Name: 生物発光細菌を使用してリアルタイムに急性肺炎のマウスモデルにおける肺炎球菌の毒性因子の影響を以下の (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-23T14:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 32 s
Description: 学ぶ生物発光イメージングによるマウス肺炎モデルでのStreptococcus pneumoniae感染のリアルタイムモニタリング手法。細菌の毒性因子と感染動態を可視化し、治療戦略の基礎研究に貢献する。

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研究室での研究は、SHにドイツ学術振興（DFG HA 3125/3-2、DFG HA 3125/4-2）と、教育研究連邦省（BMBF）医療感染ゲノミクス（FKZ 0315828A）からの補助金によって支えられている。

ここで説明した動物感染実験は、脊椎動物動物の使用のために（ 例えば実験動物学協会連合会の欧州衛生法（FELASA））のガイドラインや規制のローカルおよび国際的に厳密に従って実行する必要があります。実験は、地域の倫理委員会および動物実験委員会によって承認されなければならない。 Sにすべての実験実験室または動物の感染症、肺炎は、クラスIIバイオセーフティキャビネットで行われている。 1。生物発光Pneumococociの感染株式の準備<ol><li> 80℃（w / v）の酵母抽出物および保守のための20％グリセロールの最終濃度が1％を補充したトッド - ヒューイットブロス中の肺炎球菌株の培養物を調製</li><li>血液寒天プレート上に冷凍ストック肺炎球菌培養物の少量をプレートし、5％CO 2中37℃で10時間、細菌を培養する。 T彼血液寒天プレートがゲノムにたluxABCDE遺伝子カセットのトランスポゾン挿入のためのカナマイシン（150μg/ ml）を、適 ​​切な抗生物質を含んでいます。 </li><li> 10時間の最大のための新しい血液寒天プレート上に新鮮なコロニーをサブ養う。 </li><li>肺炎球菌とのウシ胎児血清（FBS）不活性化（v / v）の熱（56℃で30分）10％を補充したTHY培地に接種し、OD 600で0.05〜0.07の培養を開始。 </li><li>培養がOD 0.35から0.40の600に到達するまで37℃で攪拌しながら、5％のCO 2なしで肺炎球菌を培養する。成長は3-4時間の間がかかります。 </li><li> 10分間3,750×gでの遠心分離によって収穫肺炎球菌および0.5％FBSを補充したリン酸緩衝生理食塩水pH7.4（PBS）中で生物発光肺炎球菌を再懸濁。 </li><li> PBS/10％FBS中で所望の濃度に接種材料を調整します。感染量は、使用肺炎球菌菌株とマイクの遺伝的背景に依存E。 Sで鼻腔内に異系交配CD-1マウスに感染させるために肺炎球菌 D39は、感染量は90単位ヒアルロニダーゼを補充した20μLの懸濁液中に1×10 7 CFUに調整する必要がありルクス 。これは自己分解をトリガーするため、肺炎球菌を振ったりボルテックスしないでください。 </li><li> 5％CO 2中37℃で一晩増殖させた後、血液寒天とコロニーの計数に10倍連続希釈をメッキすることにより接種濃度を確認してください。 </li><li>光学撮像系を用いて生物発光を測定することにより、肺炎球菌の接種材料生物発光を確認する。 </li></ol> 2。生物発光肺炎球菌による鼻腔内およびマウスの腹腔内感染<ol><li>急性肺炎と敗血症モデルのために7月10日週の時代にメス交配マウスを使用してください。これらのマウスの重量は20〜30の間でGでなければなりません。 </li><li>ケタミンおよびキシラジンの腹腔内注射によりマウスを麻酔。混合物1.0 mgの準備100μlの滅菌0.9％ケタミンおよびキシラジン0.1mgの20グラムの体重を有するマウスについて（w / v）の塩化ナトリウム。これは、ケタミンおよびキシラジン5 mg / kg体重、50 mg / kg体重の用量と一致する。正確には、麻酔剤の注射前に、マウスを秤量する。 </li><li>腹腔に混合物を注入し、麻酔薬が作用して、動物は、麻酔になるまでバックケージに動物を配置します。マウスの呼吸が非常に遅く、定期的になります。マウスは、細菌懸濁液の鼻腔内接種及び吸入が、それゆえ、くしゃみやで接種物の損失を生じないように、十分に麻酔しなければならない。これは、それらの尾の端にマウスを挟持することによって評価することができ、完全に麻酔したマウスでは応答性を欠くであろう。 </li><li>優しく麻酔したマウスをピックアップし、アップライト（ 図1）鼻と指と親指の間でマウスを押したままにします。 </li><li>細長いチップ（ジェル·ローダーによるピペットを使用してくださいTIPS）とマウス26〜29の鼻孔（10μL/鼻孔）の上に複数の小滴中の生物発光肺炎球菌をドロップします。マウスが思わず菌を吸入します。直立マウス1〜2分間保持し、マウスがくしゃみや接種物を保持するかどうかを観察します。 </li><li>リアルタイムで感染を監視するために、それぞれ、歪D39とTIGR4の1×10 7または7.5×10 7肺炎球菌の感染量で鼻腔内7月10日週齢のCD-1マウスに感染する。宿主組織によって吸収されず、任意のシステムの検出限界は約1×10 6生物発光細菌である。 </li><li>敗血症のマウス感染モデルにおいて肺炎球菌の病原性を評価し、バイオイメージする（IP）の腹腔内に感染する。ひずみD39とひずみTIGR4の1×10 4100μlの5×10 3 CFUを使用してください。 