Name: Gタンパク質共役受容体によるカリウムチャネルの調節を検出するために、ラベルフリー光学バイオセンサの使用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-10T19:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 59 s
Description: 学ぶラベルフリー光学バイオセンサを用いたGタンパク質共役受容体によるカリウムチャネル調節の検出法。HEK293細胞を使用し、生細胞でのリアルタイムシグナル測定が可能です。神経科学と細胞シグナル伝達研究に有用です。

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著者らは、 安定的にラットスラック-Bタンパク質を発現する HEK293細胞の寛大な寄付のためのエール大学の博士フレッドSigworthの研究室で博士襄陽ヤンに感謝しています。さらに著者らは、ビデオ紹介に表示スラックの低 ​​温電子顕微鏡相同性モデル博士Sigworthに感謝しています。この研究は、LKKにNIHの助成DH067517とNS073943によってサポートされていました

1。細胞培養（フレミングとカツマレク18より） <ol><li>このアッセイにおける使用の前に2より大きく10未満の継代のための適切なメディアでの培養細胞。安定的にラットスラック-Bタンパク質を発現する非トランスフェクトHEK-293細胞およびHEK-293細胞を、リーボビッツL-15培地、10％熱不活化ウシ胎児血清および抗生物質を補充した半分のダルベッコ変法イーグル培地および半分で増殖させる。 500μg/ mlのジェネテシン（G418）を安定的にスラックチャネルの発現のために選択することスラック-Bを発現するHEK-293細胞に添加する。 0.25％トリプシン-EDTA溶液で皿から解離して70％〜90％のコンフルエンスで継代細胞。 </li></ol> 2。フィブロネクチンおよび卵白アルブミンを用いたTiO 2の 384ウェル光学バイオプレートの細胞外マトリックス（ECM）コーティング<ol><li>フィブロネクチンECM混合物およびオボブロッキング溶液の調製<ol><li> fibronectのワーキング溶液を調製します20.0 mlのPBS中のフィブロネクチンの5μg/ mlの終濃度でリン酸緩衝生理食塩水（PBS）中。 1.0 mg / mlのストック濃度から、200倍希釈のために20.0ミリリットルのPBSに100μLを加える。フィブロネクチンの使用液を調製後、等分し-20℃で保存することができます。 </li><li>滅菌水中熱不活性化オボアルブミンの5％原液を準備します。 5％の溶液と無菌組織培養グレードの水にオボアルブミンを希釈し、60℃で30分間熱不活性化室温および滅菌フィルター溶液に溶液を冷却。 4℃で5％のオボアルブミン溶液及びストアを分取</li><li> PBSに5％の原液を希釈することにより、オボアルブミンの2％ワーキング溶液を調製する。例えば、30.0ミリリットルの最終容量のPBS 18.0ミリリットルに5％卵白アルブミン原液を12.0ミリリットルを追加。 </li></ol></li><li> 384ウェル光学バイオセンサープレートコーティング<ol><li> 20.0μL/ウェルとTiO 2のプレートを水和15分間の滅菌組織培養グレードの水。以下の手順では、16チャンネルピペッターを用いて行われるべきである。 </li><li>ウェルあたり50.0μlのPBSで洗浄プレート1X。 </li><li>各ウェルにフィブロネクチン作業溶液の20.0μLを加え、ECMを作成するために、室温で2時間インキュベートする。 </li><li>ウェルあたり50.0μlのPBSで洗浄プレート1X。 </li><li>各ウェルにオボアルブミン作業溶液の40.0μlを加え、プレートをブロックするために4℃で一晩インキュベートする。 </li><li>ウェルあたり50.0μlのPBSでプレート3回洗浄します。 ECMコーティングされたプレートは、最大48時間、4℃で保存することができる。 </li></ol></li></ol> 3。 384ウェル光学バイオプレートに細胞を播種<ol><li>細胞から増殖培地を除去して、プレートから細胞を取り除くために、トリプシンを追加します。細胞を収集し、1分間の千×gで遠心する。増殖培地中のトリプシンのメディア再懸濁細胞を除去。 </li><li>血球計数器または自動化を使用してセルカウンター、細胞の濃度を決定する。 </li><li>インキュベーション中の蒸発の影響を最小限に抑えるために、ウェル当たり増殖培地の50.0μlを用い説明する。細胞は、成長培地の50.0100μlの容量でウェル当たりの細胞の所望の数を達成するために希釈されるべきである。これらの実験のために、1,000細胞/ウェルを、バイオセンサー上にプレーティングした。 </li><li>播種した細胞は、空気/ 5％CO 2下、37℃で増殖培地中で一晩インキュベートすることを可能にする。 </li></ol> 4。 RWG光バイオアッセイのためのバイオセンサーと化合物プレートの調製<ol><li>インキュベーターからプレートを取り外して、細胞から増殖培地を除去します。細胞はハンクス平衡塩溶液（HBSS）で1×洗浄します。各ウェルにHBSSの25.0を添加する。 </li><li> BINDスキャナーでバイオセンサープレートを置き、細胞を1〜2時間室温に平衡化させる。 </li><li>関心のあるリガンドは広告元となる別々の化合物プレートを準備しますアッセイ中にバイオセンサープレートにDED。これらのアッセイについては、化合物を含有する溶液の25.0μlを50.0μlの総容積のためのバイオセンサープレートに各ウェルに添加した。このように、溶液中の化合物を、2×所望の最終濃度で調製した。 </li></ol> 5。 RWG光バイオアッセイを実施<ol><li>ウェルBINDスキャンソフトウェアを用いて各々の中心1.5ミリメートルのために3.75ミクロン/ピクセルの最大解像度を用いてウェルA1-P12（SBS 384ウェルプレートの半分）用のスキャナシステムを用いてベースライン測定値を取る。このベースラインスキャンは約30分かかります。 </li><li>井戸A1-P12のために各ウェルに化合物溶液の25.0を添加する。 </li><li>ウェルA13-p24のベースライン測定を行う。 </li><li>ウェルA13-P24のために各ウェルに化合物溶液の25.0を添加する。 </li><li>井戸A1-P12のためのポスト化合物添加の測定を行い、ウェルのA13-P24のために繰り返します。 </li></ol> 6。 ABINDビューを用いたアッセイデータのnalysis <ol><li> Windowsでのベースライン測定のためのBINDアッセイデータを開き、セル選択を可能にするために「グリッド·エディタ」ボタンをクリックしてください。ソフトウェアは、ユーザによって定義された関心のあるメトリックを計算する。 </li><li> 「セルファインダー」と「ベースライナー」機能が含まれ、「プラグイン」を開きます。 「セルファインダー」に設定されたパラメータの細胞は、バイオセンサーのバックグラウンドと区別されるようにします。 </li><li>ベースライン測定のための「セル·ファインダー」は、データを含むセルのマップファイルをエクスポートします。 </li><li>繰り返します、ポスト化合物添加·データの6.1から6.2を繰り返します。 </li><li> 「ベースライナー」プラグインを開いて、ベースライン測定からセルマップをインポートします。ソフトウェアは、背景とポスト複合データ間のPWVのシフトを計算します。 </li><li>細胞に対するPWVの平均シフトの出力は、「Δセル平均」を選択します。データはその後、Microsoft Excのにエクスポートすることができますさらなる分析のためのEL。 </li></ol>

