Name: 血管新生を調査するために新生児マウス網膜の全体のマウント免疫蛍光染色 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 47 s
Description: 学ぶ 新生児マウス網膜の血管新生を調査するための全体マウント免疫蛍光染色法。網膜血管叢の可視化と共焦点顕微鏡による観察により、血管発生メカニズムの研究に活用できます。

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この作品は、ウェルカムトラストと英国心臓財団によって資金を供給された。

特に断らない限り、すべてのステップは、室温で行われる。 1。産後目の摘出および固定<ol><li>その側に子犬安楽死マウスを置き、ハサミで目を覆っている皮膚を除去。 </li><li>目を摘出するためにはさみやピンセットを使用してください。 </li><li>摘出眼球下場所はさみ、視神経と周囲の組織をカットし、目を持ち上げて外します。室温で2倍PBSで構成された4％パラホルムアルデヒド（PFA）を含む24ウェルプレートに移す。 </li><li>それぞれの目は、10のために修正するために許可する - 10分 - 15分、その後5氷上で冷たい倍PBSに転送。固定度を確保するためにenucleationsとその後固定をずらすことが最善であるそれぞれの目のために等しくなります。 </li></ol> 2。産後マウス網膜の解剖<ol><li> disse下穴および場所を広げるためにカットされているプラ​​スチック製パスツールピペットを用いて2倍のPBSを含むペトリ皿に目を移す顕微鏡cting。 </li><li>鉗子やハサミを使って目の周りの任意の脂肪を取り除きます。 </li><li>ピアース鋭いハサミで角膜の端と角膜と虹彩の周りカットして捨てる。 </li><li>網膜と強膜の間に鉗子を挿入して、網膜を引き裂くないように注意して強膜を除去する。脈絡膜層も除去することができるが、この工程の間に生じる網膜の損傷がある場合は、脈絡膜層は、それが著しく免疫染色の品質に影響を与えるべきではないように残すことができる。 </li><li>レンズとピンセットを用いて硝子体液を削除します。 </li><li>その後すぐに網膜の中心（あるいは細かいハサミで硝子体血管の基部に中略）から引き離し細かい鉗子でアイの中心でそれらを一緒に集めることによってhyaloids血管を削除します。 </li><li>きれいなペトリ皿にPBSでカップ形の網膜をすすぐ。 </li><li>春scissoを用いた網膜の半径の約2/3に達して4から5放射状の切開を行いますRS &#39;花びら&#39;形状を作成する。 </li><li>網膜を平らにするためにパスツールピペットを用いてPBSをオフに描画した後、吸収紙の小片で余分PBSを除去します。 </li><li>追加のメタノールで完全に覆われており、その後、洪水まで、網膜の表面にドロップでゆっくりピペット寒い（-20°C）メタノールドロップ。これは、網膜を固定するのに役立ちますし、透過性を促進する。網膜は、白になります。 </li><li>穴を広げるためにカットされたプラスチック製パスツールピペットを用いて2 mlのチューブに移します。 </li><li>免疫染色を進める前に、少なくとも20分間冷メタノールで網膜のままにしておきます。ここで使用される抗体のうち、VE-カドヘリンは、メタノール固定網膜上で正常に使用することはできません。この場合、網膜は、ステップ9の後に免疫染色にまっすぐ進んでする必要があります。 </li><li>必要に応じて前まで染色まで数ヶ月の​​ために、網膜を-20℃でメタノールに格納することができます。 </li></ol> 3。網膜Vascuの免疫/イソレクチン染色lature <ol><li>慎重に削除/メタノールを留注ぎ、優しく（この段階で網膜は、上記の手順11から同じ2 mlのチューブに残っている）をPBSで簡単に網膜をすすいでください。 </li><li>パーマ/ブロック溶液100μl（PBS + 0.3％トリトン+ 0.2％BSA）を含むPBS、カバー網膜に適切な血清+ 5％（ 表1を参照）を取り外し、1時間軽く振る。 </li><li>パーマ/ブロックを取り外し、優しい4℃で一晩振とうしながら網膜をインキュベート100℃選択し、一次抗体の液（ 表1を参照）、および/ ​​またはIsolectinB4とC、パーマ/ブロックで希釈することにより調製すべて。 </li><li>抗体/イソレクチンを取り外し、PBS + 0.3％トリトン（PBSTX）における網膜4×10分を洗う。 </li><li> IsolectinB4-Alexa488又は直接標識1次抗体で染色した後に例えばいくつかのケースにおいては、二次抗体は必須ではなく、網膜する（ステップ7）を直接取り付けることができる。コンジュゲートしていない一次抗体は、適当なフッ素を100μl次に、ステップ3で使用されているとき自己消費二次抗体（PBSTXで1/200希釈）を加え、4℃または室温で4時間撹拌一晩インキュベート置する。 </li><li>二次抗体を除去し、2ミリリットルPBSTXにおける網膜4×15分を洗う。 </li><li>広い口径プラスチックパスツールピペットを用いてスライドに網膜を転送し、吸収剤、ティッシュで余分PBSTXを削除します。 50μlのを追加してマウント網膜は、網膜上にカバースリップと優しく位置に封入を延長。 </li><li>転送は、彼らが延長封入が設定できるように、フラットで光から保護されていることを確認し、4℃で一晩冷蔵庫にスライドします。 </li><li>共焦点顕微鏡または落射蛍光顕微鏡を用いた画像網膜。 </li></ol>

