Name: ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 56 s
Description: 学ぶラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定法。閉胸式肺生体顕微鏡法を用いて、がん転移の血流動態をリアルタイムで高解像度に解析する革新的な手法です。がん治療戦略の改善に貢献します。

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ティモシー・マクマホン博士とSiqing Shan博士の科学的な助言に感謝します。プレゼンターは、デビッド・キルシュ博士とパトリシア・スティーグ博士に、それぞれ蛍光標識されたマウス肉腫細胞と転移性MDAMB-231細胞の寛大な贈り物に感謝します。この研究は、米国国防高等研究計画局(DARPA)プライム賞番号N66001-10-C-2134と、デューク大学医療センターの放射線腫瘍学部門から一部資金提供を受けました。

注：このプロトコルで説明されているすべての動物関連する手順は、以前にデューク大学施設内動物管理使用委員会（DUIACUC）によって承認されている。 1.がん細胞培養およびインジェクション<ol><li>蛍光標識された転移性癌細胞（ 例えば 、ヒトMDAMB231-GFP乳癌細胞、博士パトリシアシュテーク、NCIからの贈り物、とYFP標識マウス肉腫細胞、デビッドキルシュ、デューク大学医療センター、放射線腫瘍科からの贈り物）を育成（10％ウシ胎児血清および1％ペニシリン/ストレプトアビジン、例えばダルベッコ改変イーグル培地（DMEM））適切な培養培地中で、37℃で約90％コンフルエントになるまで。 </li><li>トリプシン処理細胞を、カウント、PBSでそれらを2回洗浄し、次いで27 G針を注射器を用いて、動物あたり5百万個の細胞で、イソフルラン麻酔10週齢の雌ヌードラットの尾静脈へ注入。外科レベルanesthesとりわけ、トーピンチに対する反応の欠如によって確認される。 </li></ol>マイクロCTを使用して、転移の2モニタリング<ol><li>上記転移直径が直径約2mmの存在を検出するために、マイクロCT /マイクロ照射装置を用いて週に一度、ラットを調べる。以前12に記載のように、マイクロCTは、委託されている。 <ol><li>イメージングの前に3％のイソフルラン麻酔の対象とラット。つま先のピンチによる深い麻酔を確認してください。 </li><li>麻酔の発症後、すぐに画像化チャンバ内イメージングクレードルにラットを転送し、2.5から3パーセントにイソフルランと空気の混合物にノーズコーンを経由して接続します。イメージングクレードルの外部に位置制御とレーザー区切り文字を使用して、その胸部がマイクロCTスキャナの光子ビームに配置されている方法で、クレードルにラットの位置を調整します。ガンマ線から調査員を遮蔽するために、イメージング室のドアが閉じていることを確認してください。 </li><li>再び用いて動物の位置を制御するカラービデオカメラ。低解像度のCT撮影テストの実行を実行し、胸腔のXYZ寸法に視野を調整するために、得られる画像を使用しています。 </li><li>イメージラットの40のkVpで2ミリメートルのAlフィルタを使用して、胸郭、2.5ミリアンペア、及び7 fpsで0.008ボクセルとそのケージに動物を返す。 1動物の画像化はしないより15以上または20分を取る必要があります。完全に回復するまで、他の動物の会社に手術を受けた動物を返さないでください。それは胸骨横臥位を維持するのに十分な意識を取り戻したまでは無人の動物を放置しないでください。 </li><li>胸腔内の血管では説明できない、比較的放射線不透過オブジェクトの出現によって転移を確認する（ 図1A） </li></ol></li></ol> 3.ウィンドウ商工手術<ol><li>麻酔、バイタルサイン及び尾静脈カテーテル法<ol><li>転移性疾患の存在で動物を選択します。腹腔dで動物に注入する50mg / kgのペントバルビタールのOSE。先に進む前に、つま先のピンチによって外科レベルの麻酔を確認してください。 注：麻酔プロトコルは、それぞれの実験のセットアップに一致させる必要があります。容易な再​​投薬の選択肢を提供しながらペントバルビタールは、長い手順のための深い麻酔を誘導するために、長時間作用型麻酔薬として、ここで選ばれました。