Name: 異心臓移植のマウスモデルを用いた肺動脈弁の移植 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 56 s
Description: 学ぶマウスモデルを用いた肺動脈弁の異心臓移植法。組織工学心臓弁における新組織形成と狭窄発生の細胞・分子メカニズムを解明し、高周波超音波で血流モニタリングを行う技術を習得できます。

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この作品は、CKBのNIH（RO1 HL098228）からの助成金によって部分的にサポートされていました。

注：すべての動物の手続きは、全国の小児病院施設内動物管理使用委員会によって承認された。 心臓弁ドナーマウスから1。肺心臓弁の収穫<ol><li>手術前に、すべての手術器具をオートクレーブ：細かいハサミ、3Xマイクロ鉗子、2倍のマイクロ血管クランプ、鉗子を適用する1Xクランプ、1Xマイクロニードルホルダー、1X春のはさみ、1Xリトラクターを1X。 </li><li> 6〜8週齢の雌C57BL / 6マウスは、肺、心臓弁供与体として使用される。そのケージからマウスを取り外して重量を量ると、ケタミン/キシラジンカクテル（ケタミン、200 mg / kgのキシラジンと、20 mg / kgを、IP）の過剰投与により安楽死させる。 </li><li>胸の部分をクリップし、パッドの上に背側横臥位にマウスを置きます。その後、開胸を行います。 、心臓を露出右心房に小さなカットを行い、氷冷生理食塩水で左心室を灌流。 </li><li>ぶっきらぼう昇順Aからの肺動脈（PA）を解剖するオルタ。肺動脈の2ミリメートルカフと一緒に肺動脈弁（PV）を切り出す。心の残りを処分。 </li><li>冷たいヘパリンおよび食塩水（100単位/ ml）で、PVを格納します。注：PVは、ドナー心臓への移植前2時間溶液中に保持することができる。 </li></ol> 2。ドナー心臓の準備<ol><li> 6〜8週齢の雌C57BL / 6マウスは、心臓ドナーとして使用される。そのケージからマウスを取り外して重量を量ると、ケタミン/キシラジンカクテル（ケタミン、200 mg / kgのキシラジンと、20 mg / kgを、IP）の過剰投与により安楽死させる。これは、端末の手順である。 </li><li>胸の部分をクリップし、パッドの上に背側横臥位にマウスを置きます。その後、開胸を行います。ぶっきらぼう心臓、下大静脈（IVC）、上大静脈（SVC）、上行大動脈、PA、および肺静脈を分離する。氷冷、滅菌生理食塩水でIVCを灌流。 </li><li> IVC、SVC、その後、より優れカット6​​-0絹縫合糸で肺静脈を結紮合字。 </li><li> 2ミリメートルカフと大動脈とPAをカット。 </li><li> PVを切り出し、それを処分する。 </li></ol> 3。心臓弁移植ドナー心臓の上に<ol><li>すぐにステップ2.5の後に、ドナー心臓にステップ1.5から心臓弁を配置し、心臓弁を向けます。 </li><li>テーパー針に10-0モノフィラメント縫合糸を使用したバルブの右側のステッチのPVを確保し、太陽光発電の反対側から5-6 stichesで連続縫合を開始します。 </li><li>前面を終えた後、水平に心を回転させ、ドナー心臓へのPVの裏側を縫合し始める。 </li><li>冷滅菌ヘパリン/食塩水に心を保管してください。注：ドナー心臓をレシピエントマウスへの移植前2時間溶液中に保持することができます。 </li></ol>受信者のマウスの上に4。異心臓移植<ol><li> 6-8週齢の雌C57BL / 6マウスRECIとして使用されたpient。そのケージからマウスを削除し、ケタミン/キシラジンカクテル（ケタミン、100 mg / kgのキシラジンおよび10 mg / kgの）で麻酔して、それを比較検討する。ケトプロフェン（5 mg / kgの）を、前麻酔鎮痛剤として使用される。 </li><li>つまんテールによる鎮静のレベルを確認した後、腹部と胸の毛をクリップ。無菌眼軟膏で目を潤滑し、パッド上の背側横臥位にマウスを置きます。ベタジンとアルコールパッドで腹部を消毒。その後、滅菌ドレープでマウスをカバーし、唯一の切開領域を公開します。 </li><li>恥骨領域への剣状突起下から正中開腹切開を行い、自己保持リトラクターを挿入します。生理食塩水湿らせたガーゼで腸を包む。ぶっきらぼう大動脈大動脈と大静脈を定義します。 </li><li>血液の循環を抑制するために大動脈と下大静脈を中心に近位および遠位2 6-0絹縫合糸を配置します。 </li><li>腹部大動脈の右側にドナー心臓を配置し、滅菌GAUでそれをカバーZE。生理食塩水で保湿し。 </li><li> 30 Gの針を用いて腹部大動脈に大動脈切開を行い、ドナーの大動脈の大きさにハサミで開口部を拡張する。 </li><li>テーパー針に無菌10-0モノフィラメント縫合糸を使用してエンドツー側吻合を行う。腹部大動脈の開口部の近位端に1ステッチとドナーの大動脈を確保し、腹部大動脈の先端から4-5 stichesで連続縫合を開始します。 </li><li> 、左側に心をフリップ生理食塩水を注入ガーゼでそれをカバーし、腹部大動脈の先端から4-5 stichesと連続して縫合糸に開始します。 </li><li> 30 Gの針を用いてIVCにおける静脈切開を行い、ドナー肺動脈の大きさに開口部を拡張する。 </li><li>テーパー針に無菌10-0モノフィラメント縫合糸を使用した側吻合に終止符を実行します。 IVCの開口部の近位端に1ステッチとドナーのPAを確保してから4-5 stichesで連続縫合を開始下大静脈の先端部。大動脈の方法であるため、今回は、ドナーのPAの左側壁の縫合は、IVCの内側にあることを確認してください。 </li><li>ヘパリンおよび生理食塩水（100単位/ ml）でIVC内腔を洗い流す。先端部に連続して、それらを縫合することにより、ドナーとレシピエントのPA IVCの右壁を閉じます。 </li><li>遠位合字を削除し、局所吸収性無菌止血剤を塗布して出血を制御します。出血が完全に停止すると、近位の縫合糸を取り除き、出血を同じように制御します。 </li><li>腸を返して6-0黒色ポリアミドモノフィラメント縫合糸を使用した2層に腹部の筋肉と皮膚を閉じます。 </li><li> 0.5ミリリットルの生理食塩水を皮下注射すると、マウスが完全にモバイルになるまで、温暖化パッド上で回復ケージにマウスを置きます。復旧時には、紙の寝具で新しいケージにマウスを返す。 48時間、鎮痛薬（イブプロフェン、30 mg / kgで、飲料水）を得た。やる完全に回復するまで、他の動物の会社に手術を受けている動物を返さない。 </li></ol>