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</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

ここで紹介する方法は、血管新生の容易に定量化し、生理学的に適切なモデル作り、新生児マウスの網膜のステンドホールマウント標本の画像を取得するための簡単​​かつ効率的な方法を提供しています。最初は、マウスの目は、その小さなサイズと地球の形状により解剖するのは非常に困難になる可能性がありますので、いくつかの練習と良い解剖ツールは信頼性のある結果を得るために必要とされている。これは眼からの水分損失の少量を引き起こし、切開を容易にするイントラ軌道圧を低下させるため、PBSの2倍の濃度で調製した眼の切開が重要である。網膜の良好な製剤は、いくつかの理由のために重要である。最初に、血管系の整合性を維持します。硝子体の脈管構造が十分に除去されない場合、第二に、高レベルのバックグラウンドをもたらす、抗体染色の効率が低下し、分解能を低下させた。網膜のPFA固定時間が長すぎる場合にも、この問題が発生する可能性があります。しかし、事前の染色に、-20℃の冷凍庫内のメタノールで数ヶ月に長期貯蔵アップ前イソレクチン染色に、 表1中の抗体の最も適しています。イソレクチン染色がまれに問題があるが、内皮細胞に加えて、シミマクロファージを行...

血管新生は、既存の血管ネットワークから新たな血管の形成によって定義され、いくつかのシグナル伝達経路により調節される複雑な発達過程である。これらの最も顕著なのはVEGF経路である。 VEGFは、隣接血管の発芽血管新生の開始に虚血細胞及びリードによって解除される。芽新しい血管からの主要な内皮細胞は、VEGFの源に向かって手を差し伸べることを糸状仮足を作り出す &#39;先端&#39;セル、であり、 &#39;茎&#39;内皮細胞増殖が続いている。このように、活性化内皮細胞は移動し、それらが新しい血管の管を形成する無血管領域に向かって増殖する。血流をサポートするために、これらのチューブを安定化させるために、内皮細胞は、周皮細胞と新しい血管1を囲む平滑筋細胞と相互作用する。血管新生は胚と成長組織の血管新生のために不可欠です。しかし、それはまた、多くのpathologiに寄与する癌などのCAL障害;血管新生における欠陥は虚血性疾患に関連付けられているのに対し、。疾患を治療するための手段として血管形成を調節するための効果的な薬物治療の開発は非常に興味深いことである。例えば、効果的な抗血管新生因子は、血管新生促進戦略は虚血性疾患の治療に使用することができる一方で、癌の増殖を減少させる。したがって、血管新生のモデルは、より良い新たな血管の形成と血管の成長を高めるか、または減少させるための新たな治療戦略を開発するための規則を理解することが不可欠です。 血管新生研究の基本的な要素は、適切な血管モデルの選択です。 in vitroモデルの多くは、このような内皮細胞の遊走、増殖および生存2,3のような血管形成の基本的な手順を再現するように設計されている。トンが頻繁にin vitroアッセイで使用される、マトリゲルマトリックス上内皮細胞の分枝ネットワークの形成である彼は、内皮細胞に特異的なものではなく、また、通常は周細胞又は平滑筋細胞の支持体を組み込んでいない。このような胚様体アッセイ、大動脈リングアッセイおよび胎児の中足骨アッセイとして、マウスの器官培養を用いたex vivoで発芽血管新生の評価は追加の支持細胞の文脈における内皮細胞の血管新生の分析を行うことができます。しかし、これらのアッセイの主な制限は、分析のために限られたウィンドウを与え、血流の欠如、時間の経過とともに血管の退縮が挙げられる。したがって、in vivoモデルにおいて 、より正確に血管新生の調節を理解するために、例えば皮下に移植スポンジ又はマトリゲルプラグ、並びに後肢虚血モデルを用いて、マウスにおいて開発されたものとして必要とされている。しかし、これらのモデルは、新生血管の複雑な3Dアーキテクチャにより分析することが挑戦しています。これとは対照的に、ゼブラフィッシュ胚全体で血管新生を可視化するための優れたモデルを証明している生物4。しかし、マウスはマウス、多くの場合において好ましいモデル作り、進化的にはるかに密接にゼブラフィッシュより人間に関連しています。結果的に出生後のマウス網膜の血管新生、血管新生研究のための選択のよく特徴付けメソッドを表します。それは生理的な設定だけでなく、容易に適切な蛍光汚れを用いて可視化することができ、2D血管叢を提供するだけでなく。血管ネットワークのアーキテクチャ、内皮増殖、発芽、血管周囲の細胞動員と血管リモデリングは、すべて、この手法を用いて検討することができます。 新生仔マウスの網膜において、網膜血管の発達は出生後の最初の週に起こる。マウスは、人間とは違って、生まれつき目が見えないされ、網膜のみ生後血管なる。網膜血管に近い生後0日（P0）で視神経に網膜の中心部から発生し、高度に組織化を形成するために、血管新生によって開発約P8 5によって網膜周辺部に到達したdの血管叢。血管が徐々に介入して毛細血管網で動脈と静脈の定期的な交流のパターンを生成するために周辺に向かって視神経乳頭から外側に成長毛細血管叢との特性の方法で開発しています。網膜血管系は、このように、それが比較的容易にフラットマウント標本5における網膜血管構造を検討すること、彼らは基本的に2D平面であるものに育つように血管が簡単に識別できるような血管新生を研究するための理想的なモデルを提供します。数時間のex vivoで上内皮先端細胞応答の分析のための新生児マウスの網膜を単離するための方法は、06報告されている。代替的に、全体の網膜血管系および関連血管マーカーのより詳細な調査は、開発の異なる段階で固定網膜標本の免疫染色が必要である。 ここでは、提供する我々は、顕微鏡下で染色プロトコルを介した出生後の眼の初期摘出（また、7参照）から最終的な画像に、マウスの網膜血管叢の全体マウント染色に使用する信頼性と技術的にまっすぐ進む方法の詳細な説明。

