Name: 連結可能な蛍光プローブによる実験脳卒中における細胞死の貪食クリアランスを評価する (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-27T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 14 s
Description: 学ぶ 連結可能な蛍光プローブを用いて実験脳卒中における細胞死の貪食クリアランスを評価する方法。Titeベース信号増幅反応と蛍光顕微鏡を活用し、活性貪食細胞を選択的に標識して脳虚血後の回復メカニズムを解明する。

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この研究は、国立神経疾患·脳卒中研究所、国立衛生研究所（VVD）と神経疾患や脳卒中の国立研究所からの補助金、R21 NS064403によって、ARRA（VVD）とR21を介して国立衛生研究所からの助成金R01NS062842によってサポートされていました生物医学イメージングとバイオエンジニアリングEB006301国立研究所、国立衛生研究所（VVD）。

この方法は、ホルムアルデヒド固定、パラフィン包埋組織切片に適しています。技術は、ラットにおける実験的ストロークにここにそのアプリケーションで実証されている。 1。チラミドシグナル増幅（TSA）システムのコンポーネントの準備 TSA系増強がこの反応のために調製し、標識の最終段階で使用されているが1時間以上行うことができる。したがって、標識化を開始する前に、TSA試薬を作るために便利である。 <ol><li>蛍光団のチラ原液を作る。 TSAラベリングキットと個々のバイアルで供給される蛍光体チラミド試薬を使用してください。チラミド試薬バイアルに300μlのDMSOを追加します。 4℃で保存した場合にフルオロフォアチラミドストック溶液は、少なくとも3ヶ月間安定である</li><li> TNTを含む洗浄緩衝液作る：0.1 Mトリス - 塩酸、pH 7.5; 0.15MのNaCl; 0.05％のTween-20。必要な場合、0.3％トリトンX-100、0.05％のTween-20の代わりに用いることができる。 Alternatively PBS洗浄緩衝液として使用してもよい。 </li><li>作るTNB含むバッファー、ブロッキング：0.1 Mトリス塩酸、pH 7.5; 0.15MのNaCl; 0.5％ブロッキング試薬（キットに付属）。攪拌しながら完全にブロッキング試薬を溶解するために、徐々にバッファに少しずつ追加します。連続的に攪拌しながら55℃に徐々にこのソリューションを加熱する。これは30〜60分かかる場合があります。解決策は、乳白色表示されます。使用前に室温に戻します。長期使用のために-20℃で一定分量や店舗。 </li></ol>セクションの2。準備ホルマリン固定組織から切り出したマウント5ミクロン厚の切片をスライドを使用してください。 <ol><li> 15分間キシレンでセクションを扱う。 </li><li>次のようにセクションを再水：5分毎に96％エタノール2倍につかる。 5分、80％エタノールに浸し; 5分間ずつの水2Xで洗浄する。 </li><li> PBS中50μg/ mlのにプロテイナーゼKストック溶液を希釈することにより、プロテアーゼKワーキング溶液を作る。 </li><li>プロテイナーゼを追加セクションへの使用液のK。 23℃で15分間インキュベート溶液の体積と消化の時間は、切片および組織型のサイズに応じて調整する必要があるかもしれない。小さな（直径5mm以下の）セクションのプロテイナーゼ溶液50μlで十分です。平均サイズ（直径〜10ミリメートル）のセクションでは、プロテアーゼK溶液100μlを加える。非常に大規模なセクションの場合、溶液の体積をスケールアップすることができます。全ての場合において、信号の損失を完了するのにつながり、組織形態を破壊する部分の過剰消化しないように注意してください。インキュベーション時間は25分を超えた場合、これが頻繁に発生。 </li><li> 5分ごとに蒸留水を2倍のセクションを洗ってください。のセクションでは、水中にいる間、アクティブプローブを含む標識ミックスを準備します。 </li></ol> 3。VACC TOPOベースの染色<ol><li>次を組み合わせることにより、アクティブ·プローブ·ソリューションを準備します。 水 - 11.75μL 1 Mトリス-HCl、pHが7.4から1.25μL 12塩基オーバーハング自殺オリゴヌクレオチド100ピコモル - 1μL アダプターオリゴヌクレオチドの100ピコモル - 1μL 50 pmolのVACC TOPO - 10μL </li><li>ピペッティングにより穏やかに混合します。プローブの活性化を可能にするために15分間室温（23℃）でインキュベートする。 </li><li>洗浄瓶からのセクションを取り、残りの水を吸引する。次に、ステップ3.1（〜10×10ミリメートルのセクションごとに25μL）で調製したアクティブ·プローブ·ソリューションを適用します。 </li><li>セクションをカバースリップし、23℃で15分間インキュベートディップは優しくカバースリップを除去するために水にスライドする。 5分間ずつ水3Xで洗う。 </li></ol> 4。TSA信号強調<ol><li> TNBは、先に調製し、室温（23℃）で30分間加湿チャンバー内でスライドをインキュベートし、ブロッキング緩衝液とともに組織切片を覆う。 </li><li> TNBはブロッキング緩衝液中のストレプトアビジン - 西洋ワサビペルオキシダーゼ結合体（SA-HRP）の1:100希釈液を準備します。吸引物TNBSA-HRP溶液を緩衝して適用ブロッキング。室温で30分間SA-HRPでスライドをインキュベートする。一般的には組織切片、セクションごとに100μlをカバーするために十分な試薬量を使用してください。 </li><li>洗浄は、室温でのTNT洗浄バッファー（またはPBS）中で5分間ずつ3回スライドさせる。 </li><li>キットから1X増幅希釈液中の蛍光団のチラミドストックの1:50希釈を準備します。各スライドの上に蛍光体チラ作業溶液をピペット。完全に一般的に組織切片、セクションごとに100μlをカバーするのに十分な実用的なソリューションを使用してください。すぐに各ラベルの前にフルオロフォアチラ作業溶液を作る。解決策は再利用なので、標識した後、それの未使用部分を破棄することはできません。 </li><li> 3〜10分間室温でスライドをインキュベートする。構造体の最初のヒントを見ることができるまで、顕微鏡下で蛍光の増加をモニターする。すぐにステップを洗浄するために進んでください。 </li><li>洗浄は室温tのTNT洗浄緩衝液（またはPBS）中で5分間ずつ3回スライドさせる攪拌しながらemperature。 </li><li> DAPIおよびカバーガラスで褪色防止ソリューションを追加します。蛍光顕微鏡で観察します。 DAPI及びFITC蛍光を可視化するために使用するバンドパスフィルターセット： FITC励起D490/40、発光10分の520; DAPI励起D360/40、放射20分の460、または類似。 </li></ol>

