Name: 永続かつ広範な神経伝達のための新生児マウス脳の脳室内ウイルス注射 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 15 s
Description: 学ぶ新生児マウス脳の脳室内ウイルス注射法。AAVを用いて広範な神経細胞への遺伝子導入を実現し、脳全体での持続的な発現が可能です。神経回路研究や遺伝子機能解析に有用な手法です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

この研究は、Robert A. and Rene E. Belfer Family Foundation、NIA R21 AG038856 (JLJ)、BrightFocus Foundation Alzheimer's Disease research grant A2010097 (JLJ)、NIA Biology of Aging Training grant T32 AG000183 (support for SDG) の支援を受けました。

実験動物の管理と使用のための健康ガイドの国立研究所に従って動物を含むすべての手続きとプロトコルを実行します。ここで説明する手順を見直し、医療施設内動物管理使用委員会のベイラー医科大学によって承認された。 齧歯類の脳における導入遺伝子の送達のための複製不能アデノ随伴ウイルス（AAV）ベクターは、生物学的安全性レベル1の使用が承認されている。適切な保護やウイルスの取り扱い手順についての具体的な要件について詳しく説明し、「微生物学および生物医学研究所（BMBL）におけるバイオセーフティ &quot;米国政府の出版のためのCDCのウェブサイトを参照してください。ウイルスを用いた手順のための制度固有の要件を学ぶために地元の獣医と環境安全スタッフに確認してください。手続き室、検疫、およびバイオハザードケージの識別に関する規程は教育機関ごとに異なる​​。 1。前P0仔と養母を削減する<ol><li>すべての妊婦および授乳雌は繁殖および授乳のエ​​ネルギー需要をサポートするために、高脂肪食を提供します。 </li><li>夜には、単一の居住者の男性のケージに1つまたは2つの健康な女性のを追加して飼育ケージを設置。翌朝は、差込みプラグ用​​のメスをチェックし、プラグが存在する場合には、男性から、女性を分離する。 <ol><li>貧しい母親の特性（例えば、C57BL / 6またはC3HeJ）との遺伝的背景から子犬を上げるために養母を使用してください。転送子犬が養母自身のごみの4日以内に生まれた場合は、フォスターの母親は、他のゴミから子犬を受け入れる。 </li><li>メス2組のほぼ同時に配信するように実験的なブリーダーと並んで、ICRまたはFVBメスを使用して個別の交配ケージをセットアップします。 </li></ol></li><li>女性はバックグラウンド系統に応じて、プラグ日から19±1日でお届けします。 3日前からd（16日プラグ日以降）eliveryは、新鮮なネスティング材料と覆われた避難所で清潔なケージに妊娠中の女性を配置します。 </li><li>一日二回出産予定日の2日前（17日プラグ日以降に）開始する新生児のために確認してください。ピンク新生児の存在について、底部を通ってかいま見ることで母親に最小応力とケージを確認します。マウスは、一般的には午後にお届けします午前中が、まれに子犬をお届けします。 </li><li>子犬、またはいずれか早い方の誕生の6時間内（可視ミルクスポットによって明らかになる）介護されるとすぐに注射を実行するように計画します。 </li></ol> 2注射用機器を準備する<ol><li>一般のP0新生児用32 G針を10μlの注射器を準備します。定位噴射を行う場合は、マニピュレータアームの上にシリンジをマウントします。 </li><li>注射用の定位フレームを使用している場合、100％のエタンを追加して4-8℃に新生児のステージを冷却オールおよびブロックの先端のリザーバにドライアイス。仔の凍傷を避けるために、1℃以上の温度を維持する。 </li></ol> 3注射用のウイルス希釈液を調製する<ol><li> 1％トリパンブルー染料溶液（20×ストック）を準備します。 </li><li>クラス2バイオセーフティキャビネット内にアデノ随伴ウイルス（AAV）株式の5-25μlのアリコートを準備します。将来の使用のために-80℃でこれらの分量を配置します。これはウイルスが形質導入の有効性を失う原因となるような追加の凍結融解は避けてください。 </li><li>解凍する氷上で-80℃の冷凍庫と場所からのAAVの分量を削除します。 </li><li>氷冷した1×リン酸緩衝生理食塩水（PBS）中にウイルスを希釈して注射のためにウイルス溶液を調製する。形質導入パターンの初期最適化のための10倍連続希釈（10月10日から8月 10日までのウイルス粒子/半球）から開始します。 </li><li> 0.05％の最終濃度までAAV溶液に20倍のトリパンブルーを追加する。 </li></ol><pクラス= &quot;jove_title&quot;&gt; 4。注射用新生児のステージング<ol><li>冷却するために氷の上の小さなアルミ板を配置します。