である遺伝子組み換えマウスである。また、アップレギュレーションは、レンチウイルスの注射で、成体マウスで特定の時間に発生し、時間的制御を含む遺伝子改変マウスでは、ほとんどの場合そうであるように、開発中に漏出の可能性を含んでいない。時間的制御を完了し、変更された規制は、動物の生活の中で後半に発生した神経変性疾患における異なる遺伝子の関連性を評価する際に不可欠です。さらに、レンチウイルス注射は再び、遺伝子組み換え系の漏出の一定額の対象となり、正確な空間的制御を提供しています。マウスエンジニアリングシステムはendogeを利用唯一の特定の領域または細胞型において活性化される特定のプロモーターの挿入を追加することによって、異なる転写因子の特異性整流。比較して、レンチウイルスベクター注射を変えることなく空間に制限することができる。レンチウイルス注射の欠点は面倒な外科手術や研究室間の疑わしい再現性のための要件で...

神経系の機能の特定のmiRNAの役割は、最近いくつかの研究でレンチウイルス注射によって挑戦されています。 miRNAは、シナプス構造1、シナプス2およびシナプスの改造やメンテナンス3を維持し、再整形するために重要であることが見出されている。これらの研究は強くmiRNAはシェイプアップや神経系、認知機能の主な出力を維持するために両方で多値調節作用を介して、従事していることを示唆している。齧歯類の脳の特定の領域へのレンチウイルス粒子の定位注入はシナプスの形態と神経活動の変化を探し、そして過剰発現転写産物4,5の機能的意義を確立するために使用されたことができます。 miRNAの発現レンチウイルスと明確に定義された脳領域における神経細胞の直接感染は老化、脳障害や神経変性の研究に関与することができ、のmiRNA研究sが行動規制6-8の領域ではるかに高度な状 ​​態にある、との定位注入のmiRNA発現行動テストに続いてレンチウイルス粒子は、そのような目的のために有用かもしれません。過剰または発現下誘導するためのかなり骨の折れる方法は、遺伝子組み換えノックインまたはノックアウトマウスが含まれます。遺伝システムは、さらに表現を条件と時間的制御を可能にすることができる（ 例えば、CRE-ロックス、テトシステム）が、これらはほとんど注射手順の空間的な特異性を提供していないし、漏出の一定量は、ほとんどの場合があります。また、エンジニアリングの手順は、手術を必要とせず、比較的良好な再現性を持つ研究室全体で使用できますが、彼らは遅くなりますとはるかに人材と財源を必要とする。また、過剰または注射したマウスで発現下の時間的制御は、遺伝子改変マウスに比べてはるかに正確です。

<table><tbody><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>げっ歯類の体重計</td><td>Burtons(英国)</td><td>115-455</td><td></td></tr><tr><td>加熱パッド</td><td>FIRstTechnology</td><td>DCT-25</td><td></td></tr><tr><td>トリミングマシン</td><td>Stoelting</td><td>51465</td><td></td></tr><tr><td>stereotact</td><td>Stoelting</td><td>51730</td><td></td></tr>メス<tr><td>とブレード</td><td>ケント科学</td><td></td><td></td>INS500348</tr><tr><td>ハーランド シリンジ</td><td>ハミルトン</td><td>7632-01</td><td></td></tr><tr><td>ドリラー</td><td>ストールティング</td><td>51449</td><td></td></tr><tr><td>デジタル ポンプ</td><td>ハーバード製装置</td><td>704507</td><td></td></tr><tr><td>水タンクとプラットフォーム</td><td>ストールティング</td><td>60135</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Reagents</strong</td></tr><tr><td>>ketamine </td><td>ベトキノール (ルアー フランス)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3055503 domitor</td><td>オリオン ファーマ</td><td>107140-10</td><td></td></tr><tr><td>リマディル</td><td>ファイザー アニマル ヘルス</td><td>24751</td><td></td></tr><tr><td>水分軟膏 - Synthomycine 5%</td> <td>Rekah Pharmaceutical</td><td>195</td><td> </td></tr><tr><td>histoacryl</td><td>Braun</td><td>112101</td><td></td></tr><tr><td>生理食塩水</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D8662</td><td></td></tr></tbody></table>

