Name: スキージベースアセンブリ法による生体膜マイクロアレイの形成 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-08T14:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 56 s
Description: 学ぶ スキージベースアセンブリ法による生体膜マイクロアレイの作成技術。シリカビーズに脂質二重層を被覆し、蛍光顕微鏡でイメージングすることで、毒素と脂質の相互作用の結合定数を測定できる。神経科学や生物物理学研究に応用可能。

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この作品は、国立衛生研究所（R01 GM092993）からSHOの補助金によって支えられて、全米科学財団（NSFキャリア賞、DBI 0964216）、米海軍研究局（ONR）若手研究プログラムとバイオテクノロジーのためのミネソタパートナーシップ賞医療ゲノミクス。デバイス製造は、国家ナノテクノロジー基盤ネットワークを介してNSFの支援を受けてミネソタ大学のナノファブリケーションセンター（NFC）、で行った。この作品はまた、国立衛生研究所（NS048357、R 21 NS073684）、国立多発性硬化症協会（CA1060A11）、アップルバウム、ヒルトン、ピーターソンとフォード財団やMCNEILUSファミリーからMRに補助金によって支えられている。著者らは、走査型電子顕微鏡の支援のためのイラストやShailabhクマーの支援についてはHyungsoonイムに感謝したいと思います。