<ol><li>Polito, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+morbidity+and+mortality+in+very+preterm+VLBW+infants+with+congenital+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Intens+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Increased morbidity and mortality in very preterm VLBW infants with congenital heart disease.</a> Intens Care Med. 39, 1104-1112 (2013).</li>
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<li>Shinoka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+engineered+heart+valves.+Autologous+valve+leaflet+replacement+study+in+a+lamb+model%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Tissue engineered heart valves. Autologous valve leaflet replacement study in a lamb model.</a> Circulation. 94, II164-II168 (1996).</li>
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<li>Sodian, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+in+vivo+experience+with+tissue-engineered+trileaflet+heart+valves%29%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Early in vivo experience with tissue-engineered trileaflet heart valves).</a> Circulation. 102, III22-III29 (2000).</li>
</ol>

我々は、開示することは何もありません。

この手順の死亡率は、主に受信者に腹部大動脈へのドナーの大動脈でのPV移植部位および吻合での出血によって引き起こされた20パーセント、に近接しています。ほとんどの場合、死亡率が有意に48時間後に手術を減少させる。生存したマウスは、移植PVを介して強力な心拍、血流を示した。全体のプロセスは、経験豊富なマイクロ外科医4時間かかります。これは、技術を習得するためにおよそ250匹のマウスがかかります。異所性心移植は、​​ドナー心臓へのPVの移植と比較して比較的単純である。成功したHV移植の最も重要なステップの一つは、ドナーマウスからPV構造の収穫である。 PV構造はバルブ下記1〜2ミリメートルの周りに横に切断する必要があります。残りの組織が短すぎると、吻合は、困難であろう。 PV下の組織、 すなわち （長すぎる場合。PAはアセンドに比べて長すぎになります）移植後に大動脈をING、注入されたPAは、ねじったり、キンクがあります。別の重要なステップは、移植されたPAと受信者IVC間吻合術である。 IVCは非常に薄いので、縫合中引き裂くことは極めて容易である。 このモデルでは、大...

先天性心血管の欠陥は西部の世界の1,2乳児死亡の主要な原因の1つです。その中でも、肺動脈弁狭窄症と二尖大動脈弁の欠陥が頻繁に生じる形態3である。心臓弁置換手術は、再建手術の通常の選択である。しかし、狭窄および石灰化心臓弁の、および抗凝固剤に終生の依存など、合併症は慢性的な病気と死4-7の重要な源である。また、成長の可能性がないことは、さらに、これらの若い患者4,8,9の死亡率を増加させる、リビジョン手術を必要とします。 生分解性合成心臓弁8上に成長性、Shinoka ら播種した自己由来細胞との機能的な置換心臓弁を開発する試みである。成長ポテンショ持つ構造体のようなネイティブの心臓弁に変換する合成バルブアル。予備大型動物研究は、機能的な心臓弁10を作成するために、この方法論を使用することの実現可能性を実証した。しかし、長期の移植研究は、心臓弁の狭窄を生じるバルブ新組織の進行性肥厚に乏しい耐久性を実証した。 Sodianから作業ら Shinoka手法を使用しましたが、最終的には、より生理的なプロフィール9,11,12を構築する組織工学弁の生体力学的特性を与えた生分解性エラストマーのPGA行列を置き換えました。 in vivo試験では、着床の成功にもかかわらず、コンフルエント内皮細胞ライニングが、この足場12の長期的な成功を制限する可能性が形成されなかった。 合理的に改善された第二世代合成心臓弁を設計するために、心臓弁移植のマウスモデルは、細胞および分子メカニズムを調べるために作成されたunderlyinGの新組織形成、バルブの肥厚、および狭窄の開発。マウスモデルは、他の種7で容易に入手できないトランスジェニックを含む分子試薬の広大な配列を提供しています。この心臓弁移植モデルにおいては、ex vivoで同系肺動脈心臓弁置換は、最初に実行した;した後、移植された心臓弁と心臓は顕微手法を用いて、同系宿主中に異所移植した。このモデルは、心肺バイパスを必要とせずに心臓弁置換を可能にします。 本研究では、心臓弁の収穫の詳細な説明は、ドナー心臓製剤、心臓弁移植、および異所心臓移植について説明する。結果は、受信者のハートビートとは無関係であったドナー心臓から連続ハートビートを示した。移植された肺動脈弁を通る血流がパルス波飲酒して高周波数超音波システムを用いて測定したppler。

