Name: アプリジア 単一ニューロンの電気生理学的・分子的解析のための神経節の準備 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 11 s
Description: 学ぶ Aplysia californicaの単一ニューロンにおける遺伝子発現と電気生理学的変化の解析手法。神経節のプロテアーゼ処理、電気生理学的記録、RNA抽出、定量PCRによる遺伝子発現解析のプロトコルを解説します。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

ホワイトホール財団は、この作業を行ったスクリプス研究所からの資金援助とスタートアップ資金に心から感謝します。

1. 腹部神経節の調製、電気生理学的測定、および単一同定ニューロンの単一同定された神経節の分離
<ol><li>12:12光:暗い条件下で16 °Cで循環人工海水(ASW)と実験室の水槽で Aplysia を維持します。</li>
	<li>腹部神経節の隔離。<ol>
<li>5-10分間(動物の体重の30〜35%に相当)のために380 mM MgCl2 溶液を注入することによって動物を麻酔します。</li>
		<li>中枢神経系24,28におけるその位置に基づいて腹部神経節を同定する。</li>
		<li>手術によって神経節を取り除き、450 mM NaCl、10 mM KCl、10 mM CaCl 2、55 mM MgCl2、2.5mM NaHCO3、および10 mM HEPES(pH 7.4)からなる人工海水にすぐに保管します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>プロテアーゼ処理。<ol>
<li>上記のASWで0.1%プロテアーゼ(ジスパーゼ)を希釈したペトリ皿で34°C±0.5で30分間腹部神経節をインキュベートする。 注:使用されるプロテアーゼの量は、動物の年齢と体重で標準化する必要があります。一般に、古くて大きな動物は、より多くのプロテアーゼを必要とします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>神経節鞘の除去。<ol>
<li>酵素処理後、細胞チャンバーのシルガードシリコーンベース(Ø= 1cm;vol.= 0.3 ml)に神経節を固定し、室温(18°C±2)でASW(流量:150μl/min)をパーフューズします。 注:同定されたニューロンの視認性を高めるために、20Xおよび40X倍率の双眼体顕微鏡を使用して底部から容易に照らすことができるポリカーボネートガラスシリンダー(図1)(直径Ø = 2mm改変細胞室)の上部に神経節を置きます。</li>
		<li>鉗子とマイクロシザーを使用して、ガングリオンから慎重にシースを取り外します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>2つのニューロンからの同時電気生理学的記録。<ol>
<li>目的のニューロンを特定します。</li>
		<li>抵抗10-15 MΩを有する単一の細胞内鋭利な微小電極を有するニューロンを3M KCl溶液で満たした。</li>
		<li>細胞内記録システムを用いてニューロン活動(10kHzバンドパス)を記録する。</li>
		<li>Axographなどの電気生理学ソフトウェアを使用して記録データを処理します。 注:1つは簡単に複数のニューロンからの記録を行うことができます。ニューロンL7、L11またはR15およびR2は、その位置に基づいて容易に同定される。2 つの L7 および R15 ニューロンから同時に録音するには、2 つのアンプと 2 つのマイクロマニピュレータが必要です (図 2)。</li>
	</ol>
</li>
	<li>薬物適用。<ol>
<li>穏やかなピペットによって細胞室に選択の薬物を適用するか、ニューロンに直接注入します。</li>
		<li>電気生理学的測定を行う。 注:実験目的に応じて、膜電位(MP)または作用電位(AP)の変化など、薬物塗布の前後の異なる電気生理学的パラメータを測定することができます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>単一ニューロンの分離.<ol>
<li>電気生理学的実験の終わりに、ASWの灌流を止め、100%エタノールでガングリオンを洗浄する。 エタノールへの暴露はニューロンを石化し、細かい鉗子を使用して、神経節から他のニューロンを損傷することなく、個々のニューロンを除去することが容易になります。</li>
		<li>単一のニューロンを実体顕微鏡で除去し、氷冷500μl RNA抽出試薬を含む小さなエペンドルフチューブに移します。分離された単一のニューロンは、将来の分析のために-80°CのRNA抽出試薬に保存することができます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 定量的リアルタイムPCR(qPCR)による単一ニューロンからのRNA分離と遺伝子発現解析
<ol><li>RNA分解を最小限に抑えるための注意事項: リボヌクレアーゼ(RNases)はRNAを分解し、非常に安定した活性酵素です。RNA の処理中に次の手順を実行します。<ol>