の定位注入マイクロrna発現マウス海馬ca1領域にレンチウイルスと行動アウトカムの評価

Stereotactic Injection of MicroRNA-expressing Lentiviruses to the Mouse Hippocampus CA1 Region and Assessment of the Behavioral Outcome

マイクロRNAは（miRNA）は長さ22ヌクレオチドの周りの小さな規制一本鎖RNA分子であるかもしれないことを各ターゲット多数のmRNA転写を誘導破壊および/またはこれらのターゲットの翻訳を阻害することによって薄暗い全体の遺伝子発現経路。いくつかのmiRNAは、神経構造と機能を維持するために、より高いレベルの脳機能において重要な役割を果たし、及び方法は、これらの機能を探索するためのそれらのレベルを操作するために求められている。ここでは、miRNAをコードするウイルス粒子の定位注射によってマウスにおける過剰な強制miRNAの認知影響を調べるためのインビボ方法で直接を提案する。具体的には、現在のプロトコルでは、海馬CA1哺乳類メモリの統合に貢献する地域、学習、ストレス応答への注入を含み、便利な注射部位を提供しています。座標は、デジタル制御と非常に遅い保持されるマウスブレグマとウイルス血流に従って測定される。注射後、手術創傷を密閉し、動物が回復される。対応するmRNAターゲットのサイレンサーをコードレンチウイルスはナイーブマウスに、生理食塩水及び対照として &quot;空&quot;のレンチウイルスベクターを注射したマウスに注射したマウスで、観察された効果に責任を特定のmiRNA /ターゲットの相互作用を巻き込むのに役立つ。一ヶ月後噴射は、動物はそれらのナビゲーション学習および記憶能力を評価するためのモリス水迷路（MWM）で検討されている。 MWMは1センチメートル水面下に沈んで小さなプラットフォームで着色水で満たされた丸いタンクである。タンクの周りに着実視覚的な手がかりは、空間ナビゲーション（音と地球の磁場にもナビゲートで動物を助けるかもしれない）を可能にします。ビデオカメラの監視は、水泳とプラットフォームを見つけ、量に時間の経路を測定することができます。マウスが最初に隠れたプラットフォームをマウントすると、強制水泳からの脱出を提供することを教えられて、それは、その後、このエスケープとfを使用するためにテストされinally、プラットフォームは削除され、マウスがその前の位置を記憶した場合のプローブテストは検討されています。複数の連続した​​日間のテストプラットフォームを見つけてマウントするために短い待ち時間で試験されたマウスのパフォーマンスの向上を強調し、より直接的なルートがプラットフォームまたはその場所に到達するまで繰り返される。このような改善を示すに失敗すると、その後（高架迷路内など ）は、特に試験することができる障害、学習と記憶、および/ ​​または不安を表します。このアプローチは、研究、認知および/またはストレス関連のプロセス内の特定のmiRNAと標的転写物の検証を可能にします。

プロトコルの項に示されている流量でマウスの海馬のCA1領域に0.5μlのレンチウイルスの注射は、吻側尾軸で約1mm、と内側 - 外側と前方に約0.5mmの感染球を生み出す-後軸（ 図3）。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/50170/50170fig1.jpg" /> 図1。ブレグマ点と噴射装置 。 （）が示されブレグマ（冠状および矢状縫合の交点）と切開を行った後に見られるようにラムダ（ラムダと矢状縫合の交差点）の概略地図です。 （b）の写真は、定位装置の主要機械部品を描いた。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/50170/50170fig2.jpg" /> <strong...

マイクロRNAは、脳の構造と機能に重要な役割を持っている。ここでは、設計されたmiRNAの発現レンチウイルスの定位注射を使用して過剰発現海馬のmiRNAを強制する方法について説明します。このアプローチは、評価するための比較的急速な方法として役立つことができる<em生体内で&gt;</em&gt;特定の脳領域における過剰発現miRNAの効果。

の定位注入マイクロRNA発現マウス海馬CA1領域にレンチウイルスと行動アウトカムの評価

MicroRNAs (miRNAs) are small regulatory single-stranded RNA molecules around 22 nucleotides long that may each target numerous mRNA transcripts and dim an ...