マイクロウェルアレイ基板の1。微細加工<ol><li>熱成長酸化物を100nmで4インチシリコンウエハで始まる。 </li><li> 30秒間、4,000 rpmで、ウェハ上に、SPR-955 0.7フォトレジストをスピン。 </li><li> 90秒間115℃のホットプレート上で焼く。 </li><li>フォトレジストを露光。 <ol><li>アレイが2ミリメートル×2ミリメートルの領域をカバーして3ミクロン周期の六角形のアレイ状に配置された1ミクロンの穴が作成されたマスクを使用してください。 </li><li> 6mmのステップサイズは200ミリジュール/ cm 2の露光を用いて、i線ステッパーでウエハを露光する。 </li></ol></li><li> 90秒間115℃のホットプレート上で焼く。 </li><li> 90秒の総開発時間のために、ウェーハ上のCD-26の2水たまりを堆積させるためにスピンデベロッパを使用して開発しています。 </li><li>超純DI水で十分に洗い流し、N 2で乾燥させます。 </li><li> Arを50 SCCM、CF 4の25 SCCM、及びCHF 3 FLOの50 SCCMで6分間反応性イオンエッチング装置、酸化物をエッチングする75トルの圧力で翼。 </li><li> C 4 F 8、SF 6、Arを40 SCCM、および14トルの圧力で流れるO 2の10 SCCMの27 SCCMの63 SCCMで2分間のICPディープトレンチ反応性イオンエッチング装置でシリコンをエッチング。 </li><li>レジストを除去するためにアセトン、メタノール、およびイソプロパノールですすぐ。 </li><li> H 2の浴の代わりSO 4：表面を洗浄するための10分間のH 2 O 2 1:1である。 </li><li>超純DI水で十分に洗い流し、N 2で乾燥させます。 </li><li> 250℃での原子層堆積によって堆積物の Al 2 O 3の1080オングストローム</li></ol> 2ポリの製造（ジメチルシロキサン）スキージ<ol><li>可能な場合は、クリーンルームで働いています。そうでなければ可能な最もクリーンな環境で動作します。 </li><li> ≥13ミリメートルの両側にプラスチック製のペトリ皿（またはその他のクリーン使い捨て容器）を取得します。 </li><li>その皿の中で、50グラムのPDMSのBASが続き、5グラムのPDMS硬化剤を注ぐEエージェント（またはほとんどペトリ皿を記入します1:10の比で何か）。使い捨てのプラスチックピペットや棒でよく混ぜる。 </li><li>気泡が混合物（約30分）から出てくるまで、真空を適用し、真空ラインでチャンバ内で混合さPDMSを配置することにより気泡を除去。 </li><li>ペトリ皿に既にされていない場合、気泡の生成を回避し、ペトリ皿中のPDMSを注ぐ。 </li><li> 50℃（短い時間のために高い熱も動作します）&gt;ホットプレート上で一晩硬化する。 </li><li>新しい/クリーンかみそりの刃で、慎重に、可能な限りクリーンな上面を保ち、矩形片約2.5×2.5センチカット。清潔なピンセットを用いてはがします。 （これはスキージ工程で使用されるエッジになります）できるだけ鋭い上端を作るために、一つの動きにカミソリの刃を押し下げて、1辺（1.5センチダウン）を切り落とす。 </li><li>次いで、アセトン、メタノール、イソプロピルアルコール、超純DI水できれいにし、クリーンな窒素ガスでブロー乾燥した。きれいなペトリ皿に保管してください。 </li></ol>小胞の3。準備<ol><li> 25 mg / mlの卵ホスファチジルコリン（PC）の脂質ストック溶液を収集し、1 mg / mlの1,2 -ジパルミトイル-sn-グリセロ-3 -ホスホエタノールアミン-N - （リサミンローダミンBスルホニル）アンモニウム塩（Rho-イソDPPE）をクロロホルムクロロホルム/メタノール中のモノシアロ​​ガングリオシドGM1の0.5 mg / mlのストック溶液（2:1 v / v）であった。 </li><li>小さなガラスバイアル中の25 mg / mlのPCの18.9μlの、0.5ミリグラムの39.6μlの/ mlのGM1との7.9μLを添加することによって97モル％のPCに、2モル％GM1及び1モル％のRho-DPPE結果混合物を作る1ミリグラム/ガラスシリンジを使用してミリリットルのRho-DPPE。 </li><li>注：Nairさんら 25の補足材料は、任意の所望の組成のベシクルを作成するために必要な脂質の量を算出するための優れたカスタマイズ可能なExcelスプレッドシートが含まれています。 </li><li>真空デシケーター中でバイアルを置き、6時間真空下でバイアルを残すことによって溶媒を除去する。 </li><li> 0.1の水溶液を作るのNaCl。乾燥した脂質フィルムを含むバイアルに、0.1M NaCl溶液0.5ミリリットルを追加します。 </li><li>水性の脂質混合物を一晩休ませることができます。 </li><li>室温でのバスソニケーターで20分間超音波処理して、小胞体分散液を作成するために簡単に説明すると渦ミックス。 </li><li> 100 nmの細孔サイズを有するポリカーボネート膜を介して小胞懸濁液を押し出す。フィルタ17Xによってベシクル懸濁液を渡します。 </li><li> 4℃でガラスバイアル中で押し出された小胞を保存</li></ol>球面支持された脂質二重層から4。の形成<ol><li> 700 nmの直径のSiO 2ビーズを収集します。ビーズは、1.4×10 11ビーズ/ mlのストック濃度で蒸留水に供給される。 </li><li> 1.5mlのエッペンドルフチューブ中の0.1 M NaClを893μlのビーズストック溶液の107μLを添加することによって1.5×10 10個のビーズ/ mlの濃度の1mlのビーズ懸濁液を調製する。 </li><li>それがよくマイルであることを保証するために、サスペンションをボルテックスXED。 </li><li>遠心分離器20分間1700×gで懸濁液を次いで、上清を捨てる。 0.1 MのNaCl 1ml中にビーズを再懸濁する。徹底的にビーズを洗浄するためにさらに2回、この手順を繰り返します。 </li><li> SSLBsを形成するために、1.5mlのエッペンドルフチューブに1 mg / mlの小胞懸濁液200μlをSiO 2ビーズ懸濁液25μlを加える。ボルテックス混合し、室温で1時間放置してみましょう。この段階でSSLB濃度が1.7×10 9 SSLBs / mlである必要があります。 </li><li> SSLBsをペレット20分間1700×gで遠心します。ペレットは、ビーズ上のRho-DPPEとの小胞の破裂をピンク色に表示されます。 </li><li> 225μlのリン酸緩衝生理食塩水（PBS）、pH値= 7.4での上清と再懸濁を捨てる。繰り返しますSSLB懸濁液から任意の未破裂小胞を除去するために4.6から4.7をさらに2回繰り返します。 </li></ol> 5。総会SSLBの配列<ol><li> 4-6 MICとの長方形片に生じたマイクロウェルアレイのクリーブウエハ一枚あたりのローウェル·アレイ。 </li><li>渦がSSLBサスペンションを混ぜ、その後、各マイクロウェルアレイ上SSLB懸濁液10μlを置く。残りのないよう、1時間SSLBsを表面に安定するようにします。 </li><li>優しく浅い皿に用意し、PBS浴に沈めた後、洗浄瓶からPBSでマイクロウェルアレイチップを洗う。 </li><li>水没しながら、ゆっくりとマイクロウェルアレイチップのPDMスキージフラッシュを置き、ゆっくりとマイクロウェル中に固定化されていないSSLBsを削除するために、表面5Xに沿ってスライドさせます。 </li><li>余分SSLBsを削除するために、PBS浴にグリップピンセットでマイクロウェルアレイチップ、ゆっくり振る。 </li><li>すぐにスキージ浴からチップを取り外し、さらに使用するまで新しいPBS浴に配置します。チップの上面がSSLBsを保存する濡れたままにしてください。 </li></ol>注：上述の組立方法は、天然の膜粒子のアレイを作成するために使用できる、ミエリンマウス脳から単離された粒子、またはフォーのようなSiO 2のビーズがサポートなしでspholipid小胞。この作業は、ウィッテンら 21及び代表的な結果を以下に示すに詳細に記載されている。 6。コレラ毒素結合アッセイ<ol><li> PBS中のウシ血清アルブミン（BSA）の2 mg / mlの溶液を調製する。 </li><li> 2 mg / mlのBSAを含むPBS中でアレクサ488コンジュゲートコレラ毒素Bサブユニットの所望の濃度の溶液を調製する。 </li><li> PBS浴からSSLBアレイチップを取り外し、拭いて、実験室を使用して、PBS溶液のほとんどを吸い取る。 SSLBアレイが水和し維持するために、チップ上だけで十分なのPBSを残す。 </li><li>非特異的結合を防ぐために、SSLBアレイチップに2 mg / mlのBSA溶液を200μlを加える。湿潤箱中で1時間休ませ。 </li><li>マイクロピペットで、SSLBアレイチップの上部から溶液200μlを削除します。 </li><li> SSLBアレイチップにコレラ毒素溶液200μlを加え、湿潤箱中で1時間の休憩をしましょう​​。 </li><li>優しく未結合のコレラ毒素を除去するための洗浄瓶からPBSでSSLBアレイチップを洗う。 </li><li>拭いて研究室を使用して過剰のPBSを吸い取る。 24ミリメートル×40ミリメートルのカバースリップでカバーチップを画像化する前に。 </li><li>関心対象のフルオロフォアのための適切なフィルターセットを用いて正立顕微鏡の画像アレイ。 </li><li> ImageJソフトウェアの自動化された粒子解析関数を使用して、アレイ内の個々のSSLBsの蛍光強度を分析する。 </li><li>指定された配列で発見SSLBsの強度をまとめたヒストグラムに個別SSLBsからの平均蛍光強度をコンパイルします。 </li></ol>