<table><tbody><tr><td colspan="4">Material</td></tr><tr><td>プラスチックピペット 3 ml</td><td>科学実験用品</td><td>PIP4210</td><td>ハサミで先端を取り外して広口径を作る</td></tr><tr><td>BD Falcon 24-well plates</td><td>科学実験用品</td><td>353226</td><td></td></tr><tr><td>一部のペトリ皿 テレビ 90 mm</td><td>科学実験用品</td><td>SLS2002</td><td></td></tr><tr><td>Histobond スライド</td><td>VWR</td><td>631-0624</td><td></td></tr><tr><td>カバースリップ 22 x 22 mm</td><td>VWR</td><td>631-1336</td><td></td></tr><tr><td>デュモンピンセット #5</td><td>世界の精密機器</td><td>14095</td><td></td></tr><tr><td>スプリングハサミ 長さ 10.5 cm のスプリングハサミ、8 mm の刃のストレート付き</td><td>世界の精密機器</td><td>501235</td><td>核摘出に使用</td></tr><tr><td>バンナスのハサミ 長さ 8.5 cm、7 mm のストレート刃、0.025 x 0.015 mm の超極細先端</td><td>世界の精密機器</td><td>500086</td><td>網膜の解剖に使用</td></tr><tr><td>長さ8cmの超微細バンナハサミ、刃渡り3mmのストレート、0.015×0.015mm 超微細先端</td><td>世界の精密機器</td><td>501778</td><td>網膜の解剖に使用</td></tr><tr><td>クリスタルクリア&#8217; チューブ</td><td>2ml Starlab</td><td>E1420-2000</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Reagents</td></tr><tr><td>リン酸ナトリウム二塩基性</td><td>シグマ</td><td>S0876</td><td>PBS試薬</td></tr><tr><td>リン酸カリウム一塩基性</td><td>Sigma</td><td>P5655</td><td>PBS試薬</td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td>PBS試薬</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>ΣP6148</td><td></td><td>2x PBSでメイクアップし、-20 &#176で保存します。C</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Σ</td><td>A7638</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Σ</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>ロバ血清</td><td>Σ</td><td>D9663</td><td></td></tr><tr><td>ヤギ血清</td><td>ベクター</td><td>S-1000</td><td></td></tr><tr><td>Prolong Gold 退色防止試薬</td><td>Invitrogen</td><td>P36930</td><td>封入試薬</td></tr><tr><td>イソレクチン GS-IB4-alexa 594</td><td>Invitrogen</td><td>I21413</td><td>使用場所1:200</td></tr>希釈 <tr><td>イソレクチン GS-IB4-alexa 488</td><td>Invitrogen</td><td>I21411</td><td>1:200希釈で使用<</td></tr><tr>td colspan="4">Primary Antibodies</td></tr><tr><td>Anti-NG2 (rabbit