Name: ハイスループットSHAPEを使用したRNA二次構造予測 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-31T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 42 s
Description: 学ぶハイスループットSHAPE法によるRNA二次構造予測。電気泳動と逆転写を組み合わせ、ヌクレオチド単位の高分解能構造解析を実現します。RNA構造生物学研究に有用です。

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S. Lusvarghi、J. Sztuba-Solinska、KJ Purzycka、JWラウシュとSFJル·グライスは、国立癌研究所、国立衛生研究所、米国の学内研究プログラムによってサポートされています。

<ol><li>Scott, W. G., Martick, M., Chi, Y. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+function+of+regulatory+RNA+elements%3A+ribozymes+that+regulate+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Structure and function of regulatory RNA elements: ribozymes that regulate gene expression.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1789, 634-641 (2009).</li>
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</ol>

利害の衝突は宣言されていない。

我々はここで高スループットSHAPEの詳細なプロトコルがあるどの規模のRNAのための一塩基の解像度に二次構造の決定を可能にする手法を提示する。また、二次構造の予測アルゴリズムを実験SHAPEデータを結合するだけではどちらの方法で可能であるよりも高精度にRNA二次元モデルの生成を容易にする。蛍光標識されたプライマーと自動CEの組み合わせは、単一の実験で長いRNA配列の解決を促進する従来のゲルベース図形の上に大きな利点、ならびに複数の実験のために実質的により高い速度とスループットを提供します。適切なデータ解析ツールは、この方法と可用性の便宜は、以前は難治ウイルス、そのままメッセンジャー、および非コードRNAの構造解析のために理想的に適して形を作る。これらの魅力的なRNAの二次元構造が明確になるように、ヒドロキシルラジカルの使用はスルースパ、プロービングCE切断方法論と分子モデリングは、複雑な三次相互作用を解明し、最終的に研究者が三次元でこれらのRNAの構造を決定できるように支援する必要があります。