<table><tbody><tr><td>DPBS</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td>ライ<td>カ</td><td>M80</td><td></td></tr><tr><td>C57BL / 6J(H-2B)、女性</td><td>ジャクソン研究所</td><td>664</td><td>8-12週間</td></tr><tr><td>ケタミン塩酸塩注射</td><td>Hospira Inc.</td><td>NDC 0409-2053</td><td></td></tr>キシ<tr><td>ラジン滅菌溶液</td><td>Akorn Inc.</td><td>NADA#139-236</td><td></td></tr><tr><td>Ketoprofen</td><td>Fort Dodge Animal Health</td><td>NDC 0856-4396-01</td><td></td></tr><tr><td>Ibuprofen</td><td>PrecisionDose</td><td>NDC 68094-494-59</td><td></td></tr><tr><td>Heparin Sodium</td><td>Sagent Pharmaceticals</td><td>NDC 25021-400</td><td></td></tr><tr><td>生理食塩水(滅菌0.9%塩化ナトリウム)</td><td>Hospira Inc.</td><td>NDC 0409-0138-22</td><td></td></tr><tr><td>0.9%塩化ナトリウム注射</td><td>ホスピーラ株式会社</td><td>NDC 0409-4888-10</td><td></td></tr><tr><td>ワセリン眼科軟膏</td><td>Dechra獣医製品</td><td>NDC 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>ヨウ素準備パッド</td><td>トライアド使い捨て株式会社</td><td>NDC 50730-3201-1</td><td></td></tr><tr><td>アルコール準備パッド</td><td>マッケソン株式会社</td><td>NDC 68599-5805-1</td><td></td></tr><tr><td>綿先端アプリケーター</td><td>フィッシャーSientific</td><td>23-400-118</td><td></td></tr><tr><td>細かいはさみ</td><td>FST</td><td>14028-10</td><td></td></tr><tr><td>マイクロアドソン鉗子</td><td>FST</td><td>11018-12</td><td></td></tr><tr><td>クランプ適用鉗子</td><td>FST</td><td>00072-14</td><td></td></tr><tr><td>S&T血管クランプ</td><td>FST</td><td>00396-01</td><td></td></tr>スプリング<tr><td>ハサミ</td><td>FST</td><td>15008-08</td><td></td></tr><tr><td>ColibriリトラクターFST</td><td></td><td>17000-04</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 鉗子</td><td>FST</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #7 - 細かい鉗子</td><td>FST</td><td>11274-20</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5/45鉗子</td><td>FST</td><td>11251-35</td><td></td></tr><tr><td>ティッシュニードルホルダー/鉗子</td><td>Micrins</td><td>MI1540</td><td></td></tr><tr><td>ブラックポリアミドモノフィラメント縫合糸、10-0</td><td>AROSurgical Instruments Corporation</td><td>TI638402</td><td>グラフトを縫合するための</td></tr><tr><td>ブラックポリアミドモノフィラメント縫合糸、6-0</td><td>AROSurgical Instruments</td><td>SN-1956</td><td>筋肉組織および皮膚閉鎖用</td></tr><tr><td>不織布スポンジ</td><td>McKesson Corp.</td><td>94442000</td><td></td></tr>吸収<tr><td>性止血</td>剤<td>Ethicon</td><td>1961</td><td></td></tr><tr><td>1 mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>3 mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>10 mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>18 G 1 1/2インチ、ニードル</td><td>BD</td><td>305190</td><td></td></tr><tr><td>25 G 1インチ、ニードル</td><td>BD</td><td>305125</td><td></td></tr><tr><td>30 G 1インチ、ニードル</td><td>BD</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>温水リサーキュレーター</td><td>ゲイ</td><td>マーTP-700</td><td></td></tr><tr><td>温暖パッド</td><td>ゲイ</td><td>マーTP-22G</td><td></td></tr><tr><td>トリマー</td><td>ウォール</td><td>9854-500</td><td></td></tr><tr><td>VEVO2100高周波超音波</td><td>VisualSonics</td><td><a href="http://www.visualsonics.com/vevo2100">http://www.visualsonics.com/vevo2100</a></td><td>カタログ番号と価格は、営業担当者から取得できます。</td></tr><tr><td>超音波透過ゲル</td><td>Parker Laboratories, INC.</td><td>01-02</td><td></td></tr><tr><td>卓上実験動物麻酔システム</td><td>VetEquip, INC.</td><td></td><td></td>901806</tr><tr><td>イソフルラン</td><td>バクスター</td><td>1001936060</td><td></td></tr></tbody></table>

異心臓移植のマウスモデルを用いた肺動脈弁の移植

Transplantation of Pulmonary Valve Using a Mouse Model of Heterotopic Heart Transplantation

