Name: マウスモデルにおける下大静脈介在移植の移植 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-04T14:15:00.000+00:00
Duration: 12 min 39 s
Description: 学ぶ組織工学血管グラフトの新組織形成と狭窄発生の細胞・分子メカニズムをマウスモデルで解明する方法。骨髄由来単核球を用いた細胞播種と下大静脈介在移植の技術を習得し、グラフトの長期的機能向上に貢献する知見を得られます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

この作品は、CKBのNIH（RO1 HL098228）からの助成金によって部分的にサポートされていました。

注：すべての動物の手続きは、全国の小児病院施設内動物管理使用委員会によって承認された。 1。グラフトづくり<ol><li>ヒュームフードの下に2ミリリットルのジオキサンに100mgのPは（LA / CL）を追加することにより、ε-カプロラクトンとL-ラクチド共重合体P（LA / CL）の溶液を作製。渦上に溶液を置き、完全に溶解する1〜1.5時間、連続して混ぜる。 </li><li>一方、ポリグリコール酸（PGA）のシートを削除冷凍庫から感じた、いくつかの5×8ミリメートルの部分を切り取る。また、単にフィルター上0.1〜10μlのピペットの先端を切り落とした。 </li><li>ピペットチップの先端部に19gの針（1.5長さ）を挿入し、PGAはマイクロピンセットを用いて、針の周りに感じ包む。 </li><li> 19 Gの針をその中に挿入されている間、慎重に、内腔が鈍い18 Gの針を使用して、近位部よりも直線的であるピペットチップの先端にフェルトを押してください。 </li><li>ピペット上からピペットチップに40μlのP（CL / LA）ソリューションを提供します。 PGAは、溶液と感じ飽和する。次いで、ピペットディスペンサーを用いて気泡を押し出す。 必要な場合には、このプロセスを繰り返す。 </li><li>場所の50ミリリットルチューブ内移植片および20分間-80℃の冷凍庫に入れてください。針の頭は下向きにしてください。 </li><li> 24時間凍結乾燥し、真空中にチューブを移す。空気の流れを持っているチューブの蓋を開けていることを確認してください。 </li><li>移植片を取り出し、針から削除します。 〜5ミリメ​​ートルのセクションを残して、移植片の両端をカットし、その形状を維持するために、針の上に戻ってそれらを置く。デシケーター中での移植片を保管してください。 </li><li>バイオセーフティーフードのO / Nの前に細胞播種のUV光の下で足場を置きます。 </li></ol> 2。骨髄単核細胞の回収および単離<ol><li>ケタミン/キシラジンの過剰摂取（ケタミン、200 mg / kgのキシラジンと、20 mg / kg）を持つマウスを安楽死させる。 </li><li>骨（大腿骨をAN削除する10 CCのRPMIでペトリ皿中10移植注入や場所のための3匹のマウスからDの脛骨）。 3のCC RPMIで新しいペトリ皿に25 G針で注射器を用いて骨とフラッシュ骨髄の両端をカットします。 15 CC管内に骨髄およびRPMI液を収集し、BMの残りの部分を収集するために、追加の2のCC RPMIでペトリ皿を洗う。 </li><li>サンプル（5〜10μl）を取り、 自動細胞カウンターまたは血球計数器を用いて細胞を数える。その結果を記録します。 </li><li> 15 CC遠心管に5のCCフィコールを入れて、骨髄およびRPMIソリューションを追加します。フィコールと混合するのを防ぐために非常に穏やかに溶液を入れる。 </li><li> 24℃で「ブレーキなし」と30分間528×gで遠心分離</li><li>上側のピンクの層を除去する。 MNC層であるミドルクリア層の図1を収集し、PBS 1時01分でそれを希釈する。 </li><li>遠心分離機24℃で10分間528×gで希薄MNCソリューション</li><li>上清およびジを削除5ミリリットルのPBSでペレットをリュート。 </li><li> 24℃で10分間、528×gでペレット溶液を遠心分離</li><li>上清を取り除きます。 RPMI中（〜200μL）の適切な量で、ペレットを希釈します。 </li><li> 5〜10μlのサンプルを取り、 自動細胞カウンターまたは血球計算板を用いて細胞を数える。その結果を記録します。 1より多くの時間をカウントし、細胞を繰り返して、平均セル数を計算する。 </li><li>のRPMIを使用してμlの1,000,000 cells/10に細胞濃度を希釈する。 </li></ol> 3。細胞播種<ol><li>のRPMIを削除して、5分間の管腔内5μLのRPMIを追加することで、予備湿潤足場。 </li><li>足場内腔へのステップ2.12からRPMI中で10μlの骨髄由来の単核細胞を加え、10分、細胞が足場に取り付けることができるようにするのを待ちます。 </li><li> 1cmの長さに19 G針をカットし、足場の形状を維持するために、足場の内腔に針を入れた。 24ウェルプレートに載せてください。&lt;/李&gt; <li>各ウェルに千μLのRPMIを加え、インキュベーター中で、O / Nインキュベートする。 </li></ol> 4。グラフト移植<ol><li>手術前に、すべての手術器具をオートクレーブ：細かいハサミ、3Xマイクロ鉗子、2倍のマイクロ血管クランプ、鉗子を適用する1Xクランプ、1Xマイクロニードルホルダー、1X春のはさみ、1Xリトラクターを1X。 </li><li> 6〜8週齢の雌C57BL / 6は、組織工学的血管移植片のレシピエントとして使用されている。そのケージからマウスを削除し、ケタミン/キシラジンカクテルで腹部の右下の象限（ケタミン、100 mg / kgのキシラジンと、10 mg / kg）を腹腔内注射により麻酔して、それを比較検討する。ケトプロフェン（5 mg / kgを、IPは）事前に麻酔鎮痛剤として使用されます。 </li><li>物語つまんで鎮静のレベルを確認し、腹部の毛をクリップ。無菌眼軟膏で目を潤滑し、パッド上の背側横臥位にマウスを置きます。ベタジンとアルコールパッドで腹部を消毒。 CO無菌ドレープでマウスをVERだけ切開領域を公開します。 </li><li>恥骨領域への剣状突起下から正中開腹切開を行い、自己保持リトラクターを挿入します。生理食塩水湿らせたガーゼで腸を包む。ぶっきらぼう大動脈大動脈と大静脈を定義します。 </li><li>近位大動脈と大静脈の遠位両側の2のマイクロ血管のクランプを配置し、ぶっきらぼうに大静脈トランセクト大静脈から大動脈を分離する。必要に応じて、テーパー針に10-0モノフィラメント縫合糸で腹部大動脈の枝を結紮。 </li><li>無菌10-0縫合糸を使用して吻合を終了するために、近位端および遠位端と下大静脈の介在移植片を移植する。マウスの解剖学に依存し、移植片、出荷までmmで、トリム。近位端および遠位端の両方で1ステッチで移植性を確保し、移植片の反対側から4-5 stichesで連続縫合を開始します。前面を終えた後、クランプおよび移植片を反転反対側に、グラフトの裏側を縫合。注入中に、急性血栓症を予防するために頻繁にヘパリン溶液で移植片をフラッシュします。 </li><li>近位クランプを外し、局所吸収性無菌止血剤を塗布して出血を制御します。出血が完全に停止すると、遠位クランプを取り外して、出血を同じように制御します。血液が移植片を流れて​​いることを確認してください。 </li><li>含まねじ切り針で6-0黒色ポリアミドモノフィラメント縫合糸を使用した2層に腹部の筋肉と皮膚を閉じます。 </li><li> 0.5ミリリットルの生理食塩水を皮下注射すると、マウスが完全にモバイルになるまで、温暖化パッド上で回復ケージにマウスを置きます。復旧時には、紙の寝具で新しいケージにマウスを返す。 48時間、鎮痛薬（イブプロフェン、30 mg / kgで、飲料水）を得た。 </li></ol>

