Name: 堅牢、マイクロ流体細胞内送達プラットフォームとしての細胞絞る (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-07T19:45:00.000+00:00
Duration: 8 min 2 s
Description: 学ぼう、マイクロ流体デバイスを用いた細胞絞りによるベクター非依存的なマクロ分子細胞内送達法。機械的変形で細胞膜を一時的に破壊し、標的細胞への効率的な物質導入を実現します。がん治療や免疫細胞操作への応用が期待されます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我々は、実験デザインとデータ分析の有用な議論のために、T. Shatovaに感謝します。 G·パラディの支援と専門知識は、マサチューセッツ工科大学のコッホ研究所のコアフローサイトメトリー、およびマイクロシステム技術研究所のスタッフの人が感謝して承諾されます。この作品は、健康補助金RC1 EB011187-02、DE013023、DE016516、EB000351の国立研究所によってサポートされ、部分的に国立がん研究所がんセンターサポート（コア）で、P30-CA14051およびMPP-09Call-ランガー-60を付与した。

1。ストレージ<ol><li> 70％エタノール中貯水池、ホルダー、Oリングやマイクロ流体デバイスに保管してください。ほこりや外部粒子による蒸発や汚染を防止するための蓋を持っているコンテナ（ 例えば瓶やビーカー）を使用します。 （3）第三の内の1つの容器（1）と、第2の容器内のリザーバとO-リング（2）と、ホルダー内のデバイスを置く。 </li></ol>注：ストレージのための70％エタノールの使用は、無菌性を維持することである。ソリューションのコンポーネントのみがエタノールと水（ すなわち無変性剤）がある場合は、すべてのシステム·コンポーネントは、完全に互換性がなければならず、時間の経過とともに低下することはありません。 <ol start="2"><li>実験にわたって交差汚染を防止し、目詰まりを起こすことができ、望ましくない粒子の存在を最小にするために、各使用前に、エタノール中の溶液の容器（2）と（3）を交換してください。 </li></ol> 2。実験の準備<ol><li> foの超音波浴に置き容器（2）及び（3）各使用前にR 5〜10分。これは、前の実験から任意の汚染粒子を除去するのに役立ちます。 </li><li> 70％エタノール溶液でバイオセーフティーキャビネット中できれいなワークスペース。 </li><li>生物学的安全キャビネット内に置く前に、70％エタノール溶液ですべての材料（3容器、及びピンセット）を噴霧する。 </li></ol> 3。アセンブリ<ol><li>作業領域に2〜3の低リントワイプ上下セット。 </li><li>ピンセットでそのコンテナからプラスチック製のリザーバーを取り外し、内面からのエタノール溶液の蒸発を促進するためにワイプ上に設定してください。穏やかに表面上のリザーバをタップまたはエタノール溶液の除去を容易にするために、それらを介して空気を吹き込む。 </li><li>貯水池上での適切なスロットにOリングを挿入します。 </li><li>それぞれの容器からホルダーとチップを取り外し、エタノールを蒸発させる（〜1〜2分）。 </li><li>ホルダーに必要なチップフェイスアップ（最大すなわちアクセスホール）を配置するためにピンセットを使用してください。ホルダーを上げる必ずチップをホルダーに平らに置かれていることを確認し、必要に応じてピンセットで調整するeyelevelにチップを搭載した。重要：デバイスがそのホルダ内に正しくフィットしない場合、それはその後の工程中に破損する危険性がある。 </li><li>次に、そっとホルダーに貯水池を置き、クリップでそれらを合わせます。 Oリングは、このプロセスの間に、そのスロットから落ちないように注意してください。 </li><li>彼らは、カチッと音がするまで静かに貯水池を下に押します。