本実験の目的は、マウスにおけるマイクロRNAの過剰発現が神経学的および認知的に及ぼす影響を評価することです。そのための第2段階として、マイクロRNAを発現するレンチウイルスを調製します。このレンチウイルスを脳の特定領域に注入することで、マイクロRNAを過剰発現させ、その標的に対する制御を行わせます。マウス脳へのレンチウイルスの解剖学的標的送達により、マイクロRNAの過剰発現がもたらす認知機能への影響を示す結果が得られました。遺伝子組換えなどの既存の手法と比較して本技術の主な利点は、遺伝子組換えは直接的なレンチウイルス注入よりもはるかに労力と時間を要する手法である点にあります。さらに、レンチウイルス注入により、過剰発現させる分子の空間的および時間的な完全な制御と追跡が可能になります。この手法は、行動試験で評価される学習や記憶に対して、特定のmiRNAの過剰発現または発現抑制がどのような影響を及ぼすかなど、ニューロミラー分野における重要な問いに答えるのに役立ちます。miRNAは治療的介入に適しているため、この技術の意義は神経変性疾患の治療にまで及びます。播種したパッケージング細胞をコンフルエンスが90%に達するまでインキュベートし、まずトランスフェクションを行い、その後、1 mMのグルタミンのおよび50 mg/mLの補完された無血清DMEMに培地を交換します。ペニシリン・ストレプトマイシンを添加した後、delta R 8.2およびVSVG部位をコードするA-P-L-K-O 0.1 purベクタープラスミドと、目的のmicro RNAを含むプラスミドを細胞に共 transfection します。キャリアとして、1 mg/mLのポリエチレンを10 µL使用し、24時間および48時間後に処理します。transfection後、パッケージングされたレンチウイルスを回収し、0.45 µmフィルターでろ過します。レンチウイルスを含むろ液を、15 °C、70,000 Gsの超遠心機で2時間濃縮します。上清を捨て、ペレットに目に見える塊がなくなるまで完全に溶解させるのに十分な量の脱イオン蒸留水でレンチウイルスを懸濁します。その後、濃縮液を分注し、-70 °Cで保存します。次に、連続希釈したウイルスを用いて、パッケージング細胞へのウイルス感染タイターを測定します。12ウェルプレートを用い、1ウェルあたり1 mLから10⁻⁶ mLまでベクターを分注します。得られるタイターは、1 mLあたり少なくとも10億個の感染性粒子である必要があります。動物の体重を測定し、ケタミン混合液を腹腔内（IP）投与して麻酔をかけます。各薬剤について、動物の体重に比例した投与量を使用してください。動物が完全に麻酔状態になるまで待ちます。その後、後肢に反射がない場合に、逃避反射の消失を確認します。箱に記載されている指示に従い、鎮痛剤ILを動物に皮下注射します。動物を加熱ランプの下またはヒーティングパッドの上に置き、眼軟膏で目を湿らせます。最後に、トリミング機で両耳の間の被毛を剃り、70%ethanolで皮膚を消毒します。動物をステレオタキシス装置に固定し、耳のすぐ内側の隙間に固定ピンを調整して差し込みます。次に、メスを用いて両耳の間に約1.5 cmの前後方向の切開を加え、手術用クランプで切開部を開いたまま保持します。次に、冠状縫合と矢状縫合の交差部が見えるまで、綿棒で頭蓋骨の表面を洗浄します。これには、bgmaおよび冠状縫合とラムダ縫合の交差部であるlambdaが含まれます。次に、ステレオタキシスに固定したシリンジの先端を、3軸すべての座標に従ってbgma地点に位置合わせします。これらがゼロ点になります。