ドライタスク冷たい金属から子犬の皮膚を保護するために、プレートの上に拭きを置きます。これは子犬を麻酔し、注入するための平坦な冷たい面となっている。 </li><li>注射の前と後の温かい新生仔マウスを維持するのに適した温暖化パッドを準備します。 </li><li>新生児の看護師に始まったら、ケージからそれらの約半分を削除し、その母親と一緒に残りの半分を残す。注射を待つ間加温パッド上で収集子犬を置きます。 注：生物学的な母親が子犬の世話をしない場合は、すぐにケージから全体ゴミを除去し、注入を待つために加温パッド上に子犬を置く。この状況は、C57BL / 6雌とか、貧弱な繁殖特性を持つ他の近交系を持って生まれて最初のごみを生じる可能性がある。この状況では、牛乳のスポットは新生児に表示されません。 </li><li>低体温麻酔を誘導するために、コールド金属板上に温暖化パッドから1子犬を転送します。子犬が完全に麻酔をかけたになるのを2〜3分待ちます。非常に静かに足を絞ることによって麻酔を確認し、動きや呼吸の不足を監視します。 </li></ol>新生児マウスにAAVの5。注射<ol><li>フリーハンド新生児マウスへのAAVの頭蓋内注射： <ol><li>注射器にロード0.05％トリパンブルーで希釈されたAAVの5μlの。 </li><li>静かに70％エタノールに浸した綿棒で麻酔をかけた子犬の頭を拭く。 </li><li>それぞれの目のラムダ縫合糸からの距離の2月5日で、注射部位を特定します。代わりの注射部位は、約0.8〜1ミリメートルを半ラムダとブレグマとの間で、矢状縫合から側方に位置しています。これらのランドマークは、P0で、皮膚を通して見ることができます。 </li><li>非毒性実験室ペン注射部位をマークする。 </li><li> MONIのための目に見えるスケールで注射器を持ち分配され、溶液の量をtoring。 </li><li>親指がプランジャのトップに到達できることを確認してください。誤ってウイルスを分配避けるために針を配置しながら、プランジャーから親指を削除します。 </li><li>アイスバケットに腕をベンチに肘を置くと傾斜させて注入するためのアームをブレースに快適な位置を検索します。 </li><li>直接注射器の下に頭を横に子犬を置きます。マークされた注射部位が上に向くように子犬の頭を回し、静かにしっかり開いた手でこの位置を保持する。 </li><li>頭蓋骨の表面に垂直な注射器を持ち、約3mmの深さにマークされた注射部位に注射針を挿入します。抵抗は、針が側脳室に浸透したことを示す、わずかに減少するまで、針を注入する。参照が必要な場合は、非毒性メーカー付きの針の先端から3mmをマーク。染料tに基づいて、子犬の大きさと歪みのための注入深さを調整します心室のargeting。 </li><li>プランジ​​ャが脳に遠くに針を動かすことなく押すことができるように、しっかりと注射器を持ってください。注射は視床に変位すると、ウイルスの拡散が厳しく制限される。 </li><li>注射器から分配量を監視しながら、ゆっくりとウイルスを注入することから始めます。各心室に2μlに最大音量を管理します。針が正しい位置にある場合、色素は心室を埋めるために広がっていく。 </li><li>ゆっくりと針を撤回。 </li><li>最初の注射部位は、他の半球を注入する前に閉じるようにします。 注：複数回同じ部位に注入しないでください。すでに漏れるために注入し、子犬の負傷や死亡の原因とされている針の力ウイルスを再挿入。 </li><li>同じ手順を使用して反対側の心室を注入する。 </li></ol></li><li>新生仔マウスへのAAVの定位注射： <ol><li> 0.05％トリパンブルーのintで希釈されたAAVの負荷を5μl定位マニピュレータが保有する注射器O。 </li><li>静かに新生児のフレームの耳バーの間子犬の頭を置く。ヘッドはラムダとブレグマの間の線がステージに平行であることをチェックすることにより、Y軸（前から後ろ）にレベルであることを確認してください。ことを耳や目の間の線間の想像線をチェックすることで（左右に）頭をX軸でのレベルであることを確認し、ステージに平行である。 </li><li>静かに70％エタノールに浸した綿棒で、麻酔した子犬の頭を拭く。 </li><li>ラムダ上記注射器を位置決めするために、定位マニピュレータを使用し、XおよびY座標をゼロ。標準P0仔のための（X、Y）=（0.8、1.5）mmの定位腕を移動します。 注：子犬の大きさと定位座標は、歪みや年齢によって異なる場合があります。側脳室をターゲットにするために、必要に応じて色素の注射に基づいて座標を調整します。 </li><li>ゆっくりと注射部位に針を下ろします。頭蓋骨の表面は、indはしますENT、その後、針が皮膚を貫通した後に解放する。頭蓋骨が通常の凹形状を回復するまで、針を後退させるが、皮膚下に針のベベルを保つ。ゼロZは、この時点で座標です。 </li><li> Z = -1.7ミリメートルまで針を挿入し、-1.5 mmまで後退する。 </li><li>ゆっくりとウイルスを注入します。各半球は溶液2μlまで受け入れることができます。 </li><li>注入が完了した後に30〜60秒の場所に注射器を保管した後、ゆっくりと1〜2分間かけて、針を後退させる。 </li><li>注射部位のX軸に負の座標を使用して、対側半球に対して繰り返します。 注：注射のための代替座標は（X、Y、Z）=（0.8、2.0、-1.5）mmで（1.2、1.0、-1.5）mmである。 （0.8、2.0）での最初の注射を行った後、最終的には（0.8、-2.0）、（1.2、1.0）と（1.2、-1.0）に移動する。半球あたり2μlの合計で、各サイトで溶液1μlを注入。レの手順を完了するために、注射の間で迅速に移動します10分を超える秒。 </li></ol></li></ol> 6。ポスト噴射ケア<ol><li>両半球に注射を完了した後、正常にその体温や皮膚の色戻るまで加温パッドの上に子犬を後ろに置き、子犬が動き始める。 </li><li>注入された新生児を看護する実母を使用している場合、彼らは通常の移動を回復した後、生物学的な母親に注入された子犬を返します。温暖化パッド上に残っている未注射子犬を置きます。すべてのマウスが注入されるまで、手順を繰り返します。 </li><li>注入された新生児を看護する里親のお母さんを使用する場合、それらは通常の移動を回復した後に、ケアのために養母に注入されたすべての仔を転送します。 <ol><li>注入された動物の成功を確実にするために大部分またはケージから養母に所属仔のすべてを削除します。 </li><li>養母の子犬と注入された子犬は、同じ目や皮膚の色を持っている場合、彼らがすることができるので、実験室のペンで養母から子犬をマーク後で区別した。 </li><li>養母の子犬と注入された子犬と一緒に自分の寝具の一部を配置します。注入された子犬が新しい子犬の受け入れを向上させるために、彼女の生物学的子孫の香りを取得していることを確認してください。 </li><li>バック養母のケージにのみ注入された子犬を置きます。養母から残っている子犬を間引く。 </li></ol></li><li>母親がに出席し、ケージにそれらを配置する10分以内に注入された子犬を看護していることを確認します。母親はこの時間内に子犬を収集しない場合は、別の養母に子犬を転送します。 </li><li>それは、ウイルスを注射した動物が含まれていることを示すためにバイオハザードカードを使ってケージにラベルを付けます。ハウス72時間認定された場所にケージ。 </li><li> 72時間の検疫期間の後、清潔なケージに母と仔（ただし寝具やその他のケージ項目）を転送します。いずれのウイルスに汚染された寝具への露出を避けるために、レベル2のバイオセーフティキャビネット内のこの転送を実行します。 R通常のマウス施設に注入された動物できれいにケージをeturn。 </li><li> 、バイオハザードバッグに汚れたケージを置いてオートクレーブで滅菌した後、飼育ケージに戻します。 </li></ol> 7クリーンアップ<ol><li>将来の使用のために4℃で、残りのウイルス液を配置します。 4℃8で保存した場合、ウイルスは、少なくとも2ヶ月間、導入効率を保持します。 </li><li>脱イオン水中に繰り返さリンスに続いて、2％の漂白剤と注射針と注射器を消毒。 </li><li> 70％エタノールに続いて、2％の漂白剤とワーキングエリアを清掃してください。 </li><li>プラスチック製バイオハザードバッグに入れピペットチップ、チューブ、マスク、手袋を含むすべて使い捨てのアイテムを収集します。現地の法律や制度の方針（ すなわちオートクレーブまたは焼却）で必要とされる廃棄物を処分。 </li></ol> 8。イメージングのためのマウスの脳を準備<ol><li> 3-で二酸化炭素の安楽死チャンバ内に注射したマウスを置きます4週間後に注射。適切な安楽死の手順については、施設のガイドラインに従ってください。これは蛍光標識を消光するようホルムアルデヒドで動物を灌流しないでください。 </li><li>頭蓋骨から脳全体を取り出し、4℃でPBS中の4％パラホルムアルデヒド中で3-12時間、固定します。 </li><li>凍結保護のため30％ショ糖に固定された脳を転送します。脳が底に沈むまで4℃でインキュベートする。 </li><li>細かく砕いたドライアイスの入ったバケツを収集します。正中線の下半分に、脳をカットします。凍結し、ドライアイスで脳の半分を埋める。 </li><li>ドライアイスおよび100％エタノールを添加することによりミクロトームステージを冷却する。 </li><li> PBSを用いてダウン正中でステージに脳を固定し、凍結することができます。 </li><li>凍結スライディングミクロトームを用いて、30〜45ミクロンの厚さで脳の断面。 </li><li>不凍液（250ミリリットルのグリセロールを300mlのエチレングリコールを500mlの0.1Mリン酸緩衝液、pH7.4）を含む24ウェルプレートに置き部。カバープレートのWi将来の使用のために-20℃で、第スズ箔とストア。 </li><li> 1-4井戸からのセクションを収集し、PBS中で3回洗う。 </li><li>顕微鏡スライドとカバーガラスの上のセクションをマウントします。スライドは、暗い場所で乾燥することができます。 </li><li>ネイティブYFPまたはtdTomatoのための適切なフィルタを用いた画像スライドは、ウイルス形質導入パターンを確認します。 </li></ol>