貯水池の両側は、セキュアチップが正しい位置にあるように見えるということであることを確認してください。 </li></ol> 4。細胞調製<ol><li>接着細胞（プライマリまたは確立された行）の場合：1〜2日前に、実験にプレート細胞彼らは実験日には80％以上コンフルエントないようにする。 </li><li> （PBSまたは関連するメディアに）懸濁液中の細胞を置き、1.0×10 6個/ ml 7 CEL 10 X 1.0へのオペレーティング濃度を目指すlsの個/ ml。注：我々は、セル濃度に配信性能に大きな変化は確認されていません。 </li><li>実験に必要な物質濃度を得るために、別のチューブに細胞や配送希望の材料を混ぜる。重要：記載の送達方法は、送達を容易にするために、拡散に依存しているため、より高い物質の濃度がより高い送達をもたらす。可能な場合は、最初の試験のために必要な材料の1μMのソリューションを使用することをお勧めします。必要に応じて、この濃度は、将来の実験でダウン滴定することができる。このデバイスに使用される最低報告された濃度は、10 nMで21です。 </li></ol> 5。操作<ol><li>ピペットリザーバ（現在の設計は、最大150μlの容量を有している）への細胞および送達物質との混合物。注：ほとんどのデバイスの設計は、そのためのチャネルを通る流れの方向は重要ではありません、完全に可逆的である。サンプルは、2つのリザーバのいずれかにロードされてもよい。 </李&gt; <li>満たされたタンクに圧力チューブを取り付け、（指のタイトが十分であることが多い）適切なシールを確保するために、ナットを締めます。 </li><li>レギュレータ上の所望のレベルに圧力を調整します。これは、細胞が装置を通って移動する速度を制御する。ボタンが押されるまで、セルの流れが開始されないことに注意してください。 </li></ol>注：前作では、窒素または圧縮空気をキャリアガスとしても同様に取り組んできました。 <ol start="4"><li>目の高さにデバイスを高め、リザーバ内の液体が簡単に見えるようにそれを向けます。注：貯水池が空になる前にシステムを遮断する液柱を追跡します。 </li><li>リザーバを加圧すると、セルの流れを開始するためにボタンを押してください。 </li><li>液面がリザーバの底部から約2mmである場合には、速やかに流れを停止させる0 psiまでレギュレータを向ける。重要：リザーバが空になる前に、1つの流れを停止しなかった場合、一方はcollectioから試料を排出するリスクn個の貯水池。また、流体カラム（ 例えば 3倍遅い）かなりのペースで移動していない、又は実質的にその初期流量に対して鈍化していることに注意した場合、車載器は、おそらく詰まると交換する必要がある。詰まったデバイスを動作させると、より高い細胞死につながることができます。 </li><li>適切なリザーバから処理された細胞を収集し、必要なコレクションチューブ/プレートに配置します。重要：porated細胞は最大10分20のための材料を取り込みしていきますように、この段階で任意のバッファに採取した細胞を希釈しないでください。このウィンドウが経過した後、所望の培地/緩衝液で細胞を希釈する。 </li><li>必要に応じて5.7 - より多くの処理された細胞を収集したり、代わりの実験条件を試してみてくださいするには、手順5.1を繰り返します。チップは可逆的であることを思い出して、そのための試料は、リザーバーのどちらかに取り付けることができます。彼らが目詰まりした場合、必要​​に応じてチップを交換してください。詰まったデバイスを廃棄します。 </li></ol> 6。解体<ol><li&gt;そっと脇にクリップアームを押してメインホルダーから貯水池を外します。 </li><li> （セクション1で詳述）適切な貯蔵容器内の各部品を配置します。 </li><li>廃棄のために別の容器に使用されるチップを置きます。 </li></ol>