<ol><li>Heart Association, A. merican <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+Disease+and+Stroke+Statistics%E2%80%942012+Update%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart Disease and Stroke Statistics—2012 Update.</a> Circulation. 125, (2012).</li>
<li>Shinoka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creation+Of+Viable+Pulmonary+Artery+Autografts+Through+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Thoracic+and+Cardiovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Creation Of Viable Pulmonary Artery Autografts Through Tissue Engineering.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 115, 536-546 (1998).</li>
<li>Hibino, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Late-term+results+of+tissue-engineered+vascular+grafts+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Thoracic+and+Cardiovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Late-term results of tissue-engineered vascular grafts in humans.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 139, 431-436 (2010).</li>
<li>Shin'oka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Midterm+clinical+result+of+tissue-engineered+vascular+autografts+seeded+with+autologous+bone+marrow+cells%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Thoracic+and+Cardiovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Midterm clinical result of tissue-engineered vascular autografts seeded with autologous bone marrow cells.</a> The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 129, 1330-1338 (2005).</li>
<li>Brennan, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+vascular+grafts+demonstrate+evidence+of+growth+and+development+when+implanted+in+a+juvenile+animal+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered vascular grafts demonstrate evidence of growth and development when implanted in a juvenile animal model.</a> Ann Surg. 248, 370-377 (2008).</li>
<li>Roh, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+an+autologous+tissue-engineered+venous+conduit+from+bone+marrow-derived+vascular+cells%3A+optimization+of+cell+harvest+and+seeding+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">Construction of an autologous tissue-engineered venous conduit from bone marrow-derived vascular cells: optimization of cell harvest and seeding techniques.</a> Journal of Pediatric Surgery. 42, 198-202 (2007).</li>
<li>Hibino, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+vascular+grafts+form+neovessels+that+arise+from+regeneration+of+the+adjacent+blood+vessel%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered vascular grafts form neovessels that arise from regeneration of the adjacent blood vessel.</a> The FASEB Journal. 25, 2731-2739 (2011).</li>
<li>Hibino, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+critical+role+for+macrophages+in+neovessel+formation+and+the+development+of+stenosis+in+tissue-engineered+vascular+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">A critical role for macrophages in neovessel formation and the development of stenosis in tissue-engineered vascular grafts.</a> The FASEB Journal. 25, 4253-4263 (2011).</li>
<li>Naito, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+Natural+History+of+Extracellular+Matrix+Production+in+Tissue-Engineered+Vascular+Grafts+during+Neovessel+Formation%5BTitle%5D)+AND+%22Cells+Tissues+Organs%22%5BJournal%5D)">Characterization of the Natural History of Extracellular Matrix Production in Tissue-Engineered Vascular Grafts during Neovessel Formation.</a> Cells Tissues Organs. 195, 60-72 (2012).</li>
<li>Naito, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Beyond+Burst+Pressure%3A+Initial+Evaluation+of+the+Natural+History+of+the+Biaxial+Mechanical+Properties+of+Tissue+Engineered+Vascular+Grafts+in+the+Venous+Circulation+Using+a+Murine+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model.</a> Tissue Eng. Part A. 20, (2013).</li>
<li>Mirensky, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+vascular+grafts%3A+does+cell+seeding+matter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered vascular grafts: does cell seeding matter.</a> Journal of Pediatric Surgery. 45, 1299-1305 (2010).</li>
<li>Roh, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+vascular+grafts+transform+into+mature+blood+vessels+via+an+inflammation-mediated+process+of+vascular+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered vascular grafts transform into mature blood vessels via an inflammation-mediated process of vascular remodeling.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 107, 4669-4674 (2010).</li>
<li>Mirensky, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+arterial+grafts%3A+long-term+results+after+implantation+in+a+small+animal+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered arterial grafts: long-term results after implantation in a small animal model.</a> Journal of Pediatric Surgery. 44, 1127-1133 (2009).</li>
<li>Lee, Y. U., Naito, Y., Kurobe, H., Breuer, C. K., Humphrey, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biaxial+mechanical+properties+of+the+inferior+vena+cava+in+C57BL%2F6+and+CB-17+SCID%2Fbg+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Biaxial mechanical properties of the inferior vena cava in C57BL/6 and CB-17 SCID/bg mice.</a> Journal of Biomechanics. 46, 2277-2282 (2013).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

