Name: ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 56 s
Description: 学ぶラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定法。閉胸式肺生体顕微鏡法を用いて、がん転移の血流動態をリアルタイムで高解像度に解析する革新的な手法です。がん治療戦略の改善に貢献します。

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ティモシー・マクマホン博士とSiqing Shan博士の科学的な助言に感謝します。プレゼンターは、デビッド・キルシュ博士とパトリシア・スティーグ博士に、それぞれ蛍光標識されたマウス肉腫細胞と転移性MDAMB-231細胞の寛大な贈り物に感謝します。この研究は、米国国防高等研究計画局(DARPA)プライム賞番号N66001-10-C-2134と、デューク大学医療センターの放射線腫瘍学部門から一部資金提供を受けました。

注：このプロトコルで説明されているすべての動物関連する手順は、以前にデューク大学施設内動物管理使用委員会（DUIACUC）によって承認されている。 1.がん細胞培養およびインジェクション<ol><li>蛍光標識された転移性癌細胞（ 例えば 、ヒトMDAMB231-GFP乳癌細胞、博士パトリシアシュテーク、NCIからの贈り物、とYFP標識マウス肉腫細胞、デビッドキルシュ、デューク大学医療センター、放射線腫瘍科からの贈り物）を育成（10％ウシ胎児血清および1％ペニシリン/ストレプトアビジン、例えばダルベッコ改変イーグル培地（DMEM））適切な培養培地中で、37℃で約90％コンフルエントになるまで。 </li><li>トリプシン処理細胞を、カウント、PBSでそれらを2回洗浄し、次いで27 G針を注射器を用いて、動物あたり5百万個の細胞で、イソフルラン麻酔10週齢の雌ヌードラットの尾静脈へ注入。外科レベルanesthesとりわけ、トーピンチに対する反応の欠如によって確認される。 </li></ol>マイクロCTを使用して、転移の2モニタリング<ol><li>上記転移直径が直径約2mmの存在を検出するために、マイクロCT /マイクロ照射装置を用いて週に一度、ラットを調べる。以前12に記載のように、マイクロCTは、委託されている。 <ol><li>イメージングの前に3％のイソフルラン麻酔の対象とラット。つま先のピンチによる深い麻酔を確認してください。 </li><li>麻酔の発症後、すぐに画像化チャンバ内イメージングクレードルにラットを転送し、2.5から3パーセントにイソフルランと空気の混合物にノーズコーンを経由して接続します。イメージングクレードルの外部に位置制御とレーザー区切り文字を使用して、その胸部がマイクロCTスキャナの光子ビームに配置されている方法で、クレードルにラットの位置を調整します。ガンマ線から調査員を遮蔽するために、イメージング室のドアが閉じていることを確認してください。 </li><li>再び用いて動物の位置を制御するカラービデオカメラ。低解像度のCT撮影テストの実行を実行し、胸腔のXYZ寸法に視野を調整するために、得られる画像を使用しています。 </li><li>イメージラットの40のkVpで2ミリメートルのAlフィルタを使用して、胸郭、2.5ミリアンペア、及び7 fpsで0.008ボクセルとそのケージに動物を返す。 1動物の画像化はしないより15以上または20分を取る必要があります。完全に回復するまで、他の動物の会社に手術を受けた動物を返さないでください。それは胸骨横臥位を維持するのに十分な意識を取り戻したまでは無人の動物を放置しないでください。 </li><li>胸腔内の血管では説明できない、比較的放射線不透過オブジェクトの出現によって転移を確認する（ 図1A） </li></ol></li></ol> 3.ウィンドウ商工手術<ol><li>麻酔、バイタルサイン及び尾静脈カテーテル法<ol><li>転移性疾患の存在で動物を選択します。腹腔dで動物に注入する50mg / kgのペントバルビタールのOSE。先に進む前に、つま先のピンチによって外科レベルの麻酔を確認してください。 注：麻酔プロトコルは、それぞれの実験のセットアップに一致させる必要があります。容易な再​​投薬の選択肢を提供しながらペントバルビタールは、長い手順のための深い麻酔を誘導するために、長時間作用型麻酔薬として、ここで選ばれました。