<ol><li>Schaffert, D., Wagner, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+progress+and+prospects%3A+synthetic+polymer-based+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Gene.+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene therapy progress and prospects: synthetic polymer-based systems.</a> Gene. Ther. 15, 1131-1138 (2008).</li>
<li>Whitehead, K. A., Langer, R., Anderson, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Knocking+down+barriers%3A+advances+in+siRNA+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Knocking down barriers: advances in siRNA delivery.</a> Nat. Rev. Drug Discov. 8, 129-138 (2009).</li>
<li>Leader, B., Baca, Q. J., Golan, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+therapeutics%3A+a+summary+and+pharmacological+classification%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Protein therapeutics: a summary and pharmacological classification.</a> Nat. Rev. Drug Discov. 7, 21-39 (2008).</li>
<li>Kim, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+Human+Induced+Pluripotent+Stem+Cells+by+Direct+Delivery+of+Reprogramming+Proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of Human Induced Pluripotent Stem Cells by Direct Delivery of Reprogramming Proteins.</a> Cell Stem Cell. 4, 472-476 (2009).</li>
<li>Dhar, S., Daniel, W. L., Giljohann, D. A., Mirkin, C. A., Lippard, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyvalent+Oligonucleotide+Gold+Nanoparticle+Conjugates+as+Delivery+Vehicles+for+Platinum%28IV%29+Warheads%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Polyvalent Oligonucleotide Gold Nanoparticle Conjugates as Delivery Vehicles for Platinum(IV) Warheads.</a> J. Am. Chem. Soc. 131, 14652-14653 (2009).</li>
<li>Jiang, Z. -X., Zhang, Z. -Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+PTPs+with+small+molecule+inhibitors+in+cancer+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+and+Metastasis+Reviews%22%5BJournal%5D)">Targeting PTPs with small molecule inhibitors in cancer treatment.</a> Cancer and Metastasis Reviews. 27, 263-272 (2008).</li>
<li>Derfus, A. M., Chan, W. C. W., Bhatia, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+Delivery+of+Quantum+Dots+for+Live+Cell+Labeling+and+Organelle+Tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Intracellular Delivery of Quantum Dots for Live Cell Labeling and Organelle Tracking.</a> Adv. Mater. 16, 961-966 (2004).</li>
<li>Michalet, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantum+Dots+for+Live+Cells+in+Vivo+Imaging%2C+and+Diagnostics%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Quantum Dots for Live Cells in Vivo Imaging, and Diagnostics.</a> Science. 307, 538-544 (2005).</li>
<li>Dahan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+Dynamics+of+Glycine+Receptors+Revealed+by+Single-Quantum+Dot+Tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Diffusion Dynamics of Glycine Receptors Revealed by Single-Quantum Dot Tracking.</a> Science. 302, 442-445 (2003).</li>
<li>Slowing, I. I., Trewyn, B. G., Lin, V. S. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesoporous+Silica+Nanoparticles+for+Intracellular+Delivery+of+Membrane-Impermeable+Proteins%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Mesoporous Silica Nanoparticles for Intracellular Delivery of Membrane-Impermeable Proteins.</a> J. Am. Chem. Soc. 129, 8845-8849 (2007).</li>
<li>Pack, D. W., Hoffman, A. S., Pun, S., Stayton, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+development+of+polymers+for+gene+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">Design and development of polymers for gene delivery.</a> Nat. Rev. Drug Discov. 4, 581-593 (2005).</li>
<li>Joseph, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cationic+lipids+used+in+gene+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Drug+Delivery+Reviews%22%5BJournal%5D)">Cationic lipids used in gene transfer.</a> Advanced Drug Delivery Reviews. 27 (97), 17-28 (1997).</li>
<li>Verma, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface-structure-regulated+cell-membrane+penetration+by+monolayer-protected+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Mater%22%5BJournal%5D)">Surface-structure-regulated cell-membrane penetration by monolayer-protected nanoparticles.</a> Nat. Mater. 7, 588-595 (2008).</li>
<li>Yan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+intracellular+protein+delivery+platform+based+on+single-protein+nanocapsules%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Nano%22%5BJournal%5D)">A novel intracellular protein delivery platform based on single-protein nanocapsules.</a> Nat. Nano. 5, 48-53 (2010).</li>
<li>Shi Kam, N. W., Jessop, T. C., Wender, P. A., Dai, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanotube+Molecular+Transporters%3A+Internalization+of+Carbon+Nanotube-Protein+Conjugates+into+Mammalian+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Nanotube Molecular Transporters: Internalization of Carbon Nanotube-Protein Conjugates into Mammalian Cells.</a> J. Am. Chem. Soc. 126, 6850-6851 (2004).</li>
<li>Varkouhi, A. K., Scholte, M., Storm, G., Haisma, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endosomal+escape+pathways+for+delivery+of+biologicals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">Endosomal escape pathways for delivery of biologicals.</a> Journal of Controlled Release. 151, 220-228 (2011).</li>
<li>li, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroporation+Gene+Therapy%3A+New+Developments+In+Vivo+and+In+Vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Electroporation Gene Therapy: New Developments In Vivo and In Vitro.</a> Current Gene Therapy. 4, 309-316 (2004).</li>
<li>Fox, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroporation+of+cells+in+microfluidic+devices%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Bioanal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Electroporation of cells in microfluidic devices: a review.</a> Anal. Bioanal. Chem. 385, 474-485 (2006).</li>
<li>Miller, D. L., Pislaru, S. V., Greenleaf, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonoporation%3A+Mechanical+DNA+Delivery+by+Ultrasonic+Cavitation%5BTitle%5D)+AND+%22Somatic+Cell+and+Molecular+Genetics%22%5BJournal%5D)">Sonoporation: Mechanical DNA Delivery by Ultrasonic Cavitation.</a> Somatic Cell and Molecular Genetics. 27, 115-134 (2002).</li>
<li>Sharei, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+vector-free+microfluidic+platform+for+intracellular+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A vector-free microfluidic platform for intracellular delivery.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, 2082-2087 (2013).</li>
<li>Lee, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonendocytic+Delivery+of+Functional+Engineered+Nanoparticles+into+the+Cytoplasm+of+Live+Cells+Using+a+Novel%2C+High-Throughput+Microfluidic+Device%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Nonendocytic Delivery of Functional Engineered Nanoparticles into the Cytoplasm of Live Cells Using a Novel, High-Throughput Microfluidic Device.</a> Nano Lett. 12, 6322-6327 (2012).</li>
</ol>

