Name: 鳥類の消化器系を通過した後の感染プリオンを識別するための手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-06T21:30:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: 学ぶ、アメリカガラスを用いて感染性プリオンが消化器系を通過した後も生存するかを評価する手法。マウス腹腔内接種とウエスタンブロット解析により、糞便中のプリオン感染性を検証する。

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私たちは、動物のケアとモニタリングのために、S.、本研究と米国農務省で使用されるカラスを提供するためのヴェルナー、APHIS、WS、NWRC動物管理スタッフに感謝したいと思います。言及または製品を使用するには、米国農務省の承認を意味するものではありません。この研究のための資金は、米国農務省、APHIS、獣医サービスによって提供された。

我々のプロトコルは、我々が以前に7を発表した1から採用されている。動物に関わるすべての手続きは、米国農務省（USDA）、動植物衛生検査局（APHIS）、野生動物サービス（WS）、国立野生生物研究センター（NWRC）の施設内動物管理使用委員会によって承認された。 1。カラスGavaging <ol><li>アメリカのカラスの消化管を通して「疑似脳物質 &#39;の通過時間を見積もります。 <ol><li>調理の5ミリリットルを混合し、強制経口投与針2（ 図1）を用いた青色色素および強制経口投与1カラスと全卵をスクランブル。 </li><li>青/緑に染色された糞はもはや排泄されるまで、30分ごとにカラスないことを確認してください。 </li></ol></li><li>感染していないと末期RML（チャンドラー株）に感染したC57BL / 6マウスの脳を入手します。 </li><li> 1Xと弾丸ブレンダーホモジナイザーの通常20％重量/容量、感染したマウス脳乳剤を生成リン酸緩衝生理食塩水（PBS）とガラスビーズを、次いで、より大きな粒子状物質を除去するために1分間3,000×gで遠心する。上清を除去し、無菌のPBS中の10％重量/体積を生成するために、1×PBS等容量の希釈した。必要になるまで-80℃で凍結する。 </li><li>前胃管栄養への17時間は、カラスのペンから、水食料を削除ではなく。 </li><li>無作為に処置群にカラスを割り当て、強制経口強制栄養針2を使用して正常または感染したいずれかのマウス脳ホモジネート5mlでそれぞれカラス。 </li><li>転送は、個々のケージにカラスや4時間後、胃管栄養法（ 図2）のために、各ケージ内のすべての糞を集め、プール。 </li><li>均一な組織が得られるまでガラスビーズと弾丸ブレンダーホモジナイザーの各カラスのためにプールされた糞を均質化する。 *カラスの糞は主に液体であり、容易に混合することができる。 </li><li>各カラスのために、10ミリリットルの全容量のために9.5ミリリットルの1X PBSに糞便ホモジネート500μlの希釈する。 </li><li>糞便homogenaを遠心分離1400×gで15分間のTE、上清を抽出します。 </li><li>二微生物感染の脅威を最小限ホモジネート、100μlの1〜100単位の液/ mlペニシリンおよび100μg/ mlのストレプトマイシン（Invitrogen社、NY）を用いて上清を治療するためにその後減少させるために20分間室温でUV光下に置くウイルスおよび細菌汚染のリスク。 UV露光した後、残りの微生物の膜を破壊するために30秒間70を設定することで、3000 Mpは超音波処理における超音波処理のサンプル。 </li></ol> 2。マウス接種<ol><li>無作為に以下の処置群（ 表1）にマウスを割り当てる。 <ol><li>グループ1 - 陽性の処置マウスは経口5ミリリットル感染マウスの脳を強制飼養カラスからの糞便ホモジネート1mlで腹腔内（IP）接種した。 </li><li>グループ2 - 負の処置マウスは、経口5ミリリットル、通常のマウスの脳を強制飼養カラスからの糞便ホモジネート1mlのIPアドレスを接種した。 </li><li> infecteを希釈1×PBSで1:100重量/容量のグループ3および4のdおよび正常マウス脳ホモジネート。 </li><li>第3群 - 陽性対照マウスは、感染マウス脳ホモジネート1mlのIPを接種した。 </li><li>グループ4 - 陰性対照マウスは正常マウス脳ホモジネート1mlのIPを接種した。 </li></ol></li></ol><table border="1"><tbody><tr><td></td><td>治療グループ</td><td>動物の数</td></tr><tr><td>グループ1 </td><td>スクレイピー+クロウ糞</td><td> 100 </td></tr><tr><td>グループ2 </td><td>スクレイピー - クロウ糞</td><td> 25 </td></tr><tr><td>グループ3 </td><td>スクレイピー+マウス脳</td><td> 10 </td></tr><tr><td>グループ4 </td><td>スクレイピー - マウス脳</td><td> 5 </td></tr></tbody></table> 表1スクレイピー接種の状況（負正+、 - ）と動物の数が7を使用していました。 <ol start="2"><li>腹腔内にマウスに接種： <ol><li>優しく首筋の親指と人差し指で背面の首の毛皮によるマウスとは、腹側を露出させ回転させます。 </li><li>ヘッドがやや低いので、マウスの後端部を上昇させる。 </li><li>針ロック注射器を用いて仙腸関節にCM前部皮膚を通して25 G針1センチ、正中線の左右1cmの1-2を挿入します。 </li><li> 1mlを、マウスの体腔内に徐々に接種注入する。 </li></ol></li></ol> 3。マウスの監視<ol><li>彼らはマウススクレイピーの臨床徴候を表現まで毎日マウスを監視します。臨床症状は含まれる：脊柱後、運動失調、硬い尾、グルーミング、衰弱、および嗜眠の欠如を。 </li><li> 0目に見える=なし、1 =中等度、および2 =が激しいところ目に見える兆候は、明らかであるとき6臨床徴候のそれぞれにマウスを獲得。 </li><li> 3日間、または365日後に接種（DPI）で連続6それぞれの記号の1日の総得点は1日の≥8に到達したときに、マウスを安楽死させる≥。 </li><li>収穫脳直後のeuthan-70℃でのアジアと店舗</li><li> 、スクレイピー診断を確認、次のように希釈されたプロテイナーゼK溶液（PK）の50μg/ mlのの3μlの脳サンプルを消化するために：3.1。 μlのPK、500mMのEDTA12.5μlの、pH8で、45℃で30分間、1×PBSの109.39μlを、次いで、8μlのローディング緩衝液を添加し、95℃で5分間、サンプルをインキュベートすることによってPKを不活性化する。 12％SDS-PAGEゲル電気泳動させると、室温で1時間、PBS中の0.2％のTween 20でイモビロンPVDF膜を5％脱脂乳でブロックへの転送上に負荷サンプル。次いで、室温で1時間のSuperblock中で希釈西洋ワサビペルオキシダーゼ、Bar224にコンジュゲート抗プリオンモノクローナル抗体でプローブする。 PBS-0.2％Tween 20で1時間、膜を洗浄します。可視化するために、G-ボックスゲルドキュメンテーションシステムに化学発光基質およびイメージを使用してウエスタンブロット5分間インキュベートする。 </li></ol>