しかし、過剰投与の動物の損失はペントバルビタール麻酔に共通の問題である。ペントバルビタールよりも大きな程度に自律神経反射神経を保持する別のオプションは、そのようなしかし、単一の再投与サイクルのために許可しキシラジンまたはメデトミジン、などの鎮静剤と​​の組み合わせでケタミンです。 </li><li>クリッパーを使用して、転移性疾患を有する、頸部領域における本体の側面に動物を剃る。皮膚から残りのすべての抜け毛を拭き取ってください。抜け毛を除去した後、乾燥するのを防ぐために、眼に獣医軟膏を適用する。 注：無胸腺ヌードラットはrequiが残留髪を持っていること外科手術手順に進む前にRES除去。それは外科的手技およびイメージングを妨げる可能性として、それは、徹底的にすべての毛を除去することは非常に重要です。 </li><li> 37℃の水を循環加熱パッド上に配置された金属板上に仰臥位で動物を修正。フロントと後肢四肢をテープでプレートに固定されている。 注：それは制御し、外科的および実験手順を通じて、パルス酸素濃度計を使用して、このような心拍数と動脈血酸素化などのバイタルサインを記録するのに便利です。 </li></ol></li><li>気管挿管<ol><li>動物の換気のためにカテーテルを配置するために、最初の気管に縦筋系の腹の中央分離することにより横方向子宮頸部皮膚切開を行う。 </li><li>気管の背側を通して縫合糸の通路を作成するには、鋭いピンセットを用いて繰り返し開閉·ツー·クローズアクションを使用します。 </li><li> T上の気管内に小さな切開を作る彼腹側、およそ第二及び第三の気管輪の間に、半円形を超えない。気管カテーテルの固定を可能にするために、背側表面に露出した気管の十分長い部分のままにしておきます。 </li><li>気管内に2.5〜3.0ミリメートル &quot;Y&quot;気管カニューレを挿入し、4-0モノフィラメント縫合糸で締めます。正の肺動脈圧を維持するために、カニューレは水の6センチメートルで満たされている有効期限のダクトに接続され、ボトルに圧力循環人工呼吸器に接続されていることを確認してください。実験的にそれ以外の目的のない限り、流入ガスは、100％酸素でなければなりません。 </li><li> 25-27 G針でカテーテルを挿入し、ラットの尾静脈のいずれかに、ヘパリン化生理食塩水で満たされ、テープで固定します。 注：繰り返し尾静脈にヘパリン処理生理食塩水を少量注入することにより、作業中は尾静脈カテーテルの開存性を確認してください。気管の指導すなわちまた、オロ·気管挿管、麻酔した動物の口を経由し、気管に喉頭過去のチューブは、ここで説明されている気管切開手順に可能な代替である。しかし、この方法は、気管への損傷を避けるために、特別な訓練と経験を必要とし、また、食道の偶発的カニューレ挿入を排除する。 </li></ol></li><li>肺のウィンドウの適用<ol><li>切開を作成することにより、転移性疾患が配置されて胸の側から皮膚を除去した後、鈍的切開を使用して皮膚を外す。 注：皮膚を切除し、剥離の後に除去することができます</li><li>オーバーレイする筋肉組織（胸筋、鋸、および広背筋）の2つの層を切開するが、そのまま肋間筋を残すことによって進んでください。典型的には、2つの隣接するリブの一部を除去することにより、直径約1.5cmの胸腔内の穿孔を作成する。理想的には、第六及び第七rの領域の中に穿孔を見つけるIBS。 </li><li>骨切り術： <ol><li>肺表面に出血し、被害を最小限に抑えるために、しっかりと切削中に歯の手術鉗子で切断するリブを開催。外科用ハサミを使用して、外部のポインティング残存肋骨の尖った側を残して、約45°の角度で、第一リブの内側をカット。 </li><li>その後、再度、肺表面の損傷を防止するために、外側に向いて肋骨の尖った側を残して、同様にして肋骨の側面を切る。 </li><li>肋間筋をカットし、切除した部分を削除した後、隣接するリブのための手順を繰り返します。この手順の間、肺表面と胸郭との間の機械的相互作用が最小化されるように、肺の圧力を維持する。適切に人工呼吸器上のインスピレーションの圧力を調節することによってこれを行います。 </li></ol></li><li>ウィンドウの挿入： <ol><li>あるカバーガラスからなる、カスタムメイドの肺のウィンドウを挿入しますプレキシグラスソケット（ 図1B）に装着。