組織工学心臓弁、特に脱細胞弁は、まちまちな結果と再建手術の臨床使用で躍進を始めている。しかし、新組織開発、弁の肥厚および狭窄の発生の細胞および分子メカニズムは広く研究されていない。上記の質問に答えるために、我々は、マウス異心臓弁移植モデルを開発しました。心臓弁は、弁ドナーマウスから採取し、心臓ドナーマウスに移植した。新しいバルブに心臓がレシピエントマウスに異所移植した。移植された心臓は、受信者の心拍とは無関係に、独自のビートを示した。血流は、パルス波ドプラで高周波数超音波システムを用いて定量した。移植された肺動脈弁を通る流れは、最小限の逆流との流れを前進示し、ピークフローは100mm /秒に近いものであった。心臓弁移植のこのマウスモデルであるhighl多用途のyので、変性及び異なる血行力学環境​​を提供するために、および/または組織工学心臓弁に新組織発達を研究するために、種々のトランスジェニックマウスと共に使用することができるように適合させることができる。

図1は、異所性心臓移植を用いた心臓弁移植モデルの概略図を示す。心臓弁は、ドナー心臓から採取し、第二のドナーマウスから心臓に移植した。次に、新しい心臓弁と心臓はレシピエントマウスの腹部に移植した。 図2は、腹部の空間（A）、右心臓移植（B）の後、および移植後5分に注入された心臓の図を示している。大動脈と下大静脈の両側に縫合糸を除去する際に、心臓は、後1〜2分のビートを開始し、より多くの血液循環とピンカーになる。右心房より、（B）よりも（C）に拡張されることに注意してください。心は徐々に強力なビートと24時間後に安定している。 移植された肺動脈弁を通る血流を使用して10日間、移植後に経皮的に測定した、パルス波ドプラモード（ 図3）と高周波数超音波システム。 Bモードでの大動脈の位置、右心室（RV）、注入された肺動脈弁（PV）、および肺動脈（PA）を<...

組織工学心臓弁における新組織形成および狭窄の開発の基礎となる細胞および分子メカニズムを理解するためには、異所性心臓弁移植のマウスモデルを開発した。肺動脈心臓弁は異所心臓移植技術を用いてレシピエントに移植した。

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed ...