TEVGのマウスモデルは、新組織形成と狭窄の開発の細胞および分子メカニズムを研究するための貴重なツールです。シードされたBM-MNCが移植11に播種した細胞の組織学的およびSEM画像の両方で示された。細胞播種の効率はまた、DNAアッセイ7を用いて示された。このモデル系を用いて、我々は、細胞播種が私たち人間の臨床試験3の故障の主なモードだっTEVG狭窄の開発の発生率を減少させることを示した。播種した細胞は、急速に、彼らはパラクリン機構8,12を経由してその効果を発揮することが示唆され、TEVGから姿を消した。また、新血管形成が免疫媒介回生プロセスであり、新生血管は、足場の管腔表面に沿って隣接する血管壁から血管細胞（ECおよびSMC）の内方成長から生じることが示された。また、通常のマクロファージ浸潤は、血管新組織形成のために不可欠であるこのプロセスが過剰になると、それはTEVG狭窄7,8の開発につながる。これらの結果は、ヒト疾患に対するこのマウスモデルの妥当性を示している。顕微技術は、動脈の移植片13および静...

先天性心疾患は、米国の出生の約8％に影響を与える深刻な状況である。先天性心疾患または2.4千あたりの出生とのそれらの乳児の約25％が、自分の人生1の最初の年に侵襲的な治療を必要とする。先天性心疾患のための最も有効な治療は、再建手術である。残念ながら、現在利用可能な血管導管の使用に起因する合併症は術後の罹患率と死亡率の最も重要な原因である。 この問題に対処するために、我々は、臨床使用のために第2組織工学血管移植片（TEVGs）を開発した。 TEVGsは、自家骨髄由来の、単核細胞（BM-MNCを）を播種し、先天性心臓手術のための静脈の導管として移植生分解性ポリエステルチューブから構築した。結果は、フォローアップの1〜3年で優れた開存率を示したが、狭窄の重要な発生率<s3,4&gt;まで。これは、血管新組織形成とTEVG狭窄の開発の基礎となるメカニズムのよりよい理解が必要であることは明らかであった。より良いTEVGsの開発や狭窄開発のメカニズムを理解するためには、ヒツジモデルは5,6を作成しました。このモデルでは、TEVGs正常生体血管に変換され、天然の静脈の形態と機能の両方において同様であった。大型動物モデルの使用はTEVGsの臨床使用量を助け、重要な前臨床情報を提供する上で良い最初のステップでした。しかし、大規模な動物モデルを用いTEVGsの血管新組織形成の細胞および分子メカニズムの完全な理解は原因種特異的分子ツールが不足しているため血管細胞の表現型の分子特性の限界に制限されています。これらの欠点を克服するために、TEVGsのマウスモデルは、マウス遺伝学の急速な進歩とその広範なmoleculaの理由によって開発されました短縮された時間スケールの付加的な利点を持つRの特性評価。 マウスのIVC介在モデルを忠実に大型動物やヒトで発生する新生血管形成の過程をで要約するが、はるかに短い時間経過6-9以上。ここで、生分解性の足場を用いた小規模な移植片の製造のための詳細なプロトコルは、BM-MNCの回収と単離、足場上のBM-MNCの播種、およびマウスモデルにおける移植片植え込みについて説明した。