<ol><li>Prusiner, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+proteinaceous+infectious+particles+cause+scrapie%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie.</a> Science. 216 (4542), 136-144 (1982).</li>
<li>Miller, M. W., Williams, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epizootiology+of+chronic+wasting+disease+in+free-ranging+cervids+in+Colorado+and+Wyoming%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Wildlife+Diseases%22%5BJournal%5D)">Epizootiology of chronic wasting disease in free-ranging cervids in Colorado and Wyoming.</a> Journal of Wildlife Diseases. 36 (4), 676-690 (2000).</li>
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<li>Scherbel, C., Pichner, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Degradation+of+scrapie+associated+prion+protein+%28PrPSc%29+by+the+gastrointestinal+microbiota+of+cattle%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">Degradation of scrapie associated prion protein (PrPSc) by the gastrointestinal microbiota of cattle.</a> Veterinary Research. 37 (5), 695-703 (2006).</li>
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<li>Dierenfeld, E. S., Koontz, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feed+intake%2C+digestion+and+passage+of+proboscis+monkey+%28Nasalis+larvatus%29+in+captivity%5BTitle%5D)+AND+%22Primates%22%5BJournal%5D)">Feed intake, digestion and passage of proboscis monkey (Nasalis larvatus) in captivity.</a> Primates. 33 (3), 399-405 (1992).</li>
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</ol>