<li>RNase非アクティブ化剤で作業領域と器具を清掃します。</li>
		<li>RNAを扱いながら常に手袋を着用し、手袋を頻繁に交換してください。</li>
		<li>RNAを扱うためにRNaseの自由なプラスチックだけを使用してください。</li>
	</ol></li>
	<li>単一ニューロンから総RNAを分離する:<ol>
<li>RNA分離のための標準トリゾールプロトコルは、単一のニューロンからRNAを分離するために使用することができます。簡単にトリゾールにクロロホルムの20%v /vを追加し、短い渦によってよく混ぜます。</li>
		<li>4 °Cで10分間、回転器にチューブを置きます。 トリゾールクロロホルムミックスを12,000 x gで4°Cで15分間回転させます。</li>
		<li>水相を収集し、新鮮なチューブに転送します。</li>
		<li>酢酸ナトリウム溶液(pH 5.5)を0.3M、100ng/mlのコ沈降剤グリコブルー、2.5容量の100%エタノールを添加してRNAを沈殿させます。</li>
		<li>サンプルをよく混ぜ、一晩で-80°Cでインキュベートします。</li>
		<li>4°Cで20分間12,000 x gでサンプルを回転させ、小さな青いペレットがチューブの底に見えます。</li>
		<li>上清を取り除き、75%の氷冷エタノール850μlでペレットを12,000 x gで4°Cで10分間洗浄します。</li>
		<li>上清を慎重に取り除き、最大7〜10分間RNAペレットを空気乾燥させます。 注:RNAペレットを乾燥させると可溶化が非常に困難になります- RNAが乾燥するために長い間放置されないようにしてください。 
</li>
		<li>乾燥したら、RNAペレットを10μlのRNAAseフリー水で再懸濁し、RNA濃度を決定します。 注:分光光度計を使用してRNA濃度を決定します。すぐに使用しない場合は、-80°CでRNAを保存してください。</li>
	</ol></li>
	<li>単一ニューロンからのaRNA合成:<ol>
<li>市販のリニアRNA増幅システムを用いてRNA(実験目的に応じて1または2ラウンド)を増幅する。 注:単一ニューロンからのRNAの合計は〜10〜60 ngの範囲でした。第1回増幅の期待収量は〜100〜300ngであり、第2の増幅はRNAの〜0.8〜1.5μgである。</li>
	</ol></li>
	<li>RNAの逆転写:<ol>
<li>aRNAからcDNAを生成するには、逆転写反応の20 μlで1.0 μgのaRNAを使用します。この目的のために、いくつかのキットが市販されています。 注:cDNAはサーマルサイクラーで次の設定を使用して、メーカーのプロトコルに従って合成されました。 25°Cで5分 42°Cで30分 85°Cで5分 4 °Cでホールド</li>
		<li>逆転写ステップの後、cDNAを-20°Cで長期保存のために保管します。</li>
	</ol></li>
	<li>プライマー設計と標準化: リアルタイム増幅のためのプライマーを設計するためのいくつかの優れたソフトウェアプログラムが無料で利用可能です。<ol>
<li>70-110 bpアンプリコンを生成し、市販のソースを使用してプライマーを合成する18-24のマーオリゴヌクレオチドを選択します。 注:2~3個のプライマーペアは、対象遺伝子ごとに設計する必要があります。各プライマー セットは qPCR によって標準化する必要があります。遺伝子 CREB1 (図 4) に使用されたフォワードおよびリバースプライマーのペアは、以下のとおりです。 プライマーセット1 フォワード:5'-TGATCTGACGCAAAAAAGA-3' リバース:5'-ACCGTGAGCAGTCAGTTGTAGA-3' プライマーセット2 フォワード:5'-アグガートクトCGATGAAGAA-3' リバース:5'-ガカカカガガグタットGCCAAA-3'</li>
		<li>下流解析に使用する最適なプライマーを選択するには、Ct 値と増幅曲線の形状を qPCR で監視します。 注: PCR の指数相の 40 ラウンド増幅と滑らかな曲線の間で Ct (サイクル閾値) 値を 10 ~ 35 の間で与えるプライマーは、遺伝子発現解析に最適です。</li>
	</ol></li>
	<li>定量リアルタイム PCR (qPCR): 注: qPCR マシンと互換性のある適切なチューブまたはプレートを使用してください。<ol>
<li>ヌクレアーゼフリー水でcDNAを5倍に希釈します。</li>
		<li>希釈したcDNAを2μlに、2μlのH2Oを含むqPCRマスターミックスを8μl、2x SYBRグリーンマスターミックスの5μl、1.0 μlの10 μM(それぞれ)前方および逆プライマーを加えます。</li>
		<li>cDNAとマスターミックスをピペットした後、チューブを閉じてプレートを密封します。1,500 rpmで30秒間、穏やかなタップとスピンダウンで内容を混ぜます。</li>
		<li>qPCR マシンのセットアップに進みます。</li>
	</ol></li>
</ol>