<ol><li>De Vry, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+electroporation+of+the+central+nervous+system%3A+a+non-viral+approach+for+targeted+gene+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+neurobiology%22%5BJournal%5D)">In vivo electroporation of the central nervous system: a non-viral approach for targeted gene delivery.</a> Progress in neurobiology. 92, 227-244 (2010).</li>
<li>Sun, B., Gan, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manipulation+of+gene+expression+in+the+central+nervous+system+with+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Manipulation of gene expression in the central nervous system with lentiviral vectors.</a> Methods Mol Biol. 670, 155-168 (2011).</li>
<li>Puntel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+into+rat+brain+using+adenoviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Gene transfer into rat brain using adenoviral vectors.</a> Curr Protoc Neurosci. 4, (2010).</li>
<li>Passini, M. A., Wolfe, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Widespread+gene+delivery+and+structure-specific+patterns+of+expression+in+the+brain+after+intraventricular+injections+of+neonatal+mice+with+an+adeno-associated+virus+vector%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Widespread gene delivery and structure-specific patterns of expression in the brain after intraventricular injections of neonatal mice with an adeno-associated virus vector.</a> J Virol. 75, 12382-12392 (2001).</li>
<li>Passini, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraventricular+brain+injection+of+adeno-associated+virus+type+1+%28AAV1%29+in+neonatal+mice+results+in+complementary+patterns+of+neuronal+transduction+to+AAV2+and+total+long-term+correction+of+storage+lesions+in+the+brains+of+beta-glucuronidase-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">Intraventricular brain injection of adeno-associated virus type 1 (AAV1) in neonatal mice results in complementary patterns of neuronal transduction to AAV2 and total long-term correction of storage lesions in the brains of beta-glucuronidase-deficient mice.</a> J Virol. 77, 7034-7040 (2003).</li>
<li>Kim, J. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+transduction+of+the+neonatal+brain+delivers+controllable+genetic+mosaicism+for+visualising+and+manipulating+neuronal+circuits+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Viral transduction of the neonatal brain delivers controllable genetic mosaicism for visualising and manipulating neuronal circuits in vivo.</a> Eur J Neurosci. 37, 1203-1220 (2013).</li>
<li>Chakrabarty, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capsid+serotype+and+timing+of+injection+determines+AAV+transduction+in+the+neonatal+mice+brain%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Capsid serotype and timing of injection determines AAV transduction in the neonatal mice brain.</a> PloS one. 8, (2013).</li>
<li>Croyle, M. A., Cheng, X., Wilson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+formulations+that+enhance+physical+stability+of+viral+vectors+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+therapy%22%5BJournal%5D)">Development of formulations that enhance physical stability of viral vectors for gene therapy.</a> Gene therapy. 8, 1281-1290 (2001).</li>
<li>Bauer, H. C., Bauer, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+induction+of+the+blood-brain+barrier%3A+still+an+enigma%5BTitle%5D)+AND+%22Cellular+and+molecular+neurobiology%22%5BJournal%5D)">Neural induction of the blood-brain barrier: still an enigma.</a> Cellular and molecular neurobiology. 20, 13-28 (2000).</li>
<li>Cearley, C. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expanded+repertoire+of+AAV+vector+serotypes+mediate+unique+patterns+of+transduction+in+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+therapy+%3A+the+journal+of+the+American+Society+of+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Expanded repertoire of AAV vector serotypes mediate unique patterns of transduction in mouse brain.</a> Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1710-1718 (2008).</li>
<li>Grimm, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+gene+therapy+vector+evolution+via+multispecies+interbreeding+and+retargeting+of+adeno-associated+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo gene therapy vector evolution via multispecies interbreeding and retargeting of adeno-associated viruses.</a> J Virol. 82, 5887-5911 (2008).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する金融利害がないことを宣言します。

