Name: MTTアッセイにより合成と細胞毒性の評価：抗がん金属錯体 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-10T21:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 14 s
Description: 学ぶMTTアッセイによる抗がん金属錯体の細胞毒性評価法。チタンおよびバナジウム系化合物の合成とヒトがん細胞株への効果測定、IC50値の決定手法を解説。がん治療薬開発研究に有用です。

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資金は、欧州共同体のセブンス枠組み計画（FP7/2007-2013）/ ERCグラント契約がない[239603]の下で、欧州研究評議会から受け取った

<ol><li> V（V）錯体（ 図2）の製造、18の行為は、グローブボックス内の1.1から1.4を繰り返し、グローブボックスが使用できない場合は、2（2.1から2.6）の手順の代替に進んでください。 <ol><li>リガンドの0.42ミリモルの乾燥THF中のH 2 Lを溶解し、THF中のVO等量の撹拌溶液（O I PR）3に追加します。 </li><li> 15分間室温で反応混合物を撹拌し、そして真空下で揮発物を除去。 </li><li>冷ヘキサンを加え、真空下でそれを削除します。濃い紫色の粉末を定量的収率で得られるべきである。 </li><li>エッペンドルフバイアル中で得られた化合物8mgを秤量する。 3に進みます。 </li></ol></li><li>シュレンクラインを使用して、V（V）錯体を準備します。 <ol><li>セプタムキャップで乾燥シュレンクフラスコに乾燥THF中の配位子のH 2 Lを0.42ミリモルを溶かし、シュレンクラインに接続し、真空/不活性ガス（N 2またはAr）環境を交互に適用され、それが3秒を適用することを推奨しますラウンドをUCHと真空段階で2〜5分間待ってください。 </li><li>セプタムキャップを通して注射器を経由して乾燥THFを追加します。 </li><li> 、ラインに適切な乾燥シュレンクフラスコに掛け不活性環境を塗布およびそれにバナジウム溶液からのシリンジを介して試薬を添加することによって同様に調製したTHF溶液にVOの等量（O 私のPr）3を追加リガンド。 </li><li> 15分間室温で反応混合物を撹拌し、真空下で揮発性物質を除去し、不安定な生成物の懸念がある場合には、不活性雰囲気下での揮発物のシュレンク型蒸留を行い、予備乾燥された必要なガラス器具を取り付けるために不活性ガス流を使用。 </li><li>冷ヘキサンを加え、真空下でそれを削除します。濃い紫色の粉末を定量的収率で得られるべきである。 </li><li>エッペンドルフバイアル中で得られた化合物8mgを秤量する。 </li></ol></li><li>チタン（IV）錯体（ 図2）の調製; 28 </sアップ&gt;行為はグローブボックス内の3.1〜3.3を繰り返し、グローブボックスが利用できない場合は、代わりにシュレンクラインを採用バナジウムアナログ（ステップ2）のための議論の代替手順を調整します。 <ol><li>乾燥THF中の配位子のH 2 Lを0.35ミリモルを溶解し、THF中のTi（O I PR）4等量の撹拌溶液に追加します。 </li><li> 2時間室温で反応混合物を撹拌した。定量的収率で黄色の生成物を得、真空下で揮発性物質を除去する。 </li><li>エッペンドルフバイアル中で得られた化合物8mgを秤量する。 </li></ol></li><li> HT-29細胞を96ウェルプレートの調製<ol><li> 1％ペニシリン/ストレプトマイシン抗生物質、1％L-グルタミン、および37℃で10％ウシ胎児血清（FBS）、5％CO 2を含有するRPMI-1640培地で75cm 2のフラスコ内の培養HT-29細胞。 </li><li> HT-29細胞は、（サブカルチャーずに3〜4日ごとに90から100パーセント、）最大コンフルエントに達したときにメディアを削除します。 1ミリリットルで洗浄のトリプシン（0.25％）/ EDTA（0.05％）溶液で、それを削除してください。 </li><li> 1mlのトリプシン（0.25％）/ EDTA（0.05％）溶液を添加し、5分間インキュベートする。 </li><li>フラスコから、HT-29細胞を剥離し、トリプシン活性を無効にする培地10mlを加える。チューブに細胞混合物の5ミリリットルを転送します。 </li><li>カウンタチャンバーに細胞混合物の数滴を転送するためにピペットを使用する。