polyclonal) ミリ</td><td>ポア</td><td>AB5320</td><td>ペリサイト検出</td></tr><tr><td>抗GFAP (クローン GA5, マウスモノクローナル)</td> <td>ミリポア</td><td>MAB360</td><td>アストロサイト検出</td></tr><tr><td>抗デスミン (クローン Y66,ウサギモノクローナル)</td><td>ミリポア</td><td>04-585</td><td>ペリサイト検出</td></tr><tr><td>抗コラーゲンIV(ウサギポリクローナル)</td><td>ケミコン</td><td>AB756P</td> 血管<td>基底膜検出</td></tr><tr><td>抗アルファ平滑筋アクチン-Cy3(クローン1A4、マウスモノクローナル)</td><td>シグマ</td><td>C6198</td><td>血管平滑筋細胞を検出します。</td></tr><tr><td>抗エンドリン(クローンMJ7/18、ラットモノクローナル)</td><td>BD Pharmingen</td><td>550546</td><td>内皮細胞を検出</td></tr><tr><td>抗CD31(クローンMEC13.3、ラットモノクローナル)</td><td>BD Pharmingen</td><td>553370</td><td>内皮細胞を検出</td></tr><tr><td>抗VE-カドヘリン(クローン11D4.1、ラットモノクローナル)</td>BD <td>Pharmingen</td><td>550548</td><td>内皮細胞結合を検出</td></tr><tr><td>抗Alk1(ヤギポリクローナル)</td><td>R&D Systems</td><td>AF770</td><td>Detect endothelial cells</td></tr><tr><td colspan="4">Secondary Antibodies</td></tr><tr><td>Goat anti-rabbit-Alexa594</td><td>Invitrogen</td><td>A11012</td><td>すべての二次抗体は、到着後すぐに分注され、-20 &#176;Cに保存されます。</td></tr><tr><td>ヤギ抗ラット-Alexa488</td><td>Invitrogen</td><td>A11006</td><td>すべての二次抗体は、到着後すぐに分注され、-20 &#176;Cに保存されます。</td></tr><tr><td>ヤギ抗ラット-Alexa594</td><td>Invitrogen</td><td>A11007</td><td>すべての二次抗体は、到着後すぐに分注され、-20 &#176;Cに保存されます。</td></tr><tr><td>ヤギ抗マウス-Alexa488</td><td>Invitrogen</td><td>A11029</td><td>すべての二次抗体は、到着後すぐに分注され、-20 &#176;Cに保存されます。</td></tr><tr><td>ロバ抗ヤギ-Alexa594</td><td>Invitrogen</td><td>A11058</td><td>すべての二次抗体は到着後すぐに分注され、-20 &#176;Cに保存されます。</td></tr><tr><td colspan="4">Microscopes</td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>Stemi SV6</td><td></td></tr><tr><td>カメラ</td><td>Zeiss</td><td>Axiocam HRc</td><td>解剖顕微鏡用カメラ</td></tr><tr><td>エピ蛍光顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>Axioimager with Apotome</td><td></td></tr><tr><td>Camera</td><td>Zeiss</td><td>Axiocam HRm</td><td>Axioimager</td></tr><tr><td>共焦点顕微鏡用カメラ</td><td>ニコン</td><td>A1R</td><td></td></tr></tbody></table>