次に、平面的な動きでbgmaから頭蓋骨を傷つけないよう、シリンジを垂直軸に持ち上げます。シリンジを、例えば海馬ca1などの必要な位置まで移動させます（例：AP軸に2 mm下方、LM軸に1.8 mm左右、DV軸に1.5 mm下方へ移動）。次に、シリンジの先端を頭蓋骨に触れるまで下げます。その位置に印を付け、ドリルが挿入できるスペースを確保するためにシリンジを後退させます。精密ドリルを使用して、頭蓋骨に浅い穴を開けます。ドリラーをしっかりと固定し、軟組織に穴を開けないようにしてください。穿孔時は短いパルス状に動作させると効果的です。骨を貫通した際に軟組織まで深く達しないよう、片手でもう一方の手を固定・支持して操作してください。濃縮レンチウイルス溶液を0.5 mL、シリンジに採取します。シリンジを孔の上に配置し、頭蓋骨の表面に達するまでゆっくりと垂直に下ろします。そのまま、極めてゆっくりとシリンジを脳内に挿入し続けます。デジタルポンプを0.02 milliliters per minuteに設定し、25分かけてゆっくりと注入します。これにより、逆流を防ぎ、確実に拡散させることができます。一部のシリンジタイプでは、注入を開始してください。シリンジをさらに0.5 mm挿入してから、元の座標まで戻し、物質を注入しながら注入を開始することを検討してください。組織の脱水を防ぐため、露出部位をPBSで湿らせます。完了後、5分待ってからシリンジを抜いてください。これにより、注入物質がシリンジの経路に沿って逆流することなく、脳内に拡散します。その後、シリンジを非常にゆっくりと抜き取り、逆流がないか確認します。逆流が観察された場合、注入した物質の一部が失われた可能性があります。Histo Acronで傷口を封鎖し、その際、Histo Acronが動物の目に入らないように注意します。次に、動物の脱水を防ぐため、温めた生理食塩水を1 mL腹腔内に注入します。動物を加熱パッド上のリカバリーケージに入れます。4〜6週間後、1時間の間、動物の回復状態を観察し、モーリス水迷路と同様の手法で動物のナビゲーション記憶を評価します。この時点で、標的細胞の大部分にレンチウイルスが感染しているはずです。このタイミングで、0.5 µLのレンチウイルスをca.に注入します。プロトコルに記載された方法で、マウス海馬の一領域を作製しました。その後、動物を犠牲にし、脳を 40 micron 厚の切片として解析しました。GFP発現について、DAPI染色は赤色で示されています。要約すると、これにより、吻側方向の軸で約1mm、内側ー外側および前側ー後側のAE（解剖学的軸）で約0.5mmの感染球状領域が形成されました。マイクロRNAをコードするレンチウイルスベクターを注入したマウスを、モリス水迷路を用いて対照群と比較しました。3日間のトレーニング後、緑色で示された代表的な対照群マウスの水面下に設置されたプラットフォームへの到達経路は、赤色で示された実験群動物の経路よりも大幅に短くなっていました。全体として、実験動物は対照群よりもタスクの学習に時間を要しました。習得後は、この手法をマウス1匹あたり約40分で実施可能です。本手順において制限となる要因は、流量のみとなります。この手順が脳から身体への伝達をどの程度変化させるかといった疑問を解決するために、系統的なオリゴヌクレオチド注入などの他の方法を実施することができます。レンチウイルスの取り扱いは極めて危険であるため、使い捨てのタイベック製ラボコートや中性手袋などの予防策を講じることを忘れないでください。さらに、液体廃棄物を含むガラス器具およびプラスチック器具は、バイオハザード袋に廃棄する前に除染する必要があります。