<table><tbody><tr><td>ポリグリコール酸(PGA)フェルト</td><td>生物医学構造</td><td></td><td>カスタム注文</td></tr><tr><td>ピペットチップ、0.1-10 &mu;l&nbsp;</td><td>フィッシャーシエンティフィ</td>ック <td>02-707-456</td><td></td></tr><tr><td>凍結乾燥機&nbsp;</td><td>Labconco</td><td>7070020</td><td></td></tr><tr><td>RPMI medium 1604</td><td>Gibco</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>ペトリ皿</td><td>BD</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>24 ウェルプレート</td><td>Corning</td><td>3526</td><td></td></tr><tr><td>15 cc チューブ&nbsp;</td><td>BD</td><td>352096</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll Sigma</td><td></td><td>10831-100ml</td><td>「Histopaque」とも呼ばれる</td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Littauer ボーンカッター 4.5" ストレート</td><td>Roboz</td><td>RS-8480</td><td>BM 収穫</td></tr><tr><td>鉗子用 4.5"</td> <td>Roboz</td><td>RS-8120</td><td>BM 収穫</td></tr><tr><td>用ハサミ 4.5"</td> <td>Roboz</td><td>RS-5912</td><td>BM収穫</td></tr><tr><td>顕微鏡</td>ライ<td>カ</td><td>M80</td><td></td></tr><tr><td>C57BL / 6J(H-2B)、女性</td><td>ジャクソン研究所</td><td>664</td><td>8-12週間</td></tr>ケ<tr><td>タミン塩酸塩注射</td><td>Hospira Inc.</td><td>NDC 0409-2053</td><td></td></tr>キシ<tr><td>ラジン滅菌溶液</td><td>Akorn Inc.</td><td>NADA#139-236</td><td></td></tr><tr><td>ケトプロフェン</td><td>フォートドッジアニマルヘルスNDC</td><td>0856-4396-01</td><td></td></tr><tr><td>イブプロフェン</td><td>PrecisionDose</td><td>NDC 68094-494-59</td><td></td></tr><tr><td>ヘパリンナトリウム</td><td>Sagent Pharmaceticals</td><td>NDC 25021-400</td><td></td></tr><tr><td>生理食塩水(滅菌0.9%塩化ナトリウム)</td><td>ホスピーラ株式会社</td><td>NDC 0409-0138-22</td><td></td></tr><tr><td>0.9%塩化ナトリウム注射</td><td>ホスピーラ株式会社</td><td>NDC 0409-4888-10</td><td></td></tr><tr><td>ワセリン眼科軟膏</td><td>Dechra獣医製品</td><td>NDC 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>ヨウ素調製パッド</td><td>トライアド使い捨て株式会社</td><td>NDC 50730-3201-1</td><td></td></tr><tr><td>アルコール調製パッド</td><td>McKesson株式会社</td><td>NDC 68599-5805-1</td><td></td></tr><tr><td>綿先端アプリケーター</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>23-400-118</td><td></td></tr><tr><td>ファインハサミ</td><td>FST</td><td>14028-10</td><td></td></tr>マイクロ<tr><td>アドソン鉗子</td><td>FST</td><td>11018-12</td><td></td></tr>クランプ<tr><td>適用鉗子</td><td>FST</td><td>00072-14</td><td></td></tr><tr><td>S&T血管クランプ</td><td>FST</td><td>00396-01</td><td></td></tr>スプリング<tr><td>はさみ</td><td>FST</td><td>15008-08</td><td></td></tr>コリ<tr><td>ブリリトラクターFST</td><td></td><td>17000-04</td><td></td></tr>デュ<tr><td>モン#5鉗子</td><td>FST</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>デュモン#7-細かい鉗子</td><td>FST</td><td>11274-20</td><td></td></tr>デュ<tr><td>モン#5/45鉗子</td><td>FST11251-35</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ティッシュニードルホルダー/鉗子</td><td>Micrins</td><td>MI1540</td><td></td></tr><tr><td>ブラック ポリアミド モノフィラメント 縫合糸, 10-0</td><td>AROSurgical Instruments Corporation</td><td>TI638402</td><td>縫合用</td></tr><tr><td>ブラック ポリアミド モノフィラメント 縫合, 6-0</td><td>AROSurgical Instruments</td><td>SN-1956</td><td>筋肉組織および皮膚閉鎖用</td></tr><tr><td>不織布スポンジ</td><td>McKesson Corp.</td><td>94442000</td><td></td></tr>吸収<tr><td>性止血</td>剤<td>Ethicon</td><td>1961</td><td></td></tr><tr><td>1 mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>3 mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309657 10</td><td></td></tr><tr><td>mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>18 G 1.5 in、ニードル</td><td>BD</td><td>305190</td><td></td></tr><tr><td>25 G 1 in、ニードル</td><td>BD</td><td>305125</td><td></td></tr><tr><td>30 G 1 in、ニードル</td><td>BD</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>温水リサーキュレーター</td><td>Gaymar</td><td>TP-700</td><td></td></tr><tr><td>保温パッド</td><td>Gaymar</td><td>TP-22G</td><td></td></tr><tr><td>トリマー</td><td>ウォール</td><td>9854-500</td><td></td></tr></tbody></table>