カウンター室は5×5の正方形が含まれています。 </li><li>コー​​ナーで4広場や中央にある1：顕微鏡を用いて5代表の正方形のセルを数える。 </li><li>存在する細胞の見込額を計算します。 5代表正方形のセルを合計し、20で割る。 </li><li>ステップ4.7の結果によって0.6を割る。受信された番号は、プレート当たりに必要な細胞混合物の量である。この計算は、0.6×10 6細胞（ウェルあたり9,000細胞）を含有するプレートを意味する。 </li><li>のpごとに必要な細胞混合物の量を転送するためにピペットを使用して後半（セクション4.8で計算される）と、媒体の13.2ミリリットル（66ウエル×ウェルあたり200μL）を追加します。 </li><li> 11チャンネルピペット（ウェルあたり200μL、6行、計66ウエル）で96ウェルプレートに混合物を添加。各行の1つのウェルは、ブランクコントロールのために空のままにしてください。 </li><li>細胞がプレートに付着させ24時間、5％CO 2、37℃でプレートをインキュベートする。 </li></ol></li><li>化合物の挿入<ol><li>ステップ1.4（または2.6）または3.3で説明したように各化合物8 mgまでの乾燥THF（所望の濃度範囲に応じて、異なる量）200μl加え圧迫した。あまりにも、配位子H 2 L 8mgの秤量する。 </li><li> 9別のエッペンドルフバイアル中のTHF 60μLを加えることによって、さらに、各化合物溶液を希釈する。 </li><li> 10の異なる濃度がOになるまで、というように最初のエッペンドルフバイアルに5.1節での混合物からピペットで60μLを移し、再懸濁し、次のバイアルに60μLを転送し、（セクション5.1で親の混合物を含む）btai​​ned。 </li><li>培地を180μlのTHF中に各濃度の20μlの希釈する。 </li><li>唯一のTHFでコントロール溶液を調製し、各測定中の培地180μlのでTHFを20μL。 </li><li>すでに濃度範囲ができます（最大200 mg / Lでの化合物の最終濃度を与えるために培地中の細胞の上述の溶液200μlを含む各ウェルに、（THF制御を含む）を得られた溶液から10μLを追加）化合物の活性に応じて変更することができる。 </li><li>あなたは、化合物の溶解度に応じて適用される最高濃度でい​​くつかの降水量を観測することがあります。 </li><li>化合物3倍（同じ化合物のプレートの3行）の各測定を繰り返し、それぞれの行が含まれています：10の異なる濃度での化合物で処理した細胞、ブランクのセルなしでうまく制御のみと1の溶媒で処理1を含むウェルの細胞をコントロール。 </li><li> 5％CO 2雰囲気中で37℃で3日間、ロードされたプレートをインキュベートします。 </li></ol></li><li> MTTアッセイを用いて細胞毒性の測定<ol><li>フェノールレッドを含まないRPMI-1640培地200ml溶液にMTT粉末1gを添加してMTT溶液を調製する。ストック溶液を15 mlチューブに分け、-20℃で保存することができる</li><li>ウェル（ス​​テップ4.10から細胞を含まないブランクの対照ウェルを除き）11チャンネルピペットを用いて、それぞれに、MT​​T溶液20μlを追加し、さらに3時間静置します。 </li><li>各ウェルから培地溶液を除去。 </li><li>ホルマザンを溶解するために、各ウェルにイソプロパノール200μLを加える。均質性に到達するまで0.5時間プレートを攪拌する。 </li><li>マイクロプレートリーダー分光光度計による上記の溶液200μl、550 nmの吸光度を測定します。 </li><li> 3別の日に（つまり、3回の繰り返しが含まれ、ステップ5.8を参照）、各測定を繰り返します。 </li><li> Tを計算するTHF溶媒対照値の吸光度で除した結果を、測定値からブランクコントロールの吸光度値を控除し、100％を掛けることによって、細胞生存率のパーセンテージは、彼。 </li><li>グラフパッドプリズムソフトウェア（または同等品）を用いてIC 50値を計算します。 </li><li>報告されたIC 50は、少なくとも3つの異なる日に収集したすべてのIC 50値の平均であり、誤差値は標準偏差である。 </li></ol></li></ol>

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著者は、彼らが競合する金融利害関係はありません宣言します。