しかし、過剰投与の動物の損失はペントバルビタール麻酔に共通の問題である。ペントバルビタールよりも大きな程度に自律神経反射神経を保持する別のオプションは、そのようなしかし、単一の再投与サイクルのために許可しキシラジンまたはメデトミジン、などの鎮静剤と​​の組み合わせでケタミンです。 </li><li>クリッパーを使用して、転移性疾患を有する、頸部領域における本体の側面に動物を剃る。皮膚から残りのすべての抜け毛を拭き取ってください。抜け毛を除去した後、乾燥するのを防ぐために、眼に獣医軟膏を適用する。 注：無胸腺ヌードラットはrequiが残留髪を持っていること外科手術手順に進む前にRES除去。それは外科的手技およびイメージングを妨げる可能性として、それは、徹底的にすべての毛を除去することは非常に重要です。 </li><li> 37℃の水を循環加熱パッド上に配置された金属板上に仰臥位で動物を修正。フロントと後肢四肢をテープでプレートに固定されている。 注：それは制御し、外科的および実験手順を通じて、パルス酸素濃度計を使用して、このような心拍数と動脈血酸素化などのバイタルサインを記録するのに便利です。 </li></ol></li><li>気管挿管<ol><li>動物の換気のためにカテーテルを配置するために、最初の気管に縦筋系の腹の中央分離することにより横方向子宮頸部皮膚切開を行う。 </li><li>気管の背側を通して縫合糸の通路を作成するには、鋭いピンセットを用いて繰り返し開閉·ツー·クローズアクションを使用します。 </li><li> T上の気管内に小さな切開を作る彼腹側、およそ第二及び第三の気管輪の間に、半円形を超えない。気管カテーテルの固定を可能にするために、背側表面に露出した気管の十分長い部分のままにしておきます。 </li><li>気管内に2.5〜3.0ミリメートル &quot;Y&quot;気管カニューレを挿入し、4-0モノフィラメント縫合糸で締めます。正の肺動脈圧を維持するために、カニューレは水の6センチメートルで満たされている有効期限のダクトに接続され、ボトルに圧力循環人工呼吸器に接続されていることを確認してください。実験的にそれ以外の目的のない限り、流入ガスは、100％酸素でなければなりません。 </li><li> 25-27 G針でカテーテルを挿入し、ラットの尾静脈のいずれかに、ヘパリン化生理食塩水で満たされ、テープで固定します。 注：繰り返し尾静脈にヘパリン処理生理食塩水を少量注入することにより、作業中は尾静脈カテーテルの開存性を確認してください。気管の指導すなわちまた、オロ·気管挿管、麻酔した動物の口を経由し、気管に喉頭過去のチューブは、ここで説明されている気管切開手順に可能な代替である。しかし、この方法は、気管への損傷を避けるために、特別な訓練と経験を必要とし、また、食道の偶発的カニューレ挿入を排除する。 </li></ol></li><li>肺のウィンドウの適用<ol><li>切開を作成することにより、転移性疾患が配置されて胸の側から皮膚を除去した後、鈍的切開を使用して皮膚を外す。 注：皮膚を切除し、剥離の後に除去することができます</li><li>オーバーレイする筋肉組織（胸筋、鋸、および広背筋）の2つの層を切開するが、そのまま肋間筋を残すことによって進んでください。典型的には、2つの隣接するリブの一部を除去することにより、直径約1.5cmの胸腔内の穿孔を作成する。理想的には、第六及び第七rの領域の中に穿孔を見つけるIBS。 </li><li>骨切り術： <ol><li>肺表面に出血し、被害を最小限に抑えるために、しっかりと切削中に歯の手術鉗子で切断するリブを開催。外科用ハサミを使用して、外部のポインティング残存肋骨の尖った側を残して、約45°の角度で、第一リブの内側をカット。 </li><li>その後、再度、肺表面の損傷を防止するために、外側に向いて肋骨の尖った側を残して、同様にして肋骨の側面を切る。 </li><li>肋間筋をカットし、切除した部分を削除した後、隣接するリブのための手順を繰り返します。この手順の間、肺表面と胸郭との間の機械的相互作用が最小化されるように、肺の圧力を維持する。適切に人工呼吸器上のインスピレーションの圧力を調節することによってこれを行います。 </li></ol></li><li>ウィンドウの挿入： <ol><li>あるカバーガラスからなる、カスタムメイドの肺のウィンドウを挿入しますプレキシグラスソケット（ 図1B）に装着。接着によってソケットに窓を取り付け、または真空グリースの非常に少量を適用することによって。