この手順の全体的な目的は、組織工学的に作製した心臓弁における新生組織の形成、弁の肥厚、および狭窄の発現の根底にある細胞的および分子的なメカニズムを調査することです。これはまず、ドナーマウスの心臓組織から肺動脈弁を採取することで達成されます。2番目のステップでは、別のドナーから心臓全体を採取します。次に、ドナーの肺動脈弁をドナー心臓に植え込み、新しい心臓弁を備えた心臓をレシピエントマウスに異所的に移植します。最終的に、移植された心臓の機能および肺動脈弁を通過する血流は、高周波超音波システムのパルス波ドップラーモードを用いてモニターすることができます。他の大型動物モデルと比較したマウスモデルの使用による主な利点は、マウスモデルを用いることで、狭窄の形成や組織工学的心臓弁の開発における血管新生組織形成の根底にある細胞・分子メカニズムを研究することを可能にする、広範な分子試薬を活用できることです。一般的に、この手法に不慣れな人は、生存マイクロサージャリー（微小外科手術）の複雑さゆえに苦労することになります。移植部位への適切な浸透処理の習得が困難であること、また出血を伴わずに小口径血管への浸透処理を行うことが難しいため、本手法の視覚的な実演は極めて重要です。ドナーの肺動脈弁を採取するには、まず6～8週齢の雌のドナーマウス（C 57 black six）の胸部をクリップし、マウスを背臥位に固定します。開胸後、心臓を露出し、右心房を小さく切開して、左心室に氷冷生理食塩水を灌流します。次に、鈍的に肺動脈を上行大動脈から剥離し、肺動脈の2 mmのカフとともに肺動脈弁を切除します。採取した肺動脈弁は、ドナー心への移植まで、冷やしたヘパリン生理食塩水溶液中で最大2時間保存します。その後、ドナー心臓を採取します。安楽死させた6〜8週齢の雌ドナーC 57 black sixマウスに、前述のように鈍的な開胸術を行った後、心臓、下大静脈、上大静脈、上行大動脈、肺動脈、および肺静脈を分離します。下大静脈を氷冷した滅菌生理食塩水で灌流し、次に下大静脈、上大静脈、および肺静脈を6.0シルク縫合糸で結紮します。その後、結紮部位より上方で切断し、大動脈と肺動脈を2 mmのカフを持たせて切断し、肺動脈弁を切り出してドナー心臓に移植します。まず、弁をドナー心臓に配置し、組織の向きを調整します。次に、テーパー針に付いた10-0モノフィラメント縫合糸を用いて、弁の右側にステッチを入れ、固定します。その後、肺動脈弁の反対側に沿って5〜6回の連続縫合を行います。弁の前面の縫合が完了したら、心臓を水平に回転させ、肺動脈弁の背面をドナー心臓に縫合します。次に、ドナー心臓の肺静脈を結紮し、心臓を摘出します。その後、レシピエントマウスに移植するまで、心臓を冷たいヘパリン生理食塩水溶液に最大2時間浸しておきます。ここで、6〜8週齢の雌のレシピエントC 57 black sixマウスの足指をつねり、鎮静状態であることを確認します。腹部の被毛を刈り、滅菌眼軟膏で眼球を潤滑させた後、マウスを背仰臥位に固定し、ベタジンとアルコールパッドで腹部を消毒し、切開部位のみを露出させて滅菌ドレープでマウスを覆います。次に、剣状突起下から恥骨上部にかけて正中線に沿って開腹切開を行います。