<ol><li>Jin, R., Yang, G., Li, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+mechanisms+in+ischemic+stroke%3A+role+of+inflammatory+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Inflammatory mechanisms in ischemic stroke: role of inflammatory cells.</a> J Leukoc Biol. 87, 779-789 (2010).</li>
<li>Schilling, M., Besselmann, M., Müller, M., Strecker, J. K., Ringelstein, E. B., Kiefer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predominant+phagocytic+activity+of+resident+microglia+over+hematogenous+macrophages+following+transient+focal+cerebral+ischemia%3A+an+investigation+using+green+fluorescent+protein+transgenic+bone+marrow+chimeric+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Predominant phagocytic activity of resident microglia over hematogenous macrophages following transient focal cerebral ischemia: an investigation using green fluorescent protein transgenic bone marrow chimeric mice.</a> Exp Neurol. 196 (2), 290-297 (2005).</li>
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<li>Shuman, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+classes+of+DNA+end-joining+reactions+catalyzed+by+vaccinia+topoisomerase%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">Two classes of DNA end-joining reactions catalyzed by vaccinia topoisomerase.</a> Sci. Rep. 267, 16755-16758 (1992).</li>
<li>TSA Fluorescence Systems. , Available from: 
 
 <a target="_blank" href="http://www.perkinelmer.com/CMSResources/Images/44-73609man_TSAFluorescenceSystems.pdf">http://www.perkinelmer.com/CMSResources/Images/44-73609man_TSAFluorescenceSystems.pdf</a> Forthcoming.</li>
<li>Barcia, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ROCK%2FCdc42-mediated+microglial+motility+and+gliapse+formation+lead+to+phagocytosis+of+degenerating+dopaminergic+neurons+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Rep.+%22%5BJournal%5D)">ROCK/Cdc42-mediated microglial motility and gliapse formation lead to phagocytosis of degenerating dopaminergic neurons in vivo.</a> Sci. Rep. . 2, 809(2012).</li>
<li>Didenko, V. V., Ngo, H., Minchew, C. L., Boudreaux, D. J., Widmayer, M. A., Baskin, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+irreparable+ischemic+damage+in+brain+by+selective+labeling+of+double-strand+blunt-ended+DNA+breaks%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Visualization of irreparable ischemic damage in brain by selective labeling of double-strand blunt-ended DNA breaks.</a> Mol. Med. 8, 818-823 (2002).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