著者は、競合する財政的利益を持っていません。

ニューロンR15は、心血管、消化器、呼吸器、および生殖システム30の調節に関与している。AP の定期的なリズミカルなバースト活動は、R15 の機能です。結果セクションに示すように、R15とL7の対の記録は、神経節調製がR15ニューロンの活性を保持していることを示す。R15およびL7ニューロンはAchに適切に反応した。この神経節製剤は8〜10時間まで維持することができ、電気生理学的活性を継続的に監視することができた。したがって、短い神経伝達物質暴露(特定のニューロンまたはお風呂に局所的に曝露される)の電気生理学的効果を長期間研究することができた。さらに, 1 つは、複数の神経伝達物質への暴露の効果を研究することができます (同時にまたは並行して) 自分自身またはフォロワーニューロンまたはその両方の発火特性に同じニューロンに.
qPCRによる遺伝子発現測定の例を 図4に示す。単一ニューロンのRNA含有量が低いため、 インビトロ 増幅は、複数の遺伝子の発現を定量するために十分な量のRNAを得る必要がある。市販キット...

人間の脳は、ほぼ1000億個のニューロンと何兆ものシナプス接続を持つ非常に複雑です。ニューロンと相互作用し、脳内の機能を調節する非神経細胞のほぼ同じ数があります。.ニューロンは、特定の動作を調節する回路に編成されています。脳機能や神経回路の理解が進んでいますが、特定の行動を制御する回路コンポーネントのアイデンティティについてはほとんど知られていません。回路の様々な構成要素のアイデンティティの知識は、細胞と分子の行動の両方の理解を大幅に促進し、神経精神疾患の新しい治療戦略を開発するのに役立ちます。
海洋カタツムリのAplysiaカリフォルニカは、特定の行動の基礎となる神経回路を決定するための主力となっています1-14.Aplysia神経系には、9つの異なる神経節に編成された約20,000個のニューロンが含まれています。Aplysiaのニューロンは大きく、その大きさ、電気的特性、および神経節内の位置に基づいて容易に識別することができる。Aplysiaは、研究することができる行動の豊富なレパートリーを持っています。よく研究された行動の一つは、ギル離脱反射(GWR)です。この反射の中心成分は腹部神経節に位置する。GWR回路のコンポーネントがマッピングされ、さまざまな成分の寄与が決定されました。重要なことに、GWR回路は、自動調整および非関連の学習を受ける5,6,15-19.この反射に関する数十年にわたる研究はまた、学習と記憶20-24において重要な役割を持ついくつかのシグナル伝達経路を同定した。
Aplysiaのいくつかの異なる調製物は、記憶記憶の細胞および分子ベースを研究するために使用された。これらには、無傷の動物2,3、半無傷の調製1,7,13,14,16および神経回路25-29の主要成分の再構成が含まれる。同定された神経回路の電気生理学的および分子的分析のためのAplysia神経節を探索するための還元された準備をここに説明する。次の4つの同定されたニューロンが研究された。R15は、バーストニューロン、L7およびL11、2つの異なる運動ニューロンとR2、コリン作動性ニューロンを研究した。R2は無脊椎動物神経系に記載されている最大のニューロンである。簡単に言えば、この方法論は、神経節のプロテアーゼ治療、薬理学的治療の前後の電気生理学的測定、および遺伝子発現の定量的分析のための単一ニューロンの単一のニューロンの単一の分離を含む。この方法論により、分子解析と複数のニューロンからの同時記録を組み合わせるようになっています。この方法論は、細胞内の記録を組み合わせてアセチルコリン(Ach)に対するR15およびL7ニューロンの応答を研究するために成功して使用されました。電気生理学的測定R15およびL7およびL11およびR2のような他の同定されたニューロンは、CREB1の発現の定量的ポリメラーゼ連鎖反応(qPCR)分析のために単離された、記憶記憶に重要な転写因子である。