IPルートを使用するときにマウスを麻酔されていない。 </li><li> PBSで対照マウスに接種する。 <img alt="図1" fo:conteNT-幅FO = &quot;5インチ&quot;：SRC = &quot;/ files/ftp_upload/51174/51174fig1highres.jpg&quot; SRC = &quot;/ files/ftp_upload/51174/51174fig1.jpg&quot;幅= &quot;500px&quot; /&gt; 図1。S.を収録したCD-1マウスの鼻腔内感染肺炎球菌 。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51174/51174fig1highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。 </li></ol> 3。イメージングシステムを用いて肺および血液中に肺炎球菌普及を可視化する インビボイメージングシステムを用いてリアルタイムで雌非近交系CD1マウスの鼻腔内感染後の肺炎球菌の画像普及。 <ol><li>イメージングシステムのスイッチを入れ、preconfiguratedコンピュータ上にある画像解析ソフトウェアを起動します。 </li><li>撮像システムは、自動的に初期化し、CCDカメラが熱電活性される前に90℃に冷却する。 </li><li>設定とビニングを測定したマウスの数に依存する同時かつ生物発光シグナルの強さ。動物の生物発光をモニターするための視野（FOV）は変数であり、倍率は胸のような動物のマウスのシングルまたは一部を測定するために、5匹のマウスを測定するために、22.5センチメートルの視野の範囲であり、3.9センチFOVまたは頭。 </li><li>日常1分の露光時間、ビニング中程度、22.5センチメートル（集合D）のFOVを使用してください。まず、発光撮像モードを選択して撮像パラメータを設定する。 </li><li>シグナルの放出を用いた細菌株及びマウス株及びマウスの顔料に依存し得る。 例えば、C57BL / 6マウスを使用した場合、これらのマウスにおける肺炎の発生を撮像する場合に有利で ​​あり得る、マウスの胸部を剃る。 </li><li>画像はprechosen時間間隔でマウスを感染させた。最大8から12時間の時間間隔で、急性肺炎モデルにおけるマウスの生物発光を測定します。 observiによっても感染マウスの福祉を監視その外観、動作、および体重減少の決定をngの。 </li><li>前にチャンバ内の測定に撮像装置の麻酔システムの麻薬チャンバ内にマウスを麻酔。イソフルランと酸素の混合物の吸入を開始し、マウスは徐々に、定期的に呼吸するまで待ちます。 </li><li>系の結室に麻酔した動物を配置し、仰臥位でマウスを保持します。チャンバーの上部にCCDカメラますし、画像ネズミ気道。 </li><li>麻酔薬の吸入を可能にするためにチューブにに自分の鼻を持つ動物を配置します。 </li><li>ガス配管を介して撮像チャンバ内へのエントリはイソフルラン麻酔を維持させる。 </li><li>イメージングソフトウェアでチャンバーの上部にCCDカメラを活性化し、生物発光光学イメージングを開始するには、押して「取得」。すぐに密閉チャンバー内のマウスの写真が画面に表示されます。の1分後に<html>生物発光測定データのオーバーレイと写真が示されている。 </li><li>イメージオーバーレイは、ソフトウェアのウィンドウに表示された後、麻酔を停止し、戻って自分のケージにマウスを置く。 </li><li>マウスは、回復のために監視されています。 <img alt="図2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51174/51174fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51174/51174fig2.jpg" width="500px" /> 図2麻酔及びIVIS麻酔及びIVISスペクトル装置を用いて生物発光肺炎球菌に感染したマウスのモニタリング、それぞれA）IVISスペクトル撮像システム。B）インキュベーションチャンバーとIVIS麻酔システム。インキュベーションチャンバー内で麻酔C）マウス彼らの鼻は麻酔薬を吸入するとIVISスペクトラムイメージングチャンバー内に位置しています。D）マウス。_blank &quot;&gt;拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。 </li></ol> 4。生物発光Sで感染マウスの生物発光の定量化と評価肺炎球菌 <ol><li>画像解析ソフトウェアを用いて総光子放射（光子/秒）を定量化することによってマウス又はマウスの選択された領域の生物発光強度を決定する。 </li><li>グラフを作成するExcelのデータシートに記載されている光子放出の値を使用してください。データ変化は、多くの場合、グループ化されたマウス内で高いので、異なる肺炎球菌株に感染したマウスの違いを表示するためのボックスウィスカーグラフを生成する。 </li><li>マウス当たりの光子または選択した領域の放射輝度の平均値（光子/秒/ cm 2 / SR）として、代替的な結果を提供します。 </li><li>フォトンモードでROI（関心領域）の測定データを定量的に異なるインビボ撮像システムから他間で比較することができる来放射輝度の単位での測定が自動的に考慮カメラ設定を（ 例えば積分時間、ビニング、F /停止、および視野）がかかるため、RAの設定、。 </li></ol>