血管新生を調査するために新生児マウス網膜の全体のマウント免疫蛍光染色<em生体内で&gt;</em

Whole Mount Immunofluorescent Staining of the Neonatal Mouse Retina to Investigate Angiogenesis In vivo

血管新生は、既存の血管ネットワークから新規血管の発芽によって定義された新しい血管形成の複雑なプロセスである。血管新生は、臓器や組織の正常な発達ではなく、例えば、癌、失明や虚血性疾患などの血管形成を調節不全である、多くの疾患、だけでなく、重要な役割を果たしている。大人の生活の中で、血管が新生が病気に特異的に新しい血管の形成を試み、規制する新たな薬剤開発のための重要なターゲットであるので、一般的に静止しています。優れた血管新生を理解し、それを規制するための適切な戦略を開発するために、モデルが正確に関与する異なる生物学的工程を反映していることが必要である。動脈、静脈と毛細血管が出産後の最初の週の間に血管叢を形成するために開発するため、マウス新生児の網膜は、血管新生の優れたモデルを提供します。このモデルは、2つの - ジを有するという利点を有するmensional（2D）構造は、他の血管のネットワークの複雑な3D解剖と比較して簡単な解析を行う。出生後の異なる時点で網膜血管叢を解析することにより、顕微鏡下で血管新生の様々な段階を観察することが可能である。この記事ではイソレクチンと血管特異的な抗体で蛍光染色を用いたマウス網膜の血管構造を解析するための簡単​​な手順を示しています。

解剖後網膜は、フラットの花（ 図1）のようになります。上記で概説プロトコルを使用することにより、血管内皮細胞を抗α平滑筋アクチン（ 図2）を用いて可視化されるイソレクチンB4-Alexa488染色を用いて、血管筋細胞を支持することが分かる。 図2の5倍対物レンズを用いて低消費電力の表示は、網膜の血管の組織の概要を可能にする。また、上記のプロトコルで指定された抗体の異なる組み合わせを使用することにより、血管内皮細胞を抗CD31免疫染色と支持周皮細胞を使用して見ることができるNG2（ 図3）又はデスミン（ 図4）に対する抗体を用いて見られる。抗デスミン染色は周皮細胞のプロセスのように指を可視化し、それらが密接に内皮細胞に関連付けられているかどうかを判断するために有用である。これとは対照的に、抗NG2染色がある場合に便利です各周皮細胞の核を、概説血管系の周皮細胞の数を定量化。これは、高電力（ 例えば、60X）対物レンズを用いて、視野当たりのセルの数をカウント...