著者アーモンSharei、ロバート·ランガー、及びKlavs F·ジェンセンは、この記事で使用するマイクロ流体デバイスを製造SQZバイオテクノロジー会社の株主である。

記載の実験方法（チップ設計及び動作速度以外、すなわち因子）の特定の局面では、システムが適用される細胞タイプおよび送達材料に応じて最適化される必要があり得る。アドレスに実験を設計する際に考慮すべき最も一般的な要因のいくつかを以下の考察。 蛍光標識された化合物のための送出信号を改善するためには、バックグラウンド蛍光の供給源に対処する必要がある。表面結合及びエンドサイトーシスは、例えば、培養物またはさらなる処理の前に余分な材料を除去するために細胞送達後5〜10分間洗浄することによって対処することができる。洗浄工程を差し控えることを選択する場合には、周囲の溶液中の標的物質の濃度を低下させるために、所望の媒体中で5〜10倍に処理した細胞を希釈し、従って、エンドサイトーシス率を低減することが最善であろう。いくつかの場合において、例えば、タンパク質送達のために、人はそれが必要な能動的セルsurfaをブロックするかもしれないCEの（ 例えば、非標識ウシ血清アルブミンを使用して）送達物質の非特異的結合を最小限に抑えること。未処理の場合の蛍光強度は、フローサイトメト...

細胞の細胞質への巨大分子の送達は、治療および研究用途における重要なステップである。タンパク質送達は、臨床検査室3と4の両方の設定で細胞機能に影響を与える有望な手段であるが、ナノ粒子媒介送達は、例えば、遺伝子治療の1,2のポテンシャルを示している。そのような小分子薬物、量子ドット、金ナノ粒子などの他の材料は、5,6癌治療からの細胞内標識7,8、および9を追跡単一分子までの範囲の用途において重要である。 細胞膜は、巨大分子の大部分は不透過性である。多くの既存の技術が膜破壊やエンドサイトーシスの配信を容易にするために、ポリマーナノ粒子10,11、リポソーム12、または化学修飾13を使用しています。これらの方法では、送達効率および細胞生存率は、多くの場合、目の構造に依存する電子標的分子および細胞型。これらの方法は、核酸のような構造的に均一な材料の配達時に効率的になりますが、多くの場合、そのようなタンパク質14,15ナノ材料7など、より構造的に多様な材料の配信のために病気に適している。さらに、これらの方法のほとんどはに依存しているエンドソーム破壊メカニズムは、したがって、小胞構造16に捕捉された多くの素材を残し、多くの場合、非効率的である。最後に、多くの場合、確立された細胞株を使用するために開発されている方法は、一次細胞にうまく変換されません。 例えば、エレクトロポレーション17,18および19ソノポレーションのような膜ポレーション法は、いくつかの用途において魅力的な代替物であるが、それらは、低い細胞生存率を引き起こすことが知られており、標的デリバリー材料の電荷によって制限され得る。 細胞の急速な機械的変形、納品までのマイクロ流体アプローチは、最近になっていますdemonstr細胞の再プログラミング20とナノマテリアルの配信21のコンテキストで現在の技術に比べてその利点をated。この方法は、周囲の緩衝液中に存在する物質のサイトゾル送達を促進する細胞膜oを機械的な破壊に依存している。システムが以前に挑戦的細胞型において潜在的に可能にする（ 例えば、一次免疫細胞および幹細胞）を実証し、物質（ 例えば 、抗体およびカーボンナノチューブ）している。ここで、標的巨大分子の細胞内送達のためにこれらのデバイスを使用するための一般的な手順を説明する。しかし、それは以前に報告されていないアプリケーションのために、私たちの以前に報告された設計指針20で詳述するように1が、条件の簡単な最適化を実施することをお勧めします。手順は、ほとんどの細胞型および送達物質に一般化される。今日までに、システムは、RNA、DNA、金ナノ粒子、量子ドット、カーボンナノチューブ、タンパク質の送達のために首尾よく使用されているS、およびデキストランポリマー20,21。