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<li>vander Linden, M., Al-Lahham, A., Nicklas, W., Reinert, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+characterization+of+pneumococcal+isolates+from+pets+and+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Molecular characterization of pneumococcal isolates from pets and laboratory animals.</a> PLoS One. 4, (2009).</li>
<li>Brehm,, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence+of+the+adenine+methylase+gene+of+the+Streptococcus+faecalis+plasmid+pAM+beta+1%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Sequence of the adenine methylase gene of the Streptococcus faecalis plasmid pAM beta 1.</a> Nucleic Acids Res. 15, 3177 (1987).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

<html>動物を用いて実施し、すべての実験は、地方自治体や倫理委員会によって承認されなければならない。 インビボ感染実験において、感染した動物の種々の宿主ニッチにおける細菌負荷は、様々な時点で、感染後に決定されなければならない。これらの実験条件下での動物は前の血液、咽頭、bronchoalvelar洗浄、あるいは、肺、脾臓、および脳などの臓器からの細菌の単離犠牲にしなければならない。ホスト·ニッチあたりの細菌数を計算し、病原性細菌に対する因子の効果を評価するために、血液または臓器は、細菌を回収し、固形培地上にプレーティング、続いて単離する必要がある。細菌負荷は、次いでCFUの計数により定量する。統計的に、各時点は、特定の実験条件下によるマウスの高い数に実験を処理する際の困難さをもたらすマウスの群を、必要とする有意データに到達する。 対照的にove_content &quot;&gt;、リアルタイムバイオイメージング法は、より少ない時間が要求するアプローチであり、それぞれの個々の細菌に感染したマウスは、ある期間にわたって複数回モニターすることができる。撮像技術は、異なる時に動物内細菌の可視化を可能にする時間は、...