<ol><li>Drews, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+discovery%3A+A+Historical+Perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Drug discovery: A Historical Perspective.</a> Science. 287 (5460), 1960-1964 (1126).</li>
<li>Cooper, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+Membrane+Receptor+Screening+and+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Recognit%22%5BJournal%5D)">Advances in Membrane Receptor Screening and Analysis.</a> J. Mol. Recognit. 17 (4), 286-315 (2004).</li>
<li>Voskuhl, J., Ravoo, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Recognition+of+Bilayer+Besicles%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Soc.+Rev%22%5BJournal%5D)">Molecular Recognition of Bilayer Besicles.</a> Chem. Soc. Rev. 38 (2), 495-505 (2009).</li>
<li>Walde, P., Cosentino, K., Engel, H., Stano, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+Vesicles%3A+Preparations+and+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Chembiochem%22%5BJournal%5D)">Giant Vesicles: Preparations and Applications.</a> Chembiochem. 11 (7), 848-865 (1002).</li>
<li>Castellana, E. T., Cremer, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solid+Supported+Lipid+Bilayers%3A+From+Biophysical+Studies+to+Sensor+Design%5BTitle%5D)+AND+%22Surf.+Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">Solid Supported Lipid Bilayers: From Biophysical Studies to Sensor Design.</a> Surf. Sci. Rep. 61 (10), 429-444 (2006).</li>
<li>Johnson, J. M., Ha, T., Chu, S., Boxer, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+Steps+of+Supported+Bilayer+Formation+Probed+by+Single+Vesicle+Fluorescence+Assays%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Early Steps of Supported Bilayer Formation Probed by Single Vesicle Fluorescence Assays.</a> Biophys. J. 83 (6), 3371-3379 (2002).</li>
<li>Krysinski, P., Zebrowska, A., Michota, A., Bukowska, J., Becucci, L., Moncelli, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tethered+Mono-+and+Bilayer+Lipid+Membranes+on+Au+and+Hg%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Tethered Mono- and Bilayer Lipid Membranes on Au and Hg.</a> Langmuir. 17 (13), 3852-3857 (2001).</li>
<li>Li, L., Wang, H. F., Cheng, J. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Coherent+anti-Stokes+Raman+Scattering+Imaging+of+Lipid+Distribution+in+Coexisting+Domains%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Quantitative Coherent anti-Stokes Raman Scattering Imaging of Lipid Distribution in Coexisting Domains.</a> Biophys. J. 89 (5), 3480-3490 (2005).</li>
<li>Richter, R. P., Brisson, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Following+the+Formation+of+Supported+Lipid+Bilayers+on+Mica%3A+A+Study+Combining+AFM%2C+QCM-D%2C+and+Ellipsometry%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Following the Formation of Supported Lipid Bilayers on Mica: A Study Combining AFM, QCM-D, and Ellipsometry.</a> Biophys. J. 88 (5), 3422-3433 (2005).</li>
<li>Dahlin, A., Zäch, M., Rindzevicius, T., Käll, M., Sutherland, D. S., Höök, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localized+Surface+Plasmon+Resonance+Sensing+of+Lipid-Membrane-Mediated+Biorecognition+Events%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Localized Surface Plasmon Resonance Sensing of Lipid-Membrane-Mediated Biorecognition Events.</a> J. Am. Chem. Soc. 127 (14), 5043-5048 (2005).</li>
<li>Kraft, M. L., Weber, P. K., Longo, M. L., Hutcheon, I. D., Boxer, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+Separation+of+Lipid+Membranes+Analyzed+with+High-Resolution+Secondary+Ion+Mass+Spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Phase Separation of Lipid Membranes Analyzed with High-Resolution Secondary Ion Mass Spectrometry.</a> Science. 313 (5795), 1948-1951 (2006).</li>
<li>Groves, J. T., Boxer, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropattern+Formation+in+Supported+Lipid+Membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Acc.+Chem.+Res%22%5BJournal%5D)">Micropattern Formation in Supported Lipid Membranes.</a> Acc. Chem. Res. 35 (3), 149-157 (2002).</li>
<li>Bally, M., Bailey, K., Sugihara, K., Grieshaber, D., Vörös, J., Stadler, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liposome+and+Lipid+Bilayer+Arrays+Towards+Biosensing+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Liposome and Lipid Bilayer Arrays Towards Biosensing Applications.</a> Small. 6 (22), 2481-2497 (2010).</li>
<li>Groves, J. T., Dustin, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Supported+Planar+Bilayers+in+Studies+on+Immune+Cell+Adhesion+and+Communication%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Supported Planar Bilayers in Studies on Immune Cell Adhesion and Communication.</a> J. Immunol. Methods. 278 (1-2), 19-32 Forthcoming.</li>
<li>Yang, T. L., Jung, S. Y., Mao, H. B., Cremer, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+Phospholipid+Bilayer-Coated+Microchannels+for+On-Chip+Immunoassays%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Fabrication of Phospholipid Bilayer-Coated Microchannels for On-Chip Immunoassays.</a> Anal. Chem. 73 (2), 165-169 (2001).</li>
<li>Groves, J. T., Ulman, N., Boxer, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+Fluid+Lipid+Bilayers+on+Solid+Supports%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Micropatterning Fluid Lipid Bilayers on Solid Supports.</a> Science. 275 (5300), 651-653 (1997).</li>
<li>Hovis, J. S., Boxer, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning+and+Composition+Arrays+of+Supported+Lipid+Bilayers+by+Microcontact+Printing%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Patterning and Composition Arrays of Supported Lipid Bilayers by Microcontact Printing.</a> Langmuir. 17 (11), 3400-3405 (2001).</li>
<li>Yee, C. K., Amweg, M. L., Parikh, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Photochemical+Patterning+and+Refunctionalization+of+Supported+Phospholipid+Bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Direct Photochemical Patterning and Refunctionalization of Supported Phospholipid Bilayers.</a> J. Am. Chem. Soc. 126 (43), 13962-13972 (2004).</li>
<li>Kelly, C. V., Craighead, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanofabrication+for+the+Analysis+and+Manipulation+of+Membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Nanofabrication for the Analysis and Manipulation of Membranes.</a> Ann. Biomed. Eng. 40 (6), 1356-1366 (2012).</li>