私たちは、新生児マウスの脳に広範に送達するためのビヒクルとしてAAVを使用して、ニューロン遺伝子発現を操作するための汎用性の手順を記載している。そのような子宮内電気穿孔1または定位頭蓋内注射2,3のように、神経細胞の遺伝子導入する他の方法と比較して、新生児のウイルス注射は、比較的簡単でシンプルです。基本的な手順は、アイスバケット及びマイクロシリンジで数分で行うことができる。最適な生存および導入遺伝子発現は、最も重要なウイルスストックの品質、噴射のタイミングと正確さ、および出生後のケアである、いくつかの技術的な詳細に出席することによって達成することができる。 ウイルス調製の質が成功した形質導入のために重要である。悪いウイルス調製が大幅に神経細胞の感染性を減少し、場合によっては非感染性粒子の食作用によって、かなりのアストロサイトの伝達を生成します。多くの大学ノースカロライナ大学とペンシルベニア大学でウイルスパッケージングに特化オンサイトコア研究所、大型施設を持っているが、低コストでの血清型の多様な高品質の既製の試薬を提供しています。これらの施...

神経遺伝子発現を改変するための従来の方法は時間がかかり、高価な生殖系列操作を必要とする。そのような子宮内エレクトロポレーションまたは定位レンチウイルス注入収量のように新たにアプローチより速く結果オルタナティブかつ低コストであるが、複雑な外科的介入1-3必要とするという欠点を持っている。さらに、導入遺伝子の発現は、これらの方法に制限された空間範囲を有する。本明細書では、新生児マウスの脳へのアデノ随伴ウイルス（AAV）の脳室内注射を介して広範な神経細胞操作のための、迅速、簡単、かつ経済的な方法を記載する。方法はまず、AAVは、それが未成熟上衣障壁を通って脳実質4に側脳室からの経過とともにそれは脳脊髄液内に拡散させてから、それらが小さな粒径を示唆2001年にジョン·ウルフとマルコPassiniによって記述された5。 F内のAAVの室内注射IRST誕生利回り嗅球から脳幹6,7に、脳のあらゆる領域に及ぶ神経サブセットの普及ウイルス形質導入後24時間。ウイルスにより配信の導入遺伝子を発現させ、注射日以内にアクティブで、形質導入後の年まで持続している。このように、この多目的な操作は、生後初期の脳の発達から成人老化および変性に至るまでの研究を可能にします。 それはニューロン6の形質導入で最も効率的であるため、私たちの具体的な実験のニーズに技術を適応では、主にAAV8血清型に焦点を当てている。私たちは、ウイルス力価は、遺伝子操作の細胞固有の影響を試験する実験のために形質導入​​された神経細胞の密度を制御するために希釈することができることを示している。また、2つのウイルスがために選択された血清型に依存して、ニューロンの別個のまたは重複するセットに向けて付勢されている発現パターンを生成するために同時注入することができたことを実証ウイルスパッケージ。私たちの仕事は、実験的な神経科学の設定の広い範囲で使用するためのこの技術の汎用性を拡大する。