接着によってソケットに窓を取り付け、または真空グリースの非常に少量を適用することによって。表面転移がウィンドウの中心に近い位置していることのようにウィンドウを挿入します。必要に応じて、それぞれの側に少し穴を大きくすることで、ウィンドウの中心に微小転移をもたらすために挿入された穴を調整します。 注：胸膜表面上の転移性疾患は、割れ目に沿って、主に現れる肺表面のそれ以外の場合はピンク·ツー·サーモン色の健全な部品内明確に認識白い点または領域として識別することができます。微小転移は胸膜外装の他の領域で発生する可能性がありますが、調べた細胞株は、ほとんど常に転移性疾患は放射線学的に検出することができたら、穿孔領域に微小転移を浮上表示します。 </li><li>穿孔にソケットに挿入、およびlの臓側胸膜との直接接触を作成した後長官、4.0モノフィラメント縫合糸（ 図1C）を使用して、周囲の肋間筋に、窓枠の縁を縫合する。脱出するとシールを作成するために残留空気を助けるために人工呼吸器にインスピレーション圧力のわずかな増加を使用してください。 注：ラットの呼吸速度は、それは70と90拍の間の呼吸速度を調整することが推奨されるなど、麻酔、興奮や不安状態、吸気中の酸素濃度（のFiO 2）の状態に応じて、大きく変化し得る。インスピレーション圧力が慎重に調整されるべきであり、約以上に設定することはできませ。肺表面への損傷を回避するための8cm H 2 O（0.6 mmHg）で、。 </li></ol></li><li>蛍光顕微鏡下で、恒温（電気）加熱ブランケット上に配置された鋼板上のZ方向の動き（ 図1D）を排除するように設計されているカスタムデザインの制止に動物を配置します。動物の体を制御する直腸サーミスタを用いた温度。動物の制止のネジを調整し、人工呼吸器にインスピレーション圧力が横方向の動きの最適な制御を実現する。 注：二国間、背腹、および頭尾：哺乳動物の自然な呼吸は、肺の動きと胸の延長のすべての3つの方向を伴う。可能な限り自然な呼吸運動を維​​持するためには、必要な範囲でZ方向の圧縮を最小限にすることが重要である。 Z次元拘束血流と他のパラメータに影響を与える可能性のアーチファクトを導入する可能性があるので、同じ動物で繰り返した一連の測定の間、一定の条件を維持することが望ましい。 </li></ol></li></ol>微小循環血流の4イメージングおよび測定<ol><li>心穿刺によって赤血球を収集し、前述のように、のDiI（1,1 = -dioctadecyl -3,3,3- =、3 =テトラメチルインドカルボシアニン過塩素酸塩）でそれらをラベル&lt;SUP&gt; 10。 </li><li>窓室手術が行われる前にガラス窓に初回通過の接着効果を回避するために、ラットの尾静脈への標識赤血球の300μLを注入する。静脈内への空気の導入はそれ以上の注射を阻害するように、注射器やカテーテル内の任意の気泡を除去。 </li><li>画像血液温度を冷却-40℃チップにおける顕微鏡CCDカメラで流れ、及び約100X全体の解像度（10X顕微鏡対物レンズを有する、すなわち 、および10Xプレカメラ眼）。標準ローダミン/ TRITCフィルターセット（励起450から490ナノメートル、放射&gt; 515 nm）を使用してください。結果として生じる画像シーケンスの実際のフレームレートとピクセル解像度を記録する。スタックごとにレコードが少なくとも200（理想的には約300）の画像は、流速の成功分析を確実にする。 </li><li>すべての時間食塩IPの約1ミリリットルを注入することによって、動物における流体損失を補充する。 注：介入を伴う実験的な設定、 例えば肺の癌転移における血流速度を修正する薬剤は、肺転移癌の血流速度の繰り返し測定を必要とする。これらの拡張された実験では、十分な流体を動物に補充することが重要である。 </li><li>尾静脈に3NのKCl 3mlを注入することによって動物を安楽死させる</li><li>すべての血流の流速グレースケール及びカラーコードされたマップ10,11をトレース作成され公開され、公的に利用可能なMatlabのベースのコンピュータアルゴリズムを使用して画像スタックを評価する。続いて、そのようなイメージJとして、商業的または公的に利用可能な画像解析ソフトを用いて得られたグレースケール画像を評価し、血液細胞のない動きがないことを示す値から閾値処理の後、アクティブな脈管構造、すなわちない 。 </li></ol>