ウイルスや細菌によって引き起こされる気道感染症は、世界中のすべての死の約3分の1を引き起こし、世界中の最も一般的な市中または臨床的問題の1つとなっています。キー細菌種は、 インフルエンザ菌と肺炎球菌 2である。しかし、これらの細菌種は、通常、自然な気道内細菌叢の一般的な構成要素である。このように、細菌の送料は侵襲性疾患および免疫状態や個人の素因に依存するため、特定の危険性もある。無症候性の保菌は、侵襲性感染症にトリガされます。 肺炎球菌は、市中肺炎（CAP）およびヒトにおける菌血症の最も一般的な原因の1の主要な病原体である。健常者におけるS.肺炎球菌 （肺炎球菌）は、多くの場合、彼らは非病原性細菌に直面している上気道の無症候性および無害植民ですだけでなく、 ヘモフィルス属などの病原体と常在菌叢の。または黄色ブドウ球菌とヒトの免疫防御システムの最初の行。キャリッジ率は幼児で最も高い（37％）と3-5（58％）混雑したデイケアセンター内でさらに高い。最年少の人口と高齢者は、担体及び鼻咽頭分泌物6からのエアゾール変速機を介して肺炎を受け、肺炎球菌コンジュゲートワクチン（成人では、子供と23価多糖PPSV23におけるPCV10またはPCV13）のいずれかを使用して、高リスク群とワクチン接種に属しアメリカ合衆国（米国）、多くの欧州諸国4で推奨されている。格納容器は、小児の最も一般的な血清型をカバーしながら、PPSV23は、成人では効率的に侵襲性肺炎球菌疾患（IPD）の防止、米国と欧州の菌血症肺炎球菌疾患の約90％を占める血清型をカバーしています。その結果、IPDは、ワクチンの種類（VT）にREDUです高病原性の可能性や抗生物質耐性を表示するCEDが、nonvaccine血清型が4,7-12浮上している。リザーバとして咽頭は、有害なローカル感染を開始する副鼻腔や中耳に広めるために肺炎球菌の出発点である。さらに重要なのは、肺炎球菌は、生命を脅かすCAP 4,13結果気管支や肺に気道から直接広がった。肺感染症は、多くの場合、このように血液中に広めるために、病原体を可能にし、IPDを引き起こし、組織およびバリア破壊に伴う。 CAPとIPDの発生率は、免疫不全の人で、年齢4,13の極値で最も高い。高病原性と病原体への共生の変換を担う状況が議論中である。しかし、より高い毒性および抗生物質耐性の増加を伴う宿主の感受性および進化適応の変化の他にPNEに決定的な影響を有することが示唆されているumococcal感染14〜16。 病原体は、上皮細胞の粘膜の密接な接触を仲介する付着因子の多様性に恵まれている。気道粘液を乗り越えた後、宿主細胞への肺炎球菌の付着は、細胞受容体との表面露出アドヘシンの直接的な相互作用を介して分子の4,17,18を架橋するように細胞外マトリックス成 ​​分または血清タンパク質を利用することによって促進される。としての汎用性の高い病原体の肺炎球菌も宿主の免疫防御機構の回避に関与する因子を完備しています。さらに、それらは、それぞれ、肺、血液、および脳脊髄液（CSF）、5,17,19,20等の種々の宿主的環境に適応する能力を有する。 病因および炎症応答ホスト上の細菌の要因の影響は、肺炎、菌血症、髄膜炎または21〜25の実験動物モデルにおいて調査されている。ヒトの病原体であるにもかかわらず、これらのモデルは、我々はLL-確立肺炎球菌組織向性、病原性のメカニズム、または肺炎球菌ワクチン候補の保護性を解読する。近交系マウス系統の遺伝的背景は、肺炎球菌に対する感受性を決定します。 CBA / CaおよびSJLマウスは、肺炎球菌感染22に対してより感受性あったが、鼻腔内肺炎球菌に感染したBALB / cマウスを、耐性であることが見出された。これは、ヒト、遺伝的背景および宿主防御機構と同様の感染の結果を決定する、ことを意味する。したがって、さらなる努力が肺炎球菌感染症に対してより感受性マウスのゲノムに耐性座を解明するために必要である。知見は、 インビボ病原性プロトコルの変更につながっている。代わりに、多くの場合、過去に使用された近交系BALB / cマウスの、非常に敏感CD-1/MF1近交系マウス系統は、今日では、多くの場合、機能喪失肺炎球菌、病原性や適性26-28因子の影響を研究するために使用されています。また、可用性生物発光肺炎球菌および光学イメージング技術の感染症のリアルタイム生物発光バイオイメージングが可能になる。肺炎球菌では、最適化されたluxABCDE遺伝子カセット（プラスミドポール·Tnは4001たluxABCDEのKm r）は 、トランスポゾン突然変異誘発により染色体の単一の組み込み部位に挿入されている。生物発光肺炎球菌は病原性または適性の要因別26,28-31に1解剖学的部位からの転座を欠損肺炎球菌の変異体の減衰を評価するために使用されてきた。 ここでは、マウスの肺炎や敗血症モデルにおける肺炎球菌感染症のバイオイメージングのためのプロトコルを提供する。鼻腔内または腹腔内に感染させたマウスにおける増幅および生物発光肺炎球菌の普及が容易に異なる時点で撮像光学系と同じ動物を用いて経時的にモニターすることができる。