スプライシング、翻訳、ウイルス複製および癌の調節に関与する触媒と非コーディングRNAの機能を理解するために、RNAの構造の詳細な知識が必要である1,2。残念なことに、RNA折りたたみの正確な予測は手ごわい課題を提示。クラシックプロービングエージェントは実験当たり100-150ヌクレオチドに限定され、このような毒性など多くの欠点から不完全なヌクレオチドカバレッジおよび/またはスループットに苦しむ。肉眼二次構造予測アルゴリズムは、効果的に精力的に類似した構造を区別することができないことに起因する不正確さに起因し、同様に不利である。特に大規模なRNAは、また、それらのコンフォメーションの柔軟性と、これらの技術に必要な高純度の試料を大量に起因するX線結晶構造解析と核磁気共鳴（NMR）分光法、などの3D構造決定の方法にしばしば難治性である。 HIGHスループットのSHAPEは、単一ヌクレオチド解像度で大RNAの構造をプロービングする効果的な、単純なアプローチを提供することによってこれらの問題の多くを解決する。また、SHAPEに使用される試薬は、取り扱いが安全で容易であり、試薬をプロービング他のほとんどの化学物質とは対照的に、すべての4つのリボヌクレオチドと反応する。これらの試薬 ​​はまた、 インビボ可能コンテキスト （複数可）3 でその中にRNAを精査すること、細胞膜を貫通することができる。もともと週実験室で開発された4、SHAPEはRNAの多種多様〜9キロバイトHIV-1 RNAゲノムの5の完全な二次構造の決定が最も顕著な例を分析するために使用されている。 SHAPEを使用して他の注目すべき成果はビリオン関連HIV-1 RNAの3中のタンパク質結合部位を同定するだけでなく、感染ウイロイド6、人間の長い非コードRNA 7、酵母リボソーム8、リボスイッチ9の構造の解明を含む。 WHイルSHAPEプロトコルの元と高スループットの変化が他の場所で10-12公開されている、本研究は、蛍光オリゴヌクレオチドを用いてハイスループットSHAPEによるRNAの二次構造の決定の詳細な説明は、ベックマン·コールターCEQ 8000遺伝分析装置を提供し、 SHAPEfinderとRNAStructure（V5.3）ソフトウェア。以前に未発表の技術的な詳細とトラブルシューティングに関するアドバイスも含まれています。 SHAPEのバリエーション SHAPEとそのバリエーションの本質は選択的に修正のサイトでかさばる付加物を生産し、2&#39;-水酸基（2&#39;-OH）リボースグループをアシル求電子無水物に水溶液中のRNAの露出です。この化学反応は、ベースが対になっている間、一本鎖ヌクレオチドは、これらの試薬による求電子攻撃を助長するコンホメーションを採用することが、より傾向があるように、地元のRNA構造力学を尋問の手段として、またはアーキテクチャコンストラクタainedヌクレオチドは10以下または非反応性である。付加体形成の部位が修飾されたRNA（ &quot;（+）&quot;プライマー伸長反応）上の特定の部位にハイブリダイズし、蛍光または放射性標識されたプライマーから開始する逆転写によって検出される。逆転写酵素（RT）でアシル化リボヌクレオチドを​​通過しなかった場合には、cDNA産物のプールは、その長さ修飾部位と一致製造される。制御&quot;（ - ）&quot;試薬にさらされていないRNAを用いたプライマー伸長反応は、構造、非特異的なRNA鎖の破損等を RNAにそのDNA合成の早期終了（ すなわち 、 &quot;止まり&quot;）が原因ように制御されるかもしれない。化学修飾によって生成された一時停止と区別する。最後に、同じプライマーから開始する2ジデオキシ配列決定反応は電気泳動後のRNA一次配列と反応ヌクレオチドを​​相関させるためのマーカーとして使用される。 SHAPの元のアプリケーションで（ - ）、および2つ配列決定反応E、同一の32 P-末端標識プライマー（+）のために利用される。これらの反応の生成物は、5〜8％ポリアクリルアミドスラブゲルに隣接するウェルにロードし、ポリアクリルアミドゲル電気泳動（PAGE; 図1）変性により分画している。従来のSHAPEによって生成されたゲル画像の定量的分析は、SAFA、半自動フット解析ソフトウェア13を用いて行うことができる。 対照的に、高スループットSHAPEは、蛍光標識プライマーおよび自動化されたキャピラリー電気泳動を用いる。具体的には、調査中のRNAのそれぞれの地域のために、一般的な配列を有する4 DNAプライマーのセットが、異なる5 &#39;蛍光標識は、合成または購入する必要があります。これらの異なる標識オリゴヌクレオチドは、プライム2 SHAPE反応と2配列決定反応、プールし、分留/自動キャピラリー電気泳動（CE）によって検出されたそのうちの製品に役立つ。 WHEREASのRNAの100〜150ヌクレオチドの反応性プロフィールは、独創的なアプローチを使用して、4つの一連の反応から得ることができる、高スループットSHAPEは、単一のプールされた試料300から600 3ヌクレオチドの分解能を可能にする。できるだけ多くの96としてサンプルが12連続したCEの実行（ 図2）の過程で分別のために準備ができますが、同時に、分別することがあり、最大の反応8セットまで。また、SHAPEfinderソフトウェアは、プロセスに開発され、CEQや他の遺伝的分析装置から出てくるデータを分析し、より自動化されており、SAFA 13または他のゲル解析パッケージよりもはるかに少ないユーザーの介入を必要とする。 