このビデオでは、局所性脳虚血のどの明細胞死アクティブ食細胞を標識する方法を、組織切片の形式で、示しています。提示された技術は、具体的に飲み込まれ、積極的に細胞の死体を消化しているだけの廃棄物管理の細胞を標識する最初のアプローチである。これは、この機能を持っていない貪食細胞の標識化のための他の既存の方法に関して、それが有利になります。 二本鎖包ま核の消化中に廃棄物管理細胞のファゴリソソームで生産終了5&#39;OH DNA破壊を鈍ら - メソッド食作用活性の一般的かつ選択的なDNAベースのマーカーを使用しています。のみアクティブ食細胞は、この特異的な標識は、虚血性脳内の貪食反応の強さと効率の正確な評価を可能にします。 技術が堅牢であると説明されているようにすべての手順に従えばうまく動作します。プロテイナーゼK digesti段差に強く、再現性のある染色のために特に重要である。この段階で過剰消化セクションからのDNAの損失につながると減少したり、信号を排除する可能性があります。他の重要な点は、ワクシニアトポイソメラーゼ酵素の活性の...

虚血性脳卒中は、影響を受けた脳組織の大きな変化を誘導する。これは、ミクログリア由来の常在食細胞の急速な活性化をもたらす大量の細胞死を開始する。また、好中球、マクロファージ、樹状、および肥満細胞1,2を含む血液由来のプロ食細胞の様々なタイプによる虚血性脳の浸潤をオフに設定します。 それはまだ、虚血性傷害に対するこの応答は、正または負の役割を果たしているかどうか議論されている。それは死んだ細胞をクリアし、炎症を抑制するため、脳卒中後の貪食が有益であることができますが、それはまた、ニューロンの生存に影響を与えるし、組織損傷1-5を悪化させる有毒な活性酸素種を生成します。 食細胞にはいくつかの種類が虚血性脳を浸透しながら、それらのすべては、細胞の死体を巻き込むと再生プロセス1-3の道をクリアすることによって、廃棄物管理に参加しています。このCR脳卒中における細胞死の貪食クリアランスを行う廃棄物管理の細胞の選択的同定のための要件をeat​​es。このような積極的な廃棄物管理の細胞を撮像する場合、それは彼らが巻き込ま細胞死体を劣化させる方法を効率的に質問に答えることも重要です。それは、自己免疫の病理学および核物質6のリリースを防止するので、食作用で死んで細胞のDNAの効果的かつ完全な分解が不可欠である。 ここでは、アクティブな食細胞のマーカーとして、特定のDNA切断を使用する新しいプローブを提示する。これらの署名ブレークは、排他的な機能の廃棄物管理の細胞内で包ま核の崩壊の間に生産されています。したがってプローブは、選択的に巻き込むだけ食細胞を標識し、積極的に細胞の死体を消化。彼らはまた、貪食後の強度とDNAの分解が完了したことを観察することが可能になる。プローブは、強度とefficiの評価に役立つ貪食クリアランスency。 新しいプローブは、非タンパク質ベースのマーカーに依存しているため、広範な虚血性損傷が細胞形態を混乱させるか、特にコア虚血性ゾーン内に、タンパク質ベースのマーカーを枯渇することができ、脳卒中の研究に特に有利であり得る。 技術の原理を図1に示す。図は、酵素、ワクシニアトポイソメラーゼ（VACC TOPO）によって連結し、ヘアピン型オリゴヌクレオチドプローブを示している 5&#39;OH DNAにDNA消化7時のリソソームのDNase IIによって生成され終了します。