<table><tbody><tr><td>ICRの近親交配マウス</td><td>Harlan</td><td>Hsd:ICR(CD-1)</td><td>この株は、CD-1</td></tr><tr><td>FVB近交系マウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td>1800</td>年<td>5-6週齢</td></tr>の<tr><td>ネスレット</td><td>ラボサプライ</td><td>NESTLETS</td><td></td></tr><tr><td>シェパードシャックラボ</td><td>サプライ</td><td>SSマウス</td><td></td></tr><tr><td>高脂肪げっ歯類チャウ</td><td>ピュリナミルズ</td><td>PicoLabマウスダイエット20、#5058</td><td>としても知られていますこれは、私たちの標準的なブリーダーチャウ</td></tr>高<tr><td>脂肪げっ歯類のチャウ(代替)</td><td>ハーランラボラトリーズ</td><td>テクラッドグローバル19%タンパク質げっ歯類ダイエット</td><td>#2019S 低植物性エストロゲンの場合、オートクレーブ可能なダイエットが必要です</td></tr><tr><td>注射シリンジ</td><td>ハミルトン</td><td>7653-01</td><td>10ミリリットルシリンジ</td></tr><tr><td>注射針</td><td>ハミルトン</td><td>7803-04、RN 6PK PT4、0.375 "</td><td>32 G、標準P0注射用</td></tr><tr><td>金属プレートcryoanesthesim</td><td>マクマスター・</td><td>カー8975K439</td><td>生アルミニウム版、6 "x 12 "、0.25 "厚い、3等分に切られ、デジタル表示器が付いている端はローカル機械店によって紙やすりで磨かれる必要がある</td></tr><tr><td></td><td>デビッドKopf器械</td><td>モデル940</td><td></td></tr><tr><td>針サポートフィートが付いている普遍的なシリンジのホールダー</td><td>デビッドKopf器械</td><td>モデル1772-F1</td><td></td></tr><tr><td>新生児フレーム</td><td>Stoelting</td><td>51625</td>正式に<td>はマウスと新生児ラットアダプターと呼ばれ</td></tr>、<tr><td>滅菌インジケータ付きバイオハザード廃棄バッグ</td><td>VWR</td><td>14220-030</td>重要<td>! &ndash;地元の獣医および環境安全スタッフに確認して、あなたの研究所を学びましょう。バイオハザード廃棄物処理のためのプロトコル</td></tr></tbody></table>

永続かつ広範な神経伝達のための新生児マウス脳の脳室内ウイルス注射

Intracerebroventricular Viral Injection of the Neonatal Mouse Brain for Persistent and Widespread Neuronal Transduction

科学の進歩のペースが急速に加速してして、新たな方法を迅速かつ簡単にマウス脳における遺伝子発現を操作するために実験的な神経科学のために必要とされる。ここでは、最初の新生児マウスの脳内へのウイルスによりコード導入遺伝子の直接の頭蓋内送達のためにPassiniとウルフによって導入された技術について説明します。最も基本的な形態では、手順は、アイスバケットとマイクロリットルシリンジを必要とします。しかし、プロトコルは、技術の新たな研究者のための一貫性を改善するために、定位固定フレームとの使用に適合させることができる。この方法は、上衣ライニングは、出生後の最初の12〜24時間の間、まだ未熟である間脳実質への脳室から自由に移動するためのアデノ随伴ウイルス（AAV）の能力に依存しています。脳全体の神経細胞の広範な伝達におけるこの年齢の結果でのAAVの室内注射。発現は、注射の日以内に始まり、lifetim持続動物のメール。蛍光タンパク質の共発現は、形質導入細胞の重要なラベルを提供しながら、ウイルス力価は、形質導入されたニューロンの密度を制御するように調節することができる。既製の両方を提供するために、ウイルスコア施設、事前包装された試薬およびカスタムウイルス調製物の立ち上がり可用性と、このアプローチは、迅速、簡単、かつはるかに安価であるマウス脳における遺伝子発現を操作するためのタイムリーな方法を提供伝統的な生殖細胞工学より。