<ol><li>Hille, B. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHille%2C+B+%22Ion+Channels+of+Excitable+Membranes%22">Ion Channels of Excitable Membranes</a>. , Sinauer Associates. (1992).</li>
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</ol>

スティーブンM. Shamahは、X-BODY Biosciences社の従業員である。

Z素数（Z &#39;）因子は、ハイスループットスクリーニングアッセイ20の品質を定量化するための一般的な統計的方法であり、このアッセイにおけるGPCRアゴニストのスクリーニングは、SBS互換性のある384ウェルアッセイにおいて発生したため、優れを提供このアッセイ21の堅牢性と妥当性の尺度。 1のAZ &#39;の値は、存在しない標準偏差を持つデータポイントの数が無限で、理論的に理想的なアッセイを示している。 0.5を下回るわずかに有益と考えアッセイで0.5〜1の間のAZ &#39;値は、ハイスループットスクリーニングの目的のための優れたアッセイと考えられる。このデータセットでは、陽性対照としてSFLLRカルバコールを利用して計算Z &#39;値は、このアッセイは、非常に堅牢であり、得られた結果は非常に重要であることを示す、それぞれ0.79と0.81である。 384ウェル光学バイオプレート、細胞播種および化合物添加の細胞外マトリックスコーティングこれらの実験で16チャンネルのフィンピペット（5〜50μl）を用いて手動で行った。このアッ...