利害の対立が宣言されていません。

私たちは、カラスの消化器系を通じてプリオンのRES物質の通過を文書化するための手順を示しています。私たちは、カラスが無病の地域へのプリオン解像度素材を転位する能力を持っているかどうかを判断するために、従来の方法を使用していました。他はそれを排除することができなかった、どちらも19〜21と齧歯類22,23消化液を反芻するプリオン解像度の抵抗を評価した。彼らはまた、潜在的に死肉中のPrP 解像度材料に遭遇し、プリオン病の蔓延を促進する風景全体でこの材料を輸送する可能性があるため、これらの技術の将来の適用は24他の肉食動物に適用する必要があります。 私たちは、カラスの消化管を通して均質化されたマウスの脳のおおよその通過時間を評価するための簡単​​な方法を提供し、私たちのスクランブルエッグ &quot;疑似脳の物質に青い食品着色料を追加しました。我々は最初のインに、この手法を検討して他の人にアドバイス実験動物の既存の糞の色をPECTしてか...

伝達性海綿状脳症（TSE）は、野生生物に影響を与える致命的な感染性の神経変性疾患、家畜、そしてヒトである。 TSE疾患の感染性病原体はプリオンタンパク質1のミスフォールドまたは病原性アイソフォーム（PRP RES）であるように思われる。ヒツジおよびヤギにおけるスクレイピー;、牛海綿状脳症（動物TSE疾患はラバ鹿（ ミュールジカ ）、オジロジカ（ オジロジカ ）、エルク（ アカシカ ）、およびムース（ ヘラジカ ）の慢性消耗病（CWD）が含まれ国内の牛のBSE）;養殖ミンクにおける伝染性ミンク脳症、ネコのネコ海綿状脳症、ヒト以外の霊長類8にし、海綿状脳症、エキゾチックな動物園のエキゾチックな有蹄動物海綿状脳症は、家族ウシ科の反芻。単一のヒトTSE病、変異型クロイツフェルト·ヤコブ病は、稀で、 解像度のPrP-contaminを消費することによって取得されると考えられているated食品9。汚染された牛肉が10消費された場合も、BSEはヒトに感染することができます。すべてのTSE疾患のうち、スクレイピーおよびCWDは、動物から動物2,3,11にだけでなく、環境源4-6からのものであると推定される自律的な流行と感染のソースでのみ2である。研究では、ほとんどのTSE疾患は臨床徴候が発現する前にプリオン解像度素材の自然曝露イベントからの注目すべき拡張潜伏期間が必要2-4,6,8、見かけ種の壁を最小限に、しかし、種間伝播12月14日の可能性を排除しないことを示唆している。 感染性プリオン（PRP RES）材料の普及のためのメカニズムを識別することはTSE疾患が風景を越えて移動する方法についての質問に答えるために非常に重要です。実験的研究は、昆虫15,16、家禽および豚17、およびアメリカのカラス（ カラスのブラチことが示唆されているhyrhynchos）7,18は、PrP解像度材料の受動的なキャリアまたは分散機である。カラスの消化器系を通じてプリオンのRES物質の通過は最近、TSE疾患7の分散でプレイしてもよい役割を示す、文書化されています。これらの結果は、カラス、スカベンジャーは、遭遇する可能性があること、それがもっともらしい作る消費し、無病領域に、糞の堆積により感染性物質を輸送する。 我々はここに証明する手続きは、カラスの消化システムを介してプリオンのRES物質の通過を記録するために使用されたと大いに関連する今後の研究の他のスカベンジャーと肉食種特異的なモデルに、これらの方法の適用を容易にします。本研究では、従来の方法は、プリオン解像度素材の広がりと全体的な重荷に貢献できるプリオン解像度素材を、人身売買の型破りな手段を調査するために使用された。