<table><tbody><tr><td>トッド・ヒューイット・ブロス</td><td>カール・ロス、カールスルーエ、ドイツ</td><td>X936.1</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>酵母抽出物</td><td>カール・ロス、カールスルーエ、ドイツ</td><td>2363.2</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>血液寒天プレート</td><td>Oxoid、Wesel、ドイツ</td><td>PB5039A</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Kanamycin</td><td>Carl Roth, カールスルーエ, ドイツ</td><td>T832.2</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>エリスロマイシン</td><td>Sigma-Aldrich,Taufkirchen, Germany</td><td>E6376</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清(FBS)</td><td>PAA Laboratories, Coelbe, Germany</td><td>A11-151</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>CD-1マウス、雌</td><td>のチャールズリバー、ズルツフェルト、ドイツ</td><td>CD1SIFE06W08W</td><td>雌のCD-1マウス、6〜8週齢</td></tr>の<tr><td>ケタミン500 mg、キュラメッド注射液</td><td>シュワーベ・キュラメッド、カールスルーエ、ドイツ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>ロンプン2%、注射液</td><td>バイエルアニマルヘルス、モンハイム、ドイツ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>BD Plastipak 1 mlシリンジ</td><td>ベクトン・ディキンソン、ハイデルベルク、ドイツ</td><td>300015</td><td>ニードル付き無菌ルアーロックシリンジ</td></tr><tr><td>ゲルローダーチップ</td><td>PeqLab</td><td>81-13790</td><td>M&micro;ltiFlex Tips</td></tr><tr><td>ヒアルロニダーゼ</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3884-100mg</td><td>ヒアルロニダーゼ IV-S 型 牛試験</td></tr><tr><td>酸素</td><td>エア リキード、D&uuml;ドイツ、ッセルドルフ</td><td>M1001L50R2A001</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>バクスター、Unterschlei&szlig;ハイム、ドイツ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>pGEM-T Easy</td><td>Promega、マンハイム、ドイツ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>オリゴヌクレオチド&nbsp;</td><td>Eurofins MWG, Ebersberg, Germany</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Qiaprep Spin Midiprepキット&nbsp;</td><td>Qiagen、ヒルデン、ドイツ</td><td>27104</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>PCR DNA精製キット</td><td>Qiagen, Hilden, Germany</td><td>28106</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Living Image 4.1ソフトウェア</td><td>Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>XGI-8 ガス麻酔システム</td><td>キャリパーライフサイエンス/PerkinElmer, Rodgau, Germany</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>IVISスペクトラムイメージングシステム&nbsp;</td><td>Caliper Life Sciences/PerkinElmer、ドイツ、</td><td></td>ロートガウ<td>&nbsp;</td></tr><tr><td>バイオフォトメーター</td><td>Eppendorf AG, ハンブルク, ドイツ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr></tbody></table>

生物発光細菌を使用してリアルタイムに急性肺炎のマウスモデルにおける肺炎球菌の毒性因子の影響を以下の

Following in Real Time the Impact of Pneumococcal Virulence Factors in an Acute Mouse Pneumonia Model Using Bioluminescent Bacteria

肺炎は、開発における主要なヘルスケアの問題や先進国の一つであり、かなりの罹患率と死亡率と関連している。この病気の知識、集中治療室（ICU）のアベイラビリティ、および強力な抗菌剤で効果的なワクチンの使用の進歩にもかかわらず、死亡率は1高止まり。 肺炎球菌は市中肺炎（CAP）の主要病原体であるおよびヒトにおける菌血症の最も一般的な原因の1。この病原体は、表面に露出した付着因子と肺炎や侵襲性肺炎球菌疾患（IPD）に貢献する毒性因子の装備一式が装備されています。細菌の毒性因子又は適応度のインビボでの役割の評価は、S.を解明するために最も重要である肺炎病原性メカニズム。肺炎、菌血症、および髄膜炎のマウスモデルは、DIFにおける肺炎球菌の因子の影響を決定するために使用されている感染の段階をferent。ここでは、鼻腔内、または生物発光細菌による腹腔内感染後のマウスでのリアルタイム肺炎球菌普及に監視するためのプロトコルを記述します。その結果、撮像システム及び添付分析ソフトウェアを用いて視覚化し、評価することができる下気道および血液中の乗算と肺炎球菌の普及を示す。

メチオニンの取得及び取り込みは、そのホストのニッチ32,33内のフィットネスを維持するために、肺炎球菌のための中心的な重要性である。メチオニンABCトランスポーターリポ蛋白は、SPD _ 0151遺伝子（TIGR4：sp_0149）でD39でエンコードされており、MetQ 32という。 （ - ; TIGR4 Sp_0585 - Sp_0586、METEとMETF Spd_0511 Spd_0510 D39）肺炎球菌はさらに、メチオニン生合成酵素を生産する。合成培地中のメチオニンの不足が肺炎球菌の成長と同じような、メチオニン32,33のリポMetQ障害者の取り込みを結合メチオニンの不足に影響を与えます。この不具合は、メチオニンの高濃度の添加により回復することができた。共感染実験で示されているようで示すように、MetQの欠如は、敗血症や肺炎のマウスモデルにおいて肺炎球菌を弱めた状態でマウスのコロニー形成実験でMetQが欠損した変異は、同質遺伝子野生型と病原性で弱毒化されなかった細菌負荷32を決定...