その生理学的に適切なコンテキストで、生きた細胞を調べると、細胞標的の生物学的機能を理解することが重要です。しかしながら、このような免疫共沈降アッセイなどのチャネルおよび調節細胞質タンパク質との相互作用を調べるアッセイは、一般に生細胞における相互作用の時間経過にほとんど情報を提供する。現在のセルベースアッセイの大多数は、このような関心の蛍光タグ付けされたタンパク質の転座などの特定の細胞事象を測定する。これらのアッセイは、潜在的に、タンパク質の挙動を変化させ、標的の生理学的な関連性を減少させることができ、目的のタンパク質の修飾を必要とする。 、システムの操作を必要と細胞活性の連続的な測定を提供し、彼らの最も生理学的に関連する状態4にある細胞の研究を許可していない非侵襲的な細胞ベースのアッセイ、。 光学バイオセンサを製造するように設計されているセンサ表面に結合された光の特性の測定可能な変化。表面プラズモン共鳴（SPR）と共振波長格子（RWG）技術を含むエバネッセント波を利用する光学バイオセンサは、主にセンサー表面上に固定化されたそれらの生物学的受容体への結合分子の親和性および速度を検出するために使用されてきた。より最近では、市販のRWGバイオセンサは、高空間分解能（最大3.75ミクロン/ピクセル）5のセンサ表面への付着細胞の底部内の ​​質量の相対的変化の検出を可能にするために開発されてきた。これらのバイオセンサーは、細胞接着および拡散性、毒性、増殖、およびGタンパク質共役受容体（GPCR）を含む細胞表面受容体の種々によって誘発されるシグナル伝達経路などの刺激から生じる、生細胞の原形質膜の近傍の質量の変化を検出することができる6 。 RWGバイオセンサは、相対ちゃんを検出バイオセンサ7の150nmの内の質量の相対的変化の関数としての屈折率のシチズン。細胞は、バイオセンサーにメッキされている場合、屈折率のこの変化は、バイオセンサへの細胞付着の変化に起因する細胞の原形質膜の近くの質量の変化を反映する。このプロトコルは、RWGバイオセンサを使用してチャネル - タンパク質相互作用の検出について説明する。 RWGデータ収集システムは、複数のコンポーネントで構成されています。 X-BODY Biosciences社BINDスキャナがこれらの実験に使用されたため、我々は、プレートリーダー、関連するバイオセンサー、BINDスキャン取得ソフトウェア、およびBINDビュー解析ソフトウェア8から構成され、この特定のシステムのための構成要素を指すものとする。フォトニック結晶バイオセンサは、特定の光の伝播を防止する2又は3次元の誘電体材料の周期的な配置で構成され、光学バイオセンサと称する波長と方向。フォトニック結晶構造はウッドの異常と呼ばれる現象に基づいている。最初1902年にウッドによって発見され、これらの異常は、特定の回折次数の強度の急激な変化は、特定の狭い周波数帯域で発生する光の回折格子によって反射される光のスペクトルで観察された効果である。 1962年に、ヘッセルとOliner、有限期間格子は立って共振波長9を生成するWoodの異常の新しい理論を発表した。ここで説明する光学バイオセンサにおいては、木材の異常は、白色光で刺激された場合には、波長のごく狭い帯域（典型的には850から855 nm）を反映していることをRWGバイオセンサを製造するために使用される。 個々のバイオセンサーは、高屈折率誘電体材料の二酸化チタン（TiO 2）の薄層で被覆された周期的な表面構造を有する低屈折率プラスチック材料からなる。ときはbiosensまたは広い波長光源で照明されるフォトニック結晶の光学格子はBINDスキャナで分光光度計によって測定される光の波長の狭い範囲を反映する。反射波長（ピーク波長値またはPWV）のピーク強度は、信号から計算される。バイオセンサー表面の近接内の質量の増加または減少（〜150 nm）での結果としての屈折率の変化する光シフトのPWV。光学バイオセンサは、これらの実験で使用したアッセイのための標準的な生体分子科学学会（SBS）384ウェルマイクロプレートに組み込まれる。 RWVバイオセンサは、細胞10を生体内に外因性シグナルの添加により変化を検出するために使用される。 RWGバイオセンサと屈折の地元率変化の表面は特定の刺激で処理して監視されている上に細胞を直接培養する。バイオセンサにおける質量の変化の方向があり得る局所バイオセンサーの近くの質量の増加から生じる屈折の屈折率との増加はPWVの増加として測定されるので、決定した。逆に質量の減少は、PWVの減少を生成します。検出されたPWVの変化は、細胞接着の変化、タンパク質の補充/リリース、エンドサイトーシス、リサイクル、エキソサイトーシス、アポトーシス、および細胞骨格再配列を含む多数の細胞事象に起因することができます。例えば、アッセイは、カリウムチャネルおよび他の細胞質または細胞骨格成分の間のチャネル - タンパク質相互作用の変化を検出することができる。イベントは、しかしながら、原形質膜の近くに、バイオセンサーの近くに〜150nmの検出ゾーン内、および接続されたセルの場合に発生しなければならない。細胞応答の取得は、BINDスキャンソフトウェアを用いて実行され、SBSプレート384のウェルの各々の画像表現が生成される。このシステムは、単一細胞内のイベントの検出を可能にする、最大3.75ミクロン/ピクセルの解像度を有し、かつ（例えば、HEK293またはCHO細胞）細胞株、またはそれ以上の生理学的に関連する一次細胞のいずれかで使用することができる。 BIND Viewソフトウェアを有する画像分析は、個々の細胞の集団の両方における細胞応答の検出を可能にする。バイオセンサはマイクロプレート、384ウェル標準SBSに組み込まれるように、システムは、ハイスループットスクリーニング（HTS）に容易に適応可能である。 共振波長格子光学バイオセンサは、以前は11のGPCRの活性化後の細胞の原形質膜の近くの質量の変化を検出するために使用されてきた。当研究室では、2ナトリウム活性化（K Na）のカリウムチャネル、スラック-Bおよびスリック12をクローン化しています。スラック-Bとスリックチャネルの両方の活性が非常に強く、プロテインキナーゼC（PKC）13の直接的な活性化により影響されることが示されている。このような、M1ムスカリン受容体とのmGluR1代謝調節型グルタミン酸rとGαqはタンパク質共役型受容体の活性化eceptorは、強力PKC活性化を介してチャネル活性を調節する。これらのK のNaチャネルは、持続的な刺激の間に神経細胞の適応に貢献し、アクションのタイミングの精度が14を電位調節する。たるみチャンネルはFMRP、脆弱X精神遅滞タンパク質15,16を含む細胞質シグナル伝達分子、様々な相互作用することが知られている。乳児期（MMPSI）、重度の発達遅滞17になりてんかんの早期発症フォームの複数の移行部分発作のたるみ結果に突然変異。