新生児マウスの網膜は血管新生を調節する別の遺伝子や薬剤の役割の調査を可能にし、血管新生のよく特徴付け生理学的モデルを提供<em生体内で&gt;</em&gt;コンテキスト。正確に血管叢を可視化する免疫蛍光染色は、研究のこれらのタイプの成功に極めて重要です。

Angiogenesis  is the complex process of new blood vessel formation defined by the sprouting  of new blood vessels from a pre-existing vessel network. ...

この手順の全体的な目的は、新生マウスの網膜における血管新生を調査することです。まず、出生後の眼球を核出しし、次に固定剤を適用します。第3のステップは、出生後のマウスの網膜を慎重に花びら状に解剖することであり、最終ステップで網膜血管を染色します。最終的に、蛍光染色と共焦点顕微鏡観察によって、マウス網膜血管の可視化が行われます。この手順を実演するのは、私の研究室のポストドクターであるSimon Tlo博士と、以前私の研究室に在籍していたKathleen Allensonです。本手順におけるデフォルトの温度は室温とします。まず、安楽死させたマウスの幼生を、ハサミを用いて横向きに置くことから始めてください。眼を覆っている皮膚を除去します。次に、ハサミを眼の下側に配置し、視神経と周囲の組織を切断して、眼を取り出します。摘出した眼を、2倍濃度の4% PFA（パラホルムアルデヒド）固定液を含む24ウェルプレートに移します。一方の眼を固定液に浸している間に、PBSを用いて次の眼の解剖を進めます。熟練すれば、2つの眼の解剖の間隔は30秒になります。それぞれの眼を10～15分間固定させます。その後、氷上で冷やした2倍濃度のPBSに5～10分間以上移します。網膜を分離する前に、先端を切り広げたプラスチック製パスツールピペットを用いて、必要数だけの眼をPBSに回収します。解剖顕微鏡下で、眼球を2倍濃度のPBSが入ったペトリ皿に移動させます。ピンセットとハサミを用いて、眼球周囲の脂肪を除去します。鋭いハサミで角膜の端に切り込みを入れ、角膜と虹彩の周囲を切り取り、これらの組織を廃棄します。次に、ピンセットを網膜と強膜の間に挿入します。網膜を傷つけないように注意しながら、強膜を除去します。網膜を損傷させるリスクがないのであれば、脈絡膜層も除去可能です。脈絡膜層を残したままでも、免疫染色の品質に大きな影響はないはずです。次に、ピンセットを使用して、水晶体と硝子体を摘出します。続いて、脈絡膜血管を取り除きます。精細ピンセットを使用して、それらを眼の中心に集めます。次に、網膜の中心から素早く引き離します。黄色いアザ（yellow thistle）をすべて取り除くよう細心の注意を払ってください。一部でも残っていると、判定結果が不鮮明になる可能性があるためです。カップ状になった網膜を清潔なペトリ皿に移し、PBSで洗浄します。次に、網膜の中心に向かって、中心の約3分の2まで達する放射状の切開を4〜5回行います。スプリングシザーを使用して、網膜をこのペダル状に切り出します。この工程を完璧に行うには、忍耐と練習が必要です。次に、パスツールピペットを用いてPBSの大部分を吸い出します。これにより網膜が平坦になります。次に、吸収紙の小さな破片を用いて余分なPBSを取り除きます。続いて、網膜の表面がほぼ浸るま

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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開発マウス網膜の in vivoエレクトロポレーションで

出典:Wang, Z., et al. Transpupillary Two-Photon In Vivo Imaging of the Mouse Retina. J. Vis. Exp. (2021).このビデオでは、2光子顕微鏡を用いたin vivo網膜イメージングの技術を紹介しています。麻酔マウスは、頭部を固定し、眼の潤滑剤を塗布し、眼にカバースリップを貼ることでイメージングの準備をします。蛍光タンパク質を発現する網膜神経節細胞(RGC)は、まず落射蛍光を用いてアラインメントして可視化します。最後に、2光子イメージングが採用されており、RGCの高解像度の視覚化が可能です。...