<table><tbody><tr><td>デバイスホルダー&プラスチックリザーバー</td><td>SQZバイオテクノロジー</td><td>ホルダー</td><td></td></tr><tr><td>LSRFortessa アナライザー</td><td>ベクトン・ディキンソン</td><td>N/A</td><td>コッホ研究所で使用されるフローサイトメトリーマシン コア施設</td></tr><tr><td>マイクロ流体デバイス</td><td>SQZバイオテクノロジー</td><td>セルスクイー</td><td></td></tr><tr><td>ズ Oリング</td><td>マク</td><td>マスター9452K311</td><td></td></tr><tr><td>装置を操作するための圧力システム</td><td>SQZバイオテクノロジー</td><td>ズ圧力システム</td><td></td></tr><tr><td>ピンセット</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>超音波浴</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

堅牢、マイクロ流体細胞内送達プラットフォームとしての細胞絞る

Cell Squeezing as a Robust, Microfluidic Intracellular Delivery Platform

細胞の急速な機械的な変形は高分子およびナノ物質の細胞内送達のための有望な、ベクトルフリー法として浮上している。この技術は、以前は困難な用途に対処する電位を示した;を含む一次免疫細胞、細胞の再プログラミング、カーボンナノチューブ、量子ドット送達への送達。このベクターを含まないマイクロ流体プラットフォームは、ターゲット材料のサイトゾル送達を容易にするために、細胞膜の機械的破壊に依存している。ここで、我々は、デバイス組み立て、細胞調製物、およびシステム動作を含むこれらのマイクロ流体デバイスのための使用の詳細な方法を記載している。このアプローチは、送達装置タイプ、以前に報告されていないアプリケーションの動作条件の簡単な最適化を必要とする。このシステムは、特殊な緩衝剤または化学修飾/コンジュゲーション工程を必要としないように提供される命令は、ほとんどの細胞型および送達物質に一般化される。この作品も提供Sデバイスの性能を向上させ、目詰まり、低配信効率、および細胞の生存率に関連する潜在的な問題をトラブルシュートする方法に関する推奨事項。

図1は、微小流体送達システムの概略的記述を含んでいる。 図2a〜図bは蛍光共役3 kDaのデキストラン20の存在下で、異なるデバイスの設計でHeLa細胞を処理することから、典型的な結果を示す。手順が正しく実行された場合、システム性能は、デバイスタイプと動作速度に敏感であろう。そのため、人はより複雑な実験に進む前に、特定のアプリケーションにこれらの条件を最適化する必要があります。同図に示す運転条件の範囲において、細胞生存率は、しかし、一つは次善の配信パラメータ（ 例えば、不適切なチップタイプ）を30％未満の生存率につながる可能性があることに注意する必要があり、80％を超えたまま。このように生存率および送達効率は、以前に報告されていない細胞型を同時に最適化する必要があります。デバイス設計は、標的細胞型に不適切な場合、人は配達より高いCの範囲の結果を見るエル死（ 例えば 、10％の生存率）。実験条件は、例えば、細胞表面に結合した標的物質な写真であった場合は、一方が表面結合信号として正確に送達を測定することができない場...