表面転移がウィンドウの中心に近い位置していることのようにウィンドウを挿入します。必要に応じて、それぞれの側に少し穴を大きくすることで、ウィンドウの中心に微小転移をもたらすために挿入された穴を調整します。 注：胸膜表面上の転移性疾患は、割れ目に沿って、主に現れる肺表面のそれ以外の場合はピンク·ツー·サーモン色の健全な部品内明確に認識白い点または領域として識別することができます。微小転移は胸膜外装の他の領域で発生する可能性がありますが、調べた細胞株は、ほとんど常に転移性疾患は放射線学的に検出することができたら、穿孔領域に微小転移を浮上表示します。 </li><li>穿孔にソケットに挿入、およびlの臓側胸膜との直接接触を作成した後長官、4.0モノフィラメント縫合糸（ 図1C）を使用して、周囲の肋間筋に、窓枠の縁を縫合する。脱出するとシールを作成するために残留空気を助けるために人工呼吸器にインスピレーション圧力のわずかな増加を使用してください。 注：ラットの呼吸速度は、それは70と90拍の間の呼吸速度を調整することが推奨されるなど、麻酔、興奮や不安状態、吸気中の酸素濃度（のFiO 2）の状態に応じて、大きく変化し得る。インスピレーション圧力が慎重に調整されるべきであり、約以上に設定することはできませ。肺表面への損傷を回避するための8cm H 2 O（0.6 mmHg）で、。 </li></ol></li><li>蛍光顕微鏡下で、恒温（電気）加熱ブランケット上に配置された鋼板上のZ方向の動き（ 図1D）を排除するように設計されているカスタムデザインの制止に動物を配置します。動物の体を制御する直腸サーミスタを用いた温度。動物の制止のネジを調整し、人工呼吸器にインスピレーション圧力が横方向の動きの最適な制御を実現する。 注：二国間、背腹、および頭尾：哺乳動物の自然な呼吸は、肺の動きと胸の延長のすべての3つの方向を伴う。可能な限り自然な呼吸運動を維​​持するためには、必要な範囲でZ方向の圧縮を最小限にすることが重要である。 Z次元拘束血流と他のパラメータに影響を与える可能性のアーチファクトを導入する可能性があるので、同じ動物で繰り返した一連の測定の間、一定の条件を維持することが望ましい。 </li></ol></li></ol>微小循環血流の4イメージングおよび測定<ol><li>心穿刺によって赤血球を収集し、前述のように、のDiI（1,1 = -dioctadecyl -3,3,3- =、3 =テトラメチルインドカルボシアニン過塩素酸塩）でそれらをラベル&lt;SUP&gt; 10。 </li><li>窓室手術が行われる前にガラス窓に初回通過の接着効果を回避するために、ラットの尾静脈への標識赤血球の300μLを注入する。静脈内への空気の導入はそれ以上の注射を阻害するように、注射器やカテーテル内の任意の気泡を除去。 </li><li>画像血液温度を冷却-40℃チップにおける顕微鏡CCDカメラで流れ、及び約100X全体の解像度（10X顕微鏡対物レンズを有する、すなわち 、および10Xプレカメラ眼）。標準ローダミン/ TRITCフィルターセット（励起450から490ナノメートル、放射&gt; 515 nm）を使用してください。結果として生じる画像シーケンスの実際のフレームレートとピクセル解像度を記録する。スタックごとにレコードが少なくとも200（理想的には約300）の画像は、流速の成功分析を確実にする。 </li><li>すべての時間食塩IPの約1ミリリットルを注入することによって、動物における流体損失を補充する。 注：介入を伴う実験的な設定、 例えば肺の癌転移における血流速度を修正する薬剤は、肺転移癌の血流速度の繰り返し測定を必要とする。これらの拡張された実験では、十分な流体を動物に補充することが重要である。 </li><li>尾静脈に3NのKCl 3mlを注入することによって動物を安楽死させる</li><li>すべての血流の流速グレースケール及びカラーコードされたマップ10,11をトレース作成され公開され、公的に利用可能なMatlabのベースのコンピュータアルゴリズムを使用して画像スタックを評価する。続いて、そのようなイメージJとして、商業的または公的に利用可能な画像解析ソフトを用いて得られたグレースケール画像を評価し、血液細胞のない動きがないことを示す値から閾値処理の後、アクティブな脈管構造、すなわちない 。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、開示することは何もない。