<table><tbody><tr><td>DMEM, High Glucose</td><td>Life Technologies</td><td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>Leibovitz's L-15 Medium</td><td>Life Technologies</td><td>11415-064</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン (10,000 U/ml)</td><td>Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Geneticin G-418 Sulfate</td><td>American Bioanalytical</td><td>AB05057</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Life Technologies</td><td>14025-092</td><td></td></tr><tr><td>ヒト血漿由来フィブロネクチン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0895</td><td></td></tr><tr><td>鶏卵白由来アルブミン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5378</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Life Technologies</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Hausser Bright-Line Phase Hemocytometer</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-671-6</td><td></td></tr><tr><td>塩化カルバモイルコリン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4382</td><td></td></tr><tr><td>SFLLR-NH2トリフルオロアセテート塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8701</td><td></td></tr><tr><td>フィンピペット(5-50&micro;l)</td><td>Thermo Scientific</td><td>4662090</td><td></td></tr><tr><td>BINDスキャナーシステム</td><td>X-BODY Biosciences</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>384ウェルTiO2コーティングプレート</td><td>X-BODY Biosciences</td><td>TiO-96-CM</td><td></td></tr></tbody></table>

gタンパク質共役受容体によるカリウムチャネルの調節を検出するために、ラベルフリー光学バイオセンサの使用

Use of Label-free Optical Biosensors to Detect Modulation of Potassium Channels by G-protein Coupled Receptors