より高度な高スループットの方法論は、最近取得した次世代シーケンシング技術と一緒に構造特異的酵素ではなく、アルキル化試薬を使用PARS（RNA構造の並列解析）14とFragの-SEQ（断片シークエンシング）15、などの浮上しているINFORMATIORNA構造に関するnである。これらの技術の魅力にもかかわらず、プロービングヌクレアーゼに固有の多くの制限はまだ16のままです。これらの問題は、次世代のシーケンシングは、従来の形状で実施したのと同様の化学修飾およびRNAの逆転写によって先行されるSHAPEシークエンシング（配列SHAPE-）17プロトコルで回避することができる。これらのメソッドは、RNAの構造決定の未来を表すことが、次世代シーケンシングは非常に高価であり、多くの研究室が利用できないままであることを覚えておくことが重要です。 形状データ解析遺伝分析装置に生成されたデータは、移動時間のインデックスに対してプロットされているキャピラリ検出器に流れる試料の蛍光強度（複数可）を含み、電気泳動の形で提示される。このプロットは、4つの蛍光チャネルに対応する重複のトレースの形をとるsが異なる蛍光を検出するために使用され、各トレースは、個々のcDNAの配列決定または製品に対応するピークで構成される。電気泳動データは、タブ区切りのテキストファイルとして遺伝アナライザからエクスポートしShapeFinder変換と解析ソフトウェア18にインポートされます。 ShapeFinderは、最初の移行時間とピークのボリュームを正確それぞれ、反応生成物のアイデンティティと数量を反映することを保証するためにデータを数学的な一連の変換を実行するために使用される。ピークは次いで、位置合わせて一体化し、その結果、一次RNA配列と一緒にまとめられている。 RNAの当該セグメントの &quot;反応性プロフィールは、&quot;（+）RNAヌクレオチドそれぞれに関連付けられた値からの制御値を減算し、後述するように、データを正規化することによって得られる。このプロファイルは、正規化された反応性valを変換しRNAstructure（V5.3）ソフトウェア19,20、にインポートされRNAの二次構造の折りたたみア​​ルゴリズムに組み込まれている擬似エネルギー制約へのUE。このようにアルゴリズムをプロービングや製本化学物質を組み合わせることで大幅にどちらかの方法だけでは12,21に比べて構造予測の精度を向上させます。 RNAstructureの出力（V5.3）は、最低エネルギーの画像を含むRNA二次構造テキストドットブラケット表記でSHAPE反応性プロファイル（S）だけでなく、同​​じ構造を色分け。後者はその後、そのようなヴァルナ22およびPseudoViewer 23としてRNA二次構造のグラフィカル表示に専用のソフトウェアにエクスポートすることもできる。 <img alt="図1" fo:content-width="4.8in" fo:src="/files/ftp_upload/50243/50243fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50243/50243fig1.jpg" /> 図1。 SHAPE 4,10経由RNAの構造決定のフローチャート（A）RNA MAYは、生物学的試料から、またはインビトロ転写によって得られる。（B）ソースに応じて、RNAは、折り畳まれたまたは他の方法で処理され、SHAPE試薬で修飾されている。（C）逆転写反応は、蛍光または放射性標識プライマーを用いた（D）cDNA産物であるどちらキャピラリーまたはスラブゲルベースの電気泳動経由画し。（E）フラグメント分析。（F）のRNA構造予測。 <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/50243/50243fig1large.jpg" target="_blank">より大きい数字を表示するには、ここをクリックしてください。</a> <img alt="図2" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/50243/50243fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50243/50243fig2.jpg" /> 図2。 CEベースのSHAPEの高スループットの文字が急速複数RNAの解析、および/ ​​または、同じRNAの複数のセグメントを許可します。（） </st栄&gt;は（緑、青と赤のカラーコード化）（B）RNAの切片を蛍光プライマーの異なるセット（黒矢印）（C）を用いて独立して、プローブされたRNAは、300〜600ヌクレオチドの区間に分割することができる方法のセットを表し反応は〜3キロバイトRNA1のための完全なカバレッジを提供し、それぞれのウェルA1、B1、C1、 等にプールされ、ロードされています。 RNAは2、3、4等からの反応生成物は、同様に連続した電気泳動の実行で分画に調製することができる。 <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/50243/50243fig2large.jpg" target="_blank">より大きい数字を表示するには、ここをクリックしてください。</a>