本稿に記載された方法は、生物学的細胞生存率アッセイによる化学合成を組み合わせる。生存細胞に関する任意の生物学的方法と同様に、層流フード内で作業し、滅菌有機溶媒の使用を含む無菌状態を維持することが重要である。また、加水分解に不安定な金属系薬物の製造及び貯蔵は、グローブボックス又はシュレンクライン技術が利用されるべき、不活性条件下で行われるべきである。 不活性環境下で動作するための技術の選択は、グローブボックスの可用性に主に依存している。利用可能な場合、室温条件を必要とするすべての合成は、その中に実行することは非常に便利である。加熱を必要とする合成は、通常のシュレンクフラスコに、箱から取り出され、シュレンクラインに取り付けられている。グローブボックスが利用できない場合には、すべての操作はSchleに厳選されたガラス製品を用いて実施することができるnkのライン、乾燥雰囲気を維持する真空/不活性ガス（N 2またはAr）の操作を使用している。 細胞傷害性評価プロセスでは、実験を通して細胞の出現を検討する必要がある。...

化学療法は、依然として様々な癌疾患の診療所で採用治療の主なコースの一つであり、研究のこのよう膨大な量の新しい改良抗がん剤の開発を目的とした世界的に行われている。このような研究は、主にin vitroでの細胞毒性の特性の生物学的評価に続いて、化合物の設計と準備して、化学的なレベルで開始します。細胞生存率は、細胞活性1〜2についての情報を提供する様々なアッセイにより評価することができる。 シスプラチンは、広く精巣および卵巣癌3-4向けに効率的な治療法と考えられている化学療法薬として使用される白金錯体の一例である。しかしながら、狭い活性範囲および重篤な副作用は、他の強力な遷移金属錯体5-8の研究を誘発する。中でも、チタン（IV）とバナジウム（V）錯体は、高活性の有望な結果を示し、減少し毒性9月16日 。 TI（IV）錯体は、これらの特性のために、シスプラチンの後に臨床試験に入ることが最初でしたが、それらは、製剤の困難や加水分解不安定に試験を失敗している。耐水性15,17-21高い抗癌活性を組み合わせることができるこれらの金属錯体の改善された誘導体を開発するための電流が必要とされている。 チタン（IV）およびV（V）錯体の調製における課題は、前駆体試薬の加水分解不安定性を指し、従って、不活性雰囲気が維持されるべきである。チタン（IV）およびV（V）化合物の調製は、グローブボックス内またはシュレンクライン技術を用いて、N 2またはAr条件下で行われる。 アッセイ - 抗癌活性を評価するための一つの一般的な方法は、MTT（（4,5 - ジメチルチアゾリ）-2,5 - ジフェニルテトラゾリウムブロミド3）に基づいている。このアッセイは、モスマンによって1983年に発表された比色生存率アッセイである22。それは非常によく研究され特徴付けられ、そして、その精度、迅速性、および種々の細胞株に適用されるその能力に新たな細胞毒性化合物の有効性を評価する際には非常に効率的と考えられているされている。この生存率アッセイは、それが生細胞に曝露されるMTT分子の色の変化に基づいている。生存細胞の数、および未処理の対照との比較に比例した吸光度の測定は、試験した化合物の細胞増殖阻害能力の評価を可能にする。 MTT比色アッセイは、96ウェルプレート形式23で行われる。細胞は、試験した薬剤を添加する前に、ウェル中のプレインキュベーションが必要な場合があります。プレインキュベーション時間は細胞株の特性に応じて0〜24時間と異なる場合があります。細胞は、通常、薬物活性に応じて24〜96時間薬物に曝露される。 MTT溶液を、次いで、エール処理した細胞に添加されOW MTTは生細胞（ 図1）24で動作しているミトコンドリアと細胞質ゾルの酵素の様々な紫色のホルマザンに還元される。 MTT分子は、死細胞又は赤血球（代謝的に不活性な細胞）、脾臓細胞（休止細胞）およびコンカナバリンAで刺激されたリンパ球（活性化細胞）22によって低減されない。 MTTホルマザン沈殿物とのインキュベーションの3〜4時間後。ホルマザンの形成は、インキュベーションの0.5時間後に開始されますが、最適な結果を得るためには、少なくとも3時間22 MTTに細胞を曝露することをお勧めします。その結果、成長培地を除去し、DMSOでも26を使用することができるホルマザンは、有機溶媒、好ましくはイソプロパノール25に溶解する。媒体の除去は、増殖培地中に広く一般的であるフェノールレッド、以降正確な結果を達成し、そしてタンパク質は25吸光度測定に干渉する可能性が沈殿のために重要である。ときはフォーマ恐山溶液が均質に達すると、溶液の吸光度をマイクロプレートリーダー分光光度計を用いて測定される。 550nmでの吸光度は、ウェルあたりの細胞200-50,000の範囲で細胞数に直接比例し、したがって、細胞の非常に少量の22を検出することができる。吸光度は、薬物による治療後に残った生存細胞の量を示し、薬物に曝露されなかった対照細胞の吸光度と比較される。適切なソフトウェアによる結果の分析は、IC 50（阻害濃度を、50％）を提供した値と測定のいくつかの繰り返しに基づいて統計誤差。 MTTアッセイはその正確性や比較的単純による新しい抗がん化合物をスクリーニングするための細胞毒性研究で広く一般的です。酵素反応に依存しているMTTアッセイを用いて、ただし、1は、様々な酵素阻害剤は、AN MTTの還元に影響を与えることができることを考慮しなければならない誤った結果27につながるdは。また、MTTアッセイは、薬物2の細胞傷害活性の分子メカニズムのあらゆる情報を提供しない。