イオンチャネルを選択的にイオンが原形質膜1を流すことにより、ニューロンおよび他の興奮性の細胞型の電気的特性を制御する。神経細胞の興奮性を調節するために、イオンチャネルの生物物理学的特性は、多くの場合、ヘテロメリックチャネル複合体2,3を形成するために、チャネル自体に結合するシグナル伝達タンパク質および分子によって修飾されている。生きた細胞内の相互作用の時間経過にほとんどの情報を提供しながら、チャネルおよび調節タンパク質との相互作用を調べるの伝統的なアッセイは、潜在的に、タンパク質の動作を変更し、ターゲットの生理的関連性を減少させることができ、外因性のラベルが必要です。共振の変化を検出するために、光は、X-BODYバイオサイエンスBINDスキャナシステムなどのバイオセンサー、新規ラベルフリー技術を使用して、共振波長グレーティング（RWG）光学バイオセンサーは、バイオセンサー付近の光を反映していた。このアッセイは、相対的な検出を可能にするリガンド誘導性細胞接着の変化や広がり性、毒性、増殖、および原形質膜の近くのタンパク質 - タンパク質相互作用の変化に起因するバイオセンサー表面に付着した生細胞の底部内の質量変化。 RWGバイオセンサは、光学Gタンパク質共役受容体（GPCR）、受容体チロシンキナーゼ、及び他の細胞表面受容体の活性化後の細胞の原形質膜の近くの質量の変化を検出するために使用されてきた。イオンチャネル - タンパク質相互作用におけるリガンド誘導変化はまた、このアッセイを用いて研究することができる。本論文では、スラック-B型ナトリウム活性化カリウム（K Na）の GPCRによってチャネルの調節を検出するために使用される実験手順を説明します。

スラック-Bを安定してHEK-293細胞にトランスフェクトし、コントロール非トランスフェクトHEK-293細胞を、ウェル、384ウェル、ECMコーティングされたRWGバイオセンサプレートに1,000細胞/ウェルで播種した。バイオセンサーの中心1.5ミリメートル2からのイメージは、3.75ミクロン/ピクセルの解像度（ 図1）で記録した。塊の密度勾配マップは、予め生成され、BINDスキャンソフトウェアで30分後に化合物を添加した。 BIND Viewソフトウェアは、ベースラインからのPWV PWVポスト化合物の添加を減算することにより、GPCRアゴニスト添加時のPWVシフトを決定するために利用した。 内因性ムスカリン性M1受容体アゴニストcarbamoylcholineクロリド（カルバコール）19を安定して発現するHEK-293細胞PWVにおける正の増加（ 図2A）が得られたトランスフェクトしていない対照HEK-293およびラットスラック-Bの両方に適用した。測定は、30分に...

光バイオセンサー技術は、生細胞における形質膜の近傍の質量の変化を検出し、一方、個々の細胞および細胞集団の両方において細胞性応答に従うことを可能にすることができる。このプロトコルは、このアプローチを使用して、無傷の細胞におけるGタンパク質共役受容体によりカリウムチャネルの調節の検出について説明する。

Gタンパク質共役受容体によるカリウムチャネルの調節を検出するために、ラベルフリー光学バイオセンサの使用

Ion channels control the electrical properties of neurons and other excitable cell types by selectively allowing ions to flow through the plasma ...