<table><tbody><tr><td>RML チャンドラー株 マウス適応スクレイピー</td><td>ロッキーマウンテン研究所</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RC57BL/6 マウス</td><td>ヒルトップ 実験動物</td><td></td><td></td></tr><tr><td>アメリカカラ</td>ス <td>野生捕獲</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ペン/連鎖球菌</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>Invitrogen</td><td>70011-044</td><td></td></tr><tr><td>ソニケーター</td><td>Misonix</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Proteinase-K solution</td><td>Roche</td><td>3115887001</td><td></td></tr><tr><td>ローディングバッファー</td><td>Invitrogen</td><td>NP0007 and 0009</td><td></td></tr><tr><td>Bis-tris SDS PAGE 12% gel</td><td>Invitrogen</td><td>NP0342</td><td></td></tr><tr><td>Immobilon PVDF membrane</td><td>Millipore</td><td>1SEQ00010</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P2287</td><td></td></tr><tr><td>Bulletブレンダーホモジナイザー</td><td>Braintree Scientific</td><td>BBX24B</td><td></td></tr><tr><td>2.3 mm ジルコニア/シリカビーズ</td><td>BioSpec 製品</td><td>11079125Z</td><td></td></tr><tr><td>Bar224 抗 PrP モノクローナル抗体</td><td>ケイマン ケミカル</td><td>10009035</td><td></td></tr><tr><td>スーパーブロック</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td>37517</td><td></td></tr><tr><td>化学発光基質</td><td>ミリポア</td><td>WBKLS0500</td><td></td></tr><tr><td>G-boxゲルドキュメンテーションシステム</td><td>Syngene</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

鳥類の消化器系を通過した後の感染プリオンを識別するための手順

Procedures for Identifying Infectious Prions After Passage Through the Digestive System of an Avian Species

感染性プリオン（PRP RES）材料は、おそらく致命的な神経変性伝達性 ​​海綿状脳症（TSE）の病気1の原因である。例えば、慢性消耗病（CWD）などのTSE疾患の送信は、動物から動物への2,3並びに環境源4-6からであると推定される。スカベンジャーと肉食動物は、CWDに汚染された死肉の摂取と排泄を通してプリオン解像度材料を移動させる可能性を持っている。最近の研究はアメリカのカラスの消化器系（ アメリカガラス ）、一般的な北アメリカのスカベンジャー7を通してプリオン解像度素材の通過を文書化しました。 我々はアメリカのカラスを通じてプリオン解像度素材の通過を記録するために使用される手順について説明します。カラスはRML - ひずみマウス適応スクレイピーで強制経口投与し、それらの糞は4時間後に強制経口投与を収集した。カラスの糞をし、その後プールし、腹腔内に注射したC57BL / 6マウス。彼らはマウススクレイピーの臨床徴候を表明し、その後、安楽死させたまではマウスを毎日モニターした。無症候性マウスは365日後に接種するまで監視した。ウェスタンブロット解析は、疾患状態を確認するために行った。結果は、プリオンがカラスの消化器系を通って移動した後に感染性のままであり、試験マウスにおいて疾患を引き起こす、糞便中に存在することが明らかになった。

使用手順は、カラスの消化器系は、スクレイピー脳ホモジネート7の強制経口投与した後にPrPの解像度感染性4時間を排除しないことを示している。プリオン解像度材料で強制経口投与されたすべての20カラスはその後、マウスに糞を経由したPrP 解像度素材を送信した。ウェスタンブロット分析によって完了した罹患したマウスは、臨床マウススクレイピー徴候および疾患確認の発現によって同定した。 カラスが摂取物質の保持時間の検討糞便中の染料の存在（ 図1）に基づいて、4時間であることが強制飼養カラスのための消化管の通過時間を明らかにした。すべての糞は、使い捨てピペットを用いて収集し、それぞれのカラス（ 図2）のためにプールした。生の糞便上清をパイロットテストのマウスに腹腔内注射されたときに未処理のカラスの糞便から急性毒性が発生しました。ペニシリン及びSTREと糞便接種を処理することによりptomycin、紫外線、超音波処理、我々はこの問題を軽減する。 ...