成功した脳室内ウイルス注射は、広範かつ強固な神経細胞の表現が得られます。ここでは、YFPまたはニワトリβアクチンプロモーター（CBAプロモーター）の制御下にtdTomatoの蛍光遺伝子を用いてウイルス形質導入を評価した。これらの構築物は、AAV8にパッケージ化および新生児（P0）ICRマウスの側脳室に注入した。高いウイルス力価（半球あたり10 10個の粒子）が嗅球、線条体、大脳皮質、海馬および小脳（左図1A）の密なラベル付けされた。標識は、小脳プルキンエニューロンにおいても明らかであったが、P0に大量にまだ存在しない小脳顆粒ニューロンから顕著に不在。少ないウイルス粒子（10 7）の注射は、まばらなラベリングと低強度の発現（右図1A）をもたらした。私たちは、一般よう半球当たり10 7〜10 10粒子の間の濃度範囲でAAV8を使用注射（ 図1B）によって生成導入遺伝子モザイク現象の程度を制御するためのnの簡単で信頼性の高い方法です。また、二つ以上のウイルスに同時注入することに...

ここでは、新生児マウスの脳へのアデノ随伴ウイルスの脳室内注射による広範なニューロン伝達の技術を示しています。 この方法は、ウイルス送達型導入遺伝子の生涯にわたる発現を迅速かつ容易に達成する方法を提供します。

With the pace of scientific advancement accelerating rapidly, new methods are needed for experimental neuroscience to quickly and easily manipulate gene ...

この手順の全体的な目標は、脳全体のニューロンをウイルスで形質導入することです。これは、新生児の子犬の凍結麻酔と、それに続く新生児の冷却段階への注射の移し替えによって達成されます。次に、ラムダ縫合糸と各眼またはラムダとBgmaの中間にある矢状縫合糸から外側との間の側脳室を標的とする注射部位を特定します。最後のステップは、針を正しい深さまで挿入し、各半球の側脳室に最大2マイクロリットルのウイルス溶液をゆっくりと注入することです。最終的には、目的の遺伝子の蛍光タグまたは免疫蛍光法を使用して、脳室内注射から生じる導入遺伝子の発現パターンを示します。一般的に、この技術に不慣れな人は、側脳室を正確に標的にすることに苦労します。この技術は、フリーハンドの頭蓋内注射と定位注射の両方を通じて実証されており、フリーハンドの技術が私の研究室の別のポスドクになることを示しています。まず、一般的な出生後ゼロ日目の新生児のために、32ゲージの針を備えた10マイクロリットルの注射器を準備します。次に、小さなアルミニウムプレートを氷の上に置き、冷まし、プレートの上にドライタスクワイプを置いて、子犬の皮膚を冷たい金属から保護します。これは、子犬に麻酔をかけたり注射したりするための平らな冷たい表面として機能します。次に、注入前後の新生児マウスを温めるのに適した保温パッドを用意します。生まれたばかりの子犬が授乳を始めたら、約半分をケージから取り出し、残りの半分を母親に預けます。注射を待つ間、集めた子犬をウォーミングパッドに置きます。1匹の子犬をウォーミングパッドから冷たい金属板に移し、低体温症を誘発します。麻酔。子犬が完全に麻酔をかけるまで2〜3分待ちます。足を非常に優しく握り、動きの欠如や呼吸を無料で監視して麻酔を確認します。手頭蓋内注射は、希釈したアデノ随伴ウイルスの5マイクロリットル、または0.05%トライアンブルーを含むAVを注射シリンジにロードします。麻酔をかけた子犬の頭を、70%エタノールに浸した綿棒で優しく拭きます。ラムダ縫合糸から各眼までの距離の 5 分の 2 にある注入部位を特定し、代替の注入部位は、ラムダと Bgma の中間にある矢状縫合糸から約 0.8 から 1 ミリメートル横方向にあります。これらのランドマークは、出生後のゼロ日目に皮膚を通して見ることができます。注射部位に無毒の実験用ペンで印を付けます。分注された溶液の量を監視するために目に見えるスケールでシリンジを保持します。親指がプランジャーの上部に到達できることを確認します。次に、針を配置しながらプランジャーから親指を取り外します。誤ってウイルスを分配しないように、子犬を横向きに置き、頭を注射器の真下に置きます。マークされた注入部位が上を向くようにP'Sヘッドを回し、優しく、しかししっかりと回します。この位置を開い

intracerebroventricular-viral-injection-neonatal-mouse-brain-for

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

体性幹細胞の増殖を制御することは、彼らの研​​究と治療における使用を妨げる大きな要因となっている。ここでは、一時的にマウス脳で生成されたニューロンの数を増やすために使用することができます開発と成人期における神経幹細胞の膨張を制御するためのシステムを説明します。...