<table><tbody><tr><td>キシレン</td><td>JT ベーカー</td><td>9490-22</td><td></td></tr><tr><td>エタノール</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>プロテイナーゼ K</td><td>ロシュ</td><td>3115879001</td><td></td></tr><tr><td>PBS バッファー</td><td>Invitrogen</td><td>AM9624</td><td></td></tr><tr><td>ワクシニア トポイソメラーゼ I</td><td>ビビッド テクノロジー</td><td></td>ズ <td>5 pmol/&mu;l ストック</td></tr><tr><td>12 塩基 オーバーハング 自殺 オリゴヌクレオチド</td><td>IDT DNA</td><td></td><td>5'-AAG GGA CCT GCB GCA GGT CCC TTG ATA CGA TTC TA -3';B &ndash;ビオチン-dT;100 pmol/mu;l ddH2O&nbsp;&nbsp;</td></tr><tr><td>アダプター オリゴヌクレオチド</td><td>IDT DNA</td><td></td><td>5'-TAG AAT CGT ATC-3'; 100 pmol/&mu;l ddH2O</td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl, PH 7.4</td><td>Lonza</td><td>51237</td><td></td></tr><tr><td>TSA, Fluorescein System&nbsp;</td><td>パーキンエルマー&nbsp;</td><td></td><td></td>NEL701A001KT</tr><tr><td>1 M NaCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMSO&nbsp;</td><td>シグマ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>トゥイーン-20&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>P9416-50ML</td><td></td></tr><tr><td>ベクタシールド、DAPI</td><td>ベクターラボラトリ</td><td>ーズH-1200</td><td></td></tr><tr><td>カバースリップ22</td><td></td><td></td><td>x 22 mmまたは22 x 40 mmガラスまたはプラスチックカバースリップ。プラスチック製のカバースリップは、切片から簡単に取り外すことができるため、反応中に適しています。</td></tr><tr><td>ラットの脳切片</td><td></td><td></td><td>Didenko et al11. 5-6 &mu;パラホルムアルデヒド固定パラフィン包埋組織ブロックから切り取られたM厚切片。充電済みで事前にクリーニングされたスライドを使用してください。&nbsp;</td></tr><tr><td>倒立顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>デジタルビデオカメラ&ソフトウェア</td><td>Micromax</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ソフトウェア</td><td>Metamorph</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

連結可能な蛍光プローブによる実験脳卒中における細胞死の貪食クリアランスを評価する

Assessing Phagocytic Clearance of Cell Death in Experimental Stroke by Ligatable Fluorescent Probes

我々は、局所性脳虚血に貪食クリアランスの可視化のための新たな組織化学的なアプローチについて説明します。アプローチは、任意の細胞系譜の廃棄物管理の食細胞による行程の死細胞の除去の研究を可能にします。貪食することができる多数の異なる起源の細胞が虚血性脳中に存在するが、それらの一部だけが積極的に飲み込みおよび細胞死体を消化する。このような積極的な食細胞の廃棄物管理の選択的可視化、定量化、および分析は、虚血に対する脳の反応を評価するのに役立ちます。それは、その後の再生プロセスのために道を開くように効率的な細胞死のクリアランスは、虚血性損傷から脳の回復のために重要である。死体をきれいにする失敗は非分解のDNAやタンパク質によって引き起こされる毒性反応をもたらすであろう。説明する手順は、選択的に貪食中にすべての食細胞で生産特性DNA切断にウイルストポイソメラーゼによって連結させた蛍光プローブを使用していますそして不可逆的に虚血により損傷を受けた細胞を消化。この方法は、虚血性傷害に対する脳の反応の調査のための新しいツールです。

活性な廃棄物管理の食細胞を標識するための技術の原理を図1に示されている。概略は3段階で検出進むことを示している。第一工程は、プローブの活性化（ 図1A）を包含し;第二段階で活性化プローブは、組織切片（ 図1C）内の特定のDNA切断に連結している。第三段階は、蛍光シグナル増幅（ 図1D）を含む。以下のようにより詳細な説明では、検出は進む。 1。プローブの活性化 。ライゲーション反応VACC TOPOに先立ち、共有結合オリゴプローブの3 &#39;末端に連結される必要がある。プローブの活性化の際にVACC TOPOは、ヘアピンアダプター二重と切断する上側の鎖に付着する。 12塩基長の部分は、次いで、恒久的にヘアピンの3 &#39;末端に結合VACC TOPOを残して、分離する。<html>その3 &#39;末端に結合した酵素と、このオリゴヌクレオチドは、DNA分解酵素II型の切断（ 図1B）を</str...

私たちは、積極的な食細胞のin situラベリングにおける選択のための新しい蛍光技術を提示し、その明確なストローク中の細胞死体オフ。虚血性脳内に存在する食細胞のわずかな割合は、細胞死の隙間に参加しているための方法は、虚血に対する脳の反応を評価するために重要である。

We describe a new histochemical approach for visualization of phagocytic clearance in focal brain ischemia. The approach permits the study of elimination ...