<ol><li>Billingsley, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+metastases+from+soft+tissue+sarcoma%3A+analysis+of+patterns+of+diseases+and+postmetastasis+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Pulmonary metastases from soft tissue sarcoma: analysis of patterns of diseases and postmetastasis survival.</a> Ann Surg. 229, 602-610 (1999).</li>
<li>Rashid, O. M., Takabe, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+evolution+of+the+role+of+surgery+in+the+management+of+breast+cancer+lung+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Dis%22%5BJournal%5D)">The evolution of the role of surgery in the management of breast cancer lung metastasis.</a> J Thorac Dis. 4, 420-424 (2012).</li>
<li>Mayer, A., Vaupel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypoxia%2C+lactate+accumulation%2C+and+acidosis%3A+siblings+or+accomplices+driving+tumor+progression+and+resistance+to+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+experimental+medicine+and+biology%22%5BJournal%5D)">Hypoxia, lactate accumulation, and acidosis: siblings or accomplices driving tumor progression and resistance to therapy.</a> Advances in experimental medicine and biology. 789, 203-209 (2013).</li>
<li>Okunieff, P., O'Dell, W., Zhang, M., Zhang, L., Maguire, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+oxygen+measurements+and+personalized+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+experimental+medicine+and+biology%22%5BJournal%5D)">Tumor oxygen measurements and personalized medicine.</a> Advances in experimental medicine and biology. 765, 195-201 (2013).</li>
<li>Palmer, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+optical+molecular+imaging+and+analysis+in+mice+using+dorsal+window+chamber+models+applied+to+hypoxia%2C+vasculature+and+fluorescent+reporters%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+protocols%22%5BJournal%5D)">In vivo optical molecular imaging and analysis in mice using dorsal window chamber models applied to hypoxia, vasculature and fluorescent reporters.</a> Nature protocols. 6, 1355-1366 (2011).</li>
<li>Palmer, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+imaging+of+tumor+hypoxia+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+biomedical+optics%22%5BJournal%5D)">Optical imaging of tumor hypoxia dynamics.</a> Journal of biomedical optics. 15, (2010).</li>
<li>Funakoshi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+model+of+lung+metastasis+for+intravital+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc+Res%22%5BJournal%5D)">A new model of lung metastasis for intravital studies.</a> Microvasc Res. 59, 361-367 (2000).</li>
<li>Kuebler, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+imaging+assessment+of+pulmonary+vascular+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Am+Thorac+Soc%22%5BJournal%5D)">Real-time imaging assessment of pulmonary vascular responses.</a> Proc Am Thorac Soc. 8, 458-465 (2011).</li>
<li>Tabuchi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precapillary+oxygenation+contributes+relevantly+to+gas+exchange+in+the+intact+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Respir+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Precapillary oxygenation contributes relevantly to gas exchange in the intact lung.</a> Am J Respir Crit Care Med. 188, 474-481 (2013).</li>
<li>Hanna, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+measurement+of+blood+flow+velocity+and+direction+and+hemoglobin+oxygen+saturation+in+the+rat+lung+using+intravital+microscopy.+American+journal+of+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Lung+cellular+and+molecular+physiology%22%5BJournal%5D)">Automated measurement of blood flow velocity and direction and hemoglobin oxygen saturation in the rat lung using intravital microscopy. American journal of physiology.</a> Lung cellular and molecular physiology. 304, 86-91 (2013).</li>
<li>Fontanella, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+mapping+of+hemodynamics+in+the+lung%2C+brain%2C+and+dorsal+window+chamber-grown+tumors+using+a+novel%2C+automated+algorithm%5BTitle%5D)+AND+%22Microcirculation%22%5BJournal%5D)">Quantitative mapping of hemodynamics in the lung, brain, and dorsal window chamber-grown tumors using a novel, automated algorithm.</a> Microcirculation. , (2013).</li>
<li>Newton, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commissioning+a+small-field+biological+irradiator+using+point%2C+2D%2C+and+3D+dosimetry+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+physics%22%5BJournal%5D)">Commissioning a small-field biological irradiator using point, 2D, and 3D dosimetry techniques.</a> Medical physics. 38, 6754-6762 (2011).</li>
<li>Vaupel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+microenvironmental+physiology+and+its+implications+for+radiation+oncology%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+radiation+oncology%22%5BJournal%5D)">Tumor microenvironmental physiology and its implications for radiation oncology.</a> Seminars in radiation oncology. 14, 198-206 (2004).</li>
<li>Tabuchi, A., Mertens, M., Kuppe, H., Pries, A. R., Kuebler, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+microscopy+of+the+murine+pulmonary+microcirculation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intravital microscopy of the murine pulmonary microcirculation.</a> J Appl Physiol. 104, 338-346 (2008).</li>
<li>Fingar, V. H., Taber, S. W., Wieman, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+model+for+the+study+of+pulmonary+microcirculation%3A+determination+of+pulmonary+edema+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">A new model for the study of pulmonary microcirculation: determination of pulmonary edema in rats.</a> J Surg Res. 57, 385-393 (1994).</li>
<li>Manzoor, A. A., Schroeder, T., Dewhirst, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-stop-shop+tumor+imaging%3A+buy+hypoxia%2C+get+lactate+free%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+clinical+investigation%22%5BJournal%5D)">One-stop-shop tumor imaging: buy hypoxia, get lactate free.</a> The Journal of clinical investigation. 118, 1616-1619 (2008).</li>
<li>Evans, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+and+analytical+methods+as+applied+to+the+evaluation+of+vasculature+and+hypoxia+in+human+brain+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Radiation+research%22%5BJournal%5D)">Imaging and analytical methods as applied to the evaluation of vasculature and hypoxia in human brain tumors.</a> Radiation research. 170, 677-690 (2008).</li>
<li>Radiloff, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+combination+of+theophylline+and+endothelin+receptor+antagonism+improves+exercise+performance+of+rats+under+simulated+high+altitude%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied+physiology%22%5BJournal%5D)">The combination of theophylline and endothelin receptor antagonism improves exercise performance of rats under simulated high altitude.</a> Journal of applied physiology. 113, 1243-1252 (2012).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もない。