<table><tbody><tr><td>Aplysia</td><td>National Aplysia Resource Facility, University of Miami</td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>SIGMA</td><td>S 3014-1KG</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>SIGMA</td><td>P 9333-500G</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2&bull;2H2O</td><td>SIGMA</td><td>C5080- 500G</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2&bull;6H2O</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>BP 214-501</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO4</td><td>SIGMA</td><td>S 6297-250G</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>SIGMA</td><td>H 3375-500G</td><td></td></tr><tr><td>プロテアーゼ</td><td>GIBCO</td><td>17105-042</td><td></td></tr><tr><td>Trizol</td><td>Ambion</td><td>15596-026</td><td></td></tr><tr><td>クロロホルム</td><td>MP バイオメディカル</td><td>2194002</td><td></td></tr><tr><td>100% エタノール</td><td>ACROS</td><td>64-17-5</td><td></td></tr><tr><td>GlycoBlue</td><td>Ambion</td><td>AM9515</td><td></td></tr><tr><td>3 M NaOAc, pH 5.5</td><td>Ambion</td><td>AM9740</td><td></td></tr><tr><td>ヌクレアーゼフリーウォーター</td><td>Ambion</td><td>AM9737</td><td></td></tr><tr><td>MessageAmp II aRNA Amplification Kit</td><td>Ambion</td><td>AM1751</td><td></td></tr><tr><td>qScript cDNA SuperMix</td><td>Quanta Biosciences</td><td>95048-100</td><td></td></tr><tr><td>パワーSYBRグリーンPCRマスターミックス</td><td>応用バイオシステム</td><td>4367659</td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11252-20</td><td></td></tr><tr><td>はさみ</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>ステンレス鋼細長いピン&nbsp;</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>26002-10または</td><td></td></tr><tr><td>26002-20</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Veriti Thermal Cycler</td><td>Applied Biosystems</td><td>Veriti Thermal Cycler</td><td></td></tr><tr><td>5430R 遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>5430R Centrifuge</td><td></td></tr><tr><td>7900HT 高速リアルタイムPCR</td><td>Applied Biosystems</td><td>7900HT 高速リアルタイムPCR</td><td></td></tr><tr><td>アンプ</td><td>BRAMP-01R</td><td>NPIエレクトロニクス</td><td></td></tr><tr><td>Digidata Converter</td><td>Instrutech ITC-18</td><td>HEKA ELEKTRONIK</td><td></td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>パッチ Star</td><td>Scientifica</td><td></td></tr></tbody></table>

アプリジア 単一ニューロンの電気生理学的・分子的解析のための神経節の準備

Aplysia Ganglia Preparation for Electrophysiological and Molecular Analyses of Single Neurons