<li>Wittenberg, N. J., Johnson, T. W., Oh, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Density+Arrays+of+Submicron+Spherical+Supported+Lipid+Bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">High-Density Arrays of Submicron Spherical Supported Lipid Bilayers.</a> Anal. Chem. 84 (19), 8207-8213 (2012).</li>
<li>Wittenberg, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Facile+Assembly+of+Micro-+and+Nanoarrays+for+Sensing+with+Natural+Cell+Membranes%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Facile Assembly of Micro- and Nanoarrays for Sensing with Natural Cell Membranes.</a> ACS Nano. 5 (9), 7555-7564 (2011).</li>
<li>Stamou, D., Duschl, C., Delamarche, E., Vogel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-Assembled+Microarrays+of+Attoliter+Molecular+Vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Angew.+Chem.+Int.+Ed%22%5BJournal%5D)">Self-Assembled Microarrays of Attoliter Molecular Vessels.</a> Angew. Chem. Int. Ed. 42 (45), 5580-5583 (2003).</li>
<li>Kalyankar, N. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arraying+of+Intact+Liposomes+into+Chemically+Functionalized+Microwells%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Arraying of Intact Liposomes into Chemically Functionalized Microwells.</a> Langmuir. 22 (12), 5403-5411 (2006).</li>
<li>Dahlin, A. B., Jonsson, M. P., Höök, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+Self-Assembly+of+Single+Lipid+Vesicles+in+Nanoplasmonic+Apertures+in+Gold%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Specific Self-Assembly of Single Lipid Vesicles in Nanoplasmonic Apertures in Gold.</a> Adv. Mater. 20 (8), 1436-1442 (2008).</li>
<li>Nair, P. M., Salaita, K., Petit, R. S., Groves, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+Patterned+Supported+Lipid+Membranes+to+Investigate+the+Role+of+Receptor+Organization+in+Intercellular+Signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Using Patterned Supported Lipid Membranes to Investigate the Role of Receptor Organization in Intercellular Signaling.</a> Nat. Protoc. 6 (4), 523-539 (2011).</li>
<li>Kuziemko, G. M., Stroh, M., Stevens, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholera+Toxin+Binding+Affinity+and+Specificity+for+Gangliosides+Determined+by+Surface+Plasmon+Resonance%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Cholera Toxin Binding Affinity and Specificity for Gangliosides Determined by Surface Plasmon Resonance.</a> Biochemistry. 35 (20), 6375-6384 (1996).</li>
<li>Moran-Mirabal, J. M., Edel, J. B., Meyer, G. D., Throckmorton, D., Singh, A. K., Craighead, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micrometer-Sized+Supported+Lipid+Bilayer+Arrays+for+Bacterial+Toxin+Binding+Studies+Through+Total+Internal+Reflection+Fluorescence+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Micrometer-Sized Supported Lipid Bilayer Arrays for Bacterial Toxin Binding Studies Through Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy.</a> Biophys. J. 89 (1), 296-305 (2005).</li>
<li>Shi, J. J., Yang, T. L., Kataoka, S., Zhang, Y. J., Diaz, A. J., Cremer, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GM1+Clustering+Inhibits+Cholera+Toxin+Binding+in+Supported+Phospholipid+Membranes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">GM1 Clustering Inhibits Cholera Toxin Binding in Supported Phospholipid Membranes.</a> J. Am. Chem. Soc. 129 (18), 5954-5961 (2007).</li>
<li>Gill, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Arrangement+of+Subunits+in+Cholera+Toxin%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">The Arrangement of Subunits in Cholera Toxin.</a> Biochemistry. 15 (6), 1242-1248 (1021).</li>
<li>Weng, K. C., Kanter, J. L., Robinson, W. H., Frank, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluid+Supported+Lipid+Bilayers+Containing+Monosialoganglioside+GM1%3A+A+QCM-D+and+FRAP+study%5BTitle%5D)+AND+%22Colloid+Surface+B%22%5BJournal%5D)">Fluid Supported Lipid Bilayers Containing Monosialoganglioside GM1: A QCM-D and FRAP study.</a> Colloid Surface B. 50 (1), 76-84 (1016).</li>
<li>Walt, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibre+Optic+Microarrays%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Soc.+Rev%22%5BJournal%5D)">Fibre Optic Microarrays.</a> Chem. Soc. Rev. 39 (1), 38-50 (2010).</li>
<li>Bake, K. D., Walt, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplexed+Spectroscopic+Detections%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Multiplexed Spectroscopic Detections.</a> Annu. Rev. Anal. Chem. 1 (1), 515-547 (2008).</li>
<li>Kundu, J., Levin, C. S., Halas, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-Time+Monitoring+of+Lipid+Transfer+Between+Vesicles+and+Hybrid+Bilayers+on+Au+Nanoshells+Using+Surface+Enhanced+Raman+Scattering+%28SERS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Real-Time Monitoring of Lipid Transfer Between Vesicles and Hybrid Bilayers on Au Nanoshells Using Surface Enhanced Raman Scattering (SERS).</a> Nanoscale. 1 (1), 114-117 (2009).</li>
<li>Junesch, J., Sannomiya, T., Dahlin, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+Properties+of+Nanohole+Arrays+in+Metal-Dielectric+Double+Films+Prepared+by+Mask-on-Metal+Colloidal+Lithography%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Optical Properties of Nanohole Arrays in Metal-Dielectric Double Films Prepared by Mask-on-Metal Colloidal Lithography.</a> ACS Nano. 6 (11), 10405-10415 (2012).</li>
<li>Wu, M., Holowka, D., Craighead, H. G., Baird, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+Plasma+Membrane+Compartmentalization+with+Patterned+Lipid+Bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Visualization of Plasma Membrane Compartmentalization with Patterned Lipid Bilayers.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101 (38), 13798-13803 (2004).</li>
<li>Hatzakis, N. S., Bhatia, V. K., Larsen, J., Madsen, K. L., Bolinger, P. Y., Kunding, A. H., Castillo, J., Gether, U., Hedegard, P., Stamou, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+Curved+Membranes+Recruit+Amphipathic+Helices+and+Protein+Anchoring+Motifs%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">How Curved Membranes Recruit Amphipathic Helices and Protein Anchoring Motifs.</a> Nat. Chem. Biol. 5 (11), 835-841 (2009).</li>
<li>Roizard, S., Danelon, C., Hassaine, G., Piguett, J., Schulze, K., Hovius, R., Tampe, R., Vogel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+G-Protein-Coupled+Receptors+in+Cell-Derived+Plasma+Membranes+Supported+on+Porous+Beads%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Activation of G-Protein-Coupled Receptors in Cell-Derived Plasma Membranes Supported on Porous Beads.</a> J. Am. Chem. Soc. 133 (42), 16868-16874 (2011).</li>
</ol>