モデルは、生体顕微鏡と計算血流分析を用いて、画像の微小循環血流の変化とラットの肺転移の他の動的プロセスを実行可能であることが示されている。他の方法は、げっ歯類の開放胸郭内の露出肺に顕微鏡検査を実行するために存在するが、このモデルは、閉胸設定における胸壁の穿孔を通して画像肺転移の最初のものである。この方法を使用して、実現可能性は、肺転移の微小循環血流の薬理学的に誘導された変化を測定するために示されている。 2つの基本的な方法は、画像に肺表面に直接接触して、自発的な血流により潅流生体げっ歯類の肺に存在する：開胸モデルは、呼吸および心臓活動に対する肺の一定の動きの問題を排除する吸入窓を適用することによって肺の表面に、心肺複合体の残りの部分はexpに可能にしながらそして、オープン胸腔7,14内で契約。この方法は、優れた実験的なアクセスを提供しますが、完全な肺8の条件と比較した場合、開胸条件と吸引ウィンドウがアーティファクトを紹介する。また、ほとんど無傷胸郭を残す非開胸手順はそのような互いの血流動態上の心臓と肺の動きの相互影響としてそのまま胸腔内...

肺は転移性疾患の最も重要な標的臓器の一つであり、この状態は化学療法や放射線療法でうまく治療するのが難しいため、治癒はまだ稀です1,2。固形の原発性および転移性腫瘍の特異的な病態生理学的および微小循環的特徴、例えば、微小領域低酸素症、拡散制限、非効率的な腫瘍血管系などは、抗がん治療に対する耐性に大きく寄与している3,4。微視的なスケールと微小血管血流などのパラメーターの動的な性質により、生きている動物の腫瘍の生体内顕微鏡検査は、この分野で非常に重要な研究ツールになっています5。生体内顕微鏡モデルは、開いた胸郭内の転移性肺を含むさまざまな臓器部位の腫瘍に適用されてきましたが、生理学的に保存された閉鎖性胸部環境での肺転移の研究のためのプロトコルはまだ開発されていません6,7。このような努力は、肺の全体的な機能に影響を与えることなく胸郭に外科的にアクセスする必要性によって特に妨げられる7-9。最近、蛍光生体内顕微鏡10を用いて、生きたラットの胸部近傍で肺微小循環血流を画像化する方法が導入された。このプロトコルは、動物を生理学的に安定させ、肺の完全性を維持しながら、コンピュータ化された分析を使用して、注射された蛍光標識赤血球からの血流速度の体系的な定量化を可能にします11。この本研究では、免疫不全ラットの胸膜表面にある尾静脈接種肺転移の微小循環血流を画像化および定量化するために、この技術をどのように変更できるかを示します。このモデルは、閉鎖型胸部生体内顕微鏡法で転移性肺腫瘍を研究した最初のモデルでもあります。