<table><tbody><tr><td colspan="4">試薬/材料</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>生物産業</td><td>04-007-1A</td><td></td></tr><tr><td>ヘキサン AR</td><td>ガドット</td><td>830122313</td><td>溶媒乾燥システムを使用して乾燥</td></tr><tr><td>HT-29 細胞株</td><td>ATCC</td><td>HTB-38</td><td></td></tr><tr><td>イソプロパノール AR</td><td>ガドット</td><td>830111370</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>生物産業</td><td>03-020-1B</td><td></td></tr><tr><td>MTT</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>M5655-1G</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン 抗生物質</td><td>生物産業</td><td>03-031-1B</td><td></td></tr><tr><td>RPMI-1640 フェノールレッドと L-グルタミン</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>R8758</td><td></td></tr><tr><td>RPMI フェノールレッドなし</td><td>生物産業</td><td>01-103-1A</td><td></td></tr><tr><td>テトラヒドロフラン(THF)AR</td><td>ガドット</td><td>830156391</td><td>溶剤乾燥システムを使用して乾燥</td></tr>させます <tr><td>Ti(OiPr)4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>205273-500ML</td><td>湿気に敏感な</td></tr><tr><td>トリプシン/EDTA</td><td>生物産業</td><td>03-052-1B</td><td></td></tr><tr><td>VO(OiPr)3</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>404926-10G</td><td>水分sensitive</td></tr><tr><td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>12チャンネルピペット30-300 &mu;l</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>12チャンネルピペット 5-50 &mu;l</td><td>フィンピペット</td><td></td><td></td></tr><tr><td>75 cm2フラスコ</td><td>NUNC</td><td>156472</td><td></td></tr><tr><td>96ウェルプレート 蓋付き(平底)</td><td>NUNC</td><td>167008</td><td></td></tr><tr><td>CO2 インキュベーター</td><td>バインダー</td><td>APT.line C150</td><td></td></tr><tr><td>カウンターチャンバー</td><td>マリエンフェルト・スペリオル</td><td>650030</td><td></td></tr><tr><td>エッペンドルフ・バイアル</td><td>KARTELL</td><td></td><td></td></tr><tr><td>グローブボックス</td><td>M. Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>層流フード</td><td>ADS LAMINAIRE</td><td>OPTIMALE 12</td><td></td></tr><tr><td>マイクロプレートリーダー 分光光度計</td><td>Bio-Tek</td><td>El-800</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>エクリプス TS100</td><td></td></tr><tr><td>ピペット 20-200 &mu;l</td><td>フィンピペット</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ピペット 5-50 &mu;l</td><td>フィンピペット</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

mttアッセイにより合成と細胞毒性の評価：抗がん金属錯体

Anticancer Metal Complexes: Synthesis and Cytotoxicity Evaluation by the MTT Assay

チタン（IV）とバナジウム（V）錯体は、非常に強力な抗癌剤である。それらの合成における課題は、それらの加水分解不安定性を意味するので、それらの調製は、不活性雰囲気下で行われるべきである。これらの複合体の抗癌活性の評価はMTTアッセイにより達成することができる。 MTTアッセイは、それが生存可能な細胞に曝露されたときにMTTホルマザンに分子の酵素的還元に基づく比色生存率アッセイである。還元の結果は、MTT分子の色変化である。対照と比較して吸光度測定は、化合物の抗癌活性とそのIC 50値に変換される試験した化合物、様々な濃度の彼らの治療後の生癌細胞を残りの割合を決定。 MTTアッセイはその正確性、迅速性、および比較的単純による細胞毒性試験で広く一般的です。 ここに、我々は事前に細胞プレートの調製、細胞と化合物のインキュベーション後、MTTアッセイを用いて生存率を測定し、IC 50値の決定を含む空気に敏感な金属系薬物および細胞生存率の測定、の合成のための詳細なプロトコルを送った。