によって胚および成体神経幹細胞の拡大<em&gt;子宮内</em&gt;エレクトロポレーションまたはウイルス定位注射

このビデオでは、新生児マウスの心室にトランスポゾンDNAを注入して神経膠芽腫(GBM)を効率的に誘発する技術について説明しています。プラスミドを取り込む脳室下領域の細胞は、ヒトGBMの組織病理学的特徴を持つ腫瘍を形質転換、増殖、および生成します。...

SB媒介転位を用いた膠芽腫誘導:トランスポゾンを介したSBプラスミドの新生児マウス脳への統合を用いた新規マウスモデル作製技術

このビデオは、新生児マウスの脳内のマウスサイトメガロウイルス(MCMV)の分布を研究するための脳室内注射プロセスを示しています。MCMVは、視認性を高めるために増強緑色蛍光タンパク質(EGFP)を発現するように設計されており、マウスの子犬の脳の側脳室に注入されます。注入されたウイルスは脳脊髄液を循環し、辺縁帯、脈絡叢、脳室下帯などの脳室周囲領域の細胞に感染します。...

新生児マウス脳におけるマウスサイトメガロウイルス分布を分析するための脳室内注射

出典: Pereira, M. et al., In Vivo Direct Reprogramming of Resident Gial Cells into Interneurons by Intentrebral Injection of Viral Vectors.J. Vis.

マウスモデルにおけるグリア細胞リプログラミングのためのウイルスベクターの定位注射

新生児のヒトサイトメガロウイルス（HCMV）感染症は、精神遅滞の重要な原因を表し、まだウイルス誘発病因につながる分子事象はまだよく理解されていない。脳の感染症のダイナミクスを調べるために、我々は全体の動物の適応...

活用<em生体内で&gt;</em新生児の実験マウスサイトメガロウイルス感染の進行を監視する&gt;イメージング

小児疾患の動物モデルは、早期発症と積極的な疾患の進行を体験することができます。臨床的に若いマウスモデルに関連する治療送達は技術的に困難であることができる。このプロトコルは、人生の最初の2日以内に出生後の新生児マウスのための非侵襲的静脈内注入法を説明しています。...

新生児マウスにおける静脈注射

ここでは、ウイルス粒子または蛍光マイクロビーズを新生児マウスの脳に脳室内および血管内に注入する簡単な方法について説明します。ウイルスとナノ粒子の局在パターンは、顕微鏡評価またはin...

新生児の脳へのウイルス粒子と蛍光マイクロビーズの脳室内および血管内注入

新生児マウス脳の線条体にマイクロインジェクション試薬は自家製頭固定デバイスに定位手術のプロトコルについて述べる。この手法では、新生児マウス脳の特定の領域の神経細胞で遺伝子操作ことができます。...

新生児マウス脳の線条体細胞の遺伝的操作の定位手術

このプロトコルは、順行性化学遺伝修飾剤を体性運動皮質に注入し、逆行性に輸送可能なCreリコンビナーゼを頸髄に注射することにより、生後5〜10日の新生児ラットの細胞の亜集団に遺伝子治療を適用するための新しい方法を示しています。...

脳と脊椎を組み合わせた手術を用いた二重ウイルスベクターによる新生児ラットの皮質脊髄路の標的化

本プロトコルは、遺伝子編集および薬物送達のために新生児マウスで髄腔内注射を行うためのステップバイステップの指示を概説する。...

ゲノム編集とドラッグデリバリーのための新生児マウスの髄腔内注射

くも膜下ウイルスの注入を使用するアデノ随伴ウイルスの広範な送達のための新しい技術が記載されています。この方法は、マウス新皮質ニューロンの表層への広範な形質導入を保証するだけでなく、非選択的プロモーターを使用した場合でも、第5層錐体ニューロンにおける導入遺伝子の選択的発現をもたらします。...

AAV2のくも膜下注射によるマウス新皮質ニューロンの広範な形質導入

学ぶ新生児マウス脳の脳室内ウイルス注射法。AAVを用いて広範な神経細胞への遺伝子導入を実現し、脳全体での持続的な発現が可能です。神経回路研究や遺伝子機能解析に有用な手法です。

永続かつ広範な神経伝達のための新生児マウス脳の脳室内ウイルス注射

さらに動画を探す