スカベンジャーは無病領域に糞中の感染伝達性海綿状脳症プリオンを移動させる可能性を持っている。私たちはマウス適応スクレイピープリオンはアメリカのカラスの消化管（ アメリカガラス ）、死んだ動物の共通の消費者も通過した後、感染のままかどうかを判断するために使用される詳細な方法。

Infectious prion (PrPRes) material is likely the cause of fatal, neurodegenerative transmissible spongiform encephalopathy (TSE) diseases1. Transmission ...

この手順の全体的な目標は、アメリカカラスの消化器系を通る感染性PreOn物質の通過を記録することです。これは、最初に感染性PreOn材料でカラスを測定することによって達成されます。2番目のステップは、強制経口投与後4時間カラスの糞を収集し、マウスに注射する準備をすることです。次に、マウスに1ミリリットルのカラスの糞便ホモジネートを腹腔内に接種します。最後のステップは、マウスがマウススクレイピーの臨床徴候を示すまで、マウスを毎日監視することです。最終的に、ウェスタンブロット分析を使用して、マウスモデルにおける感染性PreOnの存在を確認し、疾患の伝播を確認します。カラスが移動できるという考え。CWDは、ある冬の日、捕獲されたヘラジカの施設に車で行き、そこで調査を行い、ロードキルのヘラジカがカラスに餌を与えられているのを見た後、その日の後半に、カラスがどこからともなく空から出てきて、これらの餌桶に着陸し、ヘラジカのすぐ隣で餌を食べ、ヘラジカが消費していた穀物に排便したときに、文献からの観察から多くのことが私たちのところに来ました。コロラド州全体でその夏、ワイオミング州はニューメキシコ州の集中地域で冬を過ごし、ニューメキシコ州のその地域は、いくつかのCABDが出現した場所であり、それは亀裂消耗病の震源地から数百マイル離れたところにあることが起こります。したがって、これらの2つの観察は、カラスがCWDを地形の周りで輸送する役割を果たしている可能性があると考えるようになりました。誤った腹腔内および経口強制経口強制弁法は研究動物の死につながる可能性があるため、これらの技術の視覚的なデモンストレーションは重要です。まず、スクランブルエッグに青い染料を4滴加え、よく混ぜます。次に、5ミリリットルの染料と卵の混合物を2インチの強制針に引き込み、1人がカラスを優しく拘束します。カラスのくちばしを喉の下が見えるほど大きく開き、強制針を慎重に食道に挿入します。呼吸の変化が見られる場合は、注射器を取り外して、気管に配置されている可能性があるため、再試行してください。強制針が食道にあることを確認したら、注射器の内容物をゆっくりと搾り出します。青緑色の汚れた糞便が排泄されなくなるまで、30分ごとにカラスをチェックしてください。テスト用のカラスは、青く染まった糞便の排泄を止めるのに約4時間かかりました。次に、感染していないC 57ブラック6マウスの脳を1部、滅菌PBSとガラスビーズを4部に加え、バレットブレンダーに入れます。ホモジナイザーは、滑らかな一貫性が達成されるまで、サンプルを1〜5分間均質化します。末期疾患のR ML Chandler株に感染したC 57ブラックシックスマウスの脳を使用してプロセスを繰り返します。次に、均質なものをGの3000倍で1分間遠心分離します。より大きな粒子状物質を除去するため。次に、上清を取り除き、等量の滅菌済み 1 XPBS で希釈して、脳内物質の体積あたり 10% の重量を生成します。PBSでは、強制経口投与の17時間前に必要になるまで、サンプルを摂氏80度でマイナスに保管します。カラスペンから食べ物を取り除きますが、水は取り除きません。カラスを治療グループにランダムに割り当て、2インチの強制針を使用して、5ミリリットルの溶かしたばかりの正常または感染したマウス脳ホモジネートで各カラスを経口強制経口投与します。次に、カラスを個々のケージに移します。強制経口投与後4時間で各ケージ内のすべての糞便を収集してプールします。次に、ガラスビーズを使用した青い弾丸ホモジナイザーで、各カラスのプールされた糞便を均質化します。次に、混合物の500マイクロリットルを取り、滅菌PBS遠心分離機の9.5ミリリットル、15分間の希釈糞便ホモジネートで1〜20に希釈します。Gを1, 300倍加えてから、上清を新しいチューブに移します。二次微生物感染の脅威を最小限に抑えるために、ホモジネート1ミリリットルあたり1ユニットのペニシリンと1マイクログラムのストレプトマイシンを追加します。.次に、3000MPのレーターでサンプルを70の電力設定で30秒間超音波処理し、残りの微生物の膜を破壊します。まず、マウスをここに示されている 4 つのグループのいずれかにランダムに割り当てます。