<table><tbody><tr><td>アテミックヌードラットチャー</td><td>ルズリバー</td><td>ひずみコード316</td><td>女性10週齢の無脊椎ヌードラット</td></tr><tr><td>マイクロCT /マイクロ照射器&nbsp;</td><td>プレシジョンX線株式会社</td><td>Xrad 225Cx</td><td>MicroCTを使用して転移</td></tr><tr><td>を検出します DiI(1,1=-ジオクタデシル-3,3,3=,3=-テトラメチル-インドカルボシアニン過塩素酸塩)</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>468495-100MG</td><td>100 ulの充填赤血球と100 ulの0.5 mg / ml DiIを200プルーフエタノール、2 mlの5%デキストロース溶液を水に混合し、生理食塩水で最終容量10 mlまで満たし</td></tr>ます げ<tr><td>っ歯類の人工呼吸器</td><td>ケントサイエンティフィック</td><td>TOPO小動物人工呼吸器</td><td>気胸の適用後に肺圧を維持するためには、装置が重要です</td></tr><tr><td>Zeiss Axioskop 蛍光顕微鏡 直立</td>型 <td>Zeiss</td><td>Axioskop</td><td>顕微鏡 生体内イメージング用</td></tr><tr><td>Andor CCDカメラ</td><td>Andor</td><td>iXonEM 885</td><td>CCDカメラ 血流のライブイメージング用</td></tr><tr><td>パルスオキシメータ</td><td>StarrLife</td><td>MouseOx</td><td>パルスオキシメータ</td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>Axioskop</td><td>蛍光顕微鏡</td></tr></tbody></table>

ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定

Automated Measurement of Microcirculatory Blood Flow Velocity in Pulmonary Metastases of Rats

肺は転移性疾患の主要な標的臓器であるため、肺転移の生理機能を研究するための動物モデルは非常に重要です。しかし、顕微鏡で肺にアクセスするのが難しいため、微小循環レベルで動的に肺転移を調査する方法はこれまでほとんど存在していません。ここでは、閉じた胸部の肺窓と血流の速度と方向の自動分析を使用して、ラットの表在性肺転移の微小循環を機能的に画像化および定量化するための生体内顕微鏡法が提示されます。この方法の有用性は、薬理学的介入に応答した血流速度の増加を測定し、固形腫瘍のよく知られた曲がりくねった血管系を画像化するために実証されています。これは、閉鎖胸部モデルにおける肺転移に対する生体内顕微鏡検査の最初のデモンストレーションです。この技術は、侵襲性が最小限に抑えられていること、また比較的容易で実用性が高いことから、肺腫瘍研究を専門とする研究室で広く使用される可能性があります。