<table><tbody><tr><td colspan="4">REAGENTS</td></tr><tr><td>N-メチルイサトイック無水物 (NMIA)</td><td>ライフテクノロジー</td><td>M25</td><td>無水DMSO</td></tr><tr><td>1-メチル-t-ニトロイサト酸無水物 (1M7)</td><td>参照22</td><td></td><td></td>を参照</tr><tr><td>Superscript III 逆転写酵素</td><td>ライフテクノロジー</td><td>18080044</td><td>10,000ユニット</td></tr><tr><td>サーモシーケンナーゼサイクルシーケンシングキット</td><td>Affymetrix</td><td>78500</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Materials provided by the user</td></tr><tr><td>RNA of interest</td><td></td><td></td><td>6 pmol per reaction (検出限界は装置によって決定されます)</td></tr><tr><td>4つの5'標識プライマーのセット(Cy5、Cy5.5、WellRed D2、WellRed D1/Licor IR800)</td><td></td><td></td><td>プライマーはRNAに相補的であり、逆転写反応やシーケンシング反応に使用されます。記載されている蛍光色素は、ベックマン・コールター8000 CEQに最適です。プライマーは、社内で購入または合成することができます。</td></tr><tr><td>DNAテンプレート</td><td></td><td></td><td>DNAは、シーケンシング反応に使用され、研究対象のRNAの配列(存在する場合は任意の3'末端伸長を含む)を含んでいなければなりません。該当する場合は、RNA転写テンプレートを使用すると便利なことがよくあります。</td></tr><tr><td colspan="4">Buffers</td></tr><tr><td>10x RNA renaturation buffer</td><td></td><td></td><td>100 mM Tris-HCl pH 8.0, 1 M KCl, 1 mM EDTA</td></tr><tr><td>5X RNA フォールディングバッファー</td><td></td><td></td><td>200 mM Tris-HCl pH 8.0, 25 mM MgCl2, 2.5 mM EDTA, 650 mM KCl. (このバッファーは、ケース（例:pH、 EDTA、Mg、RNase阻害剤)</td></tr><tr><td>2.5X RTミックス</td><td></td><td></td><td>4 &mu;l 5X バッファー、1 &mu;l 100 mM DTT、1.5 &μ;l 水、1 &mu;l 10 mM dNTP、0.5 &μ;l 上付き文字 III.5X バッファーと 100 mM DTT は、SuperScript III (Invitrogen) を購入すると提供されます。</td></tr><tr><td>GenomeLab サンプルローディングソリューション (ベックマン・コールター)</td><td></td><td></td><td>Attention: 複数の凍結融解サイクルを避ける<</td></tr><tr>td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td>キャピラリー電気泳動</td><td>ベックマン</td><td>CEQ8000</td><td></td></tr><tr><td>サーモサイクラー</td><td>はさまざまです</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