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緑内障マウスモデルにおける網膜ミクログリアのin vivoイメージング

新生児のヒトサイトメガロウイルス（HCMV）感染症は、精神遅滞の重要な原因を表し、まだウイルス誘発病因につながる分子事象はまだよく理解されていない。脳の感染症のダイナミクスを調べるために、我々は全体の動物の適応...

活用<em生体内で&gt;</em新生児の実験マウスサイトメガロウイルス感染の進行を監視する&gt;イメージング

ここで説明するプロトコルは、全量網膜製剤の構造評価のためのものです。これには、組織解剖、親水性ポリテトラフルオロエチレン(PTFE)メンブレンインサートへのマウント、蛍光マーカーによるボーラスローディング、細胞およびシナプス成分の免疫組織化学的分析のためのカルボジイミドおよびパラホルムアルデヒドによる固定の比較の説明が含まれます。...

イメージングと免疫組織化学のための網膜ホールマウントの準備のために最適化されたプロトコル

ここでは、マウスレーザー誘導性脈絡膜新生血管(CNV)プロトコル、つまり血管新生加齢黄斑変性症(AMD)の血管特性を再現する実験モデルを紹介します。習得すれば、CNVをモデルシステムとして確実かつ効果的に誘導し、さまざまな実験手段を試験することができます。...

レーザ誘起脈絡膜血管新生のためのマウスモデル

in vivoイメージングは、健康と疾患における生物学の研究のための強力なツールです。このプロトコルは、標準的な2光子顕微鏡によるマウス網膜の経瞳孔イメージングについて説明しています。また、網膜の複数の細胞コホートを蛍光標識するためのさまざまなin...

経瞳孔二光子マウス網膜のin vivoイメージング

このプロトコルは、マウス網膜フラットマウントの調製および免疫蛍光染色および分析のための詳細な方法を記載する。マウスの仔に対するフルオレセイン眼底造影(FFA)の使用および画像処理についても詳細に説明されている。...

酸素誘発網膜症マウスモデルにおける網膜血管の動的成長のモニタリング

この記事では、実装網膜製剤全体に対する確立された再現性のあるレクチン染色アッセイと、増殖性および不拡散性網膜症において頻繁に変化する血管パラメータの定量的測定に必要なプロトコルについて説明する。...

不拡散性網膜症を有するマウスの全型網膜における血管パラメータの定量化

マウス網膜血管系は、血管パターン形成のメカニズムを理解する上で特に興味深いものです。このプロトコルは、視神経乳頭から一定の距離にある蛍光血管造影眼底画像からマウス網膜血管の直径を自動的に測定します。...

マウス蛍光血管造影画像からの網膜血管径の測定

蛍光トマトレクチンの眼窩後注射後、血小板由来成長因子受容体βによる免疫蛍光染色により、網膜血管系の周皮細胞を調べました。標識された網膜をさらに組織透明化法で処理し、共焦点顕微鏡下で網膜血管系を取り巻く周皮細胞の3次元ビューを視覚化するために全体をマウントしました。...

免疫染色によるマウス網膜血管周皮細胞の3D可視化 

学ぶ 新生児マウス網膜の血管新生を調査するための全体マウント免疫蛍光染色法。網膜血管叢の可視化と共焦点顕微鏡による観察により、血管発生メカニズムの研究に活用できます。

血管新生を調査するために新生児マウス網膜の全体のマウント免疫蛍光染色

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