モデルは、生体顕微鏡と計算血流分析を用いて、画像の微小循環血流の変化とラットの肺転移の他の動的プロセスを実行可能であることが示されている。他の方法は、げっ歯類の開放胸郭内の露出肺に顕微鏡検査を実行するために存在するが、このモデルは、閉胸設定における胸壁の穿孔を通して画像肺転移の最初のものである。この方法を使用して、実現可能性は、肺転移の微小循環血流の薬理学的に誘導された変化を測定するために示されている。 2つの基本的な方法は、画像に肺表面に直接接触して、自発的な血流により潅流生体げっ歯類の肺に存在する：開胸モデルは、呼吸および心臓活動に対する肺の一定の動きの問題を排除する吸入窓を適用することによって肺の表面に、心肺複合体の残りの部分はexpに可能にしながらそして、オープン胸腔7,14内で契約。この方法は、優れた実験的なアクセスを提供しますが、完全な肺8の条件と比較した場合、開胸条件と吸引ウィンドウがアーティファクトを紹介する。また、ほとんど無傷胸郭を残す非開胸手順はそのような互いの血流動態上の心臓と肺の動きの相互影響としてそのまま胸腔内...

肺は転移性疾患の最も重要な標的臓器の一つであり、この状態は化学療法や放射線療法でうまく治療するのが難しいため、治癒はまだ稀です1,2。固形の原発性および転移性腫瘍の特異的な病態生理学的および微小循環的特徴、例えば、微小領域低酸素症、拡散制限、非効率的な腫瘍血管系などは、抗がん治療に対する耐性に大きく寄与している3,4。微視的なスケールと微小血管血流などのパラメーターの動的な性質により、生きている動物の腫瘍の生体内顕微鏡検査は、この分野で非常に重要な研究ツールになっています5。生体内顕微鏡モデルは、開いた胸郭内の転移性肺を含むさまざまな臓器部位の腫瘍に適用されてきましたが、生理学的に保存された閉鎖性胸部環境での肺転移の研究のためのプロトコルはまだ開発されていません6,7。このような努力は、肺の全体的な機能に影響を与えることなく胸郭に外科的にアクセスする必要性によって特に妨げられる7-9。最近、蛍光生体内顕微鏡10を用いて、生きたラットの胸部近傍で肺微小循環血流を画像化する方法が導入された。このプロトコルは、動物を生理学的に安定させ、肺の完全性を維持しながら、コンピュータ化された分析を使用して、注射された蛍光標識赤血球からの血流速度の体系的な定量化を可能にします11。この本研究では、免疫不全ラットの胸膜表面にある尾静脈接種肺転移の微小循環血流を画像化および定量化するために、この技術をどのように変更できるかを示します。このモデルは、閉鎖型胸部生体内顕微鏡法で転移性肺腫瘍を研究した最初のモデルでもあります。

<table><tbody><tr><td>アテミックヌードラットチャー</td><td>ルズリバー</td><td>ひずみコード316</td><td>女性10週齢の無脊椎ヌードラット</td></tr><tr><td>マイクロCT /マイクロ照射器&nbsp;</td><td>プレシジョンX線株式会社</td><td>Xrad 225Cx</td><td>MicroCTを使用して転移</td></tr><tr><td>を検出します DiI(1,1=-ジオクタデシル-3,3,3=,3=-テトラメチル-インドカルボシアニン過塩素酸塩)</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>468495-100MG</td><td>100 ulの充填赤血球と100 ulの0.5 mg / ml DiIを200プルーフエタノール、2 mlの5%デキストロース溶液を水に混合し、生理食塩水で最終容量10 mlまで満たし</td></tr>ます げ<tr><td>っ歯類の人工呼吸器</td><td>ケントサイエンティフィック</td><td>TOPO小動物人工呼吸器</td><td>気胸の適用後に肺圧を維持するためには、装置が重要です</td></tr><tr><td>Zeiss Axioskop 蛍光顕微鏡 直立</td>型 <td>Zeiss</td><td>Axioskop</td><td>顕微鏡 生体内イメージング用</td></tr><tr><td>Andor CCDカメラ</td><td>Andor</td><td>iXonEM 885</td><td>CCDカメラ 血流のライブイメージング用</td></tr><tr><td>パルスオキシメータ</td><td>StarrLife</td><td>MouseOx</td><td>パルスオキシメータ</td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>Axioskop</td><td>蛍光顕微鏡</td></tr></tbody></table>

ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定

Automated Measurement of Microcirculatory Blood Flow Velocity in Pulmonary Metastases of Rats