肺炎球菌は、重症市中肺炎、世界中200万人以上の死亡の原因を引き起こす主要な病原体である。フィットネスまたは病原性に関与する細菌性因子の影響は、生物発光細菌を用いて、マウスの急性肺炎または菌血症モデルにおいてリアルタイムでモニターすることができる。

Pneumonia is one of the major health care problems in developing and industrialized countries and is associated with considerable morbidity and mortality. ...

本手順の目的は、肺炎球菌（streptococcus pneumonia）による肺炎または敗血症モデルにおける感染過程をリアルタイムで追跡することです。まず、複合培地であるTHYで培養し、肺炎球菌の感染用投与量を調製します。次に、マウスに肺炎球菌を経鼻または腹腔内投与して感染させます。最終ステップは、マウス全体または選択した領域のバイオルミネッセンス強度を定量化し、全光子放出量を算出することです。最終的に、マウス群のバイオルミネッセンス強度は、感染の経時的な変化を示します。さらに、バイオルミネッセンスを発するマウスの個々の画像の解析も行います。肺やさまざまな組織における細菌負荷を測定するなどの既存の手法と比較して、本手法の主な利点は、1匹の動物のみで感染の経過を追跡できる点にあります。この手法の意義は基礎研究にまで及び、細菌因子の産生能や抗感染薬の評価にも適用可能です。本手法は、マウスにおけるこの一群のCoxの解析に知見を提供することができます。本手法は、臓器内の細菌量の定量など、他の系にも適用可能です。一般的に、バイオイメージングシステムの操作は簡便であり、画像作成用のソフトウェアも利用可能であるため、研究者はこの手法を容易に習得できるでしょう。私はバイオイメージングシステムを紹介された直後に、この手法をbiosおよびprimo oxideを用いた感染実験に適用することを思いつきました。動物の特殊な取り扱いが必要であり、また接種などの重要なステップを説明することが困難であるため、本手法のデモンストレーションは極めて重要です。まず、テキストプロトコルに従い、感染性生物発光肺炎球菌のストックを調製します。次に、FBS添加THY培地40 millilitersを含むチューブに肺炎球菌を接種し、OD 600が0.08となるように培養を開始します。肺炎球菌を37 degrees Celsius、5%carbon dioxideの条件下で、振盪せずに3〜4時間、培養液のOD 600が0.35〜0.40に達するまでインキュベートします。次に、3,750 ×gで6分間遠心分離を行い、肺炎球菌を回収します。その後、上清を捨て、細菌ペレットを再懸濁します。0.5% FBSを添加したpH 7.4のPBS約1 mLを用いて、10% FBSと90 unitsのヒアルロニダーゼを含むPBS 20 µLの懸濁液中で、接種量を所望の濃度に調整します。肺炎球菌は自己融解が誘導されるため、振とうやボルテックス処理を行わないでください。次に、光学イメージングシステムを用いて、肺炎球菌の生物発光を確認します。ケタミンとキシラジンの腹腔内投与により、7〜10週齢の女性アウトブレッドマウスを麻酔します。尾をピンチして、麻酔深度が適切であることを確認してください。完全に麻酔をかけた後、マウスの鼻を上に向けて、指と親指で保持します。次に、細長いチップを備えたピペットを使用して、生物発光肺炎球菌を各鼻孔に10 µLずつ滴下します。これにより、マウスが不随意に細菌を吸入します。マウスを直立状態で1〜2分間保持し、くしゃみをしないか、または接種液を保持しているかを確認します。完了。マウスが選択した感染量を確実に吸入するように、感染量の吸入を確実に行う必要があります。そのため、マウスはゆっくりと規則正しく呼吸させる必要があります。マウスがくしゃみをし、感染線量の一部が失われないように注意してください。接種が成功した後、後で識別できるように尾に印を付け、マウスを新しいケージに入れてください。次に、敗血症感染モデルにおける毒性を評価するため、麻酔をかけたマウスの腹腔内に肺炎球菌株を100 µL注入します。尾に印を付けた後、対照群としてマウスをケージに戻します。