著者らは、開示することなく、競合する金融利害関係はありません。

本研究では、支持された脂質二分子層で被覆された単分散SiO 2のビーズは、脂質二重層または基板表面にリガンドを標的化するための必要なしにマイクロウェルアレイに配列することができ、アレイは、毒素-脂質相互作用を特徴づけるために使用することができることを示している。我々はCTx/GM1結合に計算された解離定数は冬らの以前の報告。、脂質でコーティングしたビーズのコロイドアセンブリは約の解離定数を計算するために使用したと、文学の中の値の広い格差を考えると、好意的に比較30 nMの。ヒルWaud結合モデルにデータを適合することにより、我々はCTx/GM1相互作用はこれまでの報告28と一致している可能性が高い多価であることを決定した。のCTX B（ガングリオシド結合）サブユニットは、GM1分子29を結合することができる5つのユニットのそれぞれと、五量体として存在する。従って、それは所与の差分、複数のサブユニットが結合されてもよいことは驚くべきことではないのSLB 30におけるGM1のusiveモビリティ。 <p class="jove_...

脂質二重膜は、本質的に必須の構造である。携帯形質膜や細胞小器官の膜は、生活のために必要である分子の数を組み込んだ脂質二重層で構成されています。多くの生命維持プロセスは、細胞の表面に発生するか、脂質二重膜と結合する分子によって媒介される。実際には、多くの医薬品対象プロセスまたは分子は、1,2または膜上に見出される。これは、分析的に、膜表面で起こる化学反応または非共有結合事象のようなプロセスを調査することが必要である。天然の膜は、単離することが困難および/またはセンサとのインタフェースとすることができるので、多くの研究者が分析研究を実施するために簡略化されたモデル膜を用いる。モデル膜システムの数は、数十ナノスケール寸法を有するリポソーム3,4に直径数百ミクロンにすることができる巨大な小胞に至るまで、文献に記載されている。 ALTERNatively、固体支持体上に堆積された平面脂質二重層は、 すなわち 、異なる表面の数に形成することができ、広く、生物物理学的、生化学的、および分析アプリケーション5で使用されているが、脂質二重層（のSLB）を支持した。電気的または光学材料でのSLBとを連結すると、さまざまな分析技術を利用して膜生化学および生物物理学の研究を可能にします。蛍光顕微鏡6、7電気化学、光学分光8、走査型プローブ顕微鏡法9、表面プラズモン共鳴10、および質量分析11は、すべてのSLBの構造と特性を研究するために使用されてきた。 SLBアレイは多重アッセイ12,13のためのセンサーの設計に追加の汎用性を提供します。他のアプリケーションは、免疫細胞14の間に形成される接合を模倣するために、SLBアレイを使用しています。 SLBアレイの製造方法は、microfluから変化しているIDICは、隣接のSLBパッチ間の物理的な障壁を用いるものと15に近づく。16他のグループが印刷方法17を使用していた、光化学パターニング18と、様々なナノエンジニアリングは、SLBアレイを作成するために19に近づく 。 本論文では、添付のビデオでは、マイクロウェル20の順序付き配列にSLBでコーティングされたSiO 2ビーズを堆積させることにより、SLBアレイを形成する方法を示しています。私たちは、球状の支持された脂質二重層（SSLBs）などのSLBでコーティングされたSiO 2ビーズを参照してください。この技術は、我々はまた、例の結果を示し、そこから自然発生源21に由来リン脂質小胞と生体膜の配列を作成した初期の研究の延長である。生体粒子または小胞を配列するための他の方法は、小胞の表面上に含まれる相補的なリガンドと会合する表面上の特定の標的化リガンドのパターンに頼ってきた。例としては、ビオチンを含んでアビジン会合22,23及びDNAハイブリダイゼーションスキーム24。我々のアプローチは、必要のない標的化または認識部分を有するマイクロウェルアレイを必要とします。 SSLBsのサイズは、低多分散性を持ったSiO 2ビーズ支持体の直径によって定義されます。 SSLBの直径よりも大きいだけに、マイクロウェルの直径を調整することによって、単一SSLBは、各マイクロウェルに落ち着く。ポリ（ジメチルシロキサン）（PDMS）スキージはその後、表面からマイクロウェル中に固定化されていないすべてのSSLBsが削除されます。得られたSSLBマイクロウェルアレイは、3μmの中心間間隔および六角形の周期性を有する高密度（〜10 5 SSLBs個/ mm 2）を有する。直列異なる脂質組成物でSSLBsを堆積させることによって、それがランダムに配置SSLBsを有する多成分アレイを作成することができる。 SSLBアレイの感知能力を実証するために、我々はSSLBsに組み込まガングリオシド（GM1）でコレラ毒素（CTX）の相互作用を用いる。ととも​​に天然の膜粒子は、我々は2つ​​の異なる種類の細胞からの膜材料を含む多成分アレイにおいて、細胞特異的脂質を検出することができた。

<table><tbody><tr><td>4インチシリコンウェーハ</td><td>大学ウェーハ</td><td>425</td><td></td></tr><tr><td>Shipley MEGAPOSIT SPR955-CM 0.7 フォトレジスト</td><td>MicroChem</td><td>SPR955-CM</td><td></td></tr><tr><td>Shipley MICROPOSIT CD-26 開発者</td><td>MicroChem</td><td>CD-26</td><td></td></tr><tr><td>i-line ステッパー</td><td>キヤノン</td><td>2500 i3ステッパー</td><td></td></tr><tr><td>ビジョン320 反応性イオンエッチング</td><td>アドバンスド真空</td><td>ビジョン320 RIE</td><td></td></tr><tr><td>深部トレンチ反応性イオンエッチング</td><td>プラズマサーム</td><td>SLR-770</td><td></td></tr><tr><td>原子層形成システム</td><td>ケンブリッジ ナノテック</td><td>サバンナ</td><td></td></tr><tr><td>ダウ コーニング シルガード 184 ポリ(ジメチルシロキサン)キット</td><td>エルスワース 接着剤</td><td>184 SIL エラストキット 0.5KG</td><td></td></tr><tr><td>卵 ホスファチジルコリン</td><td>アバンティ 極性脂質</td><td>840051C</td><td></td></tr><tr><td>1,2-ジパルミトイル-SN-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-<>N-(リサミンローダミンBスルホニル)アンモニウム塩</td><td>アバンティ極性脂質</td><td>810158C</td><td></td></tr><tr><td>モノシアロガングリオシド GM1</td><td>アバンティ極性脂質</td><td>860065P</td><td></td></tr><tr><td>シリカビーズ</td><td>バングスラボラトリ</td><td>ーズ SS03N/4666</td><td>ビーズ容器のパッケージには、ビーズの直径が900nmと記載されています。しかし、光散乱と電子顕微鏡の結果、ビーズの直径は約700nmであることがわかりました。</td></tr><tr><td>コレラ毒素Bサブユニット、Alexa 488-コンジュゲート</td><td>分子プローブ</td><td>C-34775</td><td></td></tr><tr><td>、抗オリゴデントロサイト抗体IgM O4、NorthernLights 557コンジュゲート</td><td>R&D Systems</td><td>NL1326R</td><td></td></tr><tr><td>FM1-43</td><td>Molecular Probes</td><td>T-3136</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf MiniSpin 遠心分離機</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-401-09</td><td></td></tr></tbody></table>