その後、自動開創器を挿入し、腸管を生理食塩水で湿らせたガーゼで包みます。鈍的に、腎下大動脈および下大静脈を剥離して露出させます。次に、6-0シルク縫合糸を2本用い、大動脈および下大静脈の近位側と遠位側を結紮します。血流を遮断するため、30ゲージの針を使用して、腹大動脈に大動脈切開を、下大静脈に静脈切開を施します。ハサミを用いて、ドナーの大動脈および肺動脈のサイズに合わせて開口部を広げます。ドナー心臓を腹大動脈の右側に配置し、湿らせた滅菌ガーゼで覆って保湿します。腹大動脈の開口部近位端でドナー大動脈を1針で固定し、次に腹大動脈の遠位端から4〜5針の連続縫合を行います。心臓を左側に向けます。生理食塩水で浸したガーゼで心臓を覆い、腹部大動脈の遠位端をさらに4〜5本の連続縫合で縫合します。ドナー肺動脈の近位端を下大静脈開口部の1箇所で縫合し、次に下大静脈の遠位端から4〜5本の連続縫合を行います。次に、下大静脈CVA腔をヘパリンおよび生理食塩水でフラッシュします。ドナー肺動脈の右壁とレシピエント下大静脈CVAを、遠位端に向かって連続縫合で閉鎖します。その後、遠位側の結紮を解除し、出血を制御するために吸収性局所止血剤を塗布します。出血が完全に止まったら、近位側の結紮糸を取り除き、2回目の出血を同様に制御します。吻合が成功すれば、移植した心臓は5分以内に拍動し始めます。その後、腸を戻し、6-0縫合糸を用いて腹壁筋と皮膚を2層にわたって縫合します。最後に、生理食塩水0.5 millilitersを皮下注射し、マウスが完全に動けるようになるまで、加温パッドを敷いた回復用ケージに入れて管理します。回復後、マウスを紙ベースの敷材を入れた新しいケージに単独で収容し、完全に回復するまで鎮痛剤を投与してください。48時間は飲水させます。これらの画像では、心移植直後および移植5分後の腹腔内に移植された心臓を示しています。大動脈と下大静脈の両側の結紮糸を外すと、1〜2分以内に心拍が始まり、血液が循環し始めるにつれて心臓の色が赤みを帯びてきます。右心房でより大きな拡張が起こることに注意してください。心拍が徐々に強まり、24時間後に安定すると、移植後10日目に経皮的に移植した肺動脈弁を通過する血流を測定できます。パルス波ドプラモードを備えた高周波超音波システムを用いて、Bモードで大動脈、右心室に移植された肺動脈弁、および肺動脈の位置を観察できます。図式に示されているように、黄色のサンプルボリュームのオーバーレイは移植されたPV上に配置されています。グラフに示されている通り、ドナー心臓のQRS波が、レシピエント心臓の波とは独立して周期的に検出されており、ピーク速度は約100 millimeters per secondです。この手順を行う際は、肺動脈弁移植部位、またはドナーの大動脈からレシピエントの腹部大動脈への吻合部における出血を完全に止めることが重要です。この手順に続き、疾患化した心臓弁に集積する細胞の由来に関するさらなる疑問を解決するために、組織工学的に作製した心臓弁を移植マウスに移植するなどの他の手法を実施することも可能です。このビデオを視聴することで、マウスモデルにおける肺動脈弁の採取方法、心臓弁置換術、および異所性心臓移植の手順について十分な理解が得られたはずです。