錯体はNMRおよび元素分析によって評価することができる確立された方法18,28およびそれらの純度に基づいて調製した。 MTTアッセイから受信されたデータは、化合物18,21の細胞毒性を評価するために分析される。最初に、すべての他の値からブランク対照吸光度値の減算が行われる。阻害化合物は増殖を添加しないように、第2の、THF溶媒対照値を100％生存に設定される。他のすべての値は、制御に応じて実行可能性のパーセンテージに変換されます。濃度が適用され、算出された相対生存率は次いで可変勾配（4変数）モデル（ 図4、表1）29の非線形回帰に基づいて、IC 50値を決定するために、グラフパッドプリズムソフトウェア（または同等のもの）に挿入される。 測定範囲に対して行われるべきである各台地上の少なくとも3点、3点をスロープ（ 図3、グラフA）を定義するには、次の分岐点の分布を示すグラフ...

空気に敏感チタン及びバナジウム抗癌剤の合成のための方法は、MTTアッセイによるヒト癌細胞株に対するそれらの細胞傷害活性の評価と共に、記載されている。

MTTアッセイにより合成と細胞毒性の評価：抗がん金属錯体

Titanium (IV) and vanadium (V) complexes are highly potent anticancer agents. A challenge in their synthesis refers to their hydrolytic instability; ...