本実験の全体的な目的は、ラベルフリー共鳴波長グレーディング光学バイオセンサーを用い、カリウムチャネルによるGタンパク質共役受容体の変調を検出することである。この目的を達成するため、未改変のHEK 293細胞およびラットナトリウム活性化カリウムチャネルslack Bを安定的に発現させたHEK 293細胞を384ウェル光学バイオセンサープレートに播種し、一晩インキュベートする。次に、細胞膜近傍の質量のベースライン測定を行い、内因性Gタンパク質共役受容体（GPCR）のアゴニストを添加する。最終ステップとして、GPCRの活性化に起因する信号変化を測定し、この応答に対するカリウムチャネルによる変調を算出する。最終的に、この手法によりGタンパク質共役受容体とカリウムチャネル間のシグナリング機構を定量的に測定することで、神経科学および細胞シグナリングの分野における重要な問いに答えることが可能になります。共沈降法などの、チャネルとタンパク質の相互作用を調べる既存の手法と比較した本技術の主な利点は、生細胞を用いてアッセイを実施できる点にあります。また、相互作用するタンパク質の構造を変化させる可能性のある外来性ラベルを使用する必要がありません。そして最後に、生細胞内において、相互作用を実際にリアルタイムで追跡することができます。この手法はGPCRとカリウムチャネル間のシグナリングに関する知見を提供できるだけでなく、リガンド誘発性の細胞接着や伸展、毒性、増殖、遊走の変化、および原形質膜と光学バイオセンサーとの距離の変化に起因する細胞応答の研究にも利用可能です。この手法は、チャネルタンパク質に対する薬理学的剤の効果を検証するためのハイスループット法として利用できるため、多くのチャネル病を含む、イオンチャネルや受容体の異常に起因する疾患に対する新しい治療アプローチの探索にも応用できる可能性があります。タンパク質相互作用に関して、私たちはまず、生細胞内でのチャネルタンパク質の相互作用を観察できるアッセイを開発する必要があることに気づき、この手法を用いることを着想しました。384ウェルの光学バイオセンサープレートのコーティングを開始するため、二酸化チタンプレートの各ウェルに20 µLの滅菌組織培養グレード水を加え、15分間親水化させます。その後、16チャンネルピペッターを使用して、各ウェルを50 µLのリン酸緩衝生理食塩水（PBS）で1回洗浄します。次に、あらかじめ調製したフィブロネクチンのワーキングソリューションを各ウェルに20 µLずつ加え、室温で2時間インキュベートして細胞外マトリックス（ECM）を形成させます。インキュベーション後、各ウェルを50 µLのPBSで1回洗浄します。その後、調製したオバルブミンのワーキングソリューションを各ウェルに40 µLずつ加えます。卵白アルブミン結合後のブロッキングを行うため、プレートを4 °Cで一晩インキュベートします。各ウェルに50 µLのPBSを用いて、プレートを3回洗浄します。ECMコーティング済みプレートは、4 °Cで最大48時間まで保存可能です。本文のプロトコルに従って培養した、未切除のHEK 293細胞およびslack Bを安定的に発現しているHEK 293細胞の両方から、増殖培地を除去します。次に、トリプシンを加えて細胞をプレートから剥離させます。遠心分離機を用いて1000 ×gで1分間遠心し、細胞を回収します。トリプシン溶液を除去し、増殖培地で細胞を再懸濁します。ヘモサイトメーターまたは自動細胞計数器を用いて細胞濃度を測定し、インキュベーション中の蒸発による影響を最小限に抑えるため、1ウェルあたりの目的の細胞数になるよう細胞を希釈します。本実験では、増殖培地 50 µL 中に 1,000 cells/well とします。希釈した細胞を各ウェルに50 µLずつ分注し、バイオセンサー上に播種した後、細胞を増殖培地中で37 °C、5% CO₂にて一晩インキュベートした。共鳴波長グレーディング（RWG）光学バイオセンサーアッセイを準備するため、インキュベーション後、細胞から増殖培地を除去した。細胞をハンクス平衡塩溶液で1回洗浄し、その後、各ウェルに溶液を25 µLずつ加えます。バイオセンサープレートをバインドスキャナーに設置し、細胞を室温で1〜2時間平衡化させます。その間に、アッセイ中にバイオセンサープレートへ添加する目的のリガンドを入れた別の化合物プレートを準備します。これらのアッセイでは、化合物を含む溶液25 µLをバイオセンサープレートの各ウェルに添加し、合計容量を50 µLとしました。RWG光学バイオセンサーアッセイを行うには、384ウェルプレートの半分に相当するウェルA1からP12までをスキャナーシステムで測定し、ベースラインを測定します。Bind Scanソフトウェアを使用し、各ウェルの中央1.5 mmに対して1ピクセルあたり3.75 µmの最大解像度で測定してください。このベースラインスキャンには約30分かかります。次に、ウェルA1からP12の各ウェルに、化合物溶液を25 µLずつ加えます。続いて、ウェルA13からP24のベースライン測定を行います。これらのウェルのベースライン測定後、ウェルA13からP24の各ウェルに化合物溶液を25 µLずつ加えます。最終ステップとして、ウェル A1 から P12 のコンパウンド添加後の測定を行い、同様にウェル A13 から P24 まで繰り返します。アッセイデータを解析するには、Windows でベースライン測定の bind アッセイデータを開き、グリッドエディターボタンをクリックしてセル選択を有効にします。ソフトウェアはユーザーが定義した関心のある指標を算出します。プラグインを開き、セルファインダーおよびベースラインまたは関数セットパラメータを含む設定を行い、バイオセンサーの背景からセルを区別できるようにします。ベースライン測定のセルファインダーデータを含むセルマップファイルをエクスポートします。化合物添加後のデータについても、同様の手順を繰り返します。次に、ベースラインまたはプラグインを開き、ベースライン測定からセルマップをインポートします。ソフトウェアにより、バックグラウンドと化合物添加後のデータのピーク波長値（PWV）のシフトが算出されます。細胞のPWVの平均シフトを出力するには、「delta cell mean」を選択してください。その後、データをMicrosoft Excelにエクスポートして詳細な解析を行うことができます。Slack bを安定的にトランスフェクトしたHEK 293細胞およびコントロールとして未導入のHEK 293細胞を、ECMコートした384ウェルRWGバイオセンサープレートに1ウェルあたり1000細胞で播種し、化合物の添加前および添加30分後にbind scanを用いて質量の密度勾配マップを作成した。赤色で示されたソフトウェア領域は細胞として識別されたピクセルを表し、黄色の線は灰色のプレート背景から区別された細胞を示しています。化合物添加後のPWVからベースラインのPWVを差し引くことで、GPCRアゴニスト添加によるPWVの変化を決定するためにBind Viewソフトウェアが利用されました。これはカラーグラデーションで表示され、赤色はピーク波長値（PWV）の正の変化を、青色は変化なしを表しています。カルバコールに対する内因性M1ムスカリン受容体の刺激を、未導入のコントロールHEK 293細胞およびslack Bを安定発現させたHEK 293細胞の両方に適用したところ、コントロール細胞と比較してピーク波長値の正の増加が認められました。slack B導入細胞では、ピーク波長値の増加がより顕著でした。内因性GPCRであるプロテアーゼ活性化受容体1に対してアゴニスト活性を示すS-F-L-L-R NH2 トリフルオロ酢酸塩およびC末端トロンビン受容体活性化ペプチド五量体においても、未導入細胞とslack B導入細胞で異なる応答が示されました。これらの結果は、Slack Bチャネルの存在が、HEK細胞における内因性GPCRの活性化に伴い発生するPWVのシフトを有意に増大させることを示しており、チャネルタンパク質の相互作用を研究するための本アッセイの有用性を実証しています。このビデオを視聴することで、ラベルフリー光学バイオセンサーアッセイの開発および実施方法について十分に理解できるはずです。この手法を習得し、細胞と試薬を適切に準備しておけば、本手順を2日間で完了させることが可能です。播種する細胞数やリガンドのインキュベーション時間などのアッセイパラメータは、細胞株ごとに最適化する必要があることに留意してください。本手順を実施した後、RやAIなどの手法を用いて、シグナルの変化にどの特定のタンパク質が必要であるかを特定させることができます。ヒト細胞培養の取り扱いは極めて危険を伴う可能性があるため、本手順の遂行中は常にバイオセーフティキャビネット内で作業するなど、十分な予防策を講じてください。