細胞の急速な機械的な変形は高分子およびナノ物質の細胞内送達のための有望な、ベクトルフリー法として浮上している。このプロトコルは、幅広いアプリケーションのためのシステムを使用する方法の詳細な手順を提供しています。

Rapid mechanical deformation of cells has emerged as a promising, vector-free method for intracellular delivery of macromolecules and nanomaterials. This ...

このフォールイング実験の全体的な目的は、機械的な破砕を用いて、ベクターフリーの高分子を標的細胞に導入することである。まず、標的となる細胞種を目的の導入物質とともに懸濁させ、特別に設計されたマイクロ流体デバイスのリザーバーに充填する。次に、マイクロ流体デバイスを加圧し、細胞をマイクロ流体チャネルの配列に通過させることで細胞を圧搾し、一過性の膜破砕を促進させる。次に、物質が細胞質内へ拡散輸送されるように、標的配送物質存在下で細胞をインキュベートします。これにより細胞膜が修復されます。フローサイトメトリーを用いて、高分子物質が効果的に配送された結果が得られます。この手法の既存の手法（エレクトロポレーションやリポフェクションなど）に対する主な利点は、他の手法では効果的に導入できない困難な細胞型や物質に対処できる点にあります。本手法は、細胞リプログラミングをどのように改善するかといった、生物学分野における重要な問いに答えることができます。また、本システムは免疫細胞を操作して抗腫瘍効果を高めることができるため、この技術の意義はがんの治療や診断にまで及びます。まず、本ビデオに示し、付属のテキストプロトコルに詳細を記載しているマイクロ流体デバイス、デバイスホルダー、プラスチック製液体リザーバー、およびOリングを作製または購入し、3つの密閉容器に70% ethanolを半分まで満たします。1つ目の容器にデバイスを、2つ目の容器にリザーバーとOリングを、3つ目の容器にホルダーを入れます。その後、容器の残りの部分を70% ethanolで満たします。次に、リザーバーとOリングが入った容器と、ホルダーが入った容器を、使用前に超音波洗浄機で5〜10分間洗浄します。これにより、前回の実験による汚染粒子を除去できます。コンポーネントをソニケーションしている間に、バイオセーフティキャビネット内の作業スペースを70%エタノールで拭き上げてください。その後、3つの容器とピンセット1組を含む必要なすべての資材を70%エタノールで拭いて滅菌し、組み立てを開始するためにバイオセーフティキャビネット内に配置します。まず、作業領域に低リンターワイプを2～3枚敷きます。次に、ピンセットでエタノール容器からプラスチックリザーバーを取り出し、内表面からエタノールが毛細管現象で吸収され、蒸発しやすくなるようにワイプの上に置きます。リザーバーを軽く叩き、エタノール溶液の除去を促進させます。必要に応じて、加圧ガスを用いてリザーバー内を完全にパージします。リザーバーが乾燥したら、リザーバーの適切なスロットにOリングを挿入します。次に、ピンセットを使用して、チップをデバイスホルダーに上面を上にして配置します。チップがホルダーに平らに置かれていることを確認し、必要に応じてピンセットで調整してください。デバイスがホルダーに適切に収まっていない場合、以降の工程で破損するリスクがあります。次に、リザーバーをホルダー上にゆっくりと配置し、クリップに合わせて調整します。Oリングがスロットから脱落しないように注意してください。この工程では、リザーバーがカチッと音がして固定されるまで、ゆっくりと押し下げます。リザーバーの両側がしっかりと固定され、チップが正しい位置にあることを確認してください。リザーバーを過剰な力で押し下げないでください。圧力がかかると、初代細胞用または接着性細胞株用のチップが破損する恐あります。細胞は、コンフルエント率が80%以下になるよう、実験の1～2日前に播種してください。実験当日。実験の直前に細胞を回収し、培地または任意のバッファーを用いて、10⁶～10⁷ cells/mLの濃度で再懸濁します。その後、細胞の凝集塊やマトリックスによってデバイスが詰まるのを防ぐため、細胞懸濁液を40 µmのセルストレーナーメッシュに注意深く通します。ろ過後、別のチューブ内で、細胞懸濁液300 µLと目的の濃度のデリバリー材料を混合した。