ハイスループットshapeを使用したrna二次構造予測

RNA Secondary Structure Prediction Using High-throughput SHAPE

生物学的プロセスに関与してRNAの機能を理解することは、RNA構造の徹底的な知識が必要です。この終わりに向かって、またはSHAPE &quot;プライマー伸長により解析のハイスループット選択2 &#39;ヒドロキシルアシル化&quot;と呼ばれる方法論は、一塩基分解能を持つRNAの二次構造を予測することができます。このアプローチは、優先的に水溶液中でのRNAの一本鎖またはフレキシブル領域をアシル化する化学プローブエージェントを利用しています。化学修飾部位が修飾されたRNAの逆転写によって検出され、この反応の生成物は、自動化されたキャピラリー電気泳動（CE）によって分画されている。逆転写酵素は、SHAPE試薬によって変更それらのRNAヌクレオチドで一時停止しているため、得られたcDNAライブラリーは、間接的に、単一の折られたRNAの文脈で足止めされているそれらのリボヌクレオチドを​​マッピング。 ShapeFinderソフトウェアを使用して、自動化されたCEによって生成された電気泳動図はNUに加工と変換される自身がRNAStructure（V5.3）予測アルゴリズムで使用される擬似エネルギー制約に変換されcleotide反応テーブル。 シリコ RNAの二次構造予測でプロービングSHAPEを組み合わせることにより得られる二次元RNA構造は単独の方法を用いて得られた構造体よりもはるかに正確であることが見出されている。