別のマウス群にはPBSを注入します。肺炎球菌の播散は、画像解析ソフトウェアを用いて行います。まず、イメージングモードをルミネッセンスに設定し、次にイメージングパラメータを次のように設定します。露光時間を1分に設定してください。中程度のビニングを行い、FOVを22.5 centimetersに設定します。イメージング装置の麻酔チャンバー内で、イソフルランと酸素の混合ガスを用いてマウスを麻酔します。マウスの呼吸が緩やかになったら、鼻を麻酔システムに接続されたチューブに挿入し、仰臥位の状態でイメージングチャンバーに配置します。チャンバー上部のCCDカメラを起動し、生物発光光学イメージングを開始するには、イメージングソフトウェアの「acquire」を直ちに押します。閉鎖されたチャンバー内のマウスの写真が画面に表示されます。1分間の測定後、生物発光データと写真のオーバーレイが表示されます。曝露終了の約20秒前に麻酔を停止します。マウスをケージに戻し、ケージをラックに戻す前に麻酔から完全に回復させてください。その後、外見、行動、および体重のモニタリングに加え、感染したマウスのイメージングを8～10時間ごとに継続して行います。最後に、画像解析ソフトウェアを使用して、鼻腔内にD 39 luxまたは同源変異株D 39 luxe delta MET Qを接種したマウスの生物発光光学イメージングにおける総光子放出量を定量化し、時間点およびマウス群ごとの生物発光強度を決定します。イメージングは感染24時間後に開始し、各群において死亡するか、または感染から120時間が経過するまで8時間ごとに継続しました。10匹中7匹のマウスに重篤な疾患徴候が現れて死亡し、残りの3匹は生物発光を示さず生存しました。2匹のマウスにおけるバイオルミネッセンスのシーンは、実際には隣接するマウスの強力なバイオルミネッセンスによる漏れ込みであることに注意してください。バイオルミネッセンス野生型D 39 luxに正常に感染したマウスは、感染から32時間後に重度の肺感染症を発症し、その後8〜16時間以内に敗血症へと進行しました。D 39 luxへの感染後に肺炎および敗血症を発症したすべてのマウスは、感染後96時間までに死亡しました。メチオニン結合リポタンパク質の機能喪失により、肺炎球菌の毒性は著しく低下しました。32時間後、感受性のあるD 39 luxマウスではすべてに感染が見られたのに対し、mEq変異株を接種したマウスでは、わずか1匹のみに軽度の肺感染が認められました。しかしながら、48時間後には、変異株を接種したマウスにおいても重度の肺感染が顕在化しました。その結果、これらのマウスは感染後72時間で敗血症を発症し、72時間を経過した後に菌数がさらに増加したことから、急性肺炎感染モデルにおいてmet Qの欠損が肺炎球菌を減衰させることが示された。グループ分けされたマウスの生物発光強度の値を、指定した時点について示す。生物発光フラックスの定量化により、感染後32時間および40時間において、野生型感染マウスとmet q感染マウスの間に有意な差があることが示された。したがって、met qの機能喪失により肺炎球菌は弱毒化し、侵襲性感染が大幅に遅延しますが、一度定着すると細菌が毒性を失うことはありません。この手法を適切に実施すれば、1時間で4匹ずつ10群のマウスをモニタリングすることが可能です。この手順を試みる際は、菌液が完全に吸引され、マウスに吸入されることを確認することが重要です。本手順の後、弱毒化の程度や細菌変異体に関するさらなる疑問を解決するために、マウスへの共感染などの他の手法も実施できます。この手法は、感染生物学分野の研究者がマウスにおける肺炎球菌性肺炎や敗血症を探索し、可視化することを可能にしました。このビデオを視聴することで、マウスへの感染方法、およびバイオイメージングシステムを用いて肺炎球菌感染をリアルタイムで追跡する方法について深く理解できるはずです。肺炎球菌のようなヒト病原性細菌を取り扱うことは危険を伴うため、この手順を行う際はクラス2安全キャビネット内で作業するなど、適切な予防策を講じることを忘れないでください。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

インフルエンザウイルスとの同時感染は無症候性の中に侵襲性肺炎球菌疾患の誘導に関与する要因の一つです。...