肺は転移性疾患の主要な標的臓器であるため、肺転移の生理機能を研究するための動物モデルは非常に重要です。しかし、顕微鏡で肺にアクセスするのが難しいため、微小循環レベルで動的に肺転移を調査する方法はこれまでほとんど存在していません。ここでは、閉じた胸部の肺窓と血流の速度と方向の自動分析を使用して、ラットの表在性肺転移の微小循環を機能的に画像化および定量化するための生体内顕微鏡法が提示されます。この方法の有用性は、薬理学的介入に応答した血流速度の増加を測定し、固形腫瘍のよく知られた曲がりくねった血管系を画像化するために実証されています。これは、閉鎖胸部モデルにおける肺転移に対する生体内顕微鏡検査の最初のデモンストレーションです。この技術は、侵襲性が最小限に抑えられていること、また比較的容易で実用性が高いことから、肺腫瘍研究を専門とする研究室で広く使用される可能性があります。

固形腫瘍における血管系は、屈曲度の大きい度、高い脈管間の距離13を示し、正常な血液供給と大きく異なることが知られている。正常な肺の微小循環（ 図2A、上パネル）と比較した場合、それに応じて、実験的肺乳癌および肉腫の転移における血流トラックは、不規則な形状、大きな脈管間の隙間（ 図2A、下側2パネル）を有する。以前の研究では、肺のウィンドウ法の能力は、正常な肺10内の血流速度の変化の自動測定を行うことが示された。肺のウィンドウ法はまた、肺転移における血流速度の増加を測定することができるかどうかを調査するために、交感神経作用薬エフェドリン、最近、健康な肺における微小循環を増加させることが見出されているエンドセリンブロッカーアンブリセンタンの薬物の組み合わせ、（他の場所で会計データ）ここで適用した。本研究では、この方法の能力は、エフェドリンとの組み合わせた（20mg / kg）およびエンドセリン受容体拮抗薬、アンブリセンタン（0.5ミリグラム/の投与によって引き起こされる、マウス肉腫の肺転移における血流速度の増加を検出することが示さ...

ラットの胸膜表面の肺癌転移における微小循環血流速度を、閉鎖胸部肺生体内顕微鏡法を用いて自動的に測定する方法が提示されています。このモデルは、げっ歯類の肺転移に関する生理学的研究を実施するための広範なツールとして使用される可能性を秘めています。

Because the lung is a major target organ of metastatic disease, animal models to study the physiology of pulmonary metastases are of great importance. ...

この手順の全体的な目的は、肺転移を有するラットにおいて、生体顕微鏡観察のための胸部ウィンドウを作製することです。まず、転移を有する動物を麻酔し、気管挿管を行い、加圧換気のために小動物用人工呼吸器に接続します。次に、蛍光標識した赤血球を動物の尾静脈に注入します。次に、肺表面を損傷しないように外科的に胸腔へアプローチし、転移巣を特定してウィンドウを挿入します。最後に、動物の顕微鏡イメージングを行います。最終的に、生存ラットにおいて肺を外科的に開口し、急性顕微鏡観察用のウィンドウを挿入することで、肺転移における微小循環血流の自動測定が可能になります。この手法の、胸部マイクロCTイメージング、非侵襲的胸腔鏡検鏡、がん化した肺のマイクロPETなどの既存手法に対する主な利点は、肺転移の微小循環を高い時間的および空間的解像度でリアルタイムに測定できることです。この方法は、治療やがんの進行が血流、そして最終的に肺転移巣の低酸素状態をどのように変化させるかなど、肺転移分野における重要な疑問への回答に寄与します。この手法は、転移性腫瘍の微小循環および代謝微小環境のダイナミクスについて、かつてない視点を提供するため、肺転移がんの診断および治療への応用が期待されます。本手法は、肺転移や微小循環のダイナミクスを理解する道を切り開き、ひいては現在の治療戦略の改善に寄与します。一般的に、この手法に不慣れな人は、肺の自律的な動きを最小限に抑えるように設定を調整する経験が必要であるため、苦労することがあります。テキストプロトコルに従ってラットに転移性癌を誘導し、それを確認した後、ペントバルビタールを腹腔内投与して麻酔をかけ、足趾へのピンチテストを行い、鎮静状態を確認してください。転移性病変がある側の体幹部と頸部を剃毛し、イメージングの妨げにならないよう、皮膚に残った緩い毛をすべて拭き取ります。眼の乾燥を防ぐため、獣医用眼軟膏を塗布します。37 °Cの水循環式加温パッド上に設置した金属プレートに動物を仰向けに配置し、テープで前肢と後肢を固定します。ラットの挿管処置の間、バイタルサインを制御および記録するためにパルスオキシメータを装着します。まず、頸部の皮膚を横方向に切開します。次に、鋭いピンセットを使用して、気管腹側の縦走筋を内側に分離します。気管第2環と第3環の間の腹側から、気管の背側に向けて、開閉動作を繰り返して縫合糸を通すための通路を作成します。気管に小さな切開を加えます。カテーテルを固定できるよう、背側に十分な長さの気管を露出させておきます。次に、2.5〜3.0 mmのY型気管カニューレを気管に挿入し、4-0モノフィラメント縫合糸で固定します。陽圧肺圧を維持するため、カニューレを圧力サイクル制御ベンチレーターを介して100%酸素に接続し、呼気管には6 cmの水を満たしたボトルを接続しま