スキージベースアセンブリ法による生体膜マイクロアレイの形成

Formation of Biomembrane Microarrays with a Squeegee-based Assembly Method

脂質二分子膜は、細胞の原形質膜を形成し、細胞内オルガネラの境界を画定する。自然界では、これらの膜は、脂質の多くの種類の不均質混合物である膜結合タンパク質を含んでおり、糖質が飾られています。いくつかの実験では、天然のものから、膜の脂質二重層の生物物理学的又は生化学的特性を分離することが望ましい。そのような場合には、このような巨大ベシクル、リポソームまたはサポートされている脂質二重層（のSLB）などのモデルシステムの使用を求める。のSLBのアレイは、アプリケーションを検出し、細胞 - 細胞相互作用を模倣するために特に魅力的である。ここでは、SLBアレイを形成するための新たな方法を説明します。サブミクロン径のSiO 2ビーズが第1の球面のSLB（SSLBs）を形成する脂質二重層で被覆されている。次いで、ビーズを微細加工サブミクロン径のマイクロウェルのアレイに堆積される。別れるながら調製技術は、基板表面を洗浄するために「スキージ」を使用しマイクロウェルに落ち着いてきSSLBsの後ろグラム。この方法は、マイクロウェル基板のない化学修飾、またSSLB上の任意の特定の標的化リガンドを必要としません。ウェルの直径は、ビーズの直径よりもわずか大きくなるようにチューニングされているので、マイクロウェルは単一のビーズによって占有されている。残りは空のままで一般的には、井戸のより多くの75％は、占有されている。緩衝液中でSSLBアレイは、より大きな一週間の長期安定性を示す。我々は、ガングリオシドGM1とコレラ毒素の相互作用を特徴付けることによって実証する、SSLBs複数種類のシリアル堆積によって単一のアレイに配置することができ、およびアレイは、感知のために使用することができる。我々はまた、細胞源からビーズ支持体と生体膜なしのリン脂質小胞は、同じ方法で配列することができ、細胞特異的膜脂質を同定することができることを示している。

SiO 2のビーズは、リン脂質、蛍光脂質およびガングリオシドなどのような他の脂質からなる小胞の溶液と混合すると、図1aに模式的に示すように、小胞は、SSLBsを形成するためにSiO 2をビーズ表面上で破裂。 SSLBsを洗浄した後、SSLB溶液の滴をマイクロウェルアレイ上に配置し、ビーズを表面に沈降させる。 （ 図1B1）これは、 図1b2とに示されているリン脂質小胞または天然の膜粒子の懸濁液を用いても行うことができる。マイクロウェルアレイ基板に吸着したリン脂質小胞の蛍光画像を図1B3に示されている。その後のPDMSスキージは、任意のSSLBs（ 図1C1）、小胞や天然膜粒子マイクロウェルに沈降しなかった（ 図1C2）を除去するために表面をそっとスライドさせる。これは、各々にSSLB配列になりマイクロウェルは、ほとんど1 SSLB（ 図1D1）または複数の小...

サポートされている脂質二重層と天然膜粒子は、細胞膜の特性を近似することができると分析種々の戦略に組み込むことが好都合システムである。ここでは、サポートされている脂質二分子膜でコーティングされたSiO 2ビーズ、リン脂質小胞または天然の膜粒子からなるマイクロアレイを調製するための方法を実証する。

Lipid bilayer membranes form the plasma membranes of cells and define the boundaries of subcellular organelles. In nature, these membranes are ...