RNAは存在下でHIV-1回転応答エレメント（RRE）および3 &#39;末端構造カセット4は 、それが 37℃で加熱、冷却、およびインキュベーションによって折られた後に、in vitro転写により線状プラスミドから調製した°Cを含有するのMgCl 2。 RNAはNMIAに露出した後、3 &#39;末端構造カセットにハイブリダイズした5&#39;-末端標識DNAプライマーから逆転写。得られたcDNAライブラリーSHAPEは、一緒に制御し、配列決定反応と、その後、 図4に示す電気泳動図を生成するためにベックマン·コールターCEQ 8000自動化されたキャピラリー電気泳動システムを用いて分画した。以下のように4重なり、色分けされたトレースは、キャピラリを介して反応生成物の4組の移動によって生成される：ブルー（NMIA変性RNAの逆転写から生成Cy5で標識したRT製品）、緑色（Cy5.5の標識化折り畳まれたが、それ以外unmodifiからRT製品EDセンスRNA）、ブラック（DDGを使用して生成WellRed D2-標識した...

プライマー伸長により解析し、高スループット選択2 &#39;ヒドロキシルアシル化（SHAPE）数百から一塩基の解像度で数千ヌクレオチドRNAの構造を決定するための技術が、逆転写、キャピラリー電気泳動および二次構造予測ソフトウェアをプロービングする新規化学物質を利用しています。

ハイスループットSHAPEを使用したRNA二次構造予測

Understanding the function of RNA involved in biological processes requires a thorough knowledge of RNA structure. Toward this end, the methodology dubbed ...