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Medicine

医学

生理的な血管新生とそれを欠いている正常な成体血管化哺乳動物の組織を研究するために使用される外科的介入にさらされていません：（i）の開始とテストエージェントの腹腔内投与後の血管新生の開発、との全身投与後の血管新生の（II）修正テストエージェントを選択した。...

ラット間膜の血管新生アッセイ

低酸素肺血管収縮(HPV)は、肺胞低酸素肺灌流で換気に一致する重要な生理学的現象である。HPVに寄与する主要な血管セグメントは、口腔内動脈である。ここでは、直径20~100μmのマウス肺血管のHPVの分析プロトコルについて説明します。...

マウス精密切り出肺スライスを用いた低酸素肺血管収縮のビデオモルフォメトリクス解析

孤立した血液灌流肺準備が肺表面上の微小血管ネットワークを可視化することが実現可能になります。ここでは、リアルタイムの蛍光画像を用いて単離された肺における単一微小血管の透過性を定量化するためのアプローチを記載する。...

単離された血液灌流ラットの肺の準備にシングル微小血管透過性を定量化する

修正されたLandis技術は、微小灌流技術を用いた制御および試験条件下で、正常ラットと遺伝子組み換えラットの腸間膜における個々の微小血管の透水係数のペア測定を可能にします。これは、生理学的条件下で微小血管の透過性と経血管交換を調節するメカニズムを評価するための便利な方法を提供します。...

ラット腸間膜に微小血管透過性の調節を調査するために、微小灌流法

この原稿は、腫瘍低酸素症が転移に及ぼす影響を直接テストし、その作用メカニズムを解読することを可能にする動物モデルの開発について説明しています。ここで説明する実験はユーイング肉腫に焦点を当てていますが、同様のアプローチを他の腫瘍タイプにも適用できます。...

腫瘍転移に対する低酸素のテストの効果のためのインビボモデル

ここでは、中隔動脈がカニュール化および加圧されるように、動脈灌流圧および流れを維持する動脈灌流圧および流れのex...

マウス心臓における毛細血管、細動脈、および周囲細胞の動的測定とイメージング

ここでは、肺の高解像度の生体内イメージングを可能にするマウス胸郭用の永久に留置された光学窓の外科的移植のためのプロトコルを提示する。ウィンドウの永続性は、肺の動的細胞プロセス、特に播種された腫瘍細胞の転移進行など、ゆっくりと進化している細胞プロセスの研究に適しています。...

肺への癌転移を調査するための永久的な窓

このプロトコルは、ライトシート蛍光顕微鏡を使用した定量的なホールマウント3次元血管イメージングの迅速な方法を導入します。この方法の有効性は、ニワトリ胚モデルの咽頭アーチ動脈系を使用して実証され、血行動態の力は計算流体力学 によって...

定量的研究のための小動物血管系の迅速なホールマウント高分解能イメージング

このプロトコルは、ラットの肺動脈圧を検出するために右心カテーテル法を用いた経験を詳細に紹介し、より正確なデータ取得と実験の成功率向上に役立ちます。この方法はまた、異なる実験室間での実験の再現性を向上させます。...

右心カテーテル術を用いたラットの肺動脈圧測定

内皮グリコカリックス/内皮表面層は、理想的には生体顕微鏡を用いて研究されています。生体顕微鏡検査は、肺などの臓器に移動技術的に困難である。私たちは、同時明視野と蛍光顕微鏡を自由に移動させる際に内皮表面層の厚さを推定するために使用することができる方法を示してい...

マウス肺内皮表面層の in vivo測定における

学ぶラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定法。閉胸式肺生体顕微鏡法を用いて、がん転移の血流動態をリアルタイムで高解像度に解析する革新的な手法です。がん治療戦略の改善に貢献します。

ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定

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