本手順の目的は、抗がん剤として機能する金属錯体薬を調製し、MTTアッセイを用いてその細胞毒性を評価することです。まず、金属ベースの抗がん化合物を合成し、次に、がん細胞を播種した96ウェルプレートを調製することでこれを達成します。次に、金属ベースの抗がん化合物をがん細胞に導入します。最終ステップとして、MTTアッセイにより細胞生存率を測定します。ここでは、ミトコンドリアおよび細胞質酵素によるMTTの還元で生じるフォルマザンを測定することで、最終的に抗がん活性および半数最大抑制濃度（IC50値）を決定します。一般的に、この手法に不慣れな方は、実験者の全神経を集中させる必要がある多段階の手順であり、厳格なタイムスケジュールに基づいているため、苦労することがあります。生存細胞の取り扱いには特定のガイドラインに従う必要があるため、セルプレートの調製は単純ではなく、本手法の視覚的なデモンストレーションが不可欠です。グローブボックス内で、0.42 millimole のリガンド前駆体を乾燥 THF に溶解させて、バナジウム(V)錯体を調製します。次に、これをTHF中で撹拌し、等量のバナジウムオキシトリイソプロポキシドを加えた溶液に加えます。反応混合物を室温で15分間撹拌した後、真空状態で揮発分を除去します。続いて、冷えたヘキサンを加え、これを真空状態で除去します。定量的収率で濃紫色の粉末が得られるはずです。得られた化合物を8 mg、エピオーフバイアルに秤量します。チタン複合体4を調製するには、0.35 mmolのリガンド前駆体を乾燥THFに溶解させ、それを等量のチタンテトライソプロポキシドのTHF溶液に加えて撹拌します。反応混合物を室温で2時間撹拌します。その後、真空条件下で揮発成分を除去し、定量的な収率で黄色生成物を得ます。得られた化合物を8 mg量り取り、エッペンドルフチューブに入れ、96ウェルプレートで一次培養したHT 29細胞の調製に使用します。テキストプロトコルに記載されている75 cm²フラスコ内の細胞について、HT 29細胞が最大コンフルエントに達した時点で培地を除去します。1 mLのトリプシンEDTA溶液で細胞を洗浄した後、同溶液を1 mL加え、5分間インキュベートします。HT 29細胞をフラスコから剥離させ、10 mLの培地を加えてトリプシンの活性を停止させます。細胞懸濁液5 mLをチューブに移します。ピペットを使用して、細胞懸濁液を数滴、カウンターチャンバーに移します。カウンターチャンバーは、5×5の正方形が2つの領域で構成されています。顕微鏡を用いて、各部位の代表的な5つの正方形内の細胞数をカウントします。四隅の4つの正方形と、中央の1つの正方形をカウントしてください。その後、存在する細胞の推定量を算出します。各部位の代表的な5つの正方形内の細胞数を合計します。2つの部位の合計値の平均を算出し、それを20で除します。次に、0.6をその商で除します。得られた数値は、プレート1枚あたりに必要な細胞混合液の量です。この計算は、1ウェルあたり9,000個の細胞を含むプレートに基づいています。ピペットを使用して、プレート1枚あたりに必要な量の細胞混合液を13.2 millilitersの培地と混合します。混合液を96ウェルプレートに分注します。11チャンネルピペットを使用し、1ウェルあたり200 µLで、合計66ウェルを含む6行にわたって分注します。ブランクコントロールとして、各行の1ウェルを空けておきます。プレートを37 °C、5% CO₂条件下で24時間インキュベートし、細胞をプレートに接着させます。化合物を導入するため、まず8 mgの秤量した化合物に200 µLの乾燥THFを加えます。さらに、9つの異なるエッペンドルフチューブに60 µLのTHFを加え、化合物溶液を希釈します。各溶液について、ピペットを用いて化合物溶液から60 µLを最初のエッペンドルフチューブへ転移させます。その後、再懸濁して60 µLを次のバイアルに移し、10種類の異なる濃度が得られるまでこれを繰り返します。次に、THFで調製した各濃度の溶液20 µLを、180 µLの培地で希釈します。また、20 µLのTHFを180 µLの培地に加えることで、溶媒のみのコントロール溶液を調製します。次に、得られた各溶液を10 µLずつ、各ウェルに加えます。各ウェルには、前述の培地中の細胞懸濁液が200 µL分入っており、これにより化合物の最終濃度が最大200 mg/Lとなります。各行には、10種類の異なる濃度の化合物で処理した細胞が含まれています。溶媒のみで処理した細胞を含むコントロールウェル1つと、細胞を含まないウェル1つを用意します。ブランクコントロールについては、各化合物の測定を3回繰り返すようにラインを設定します。ロードしたプレートを37°C、5% carbon dioxide雰囲気下で3日間インキュベートします。11チャンネルピペットを用いて、テキストプロトコルに記載の通りにMTT溶液を調製します。ブランクコントロールウェルを除き、各ウェルに20 µLのMTT溶液を加えます。さらに3時間インキュベートします。各ウェルから培地を除去し、200 µLのイソプロパノールを各ウェルに加えます。forminを溶解させるため、プレートを30分間撹拌し、均一にします。均一になった溶液200 µLを用い、マイクロプレートリーダーまたは分光光度計で550 nmの吸光度を測定します。各測定は3日かけて繰り返し行います。次に、測定値からブランクコントロールの吸光度値を引き、その結果をTHF溶媒コントロールの吸光度値で除し、100%を乗じることで、細胞生存率を算出します。グラフ作成ソフトを用いて、半数最大抑制濃度（IC₅₀）値を算出します。報告されたIC 50は、少なくとも3日以上の異なる日に収集されたすべてのIC 50値の平均値であり、誤差値は標準偏差である。MTTアッセイから得られたデータを解析し、化合物の細胞毒性を評価する。測定は、各プラトーに少なくとも3点、および勾配を定義するために3点のポイントが含まれ、点が均等に分布するグラフが得られる濃度範囲で実施する必要がある。高濃度域または低濃度域での測定値が不十分な場合、IC 50値の決定に必要な曲線の非線形回帰適合が損なわれ、その結果、精度の低下を招きます。非線形回帰適合によって決定される相対的IC 50値は、試験化合物によって達成可能な細胞増殖抑制率が50%となる濃度に対応します。これは、測定された最大細胞生存率と最小細胞生存率の中間点として算出され、これらは必ずしもそれぞれ100%および0%であるとは限りません。プロトコルに記載された実験結果を確認すると、シスプラチンおよびチタンおよびバナジウム錯体が非常に活性が高いことが明らかになります。また、ある化合物の最大阻害値が100%に近いほど、異なる化合物間でIC 50値を比較した際に、相対的なIC 50値が絶対値に近づくことも見て取れます。チタン(IV)錯体は最も高い細胞毒性を示し、そのIC 50値はシスプラチンおよびバナジウム(V)錯体よりも低い値でした。しかし、遊離リガンドに関しては、異なる濃度で添加した後の細胞生存率の低下が錯体ほど顕著ではなく、活性が著しく低下していることが示されました。これにより、錯体の高い抗がん活性が金属中心に起因することが保証されます。この手順を行う際は、常に無菌状態を維持することが重要です。このビデオを視聴することで、MTTアッセイを用いて抗がん化合物の細胞毒性を評価する方法について十分に理解できるはずです。

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MTTアッセイにより合成と細胞毒性の評価：抗がん金属錯体

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