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Behavior

行動

このビデオは、マウス海馬の脳スライスにおける興奮性シナプス電流のマイクロRNA媒介阻害を示しています。CA3ニューロンには、蛍光レポーターを発現するためのコンストラクト、光活性化膜チャネル、および電位依存性カルシウムチャネルの発現をダウンレギュレートするマイクロRNAを保有する組換えウイルスベクターが感染しました。スライスを記録チャンバーに入れ、CA1ニューロンを記録ピペットでパッチすると、光パルスを使用して光活性化チャネルを刺激し、イオンの流入と活動電位の生成をもたらしました。CA3ニューロンに電位依存性カルシウムチャネルがないと、神経伝達物質の放出が阻害され、シナプスに結合したCA1ニューロンの興奮性シナプス後電流が阻害されます。...

マイクロRNAを介したマウス海馬切片における興奮性シナプス後電流の阻害

出典: Chen, S., et al., Stereotacic Surgery for Genetic Manipulation in Striatal Cells of Neonatal Mouse Brains.J. Vis. 経験。...

マウスの子犬線条体における遺伝子操作のためのウイルスベクターの定位マイクロインジェクション

出典: Pereira, M. et al., In Vivo Direct Reprogramming of Resident Gial Cells into Interneurons by Intentrebral Injection of Viral Vectors.J. Vis.

マウスモデルにおけるグリア細胞リプログラミングのためのウイルスベクターの定位注射

出典: Fricano-Kugler, CJ, et al.定位注射による高力価CRISPR Retroおよびレンチウイルスの設計,パッケージングおよび送達J. Vis. 経験。(2016年)このビデオは、マウス脳における正確なニューロン遺伝子編集のための定位固定性ウイルス注射を示しています。このプロトコルは、歯状回への正確なウイルス送達を保証し、蛍光標識とCRISPRを介した遺伝子ノックアウトを可能にして、in...

マウス脳における標的ニューロン遺伝子編集のための定位固定性ウイルス注射

この記事では、マウスの脳にウイルスベクターを顕微注入すると、その後買収、絶滅と回復期を含む条件付け場所嗜好パラダイムでテストする方法を説明します。...

コカイン条件付け場所嗜好における標的遺伝子の役割を研究するためにCreリコンビナーゼを発現するウイルスベクターの定位マイクロインジェクション

cDNAを発現するレンチウイルスまたはshRNAの定位注射は、マウスの特定の脳領域における遺伝子発現を調節することができます。ここでは、そのようなオープンフィールド試験（OFT）および強制水泳試験（FST）のような行動のタスク、と定位注射を結合するためのプロトコルを提示します。...

定位注入法を適用すると、動物の行動の遺伝的影響を研究するために、

ここでは、アミロイドベータの脳定位固定剤を直接注入するためのプロトコルを紹介します。この方法論は、アミロイドベータが脳ニューロンに及ぼす短期的な影響に対処するための代替のin...

マウス海馬にオリゴマーアミロイドベータの定位注入

MicroRNAは脳内で重要な役割を果たしており、神経変性をモデル化するための潜在的な標的です。しかし、miRNAの長さが短く、脳組織にアクセスできないため、miRNAのレベルを乱すことは困難です。このビデオでは、マウスの神経ペプチドを使用したアンタゴミールの設計と脳特異的送達の方法を紹介します。...

miRNAの脳特異的ノックダウンのための定位注射への単純な代替

CRISPR / Cas9システムは、科学界にターゲットを絞ったゲノム編集がアクセス可能で、手頃な価格にする可能性を提供しています。このプロトコルは、CRISPR / Cas9システムを使用して、目的の遺伝子をノックアウトしてから、成体マウスの脳に定位的にそれらを注入するウイルスを作成する方法を実証することを意図しています。...

デザイン、パッケージング、および定位注射を介して高力価CRISPRレトロウイルスおよびレンチウイルスの配信

このプロトコルの目的は、特定の局所神経回路の化学的操作に応答して成人神経幹細胞/前駆細胞の挙動を分析するアプローチを記述することである。...

成人海馬神経前駆細胞のアッセイ回路特異的調節

この記事では、注入カニューレを補ったカスタムメイドのイメージングウィンドウの準備と、マウスの海馬のCA1領域への移植を示す。...

マウスの振る舞いの海馬における神経活動を可視化するための頭蓋骨管制法

学ぶマウス海馬CA1領域へのレンチウイルス定位注入法とmicroRNA発現による認知行動変化の評価手法。この効率的な遺伝子導入技術は神経科学と行動研究に有用です。

の定位注入マイクロRNA発現マウス海馬CA1領域にレンチウイルスと行動アウトカムの評価

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