マウスモデルにおける下大静脈介在移植の移植

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

骨髄単核細胞（のBMC）を播種した生分解性の足場は、しばしば、先天性心臓異常を治療するための再建手術のために使用される。長期臨床結果は、狭窄の有意な発生率が、優れた開存率を示した。血管新組織形成の細胞および分子機構を調査し、組織工学血管移植片（TEVGs）に狭窄発症を予防するために、我々は、約1mmの内径を有する移植片のマウスモデルを開発した。まず、ポリグリコール酸不織布から製造生分解性の管状の足場から組み立てたTEVGs、ε-カプロラクトンとL-ラクチド共重合体でコーティングされたメッシュと感じました。足場は、次いで、凍結乾燥機に入れ、24時間真空にし、細胞播種するまでデシケーター中に保存した。次に、骨髄を、ドナーマウスから採取し、単核細胞を、密度勾配遠心分離によって単離した。第三に、約100万個の細胞であった足場に播種し、O / Nインキュベート最後に、播種された足場は、その後、C57BL / 6マウスにおける大動脈大静脈介在移植片として移植した。注入された移植片は、血栓塞栓合併症や動脈瘤の形成の証拠がなく、優れた開存性（&gt; 90％）を示した。このマウスモデルは、理解で私たちを助け、TEVGに新組織形成の細胞および分子メカニズムを定量化します。

TEVG注入の概略図を図1に示されている。骨髄は、ドナーマウスから採取し、単核細胞を密度遠心分離を用いて単離し、その後、生分解性足場上に播種する。シードされた足場は、O / Nインキュベートし、下大静脈の介在移植片としてレシピエントマウスに移植した。 図2は、PGA-P（CL / LA）骨格の走査型電子顕微鏡を示す。内径は約1mmであり、壁の厚さは約0.17ミリメートルであった。総気孔率は78.5％であり、孔の大きさは45.4±17.6であったわけで。 C57BL / 6マウスのIVCに介在しTEVGの総イメージは注入（A）と打ち込み、（B）の後の2週間後に、図3右に示します。 （C）は、比較したネイティブIVCのグロス画像を示している。それがあることは明らかである移植片は、新組織で充填されたが、それはまだ元の移植片の形...

細胞および分子新組織形成の我々の知識を向上させるために、TEVGのマウスモデルは、最近開発されました。グラフトは、C57BL / 6マウスにおける大動脈大静脈介在移植片として移植した。このモデルは、私たちの臨床研究で達成されるものと同様の結果を達成するが、はるかに短縮され、時間経過とともに。

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

本手順の全体的な目的は、組織工学的に作製された血管グラフトにおける新生組織の形成および狭窄進展の細胞・分子メカニズムを調査することである。まず、ポリグリコール酸不織布メッシュをε-カプロラクトンおよびL-ラクチド共重合体でコーティングすることにより、生分解性管状スキャフォールドを構築する。次に、骨髄を採取し、密度勾配遠心法を用いて単核細胞を単離する。次に、約100万個の細胞をスキャフォールドに播種し、一晩インキュベートします。最終ステップとして、細胞を播種したスキャフォールドを下大静脈の間置グラフトとして移植します。最終的に、免疫組織化学染色により、組織工学的血管グラフト内への細胞浸潤および細胞外マトリックスの沈着を確認することができます。この手法の目的は、狭窄の形成原因および組織工学的血管グラフトについてより深く理解し、その情報を活用してより優れた組織工学的血管グラフトを設計することにあります。我々の臨床研究から、組織工学的な導管を移植された患者の約4分の1に狭窄が生じることが明らかになりました。我々の目標は、この問題を解消することです。この手法は先天性心疾患に適用可能であるだけでなく、結腸バイパス手術や、静脈還流路の変更を目的とした導管形成術にも適用できます。一般的に、この手法に不慣れな者は、静脈浸透時に必要とされる精緻なマイクロサージャリー技術に苦労します。私たちがこの手法を考案したのは、ヒト臨床試験で使用している組織工学的に作製した血管グラフトにおいて、新生組織の形成をより適切に特性評価する方法と、組織内での狭窄発生を防止する方法を模索していた時でした。まず、ε-カプロラクトンとL-ラクチドの共重合体を混合し始めます。完全に溶解するまで60～90分かかります。その間に、冷凍庫からポリグリコール酸のシートを取り出し、5 mm × 8 mmのセクションを数個切り出します。次に、10 µL ピペットチップのフィルター部分を切り取り、その先端に19ゲージの針を挿入します。ピンセットを用いて、ポリグリコール酸フェルトを針の周りに巻き付けます。その後、鈍端の18ゲージ針を使用し、19ゲージ針を囲むようにフェルトをピペットチップの先端へと慎重に押し込みます。共重合体溶液の準備ができたら、ポリグリコール酸フェルトを溶液で飽和させるため、ピペットチップの上部に40 µLをロードします。気泡がすべてなくなるまで、ピペッターで気泡を押し出してください。準備したすべてのグラフトを、針先を下にして50 mLチューブに移し、-80 °Cで20分間静置します。その後、移植片を真空下で24時間凍結乾燥させます。翌日、チューブの蓋を開け、針から移植片を分離します。移植片の両端を切り落とし、4～5 mmのきれいなセクションにします。その後、グラフトが形状を維持できるように、ニードルの周