固形腫瘍における血管系は、屈曲度の大きい度、高い脈管間の距離13を示し、正常な血液供給と大きく異なることが知られている。正常な肺の微小循環（ 図2A、上パネル）と比較した場合、それに応じて、実験的肺乳癌および肉腫の転移における血流トラックは、不規則な形状、大きな脈管間の隙間（ 図2A、下側2パネル）を有する。以前の研究では、肺のウィンドウ法の能力は、正常な肺10内の血流速度の変化の自動測定を行うことが示された。肺のウィンドウ法はまた、肺転移における血流速度の増加を測定することができるかどうかを調査するために、交感神経作用薬エフェドリン、最近、健康な肺における微小循環を増加させることが見出されているエンドセリンブロッカーアンブリセンタンの薬物の組み合わせ、（他の場所で会計データ）ここで適用した。本研究では、この方法の能力は、エフェドリンとの組み合わせた（20mg / kg）およびエンドセリン受容体拮抗薬、アンブリセンタン（0.5ミリグラム/の投与によって引き起こされる、マウス肉腫の肺転移における血流速度の増加を検出することが示さ...

ラットの胸膜表面の肺癌転移における微小循環血流速度を、閉鎖胸部肺生体内顕微鏡法を用いて自動的に測定する方法が提示されています。このモデルは、げっ歯類の肺転移に関する生理学的研究を実施するための広範なツールとして使用される可能性を秘めています。

Because the lung is a major target organ of metastatic disease, animal models to study the physiology of pulmonary metastases are of great importance. ...