本手順の目的は、簡便な調製方法を用いてバイオメンブレンマイクロアレイを作成することです。まず、シリカビーズに脂質二重層膜をコーティングします。次に、脂質コーティングしたビーズをシリコンマイクロウェル基板上に配置します。第3の手順は、ポリメチルシロキサン製スクイージーを用いて、マイクロウェル外にあるビーズを除去することです。最終ステップでは、蛍光顕微鏡を用いて脂質コートビーズアレイのイメージングを行います。最終的に、この手法はアレイイメージングアプローチを用いて毒素と脂質の相互作用における結合定数を決定するために利用できます。この手法を用いて、球状の支持脂質二重層および細胞由来の天然膜粒子の配列を作成することができます。既存の手法と比較した本技術の主な利点は、マイクロウェルの作製以外に、空間的に定義されたバイオ膜配列を作成するための基板または脂質膜への化学的な修飾を必要としない点にあります。本技術の応用範囲は、ナノメートルサイズの金属ホール配列に基づいた表面プラズモン共鳴を用い、脂質とタンパク質の相互作用をラベルフリーで検出することまで拡張可能です。この手法は脂質とタンパク質の相互作用に関する知見を得るのに有用ですが、細胞の焦点接着の研究など他の系にも適用可能です。マイクロウェルアレイおよびスクイージー調製の詳細は、テキストプロトコルに記載されています。このビデオでは、まず小胞の調製から開始します。まず、小さなガラスバイアルの中で、小胞用の構成脂質を混合します。この溶液中には合計0.5 mgの脂質が含まれています。混合物を真空デシケーター内で6時間乾燥させます。次に、0.1 Mの塩化ナトリウム溶液を調製し、乾燥した脂質に0.5 mL添加します。混合物を室温で一晩インキュベートします。翌日、混合物をボルテックスしてベシクルを懸濁させます。次に、バスを用いて室温で20分間、混合物を超音波処理します。超音波処理後、懸濁液を100 nanometerのポリカーボネート膜フィルターでエクストルージョンします。懸濁液をエクストルージョンフィルターで計17回通過させます。その後、エクストルージョン後のベシクルをガラスバイアルに入れ、4°Cで保存します。まず、直径700 nmの二酸化ケイ素ビーズを使用します。0.1 M 塩化ナトリウム中で150億個のビーズの懸濁液を作成します。懸濁液をボルテックスした後、1700 Gsで20分間遠心分離し、上清を捨てます。さらに1 mLの塩類溶液でビーズを再懸濁し、再び20分間遠心分離することで、洗浄を繰り返します。その後、この工程を3回繰り返し、球状支持脂質二重層（SSB）を形成します。25 µLの二酸化ケイ素ビーズ懸濁液を、前節で調製した200 µLのベシクル懸濁液と混合します。混合物をボルテックスし、室温で1時間インキュベートした後、1700 ×gで20分間遠心分離します。上清を捨てます。粗DPPEがビーズ上に存在する破裂した小胞により、ペレットはピンク色になります。これをpH 7.4のPBS 225 µLで再懸濁します。未破裂のベシクルを除去し、SSBの作製を完了させるため、遠心分離とResus懸濁のステップを2回繰り返します。マイクロウェルアレイのウェハーを、4〜6個のアレイを含む長方形の断片に分割します。次に、前セクションで作成したSSLB懸濁液をボルテックスし、各マイクロウェルアレイに10 µLずつ分注します。その後、SSBが沈降するまで1時間待ちます。アレイチップをPBSで穏やかに洗浄し、アレイをPBSに浸した状態で、チップの表面をスクイージーで5回滑らせます。これにより、マイクロウェルの外側にあるSLPが除去されます。次に、各アレイチップをピンセットで掴み、PBSを軽く振り落とします。その後、新しいPBSバスに移します。チップの上面は常に濡れた状態を維持してください。チップをバスから取り出し、ラボワイプでPBSの大部分を拭き取ります。アレイの水分を維持するのに十分な量のPBSを残してください。次に、非特異的結合をブロックするために、200 µLのBSA溶液をアレイに加えます。アレイを1時間インキュベートしてください。その後、加湿ボックス内でマイクロピペットを用いてBSAを除去し、200 µLのコレラトキシン溶液を加えます。その後、アレイを加湿チャンバーに戻します。さらに1時間待機した後、アレイをPBSで洗浄し、余分なPBSをラボワイプで吸い取ります。次に、アレイチップを標準的な顕微鏡スライドグラス上に配置し、24 by 40 millimeterの正方形カバーガラスをアレイに取り付けて、イメージングに進みます。画像解析はImageJを用いて行います。自動粒子解析機能を使用し、各アレイについて、個々のSSBの平均強度をヒストグラムとしてまとめます。上述の手法を用いた結果、アレイ上の100 µm四方の領域に936個のSSBが確認されました。保存から1週間後に占有率データが算出され、SSLBの蛍光強度のヒストグラムが作成されました。同一のアレイを同様の方法で再解析したところ、蛍光強度およびアレイの占有率に変化は見られませんでした。また、概説した手法を用いることで、異なる識別マーカーを持つ異なるSSBの逐次的な堆積も可能でした。2回目のSSBは、1回目のSSBの堆積濃度の10分の1の濃度で堆積させました。ある実験における両方のマーカーのオーバーレイを示します。様々な濃度のGM oneを含むSSBを用いてアレイを作成し、一定濃度のコレラトキシンに曝露させました。平衡解離定数を決定するために、その逆の操作も行いました。GM oneについて。コレラトキシン結合アレイは、髄鞘粒子で作製されたこのアレイのように、天然の生体膜からも作製できます。これは親油性蛍光色素FM 1 43で標識されています。脂質ラフトには、コレステロールやGM1などのガングリオシドが豊富に含まれています。したがって、Alexa 488が接合されたコレラ毒素はリピドラフトマイクロアレイに強く結合しますが、対照的に、蛍光標識されたストリップ化Adenはこれらのアレイに結合しません。アレイは、250 µmのチャネルを持つマイクロ流体チップを用いて、髄鞘とリピドラフトをマイクロウェルに導入することで作製されました。抗オリゴデンドロサイトIgMで標識され、髄鞘に含まれるSスルフィドが標識されましたが、リピドラフトは標識されませんでした。脂質ビークルコートビーズの調製が完了した後、この手法を適切に実施すれば、天然膜粒子アレイを1時間で調製することが可能です。バイオ分子相互作用のラベルフリーセンシングには、ナノホール表面プラズモン共鳴などの他の手法も利用できます。このビデオを視聴することで、脂質二重層コートビーズと天然膜粒子を用いたバイオ膜アレイの作製方法について十分に理解することができます。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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この記事では、我々は、自動走査型共焦点顕微鏡を用いて表面に固定化された個々のDNA分子からのトレースをFRETの取得方法について説明します。...

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オンチップ光重合技術を用いた高分子マイクロアレイの形成の説明。原子間力顕微鏡、水接触角の測定値を使用して高スループット表面特性、飛行二次イオン質量分析法と細胞接着アッセイのX線光電子分光法と時間も記載されている。...

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学ぶ スキージベースアセンブリ法による生体膜マイクロアレイの作成技術。シリカビーズに脂質二重層を被覆し、蛍光顕微鏡でイメージングすることで、毒素と脂質の相互作用の結合定数を測定できる。神経科学や生物物理学研究に応用可能。

スキージベースアセンブリ法による生体膜マイクロアレイの形成

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