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バイオエンジニアリング（生体工学）

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GIRKチャネルのモジュレーターを同定するための蛍光スクリーニングアッセイ

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ラベルフリーインピーダンスベースのGPCRアッセイにおけるスループット向上のためのステップワイズドージングプロトコル

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インタクトな機能的な膜タンパク質へのヌクレオチド結合をリアルタイムで測定

この研究では、組換えGタンパク質共役受容体(GPCR)上の低分子ライブラリをスクリーニングするための384ウェルプレートのハイスループット細胞内カルシウム蛍光アッセイについて説明します。標的は、牛熱ダニ由来のキニン受容体である リピケファルス・マイクロプラスが、...

組換えGタンパク質共役型受容体のハイスループットスクリーニングのための「二重付加」カルシウム蛍光アッセイ

このプロトコルは、Gタンパク質共役型受容体リガンド刺激による生HEK293細胞におけるGタンパク質活性化のリアルタイム測定のためのBRITベースのバイオセンサーの使用について説明しています。ここでは、β2-アドレナリン受容体とカンナビノイド1型受容体を例として、いくつかのGタンパク質サブタイプおよびさまざまなGPCRにわたるセンサーの効率を実証します。...

生細胞におけるGタンパク質共役受容体活性を測定するためのBRITベースのGタンパク質バイオセンサー

学ぶラベルフリー光学バイオセンサを用いたGタンパク質共役受容体によるカリウムチャネル調節の検出法。HEK293細胞を使用し、生細胞でのリアルタイムシグナル測定が可能です。神経科学と細胞シグナル伝達研究に有用です。

Gタンパク質共役受容体によるカリウムチャネルの調節を検出するために、ラベルフリー光学バイオセンサの使用

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