神経生物学における大きな課題は、特定の行動を支配する神経回路の分子基盤を理解することです。特定の分子機構が特定されると、変性疾患や神経系の老化によって引き起こされる特定の行動の異常を治療するための新しい治療戦略を開発することができます。海洋カタツムリ のAplysiaカリフォルニカ は、特定の行動の根底にある神経回路を容易に決定することができ、回路の個々の構成要素を容易に操作できるため、細胞および分子ベースの行動の調査に適しています。 Aplysia のこれらの利点は、学習と記憶の神経生物学のいくつかの基本的な発見につながっています。.ここでは、個々のニューロンの電気生理学的および分子的分析のための Aplysia 神経系の調製について説明する。簡単に言えば、神経系から解剖された神経節は、ニューロンが露出されるが、無傷の動物のように神経細胞活動を保持するように神経節鞘を除去するためにプロテアーゼにさらされる。この調製物は、単一または複数のニューロンの電気生理学的測定を行うために使用される。重要なことに、単純な方法論を用いた記録に続いて、ニューロンは遺伝子発現解析のために神経節から直接単離されることができた。これらのプロトコルは、L7およびR15ニューロンからの同時電気生理学的記録を行い、アセチルコリンに対する応答を研究し 、APlysiaの単一の単一のL7、L11、R15、およびR2ニューロンにおけるCREB1遺伝子の定量発現を研究するために使用された。

この研究で使用された動物の重量は100〜200gの範囲であった。記載されたプロトコルに従い、2-5gから200〜300gの範囲の動物から分離された腹部神経節のニューロンの電気生理学的測定および分子解析を行った。
プロテアーゼ処理の標準化は、神経節におけるニューロンの電気生理学的測定を成功させるために重要である。当初、複数のプロテアーゼ(Dispase)濃度および持続時間が使用され、R15ニューロンからのバースト作用電位が26,31を記録した。これらの測定値を、インタクトガンリアからの直接(プロテアーゼ処理なし)記録と比較した。プロテアーゼの濃度(0.1%プロテアーゼ、ステップ1.3参照)は、その後の実験で使用されたプロテアーゼを用いずに、露出した神経節から得られたものと同等のバースト電位を生成した。
記載されたプロトコルを用いて、R15へのAch曝露に応答したアクション電位(AP)、コリン作動性ニューロンおよびL7、Achに反応しない運動ニューロンが記録された。予想通り、同時電気生理学的記録は、AchがR...

海洋カタツムリ のアプリシアカリフォルニカ は、細胞および分子ベースの行動に関する研究のための神経生物学モデルとして広く使用されている。ここでは、同定された神経回路の単一ニューロンの電気生理学的および分子的分析のための Aplysia の神経系を探索するための方法論が記載されている。

A major challenge in neurobiology is to understand the molecular underpinnings of neural circuitry that govern a specific behavior. Once the specific ...

この手順の全体的な目的は、単一の同定済みニューロンにおける遺伝子発現と電気生理学的変化を研究することです。これは、まずプロテアーゼ処理と神経節の脱鞘によってニューロンを露出させ、その後、plegiaの神経節から目的のニューロンを慎重に同定することで達成されます。次のステップでは、同定されたニューロンの電気生理学的特性を記録します。次に、電気生理学的測定の後で単一ニューロンを分離し、これらのニューロンから線形増幅用のRNAを抽出します。最終ステップとして、定量的PCRにより遺伝子発現を特性解析します。最終的に、処置群と対照群の電気生理学的データおよび遺伝子発現データを分析し、特異的な変化を特定します。器官、組織、または神経節の解析といった既存の手法に対する本手法の主な利点は、単一ニューロンレベルでの解析が可能であることです。この方法は、加齢に伴い単一ニューロン内での遺伝子発現がどのように変化するか、あるいは異なる薬理学的試薬にどのように反応するかなど、認知神経科学分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。加齢が個々のニューロンおよび回路の機能にどのような影響を与えるかを調査したいと考えたことが、本手法を着想したきっかけとなりました。腹部神経節を分離します。まず、380 millimolarの塩化マグネシウム溶液を注入して動物を麻酔し、5〜10分間待ちます。次に、中枢神経系における位置に基づき腹側神経節を特定します。その後、外科的手術により神経節を摘出し、プロテアーゼ処理のため直ちに人工海水中に保存します。腹神経節を、SWで希釈した0.1%プロテアーゼを含むペトリ皿に入れ、34°Cで30分間インキュベートします。神経節鞘を除去するために、使用するプロテアーゼの量は動物の齢および体重に合わせて標準化する必要があることに注意してください。酵素処理後、ポリカーボネート製ガラスシリンダーの上部に配置したシガーシリコンベースに神経節をピンで固定し、18°CのSWを150 µL/minで灌流します。同定したニューロンの視認性を高めるために、20倍および40倍の倍率を持つ生物顕微鏡を用いて、ポリカーボネート製ガラスシリンダーを下から照らします。次に、この手順に従い、ピンセットとマイクロシザーを用いて神経節から鞘を慎重に除去します。まず、目的のニューロンを同定してください。次に、3 M 塩化カリウム溶液を満たした単一の細胞内シャープマイクロ電極でニューロンを穿刺します。ピペッティングまたはニューロンへの直接注入により、選択した薬剤を細胞チャンバー内に投与します。その後、細胞内記録システムを用いてニューロン活動を記録します。記録データは、単一ニューロンを分離するためにAxo graphなどの電気生理学ソフトウェアを用いて処理します。電気生理学的実験後、ASW灌流を停止させま