グループ1は感染したカラスの糞を受け取ります。グループ2は、感染していないカラスの糞を受け取ります。グループ3は感染したマウスの脳を受け取り、グループ4は正常なマウスの脳を受け取ります。次に、MNグループ1と2については、スクレーピーポジティブまたはスクレーピーネガティブのカラスの糞便を1ミリリットル引き出します。マウスのグループ番号に応じて25ゲージの針を使用してホモジネートします。次に、マウスの背側の首の毛皮を握りしめます。親指と人差し指を使用して、腹側を露出させるようにゆっくりと回転させます。マウスの後端を持ち上げて、頭が少し下がるようにします。針を皮膚から1センチメートル、正中線の外側1センチメートル、仙腸関節の1〜2センチ前に挿入します。次に、わずかに引き戻して、均質なものをマウスの体腔にゆっくりと注入します。次に、凍結マウス脳ホモジネートをスクラップありとなしのホモジネートを調製し、グループ3および4の動物に注射します。最初にホーズを滅菌PBSで混合物1〜10を希釈します。次に、希釈したスクレイピー陽性の脳ホモジネート1ミリリットルをグループ3のマウスに注入し、希釈したスクレーピーネガティブ脳ホモジネートの1ミリリットルをマウスに注入します。グループ4で。マウスがスクレイピーの臨床徴候を示すまで、マウスを毎日監視します。臨床徴候には、後弯症、運動失調、尾のこわばり、身だしなみの欠如、衰弱、無気力などがあります。6つの臨床徴候のそれぞれについて私の毎日を採点します。目に見える兆候が明らかな場合。ゼロは目に見える符号がないことを意味します。1 は中程度、2 つは符号の重度レベルに相当します。各兆候の1日の合計スコアが8以上に達し、3日間または365日連続して6以上の1日で8以上に達した場合、マウスを安楽死させます。接種後、安楽死直後に脳を採取し、摂氏マイナス80度で保存します。次に、死骸を適切に処理して、不器用な診断を確認します。凍結したマウスの脳を解凍し、均一な食感が得られるまで、ガラスビーズを使用したBlue Bulletホモジナイザーで個別に均質化します。次に、109.39マイクロリットルのPBSと12.5マイクロリットルの500ミリモルEDTAをpH 8で組み合わせ、3.1マイクロリットルの50マイクログラム/ミリリットルのプロテイナーゼK溶液を組み合わせて、125マイクロリットルのプロテイナーゼK消化液を調製します。次に、脳の17マイクロリットルに3マイクロリットルの消化液を追加します。ホモジネート。サンプルを摂氏45度で、振とうのあるヒートブロックで30分間インキュベートします。インキュベーションが終了したら、8マイクロリットルのSDSページローディングバッファーを添加して消化液を不活性化し、サンプルを摂氏95度で5分間インキュベートします。次に、サンプルを 12%SDS ページに読み込みます。ゲル電気泳動でタンパク質を電気泳動し、ゲルをIMON PVDF膜に移す 一度、PVDF膜をPBS中の5%脱脂乳でブロックし、20と岩石の間で0.2%で室温で1時間。次に、インキュベーション後、室温で1時間、スーパーブロックとロックで1〜20,000を希釈したセイヨウダイオスペルオキシダーゼに結合した224とIPRPモノクローナル抗体で膜をプローブします。膜をPBSで1時間洗い流し、0.2%で20の間。メンブレンを化学発光基質と5分間インキュベートすることにより、タンパク質を可視化します。次に、Gボックスゲルドキュメンテーションシステムでメンブレンをイメージングします。罹患マウスは、臨床マウスの擦り傷徴候の発現により同定され、ウェスタン血液分析により疾患確認が完了しました。正常なマウス脳は、スクレイピーがなく均質で、ここでは左の2レーンで示されています。プロテアーゼKの助けがない場合とない場合の2つのレーンで、プロテアーゼKがない場合、3つの曲がりが見られます。しかし、正常なタンパク質はプロテイナーゼに感受性があるため、第2レーンでは曲がりは見られません。レーン3は、プロテアーゼ分解されたスクレイピーポジティブコントロールサンプルを示しています。プロテアーゼは、タンパク質のn末端とc末端の喪失により、3つの元のバンドにシフトを引き起こします。しかし、感染したタンパク質は、正常な脳サンプルのように完全に消化することはできません。右図は、接種したカラスの糞便を接種したマウスの脳をプロテイナーゼKで消化したもので、バンドが消化されないため、サンプル中のプリオンの存在が確認されています。このビデオを見れば、感染性プリオン物質がカラスの消化器系を通過する様子を記録する方法について、より深く理解することができます。その後、腹膜間マウスバイオアッセイで感染性を確認します。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