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マウス異所性心臓移植モデルは、拒絶反応や免疫応答のメカニズムを研究するための重要な方法であると多くの研究者によって証明されています。しかし、関係する技術はまだ厳しいです。標準的な技術を変更することにより我々は1000以上の移植で成功を収めている。...

マウスにおける異所心臓移植

マウスの心臓の異所性移植のための顕微手術のための技術が実証されています。これには、ドナー採取とレシピエント血管の吻合のための簡略化された方法が含まれています。...

異マウスハートTransplantion用に変更する方法

原稿は、マウスで異所性心移植を実行するために必要な手順について説明します。...

ネズミ異心臓移植技術

結合された固形臓器と血管新生複合同種移植を研究するために、マウスにおける新しいヘテロトピックの一括胸壁、胸腺、および心臓移植モデルを子宮頸部非縫合カフ技術を用いて記述します。...

マウスにおける異所のための新しい顕微モデル、エン圏胸壁、胸腺、および心臓移植

ここでは、新しい心保護戦略を研究するためにしっかりと確立され、利用されている正頭外核移植の前臨床大型動物(ブタ)モデルについて説明する。...

オルソトピック心臓移植の前臨床ブタモデル

異重症性腹部マウス心臓移植モデルにおける血液回路再建の新しい技術が実証されている。...

腹部マウス心臓移植モデルにおける血液回路再建

このプロトコルは、心臓弁のアロア活性の研究を可能にするために、腎嚢の下に大動脈弁小葉を移植するための簡単で効率的な方法を記載している。...

げっ歯類におけるヘテロトピック心臓弁移植のための簡略モデル

本プロトコールでは、心臓同種移植片拒絶反応のメカニズムを調べるためにマウス心臓移植モデルが用いられる。この異所性心臓移植モデルでは、手術効率が向上し、修正カフ技術を用いた心臓移植の頸部エンドツーエンド吻合によって心臓移植片の生存が確保されます。...

マウス頸部異所性心臓移植モデルのための修正カフ法

マウス心臓移植モデルは、移植免疫学を研究するための貴重な研究ツールとなります。本プロトコルは、層流を可能にするためにレシピエントの総頸動脈およびドナーの肺動脈幹にカフを配置することを含むマウス異所性頸部心臓移植を詳述する。...

血管カフを用いたマウスヘテロトピック頸部心臓移植

このプロトコルは、マウス頸部心臓移植のための簡略化された端側縫合吻合技術を提示し、移植免疫学の研究において堅牢かつ再現性の高いモデルを提供します。...

エンドツーサイド吻合技術を用いた子宮頸部ヘテロトピオマウス心臓移植による移植免疫学の研究

学ぶマウスモデルを用いた肺動脈弁の異心臓移植法。組織工学心臓弁における新組織形成と狭窄発生の細胞・分子メカニズムを解明し、高周波超音波で血流モニタリングを行う技術を習得できます。

異心臓移植のマウスモデルを用いた肺動脈弁の移植

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