aplysia-ganglia-preparation-for-electrophysiological-molecular

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

アメフラシカリフォルニのニューロンは、成長円錐の運動性と指導の高分解能イメージングのための優れている文化の中で大きな成長円錐を開発する。ここでは、アメフラシの袋の細胞ニューロンの解剖やメッキ用だけでなく、生細胞イメージングのためのチャンバーを設定するためのプロトコルを提示する。...

成長円錐の高分解能イメージングのためのアメフラシから神経細胞の培養

の準備アメフラシ感覚運動神経細胞の培養

テクニックは、4を注入するために記述されています...

の電極の作製と注入アメフラシカリフォルニ無傷、自由に振る舞う動物における多チャンネル神経と筋肉の録音のための

我々は、カナダ国立研究評議会で作製した平面パッチクランプチップは、滅菌プライミング、メディアをロードし、細胞を播種し、電気生理学的記録に使用される方法を示しています。...

NRCCパッチクランプチップ上で細胞の培養と電気生理学

我々は、細胞内遊離カルシウム濃度とシナプス伝達効率の変化が同時にのガングリオンの準備で監視する方法を示し...

軟体​​動物細胞内カルシウム濃度とシナプス伝達効率での変更のモニタ<em&gt;アメフラシ</em

我々は細胞外記録し、神経、筋肉、および個々の識別されたニューロンから刺激するテクニックを説明...

アン<em&gt; in vitroで</em生理的動きと送りモータプログラムを引き出すと録音用&gt;準備<em&gt;アメフラシカリフォルニ</em

大同定ニューロン（と動物では...

体外における筋モータープールのために運動ニューロンの識別<em&gt;アメフラシカリフォルニ</em

我々は、海洋アメフラシの神経系の解剖を説明...

の感覚ニューロンの分離<em&gt;アメフラシカリフォルニ</em&gt;グルタミン酸作動電流のパッチクランプ記録のために

このプロトコルは、吸光度の電圧依存性色素とフォトダイオードアレイを用いた非トランスジェニック無脊椎動物種における単細胞分解能を用いたニューロン集団活性をイメージングする方法を提示する。このアプローチにより、迅速なワークフローが可能になり、イメージングと解析を1日にわたって追求できます。...

非トランスジェニック無脊椎動物における単一ニューロン分解能を用いたネットワークダイナミクスを記録するためのフォトダイオードベースの光学イメージング

RNAの転写後修飾は、最近中枢神経系の可塑性に関連している翻訳調節の未研究の層を表す。ここで、試料調製および液体クロマトグラフィータンデム質量分析アプローチは、単一のニューロンにおける多数のRNA修飾の同時特性評価のために説明される。...

質量分析法を用いた単一ニューロンにおけるRNA修飾の特性評価

学ぶ Aplysia californicaの単一ニューロンにおける遺伝子発現と電気生理学的変化の解析手法。神経節のプロテアーゼ処理、電気生理学的記録、RNA抽出、定量PCRによる遺伝子発現解析のプロトコルを解説します。

アプリジア単一ニューロンの電気生理学的・分子的解析のための神経節の準備

さらに動画を探す

アプリジア 単一ニューロンの電気生理学的・分子的解析のための神経節の準備

さらに動画を探す

アプリジア単一ニューロンの電気生理学的・分子的解析のための神経節の準備