この手順の全体的な目的は、肺転移を有するラットにおいて、生体顕微鏡観察のための胸部ウィンドウを作製することです。まず、転移を有する動物を麻酔し、気管挿管を行い、加圧換気のために小動物用人工呼吸器に接続します。次に、蛍光標識した赤血球を動物の尾静脈に注入します。次に、肺表面を損傷しないように外科的に胸腔へアプローチし、転移巣を特定してウィンドウを挿入します。最後に、動物の顕微鏡イメージングを行います。最終的に、生存ラットにおいて肺を外科的に開口し、急性顕微鏡観察用のウィンドウを挿入することで、肺転移における微小循環血流の自動測定が可能になります。この手法の、胸部マイクロCTイメージング、非侵襲的胸腔鏡検鏡、がん化した肺のマイクロPETなどの既存手法に対する主な利点は、肺転移の微小循環を高い時間的および空間的解像度でリアルタイムに測定できることです。この方法は、治療やがんの進行が血流、そして最終的に肺転移巣の低酸素状態をどのように変化させるかなど、肺転移分野における重要な疑問への回答に寄与します。この手法は、転移性腫瘍の微小循環および代謝微小環境のダイナミクスについて、かつてない視点を提供するため、肺転移がんの診断および治療への応用が期待されます。本手法は、肺転移や微小循環のダイナミクスを理解する道を切り開き、ひいては現在の治療戦略の改善に寄与します。一般的に、この手法に不慣れな人は、肺の自律的な動きを最小限に抑えるように設定を調整する経験が必要であるため、苦労することがあります。テキストプロトコルに従ってラットに転移性癌を誘導し、それを確認した後、ペントバルビタールを腹腔内投与して麻酔をかけ、足趾へのピンチテストを行い、鎮静状態を確認してください。転移性病変がある側の体幹部と頸部を剃毛し、イメージングの妨げにならないよう、皮膚に残った緩い毛をすべて拭き取ります。眼の乾燥を防ぐため、獣医用眼軟膏を塗布します。37 °Cの水循環式加温パッド上に設置した金属プレートに動物を仰向けに配置し、テープで前肢と後肢を固定します。ラットの挿管処置の間、バイタルサインを制御および記録するためにパルスオキシメータを装着します。まず、頸部の皮膚を横方向に切開します。次に、鋭いピンセットを使用して、気管腹側の縦走筋を内側に分離します。気管第2環と第3環の間の腹側から、気管の背側に向けて、開閉動作を繰り返して縫合糸を通すための通路を作成します。気管に小さな切開を加えます。カテーテルを固定できるよう、背側に十分な長さの気管を露出させておきます。次に、2.5〜3.0 mmのY型気管カニューレを気管に挿入し、4-0モノフィラメント縫合糸で固定します。陽圧肺圧を維持するため、カニューレを圧力サイクル制御ベンチレーターを介して100%酸素に接続し、呼気管には6 cmの水を満たしたボトルを接続します。その後、25〜27ゲージの針とヘパリン生理食塩水を満たしたシリンジを用い、尾静脈のいずれかにカテーテルを挿入し、テープで固定します。テキストのプロトコルに従ってあらかじめ採取しDIIでラベルした赤血球を用い、ラットの尾静脈に300 µL注入して肺ウィンドウを作成します。胸部の癌側を切開し、鈍的剥離を用いて皮膚を剥離します。重なり合う2層の筋肉を剥離し、第6肋骨および第7肋骨付近の肋間筋は温存します。骨切り術を行うため、胸腔に直径約1.5 cmの穿孔を作成します。人工呼吸器の吸気圧を調整し、肺表面と肋骨格との間の機械的な干渉を最小限に抑えます。歯科用手術鉗子で切除する肋骨をしっかりと固定し、手術用はさみを用いて第6肋骨および第7肋骨の一部を切除します。肋骨の内側を、鋭い側が外側を向くように約45度の角度で切断します。同様の方法で骨の外側を切り、ここでも尖った側を外側に向けたままにします。肺への損傷を避けるため、肋間筋を切断する前に隣接する肋骨の骨切りを繰り返し、切除した断片を取り除きます。接着剤または少量の真空グリスを使用してカバーガラスをプレキシガラス製ソケットに取り付け、カスタムメイドのロングウィンドウを作成します。次に、表面転移巣がウィンドウの中心付近に位置するようにウィンドウを挿入し、必要に応じて片側の穴を広げます。ソケットを穿孔部に挿入し、肺の臓器胸膜に直接接触させた後、4-0モノフィラメント縫合糸を用いて、ウィンドウフレームの端を周囲の肋間筋に縫い付けます。ベンチレーターの吸気圧を上げ、残存空気を排出し、密閉状態を作ります。次に、Z方向への動きを排除するように設計されたカスタムメイドの固定具に動物をセットし、蛍光顕微鏡下の加熱鋼板の上に配置します。その後、直腸サーミスタを挿入し、動物の体温を制御します。動物固定具のネジと人工呼吸器の吸気圧を調整し、側方向の動きを最適に制御できるようにします。イメージングおよび微小循環血流測定に使用します。チップ冷却温度を-40°Cに設定したCCDカメラと、10倍対物レンズを使用してください。標準的なrod Domine Trit Cフィルターセットを用いて、得られた画像シーケンスの実際のフレームレートと画素解像度を記録します。動物の体液喪失を補い、血流速度を一定に維持するため、イメージングセッション中に1時間ごとに約1 mLの生理食塩水を腹腔内投与してください。また、血流速度の解析を確実に行うため、1スタックあたり少なくとも200枚の画像を記録してください。イメージング完了後、テキストプロトコルに従って動物を安楽死させます。固形腫瘍内の脈管系は、正常な血流供給とは大きく異なることが知られており、より高度な蛇行性と、より長い血管間距離を示します。したがって、ここで示されているように、実験的な肺乳がんおよび転移における血流経路は、正常な微小循環と比較して、不規則な形状と大きな血管間ギャップを呈しています。本研究では、健康な肺で実証されたのと同様に、エフェドリンとエンドセリン受容体拮抗薬の併用投与により、マウス肉腫における血流速度が増加しました。各データポイントは、5匹の動物から得られたデータに基づき、5分間隔で3回測定した個体平均をプールして平均化したものです。1回目の注射により、腫瘍領域の血流速度は 0.61 ± 0.12 mm/s から 0.74 ± 0.19 mm/s へと有意に増加しました。一方、2回目の注入では、流速は 0.74 ± 0.19 mm/s の高値を維持しました。この処置を行う際は、肋骨をカットする際に鋭利な突出構造を作らないよう注意することが重要です。そうしないと、その後の肺の形成過程で損傷や出血を引き起こす原因となります。この手法により、肺転移研究分野の研究者が、細胞毒性薬剤の送達制限や拡散制限性低酸素症、ラット肺転移モデルなど、抗がん剤開発に関連するエンドポイントを探索する道が開かれました。このビデオを視聴することで、ラットの転移ありまたは正常な肺への外科的アプローチ方法と、その顕微鏡イメージングの手法について十分に理解することができます。

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Research

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Medicine

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ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定

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