本手順の全体的な目的は、脳卒中において細胞死骸を除去する活性化した食細胞を選択的に標識することです。これは、まずTiteベースの信号増幅反応に必要なコンポーネントを調製し、次に切片を調製することで達成されます。次に、vaccinia酵素、トポイソメラーゼ、および反応性蛍光プローブを用いて標識反応を行います。最終ステップは、IDEに基づいた蛍光信号の増幅です。最終的に、蛍光顕微鏡を用いて、焦点性脳虚血の組織切片における死細胞の貪食能による除去を評価します。食細胞による死細胞の除去は、虚血後の脳の回復において重要な役割を果たします。本手法では、死細胞を能動的に除去している食細胞のみを標識することで、このプロセスの効率を判定します。この手法は虚血脳への知見を提供しますが、他の臓器や組織における虚血性損傷の研究にも適用可能です。FAによる死細胞の酸性除去が重要となる場合についてです。IDEシグナル増幅またはTSAステップは標識の最終段階で行われますが、この反応の準備には1時間以上かかることがあります。したがって、先にTSA試薬を調製しておく方が効率的です。最初のステップは、TSA標識キットに含まれるtyrom試薬ファイルに300 µLのDMSOを加え、fluoro four TYROMストック溶液を作製することです。次に、ブロッキング試薬を完全に溶解させるために、TNT洗浄バッファーを調製します。TNBブロッキングバッファーを作製する際は、溶液を撹拌しながら少量ずつゆっくりと加え、徐々に55 °Cまで加熱してください。継続的に攪拌すると、溶液は乳白色になります。分注して使用する前に室温に戻し、長期保存する場合は-20°Cで保存してください。本手順では、ホルマリン固定組織から切り出した厚さ5µmの切片を標本に載せ、あらかじめスライドを準備しておきます。まず、切片をキシレンで15分間処理し、一連のエタノール洗浄によって切片を再水和させた後、水で2回洗浄します。次に、ストックソリューションをPBSで希釈し、50 µg/mLのproteinase K作動液を調製します。本実験で最も困難な点は、proteinase Kによる消化の最適時間を決定することであり、組織のサイズや種類に応じて、成功を確実にするために消化時間を短くしたり長くしたりしたコントロールが必要になる場合があります。適切な量のproteinase K作動液を切片に加え、23 °Cで15分間インキュベートします。インキュベーション後、切片を蒸留水で5分間ずつ2回洗浄します。切片を浸漬させている間に、活性化プローブを含む標識ミックスを調製します。活性化プローブ溶液を調製するには、オリゴヌクレオチドに1 M Tris-HClとキット付属のワクシニアトポイソメラーゼを加え、ピペッティングで穏やかに混ぜ合わせた後、プローブを活性化させるために室温で15分間インキュベートします。2回目の洗浄期間の後、切片を容器から取り出し、残った水を吸引除去します。準備が整ったら、事前に調製した活性プローブ溶液を適用して被覆します。切片をスライドに載せ、23 °Cで15分間インキュベートします。インキュベーション後、スライドを水に浸してカバーガラスを慎重に除去します。スライドを水で3回、各5分間洗浄します。最後の洗浄後、組織切片にTNBブロッキング緩衝液をかけ、加湿チャンバー内で室温にて30分間インキュベートします。この間に、ストリプトアビジン-西洋ワサビペルオキシダーゼ複合体（S-A-HRP）をTNBブロッキング緩衝液を用いて1:100に希釈して調製します。スライドを取り出し、TNBブロッキング緩衝液を吸い取ります。S-A-HRP溶液を添加する際は、組織切片全体を覆うのに十分な量の試薬を使用してください。カバーガラスを被せた後、室温で30分間インキュベートします。インキュベーション後、室温のTNT洗浄バッファーで5分間ずつ3回洗浄します。使用直前に、1×増幅希釈液を用いて、fluorophore stockを1:50に希釈して調製します。この溶液をスライドに滴下し、組織切片全体を完全に覆ってください。溶液は再利用できないため、未使用分は廃棄してください。スライドを室温で3〜10分間インキュベートします。蛍光を確認してください。構造物の兆候が最初に見えるまで、顕微鏡の倍率を上げます。速やかに洗浄ステップへ進んでください。スライドを5分間ずつ3回洗浄します。室温で撹拌しながらTNT洗浄バッファーで洗浄します。洗浄後、DPIを含む抗退色溶液を加え、カバーガラスをかけます。蛍光顕微鏡で結果を観察してください。これらの画像は、PHA酸性クリアランスの2つの例を示しています。核染色であるdappyが青色蛍光で示され、liable vac topoプローブが緑色蛍光で示されています。これらの画像に提示された事象の図には、食細胞の核と、消化のさまざまな段階にある取り込まれた細胞外核が示されています。習得すれば、適切に実施することで約3時間でこの手法を完了させることができます。このビデオを視聴することで、組織切片における生存蛍光プローブの使用方法を習得できます。また、虚血脳において死細胞を除去し、活性化したミクログリアを選択的に標識する方法を学ぶことができます。