本デモンストレーションでは、細胞懸濁液50 µLあたり、5 mg/mLのデキストリン2 µLおよびAlexa 488アイソタイプコントロール抗体2 µLを添加した。次に、ピペッティングにより100 µLの細胞を穏やかに混合します。その後、ゲルロードチップを使用して、細胞とデリバリー材料をいずれか一方のリザーバーにピペッティングします。充填したリザーバーに圧力チューブを取り付け、適切に密閉されるように結び目を指で締め付けます。次に、レギュレーターで空気圧を70 PSIに調整し、デバイス内を細胞が移動する速度を制御します。圧力は、各実験で使用する特定の細胞とマイクロ流体チップの組み合わせに合わせて最適化してください。すべての準備が整ったら、デバイスを目線の高さまで上げ、リザーバー内の液体が容易に見えるように向きを調整します。次に、プッシュボタンバルブを押してリザーバーを加圧し、細胞の流れを開始させます。リザーバーから流出する液体の速度を確認してください。流速が初期の状態に比べて大幅に低下している場合、装着したデバイスが詰まっている可能性が高いため、交換が必要です。閉塞によって剪断力が増大すると、通常よりも多くの細胞死が引き起こされます。液面がリザーバーの底から約2mmまで下がったら、速やかにレギュレーターを0 PSIに回して流量を停止させます。リザーバーが空になる前に空気の流れを止めることが重要であり、そうしないとサンプルが回収リザーバーから排出される恐れがあります。その後、流出リザーバーから処理済みの細胞を回収し、マイクロ遠心チューブに入れます。室温において、処理済みの細胞は最大10分間物質の取り込みを続けます。10分後、細胞をさらに培地と共にプレートに播種するか、実験の必要に応じて細胞の使用を継続してください。これらの手順を繰り返し、必要な数だけ処理済み細胞を回収します。チップが詰まった場合は適宜交換し、以降のサンプルごとに詰まったデバイスを廃棄してください。目詰まりの影響を最小限に抑えるため、流れの方向を変更します。細胞の回収が完了したら、クリップアームを押し下げて、リザーバーをメインホルダーからゆっくりと取り外します。その後、再利用する各パーツを適切な保管容器に入れ、新鮮な70%ethanolを満たしてください。最後に、使用したチップをすべて別の容器に入れ、適切に廃棄します。HeLa細胞の導入効率と細胞生存率を測定しました。一連の実験の結果、3種類のマイクロ流体チップを用い、最大600 millimeters per secondまでの範囲の速度で試験を行いました。これらの試験により、テストしたすべてのチップにおいて、流速を上げることで、3 kDaの蛍光標識デキストリンの細胞内への導入効率が向上することが示されました。さらに、流速を上げたことで、テストしたデバイスにおける細胞生存率が約20%低下しました。この程度の細胞死は比較的低く、不適切に設計されたデバイスでは、しばしばこれよりもはるかに高い数値となります。左側に示されているコントロール細胞群へのPacific blue共役デキストリンの取り込みは、限定的な表面結合とエンドサイトーシス効果によるものです。これらの細胞は、処理細胞と同じ時間、デリバリー材料に曝露されています。右側は、コントロール細胞と同じ濃度のデキストリンに曝露されながら、マイクロ流体デバイスを通過した生存細胞群です。網掛け部分の細胞は未送達と見なし、線の右側の細胞は送達済みと定義します。この手法に習熟し、適切に実施すれば、1時間以内に完了させることができます。本手順に続き、送達効率や開発後の材料機能などの追加的な疑問を解消するために、他の解析手法や術後評価を行うことが可能です。この手法は、再生医療分野の研究者が、直接的なタンパク質導入を用いて成人一次細胞における細胞プログラミングを探索するための道を開きました。このビデオを視聴することで、目的のアプリケーションに合わせてセルフスクイージングシステムをセットアップし、操作する方法を十分に理解できるはずです。

cell-squeezing-as-robust-microfluidic-intracellular-delivery

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

マイクロ流体デバイスを用いた細胞のキャプチャ

小説マイクロ流体システムは受動的なポンプの現象とユーザ制御された流体供給システムを使用して開発されました。このマイクロ流体システムは、低コスト、使いやすさ、体積精度、高速、再現性と自動化を与えられた生物学的なさまざまなアプリケーションで使用される可能性があります。...