implantation-of-inferior-vena-cava-interposition-graft-in-mouse-model

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

マウス異所性心臓移植モデルは、拒絶反応や免疫応答のメカニズムを研究するための重要な方法であると多くの研究者によって証明されています。しかし、関係する技術はまだ厳しいです。標準的な技術を変更することにより我々は1000以上の移植で成功を収めている。...

マウスにおける異所心臓移植

組織工学心臓弁における新組織形成および狭窄の開発の基礎となる細胞および分子メカニズムを理解するためには、異所性心臓弁移植のマウスモデルを開発した。肺動脈心臓弁は異所心臓移植技術を用いてレシピエントに移植した。...

異心臓移植のマウスモデルを用いた肺動脈弁の移植

カフ技術は、技術的に困難な小血管の縫合糸吻合を避けることにより、マウスにおける異所性子宮頸部心臓移植のモデルを短縮し、促進します。このビデオペーパーで示されている技術的な詳細により、研究者は自分の研究室でこのモデルを確立できるはずです。...

マウスにおける異子宮頸心臓移植

このビデオは、ラットの静脈介在手術後の筋内膜過形成の発症を研究するモデルを示しています。...

静脈介在モデル：バイパスグラフト開存を研究するための適切なモデル

本プロトコルは、静脈移植片を用いた血管形成手術後の静脈内膜過形成を減衰させる戦略を開発するための動脈血圧に静脈を与えることによって、静脈内膜過形成を実験的に作り出すことを目的とする。...

静脈移植を用いた血管形成術を模したウサギ静脈間位置モデルによる動脈血圧下の内膜過形成の評価

異重症性腹部マウス心臓移植モデルにおける血液回路再建の新しい技術が実証されている。...

腹部マウス心臓移植モデルにおける血液回路再建

マウス心臓移植モデルは、移植免疫学を研究するための貴重な研究ツールとなります。本プロトコルは、層流を可能にするためにレシピエントの総頸動脈およびドナーの肺動脈幹にカフを配置することを含むマウス異所性頸部心臓移植を詳述する。...

血管カフを用いたマウスヘテロトピック頸部心臓移植

このプロトコルは、マウス同所性肝移植におけるカフ技術を使用した血管再建のための技術情報を提供します。...

マウス同所性肝移植におけるカフ技術による血管再建

ここでは、カフ技術を使用してマウス頸動脈に組織工学的血管移植片を移植するためのプロトコルが提示され、血管組織再生メカニズムを調査するための適切な動物モデルが提供されます。...

カフ法 による マウス頸動脈への組織改変血管移植片の移植

我々は、異所性後肢から首への血管化複合異種移植の再現可能なマウスモデルを提示します。この超顕微外科プロトコルは0.3〜0.5mmの血管吻合を含み、ナイロンフィラメント誘導と静脈カフを統合しています。この研究は、血管化複合型異種移植における寛容性、虚血再灌流損傷、免疫学的メカニズムに関する翻訳研究の信頼できるプラットフォームを提供します。...

マウスにおける異所性後肢から頸部への移植:血管化複合型アロ移植の超顕微外科モデル

学ぶ組織工学血管グラフトの新組織形成と狭窄発生の細胞・分子メカニズムをマウスモデルで解明する方法。骨髄由来単核球を用いた細胞播種と下大静脈介在移植の技術を習得し、グラフトの長期的機能向上に貢献する知見を得られます。

マウスモデルにおける下大静脈介在移植の移植

さらに動画を探す