本手順の最終的な目的は、単一ヌクレオチド分解能でのRNA二次構造の予測です。これはまず、親電子試薬を用いて折りたたまれたRNAを化学修飾し、RNAの単鎖領域または柔軟な領域を単離することによって達成されます。第2のステップでは、逆転写を用いて化学修飾されたRNA部位を検出します。次に、逆転写によるCDN産物をキャピラリー電気泳動により分画します。最終ステップは、データの処理と標準化です。最終的に、RNA構造解析ソフトウェアを用いて、SHAPE解析から導出された擬似自由エネルギー制約に基づき、RNA二次構造を予測します。この手法は、RNA構造が触媒RNAや非コードRNAの機能をどのように制御しているか、またウイルスRNAゲノムがそのゲノムの多機能性をどのように調節しているかなど、分子生物学分野における重要な疑問に答えるのに役立ちます。この技術の意義は、ウイルス性疾患や癌の治療および診断にまで及びます。なぜなら、RNA二次構造に関する知見を得ることは、構造ベースの薬剤設計に寄与する可能性があるためです。本手法は、in vitro転写によって産生されたRNAの構造に関する知見を提供しますが、シェイプ試薬（shape reagents）は細胞透過性があるため、in vivoで適用することも可能です。本手順を開始する前に、市販の転写キットを用いてインビトロ転写を行い、RNAを調製します。RNAは、0.5 µLマイクロ遠心チューブに入れ、TEバッファー中で-20℃から-80℃で保存してください。12 pmolのRNAを水で18 µLに希釈し、10x再天然化バッファーミックスを2 µL加えます。チューブをタッピングした後、短時間遠心し、混合液を85 °Cで1分間加熱し、その後0.1 °C/秒の速度で4 °Cまで冷却します。マイクロ遠心チューブに水100 µLと5xフォールディングバッファー30 µLを加えます。続いて、フォールディングさせるRNAに応じて、チューブの内容物を37 °Cで30〜60分間インキュベートします。一般的に、より長く構造が複雑なRNAのマグネシウム依存的なフォールディングには、より長いインキュベーション時間が必要です。72 µLのアリコートを、それぞれ「modified」および「control」とラベルを貼った2本の0.5 mLマイクロ遠心チューブに分注します。次に、コントロールミックスに8 µLの無水ジメチルスルホキシドを加えて静置します。その後、モディファイドミックスに8 µLの10 x MIAを加えます。修飾ミックスとコントロールミックスを37 °Cで50分間インキュベートします。修飾RNAを沈殿させるため、修飾ミックスのチューブに8 µLの3 M 酢酸ナトリウム（pH 5.2）、8 µLの100 mM EDTA、240 µLの冷エタノール、および1 µLの10 mg/mL グリコゲンを加えます。チューブの内容物を-20 °Cで2時間冷却した後、4 °Cで14,000 ×g、30分間遠心分離します。次に、ペレットを冷たい70%エタノールで2回洗浄し、5分間遠心分離します。各洗浄後、マイクロピペットで上清を除去し、ペレットを5分間風乾させます。室温で、0.5 mLマイクロ遠心チューブを用いて、逆転写用の修飾サンプルおよびコントロールサンプルを調製します。修飾反応ミックスとして、修飾RNA 5 µL、水 6 µL、および10 µMのsci 5標識プライマー溶液 1 µLを調製します。コントロール反応ミックスとして、コントロールRNA 5 µL、水 6 µL、および10 µMのsci 5.5標識プライマー溶液 1 µLを調製します。チューブをサーマルサイクラーにセットし、プライマーをRNAにアニールさせます。アニーリングの間に 2.5 x RTミックスを調製します。各RT反応について、よく混ぜ合わせ、アニーリング反応に添加する前に37 °Cで5分間インキュベートします。アニーリング反応の温度が50 °Cに達したら、2.5 XRTを8 µL添加します。混合し、50°Cで50分間インキュベートします。次に、4 M 水酸化ナトリウムを1 µL加え、90°Cで3分間加熱してRNAを加水分解します。反応液を氷上で冷却し、2 M 塩酸を2 µL加えて中和します。次に、修飾反応液とコントロール反応液を混合し、全反応量に対して0.1容量（10分の1量）の3 M 酢酸ナトリウムおよび100 mM EDTA、1.5容量の冷エタノール、および10 mg/mL グリコーゲンを1 µL加えます。これにより、cDNAが溶液から沈殿します。溶液を2時間冷蔵し、その後、4 °Cで30分間、14,000 ×gで遠心分離します。ペレットを冷たい70%エタノールで2回洗浄し、ペレット化したCD NAを40 µLの脱イオンホルムアミドに再懸濁させ、65 °Cで10分間加熱した後、少なくとも30分間激しくボルテックスします。シーケンシング反応の調製のため、0.5 mLマイクロ遠心チューブに、40 µLのDDA停止ミックス、5 pMのDNAテンプレート、4.6 µLの10x seaseバッファー、および10 µLのwell-read D2標識プライマーを混合します。この混合液に4.6 µLのQUIN Aを加え、水を加えて全量を82 µLにします。代わりにDDTおよびlycor IR 800標識プライマーを用いて、同様の手順で2つ目のシーケンシング反応を準備します。次に、指定されたUSB推奨条件に従ってPCR増幅を行います。DNAを沈殿させるため、3 M 酢酸ナトリウム（pH 5.2）16 µL、100 mM EDTA 16 µL、10 mg/mL グリコーゲン 1 µL、および95%エタノール 480 µLを添加し、4 °Cで30分間インキュベートした後、4 °Cにて14,000 ×gで30分間遠心分離します。ペレット化したCD NAを100 µLの脱イオンホルムアミドに再懸濁します。その際、65 °Cで10分間加熱した後、少なくとも30分間激しくボルテックスします。次に、プールしたシェイプサンプル40 µLとプールしたシーケンシングラダー10 µLを混合し、サンプルの全量を96ウェルサンプルプレートに分注します。その後、キャピラリー電気泳動装置を準備し、製造元の指示に従ってランを開始します。4色のカラーコード付きトレースが重なって出力されますが、これは4組の反応産物がキャピラリー内を移行することで生成されます。例えば、青色のトレースは、NMIA修飾RNAの逆転写から生成された逆転写産物を示します。緑色のトレースは、折り畳まれているがそれ以外は未修飾のRNAからの逆転写産物を示しています。黒色のトレースはD-N-A-D-D-Gシーケンシングラダーを示し、赤色のトレースはDDTシーケンシングラダーを示しています。未加工のキャピラリー電気泳動トレースは、シェイプファインダーソフトウェアを用いて分離、処理、アライメント、および統合されます。データ解析は、キャピラリー電気泳動システムからエレクトロフェログラムをshape finderにインポートすることから始まります。中央のデータビューウィンドウでは、各データ処理ステップに関するグラフィカルなフィードバックが表示されます。画面左下に配置されたツールインスペクターウィンドウには、スクリプティングインスペクターで選択したツールのパラメータが表示されます。画面上部のスクリプトインスペクターには、データに適用されたツールが表示されます。ここでは、蛍光バックグラウンドの補正、蛍光チャンネル間のスペクトルオーバーラップの補正、異なるタグ付きプライマーによる移動度のシフトの補正、逆転写の早期停止に起因する信号減衰の補正、および異なる蛍光色素でラベル化された共通産物の蛍光強度の差異の補正を、SHAPEfinderのAlign and Integrateツールを用いて行います。Setup関数を使用して、個々のピークにアイデンティティを自動的に割り当て、この情報をユーザー入力および2つのシーケンシングラダーによって定義されたRNA配列と相関させます。これにより、ヌクレオチド反応性プロファイルをRNAstructure 5.3ソフトウェアで使用される二次構造アルゴリズムに組み込むか、あるいは、密接に関連するRNAのプロファイルを比較します。SHAPEデータを標準化された方法で正規化してください。これを行うために、外れ値を以降の計算から除外します。有効最大反応性を決定し、すべての反応性値をその有効最大値で除算して正規化します。SHAPE解析から得られた擬似自由エネルギー制約を用いて、実験的に裏付けられたRNA二次構造を予測するためにRNA構造予測ソフトウェアを使用します。本ソフトウェアは、sDRNA構造の最低エネルギー状態をグラフィカルに表示するほか、これらの構造をテキスト形式で表示します。ドットブラケット表記では、配列とドットブラケット注釈をRNA構造ビューアにインポートする必要があります。ここに示されているのは、SHAPE由来の反応性プロファイルを用いてRNAstructure 5.3で生成し、Javaライトウェイトアプレットを用いて可視化した、HIV rev反応要素ステムループ2領域の2次元構造です。青色で色付けされたヌクレオチドは反応性が低く、赤色で色付けされたヌクレオチドは反応性が高いことを示しています。習熟すれば、適切に実施することで2日間で完了させることが可能です。本手順を実施する際は、得られたRNAモデルに基づきRNA二次構造について最終的な結論を出す前に、その結果を慎重に解釈することが重要であることを忘れないでください。複雑な三次相互作用を解明し、最終的にこれらのRNAの三次元構造を決定するためには、空間切断法を用いたヒドロキシラジカルプロービングなどの他の手法を併用することが可能です。

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生物学

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ハイスループットSHAPEを使用したRNA二次構造予測

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