マイクロ流体デバイスでパッシブポンピング用高速液滴ベースのデリバリーシステム

細胞と粒子の慣性順序を持つ単分散ドロップ生成を組み合わせることで、我々は、kHzのレートで一滴の細胞または粒子の所望の数をカプセル化する方法を説明します。我々は、二回のシングルとダブルの粒子降下を順不同カプセルのものを超えて効率を示しています。...

ハイスループットマイクロカプセル化シングルセルと複数セル

我々は、マイクロスケール細胞刺激実験のために自動細胞培養と尋問プラットフォームを開発した。プラットフォームは、栽培と細胞の小集団を刺激し、分子解析のための溶解物の回収で、シンプルで汎用性の高い、かつ正確なコントロールを提供しています。プラットフォームはよく貴重な細胞および/または試薬を使用した研究に適しています。...

マイクロスケール細胞刺激のための実験のための多目的自動化プラットフォーム

液滴界面の脂質二重層に対するマイクロ流体噴射は、膜の非対称性、膜貫通タンパク質の取り込み、および材料のカプセル化を制御して小胞を生成するための信頼できる方法を提供します。この技術は、区画化された生体分子が所望される生体系の様々な研究に適用することができる。...

マイクロ流体ジェッティングを使用して、脂質二重層小胞の生成

マイクロ流体渦補助エレクトロポレーション·プラットフォームは、正確かつ独立した投与量制御を備え​​た同一の細胞集団への複数の分子の順次配信のために開発されました。分子の送達効率および加工細胞の生存率を向上させるために支援エレクトロポレーションの前に、システムのサイズベースの標的細胞精製工程。...

マイクロスケール渦アシストシーケンシャル分子送達用エレクトロポ

ここでは、高効率のシングルセルの単離と長期のクローン培養を可能にする新しいマイクロウェル設計コンセプトを利用したマイクロ流体プラットフォームを使用して、単一細胞を分離および培養するためのプロトコルを紹介します。...

ハイスループットシングルセルの単離および培養のためのマイクロ流体プラットフォーム

マイクロ流体チップを作製し、タンデムバブル生成用の金ドットと、その近くのシングルセルパターニング用のフィブロネクチン被覆島を生成しました。得られた流れ場は、粒子画像速度測定によって特徴付けられ、細胞膜ポレーション、膜変形、細胞内カルシウム応答など、さまざまな生体効果の研究に使用されました。...

単一細胞レベルでのキャビテーション気泡（複数可） - 細胞相互作用し、得られた生体効果を調査するための表面パターニングとマイクロ流体システム

このプロトコルは、超音波造影剤によって誘発されるソノポレーションを介して細胞に迅速に分子送達するための低コストのアユースト流体デバイスの組み立ておよび動作を記述する。...

細胞への分子化合物の送達を強化するためのアキュトー流体デバイスの組立と操作

本プロトコルは、最小限のユーザー介入で数百の ショウジョウバエメラノガスター 胚を整列、固定化、および正確に圧縮することができるマイクロ流体システムの設計、製造、および特性評価について説明しています。このシステムは、刺激後分析のためのサンプルの高解像度イメージングと回収を可能にし、他の多細胞生物学的システムに対応するように拡張することができます。...

ハイスループットマイクロ流体圧縮システムによる多細胞生物のメカノ刺激

学ぼう、マイクロ流体デバイスを用いた細胞絞りによるベクター非依存的なマクロ分子細胞内送達法。機械的変形で細胞膜を一時的に破壊し、標的細胞への効率的な物質導入を実現します。がん治療や免疫細胞操作への応用が期待されます。

堅牢、マイクロ流体細胞内送達プラットフォームとしての細胞絞る

さらに動画を探す