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このビデオでは、共焦点顕微鏡を使用してアポトーシス細胞のクリアランスを研究するエフェロサイトーシスアッセイを実演します。エフェロサイトーシスは、アポトーシス細胞が食細胞に飲み込まれ、エフェロソームと呼ばれる小胞内で分解される多段階のプロセスです。このプロトコルは、個々のアポトーシス細胞の内在化部分と非内在化部分を視覚化し、エフェロサイトーシスを定量化する方法を提供します。...

Fixed Cell Efferocytosis Assay:蛍光顕微鏡を用いたマクロファージによるアポトーシス細胞のエフェロサイトーシス取り込みを研究する方法

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome ...

ライブマクロファージにおけるファゴリソソーム生合成の研究

小膠細胞は、それらの細胞外環境に材料を貪食又は巻き込むための高い能力を有する中枢神経系（CNS）の居住者の免疫細胞である。ここでは、シナプスのコンポーネントのミクログリア媒介貪食を可視化し、測定するために広く適用可能で信頼性が高く、高度に定量的なアッセイが記載されている。...

貪食アッセイ：CNS食細胞と神経細胞間の相互作用を評価するためのプロトコル

組織の恒常性と不十分な食細胞機能の維持が病態に関与しているためにミクログリアの貪食作用が重要です。しかしながら、 インビボでのミクログリアの機能を評価することは技術的に困難です。私たちは、正確に監視し、生理的な環境の中でミクログリアの貪食の可能性を定量化するためのシンプルでありながら堅牢な技術を開発しました。...

網膜ミクログリアの貪食機能を評価します<em&gt;インビボ</em&gt;フローサイトメトリーベースのアッセイを使用しました

蛍光に分類された髄鞘の残骸と細胞内脂質液滴染色を使用してプライマリ...

体外骨髄由来マクロファージによって髄鞘の残骸の貪食

Efferocytosis、アポトーシス細胞の貪食除去は恒常性を維持するために必要な受容体と認識、キャニスター、アポトーシス細胞の内面化を可能にするシグナル伝達経路によって促進されます。ここで、efferocytosis の定量化と efferocytic シグナル伝達経路の活性の蛍光顕微鏡のプロトコルを提案する.

単一細胞の蛍光顕微鏡による Efferocytosis の定量化

神経変性疾患は、調節不変のミクログリア機能に関連付けられている。本稿では、iPSCマクロファージによる神経芽細胞細胞の貪食のインビトロアッセイについて概説する。量的顕微鏡読み出しは、ライブ細胞タイムラプスイメージングと固定細胞高含有イメージングの両方について説明されています。...

iPSCマクロファージによる死んだ神経芽細胞の食細胞に対するインビトロ定量イメージングアッセイ

ラット のin vivo モデルは、虚血性脳卒中の病態メカニズムと治療標的を調査するために不可欠なツールです。この研究では、ラットの中大脳動脈閉塞 (MCAO)...

虚血性脳卒中のラットモデルにおける免疫蛍光法による細胞死シグナル伝達の評価

ここでは、ミニ脳卒中モデルでのフローサイトメトリー分析を使用して、虚血性脳卒中後の免疫細胞機能を評価するためのプロトコルを紹介します。この方法は、神経免疫相互作用の詳細な調査を可能にし、他の神経変性疾患の研究にも適応できるため、脳卒中病理における免疫応答の理解を深めることができます。...

ミニ脳卒中マウスモデルにおける神経免疫相互作用の単離とフローサイトメトリー評価

中大脳動脈の糸状閉塞は、マウスでは虚血性脳卒中を研究するための一般的なモデルです。...

マウスにおけるモデリングのストローク - フィラメントモデルと中大脳動脈閉塞

学ぶ 連結可能な蛍光プローブを用いて実験脳卒中における細胞死の貪食クリアランスを評価する方法。Titeベース信号増幅反応と蛍光顕微鏡を活用し、活性貪食細胞を選択的に標識して脳虚血後の回復メカニズムを解明する。

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