の間に相乗効果を調査するために生物発光イメージングを使用して肺炎球菌幼児マウスで>とインフルエンザウイルス

生きている動物における細菌感染症の生物発光イメージングのための方法が説明されています。病原体は、生きた動物における感染症の光学全身イメージングを可能にルシフェラーゼを発現するように変更されます。動物モデルは、ルシフェラーゼを発現する病原体に感染し、病気の結果として得られるコースは、生物発光イメージングによってリアルタイムに可視化することができます。...

マウスでイメージ細菌感染にルシフェラーゼを用いた

出典:バレンタイン、ME、他。Pseudomonas aeruginosaにおけるインフレーム遺伝子欠失変異株の作製と感染の単純なマウスモデルにおける病原性減衰の試験J. Vis. 経験。(2020年)このビデオでは、生物発光を使用して、マウスにおける毒性細菌株と弱毒菌株のin...

生物発光を用いたマウスにおける細菌感染動態の追跡

出典:de Vries, C. R.ら、慢性緑膿菌創傷感染の遅延接種モデル。J. Vis. Exp.(2020年)。このビデオでは、生きたマウスモデルにおける細菌感染の進行を監視するための生物発光イメージング技術を実演しています。 luxABCDE...

マウスの細菌感染の生物発光イメージング

出典: Valentine, M. E.ら、『 緑膿菌 におけるインフレーム遺伝子欠失変異体の生成および感染の単純なマウスモデルにおける病原性減損の検証』。 J. Vis.

生物発光を用いたマウスモデルにおける細菌感染のリアルタイムイメージング

いくつかの方法は、マウスにおける細菌性肺炎をモデル化するための文献に記載されています。ここで、我々は、中咽頭にピペット細菌接種の吸引（ すなわち 、吸入）を介して肺炎を誘導するための非侵襲性の、安価で迅速な方法を記載します。肺の先天性免疫応答を評価するための下流の方法も詳しく説明されています。...

マウスにおける実験的細菌性肺炎の誘導と表現型のための非侵襲的および技術的に非集中的な方法

免疫能力のあるげっ歯類における肺感染症の確立方法が説明されています。熟練度があれば、この方法は迅速かつ容易に実行でき、肺炎球菌、インフルエンザ菌、緑膿菌、肺炎菌、バウマニー菌の多くの分離株で安定した感染を誘発することができます。...

免疫担当げっ歯類で堅牢な肺炎モデルはに対して抗菌有効性を評価するために<i&gt; S。ニューモニエ</i&gt;、<i&gt; H。インフルエンザ</i&gt;、<i&gt; K。ニューモニエ</i&gt;、<em&gt; P。緑膿菌</em&gt;または<em&gt; A。バウマニ</em

本明細書に記載の方法は、非侵襲性生物発光イメージング（BLI）を介したマウスの肺におけるIL-8プロモーター依存性炎症活性化の視覚化を可能にする。同じ動物を、ルシフェラーゼレポーター構築物の送達の時点から2ヶ月まで、複数回BLIに供することができる。...

IL-8トランジェントトランスジェニックマウスモデル<em&gt;インビボ</em&gt;炎症反応の長期モニタリング

ここでは、市販品に対する米国食品医薬品局(FDA)承認の大腸菌と比較して、緑膿菌の遺伝子組み換え株の減衰を評価する感染のマウスモデルの簡単かつ再現性の高いプロトコルについて説明する。...

緑膿菌におけるフレーム内遺伝子欠失変異体の生成と感染の単純マウスモデルにおける毒性減衰の試験

新生児マウスの生物発光 性大腸菌...

グラム陰性細菌敗血症の新生児画像モデル

この論文では、ウイルス感染中の無症候性コロニーから病気の原因となる病原体への肺炎球菌の移行に関する新しいマウスモデルについて説明します。このモデルは、疾患進行のさまざまな段階およびさまざまな宿主にわたる多微生物および宿主-病原体の相互作用を研究するために容易に適応できます。...

肺炎 連鎖 球菌のウイルス重感染によるコロニー形成者から病原体への移行に関するマウスモデルが加齢増悪疾患を再現

学ぶ生物発光イメージングによるマウス肺炎モデルでのStreptococcus pneumoniae感染のリアルタイムモニタリング手法。細菌の毒性因子と感染動態を可視化し、治療戦略の基礎研究に貢献する。

生物発光細菌を使用してリアルタイムに急性肺炎のマウスモデルにおける肺炎球菌の毒性因子の影響を以下の

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