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野鳥の鳥インフルエンザウイルスの迅速な診断：フィールドのポータブルRRT - PCR及び凍結乾燥試薬の使用

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プリオンのタンパク質のミスフォールディングサイクリック増幅

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免疫組織化学による脳組織中の異常なプリオンタンパク質の検出

コレラ毒素とビオチン化デキストランアミン二重標識が続く仮性狂犬病ウイルスとペリフェラルターゲットからトレース経シナプス

短い臨床検査プロトコルは羊およびヤギの古典的および非定型的なスククレーピーの検出を助けるために提示される。...

羊の非定型および古典スククレープを検出する臨床検査プロトコル

プリオン病の種間伝播に対する障壁を測定することは困難であり、通常、動物実験や生化学的アッセイを伴います。ここでは、種障壁を予測する能力を持つin...

と伝達性海綿状脳症種の障壁を評価する<em&gt;インビトロ</em&gt;プリオンタンパク質変換アッセイ

ここでは、単純な高速かつ効率的なプリオンの増幅技術、リアルタイムで揺れる誘起変換 (RT QuIC) メソッドを記述するプロトコルを提案する.

リアルタイム揺れる誘起変換用糞便材料の CWD プリオンの検出

免疫組織化学プロトコルを使用して異常なプリオンタンパク質を免疫標識するには、特定のサンプルおよび抗PrP抗体調製方法が必要です。本プロトコルは、適切なPrP免疫標識を確保し、非特異的バックグラウンド染色を最小限に抑えるためのエピトープデマスキングの重要なステップを説明しています。また、このアプローチは、プリオン感染組織を用いて免疫組織化学研究を行う際のバイオセーフティ対策を考慮する。...

免疫組織化学による異常プリオンタンパク質の検出

実験室で一般的に使用される領域をプリオン汚染と効果的な除染のために評価する方法が不足しています。ここで説明するプロトコルは、特定のラボの個々のニーズに合わせて簡単に変更できるラボプリオン安全性スワイプテストを実装するための重要な基本を提供します。...

プリオン安全研究所 スワイプ試験

学ぶ、アメリカガラスを用いて感染性プリオンが消化器系を通過した後も生存するかを評価する手法。マウス腹腔内接種とウエスタンブロット解析により、糞便中のプリオン感染性を検証する。

鳥類の消化器系を通過した後の感染プリオンを識別するための手順

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