Name: 肺特異的血管形成を研究するためにマウスの肺にフィブリンゲルの移植 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 52 s
Description: 学ぶマウス肺へのフィブリンゲル移植法で血管新生と肺胞再生を研究する手法。血管新生因子を含むゲルを肺表面に移植し、組織学的・免疫組織化学的解析で肺特異的微小環境の役割を解明する。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この作品は、米国心臓協会（AM）、米国国防総省（BC074986）、ボストン小児病院学部キャリア開発フェローシップ（TM、AM）からの資金によってサポートされていました。著者は、技術支援のためのアマンダ江とエリザベート江に感謝。

注：in vivoでの動物実験は、国立衛生研究所の実験動物の管理と使用に関する指針の推奨事項に厳密に従って実施した。プロトコルを見直し、ボストン小児病院の動物実験委員会によって承認された（プロトコル番号：13-10-2526R、14-02-2568R）。このプロトコルで使用されるすべての薬物は、医薬品グレードであり、これらの薬物は、無菌条件下で調製される。 1.フィブリンゲルの準備<ol><li> VEGFおよびbFGFが含まれているフィブリンゲルを準備します。 <ol><li>室温（25℃）に-80℃で保存されたフィブリノーゲンおよびトロンビ​​ンのストック溶液を解凍する。 </li><li>フィブリノゲンへのCaCl 2（最終濃度：45ミリモル）、VEGF（終濃度：0〜100 ng / ml）をおよびbFGF（0-100 / mlの最終濃度）のトロンビン（2.5 U / mlの最終濃度）を添加する溶液（最終濃度：0.9％sodiu 12.5 mg / mlの1.5mlチューブにおけるm食塩43-45）。 </li><li>ピペッティングにより穏やかに混合します。 </li><li>穏やかにp200とのピペットチップを用いて滴下様式で滅菌プラスチックシャーレ上に混合物200μlをピペット。 </li><li>彼らが固化するまで、30〜60分間、37℃で滴をインキュベートする。 注：固化ゲル注入（ 図1a）の前に数時間、室温（25℃）で密封されたプラスチックディッシュに保つことができる。 </li></ol></li><li>移植前に小さな外科用ハサミを用いて約3×3×3 mmの立方体にフィブリンゲルをトリミング。 </li></ol> 2.マウスの準備<ol><li>腹腔内ケタミンの（IP）注射（100mg / kg）およびキシラジン（10mg / kgの）によって成体マウス（8-12週）を麻酔し、マウスが十分にマウスのつま先をつまんで麻酔をかけていることを確認します。 <ol><li>実験中に乾燥を防ぐために、マウスの目に獣医軟膏を使用してください。 </li></ol></li><li>シェーブFUマウスの胸郭の左側の上R。 </li><li>マウスの気管内挿管を行います。 </li><li> 70°の角度をなす挿管スタンドにマウスを置き、スタンドの上部にある小さなゴムバンドの上に、その上部切歯をフックによって所定の位置にマウスを保持する。 </li><li>静かに鈍鉗子を用いて片側に舌を撤回。 </li><li>光ファイバグースネック顕微鏡照明装置を用いて喉頭を視覚化。 </li><li>気管内に気管内弾性カテーテル（21 G）を挿入します。 </li><li>マウスが自然発生的に（通常の100〜150呼吸/分、ない逆説的または浅い呼吸）がスムーズな方法で呼吸していることを確認してください。 </li><li>解剖顕微鏡下で発生しやすい位置にマウスを置きます。 </li><li>機械的にげっ歯類人工呼吸器（150呼吸/分、7ミリリットル/ kgの一回換気量）を使用して、マウスを換気する。 </li><li> 4 番目と5 番目の肋骨の間の肋間スペースを見つけるために肋骨を数える。 </li><li>エリアBの上に無菌のフィールドを作成します。yは徹底的にアルコールやポビドンヨードで拭く。無菌の外科用ドレープで適切に手術野をカバーしています。 </li></ol> 3.マウスの手術<ol><li>皮膚の0.25％ブピバカイン（200μl）を局所注射した後、解剖ハサミを使用して、肋間空間にわたって横断皮膚切開（約1cm長）を作る。 </li><li>肋間筋に0.25％ブピバカイン（200μL）を注入した後、細かい小さなハサミを使用して4 番目と5 番目の肋骨の間の筋肉の切開を作る。 </li><li>完全に左肺を可視化するために、リブの間の解剖リトラクターを挿入します。 <ol><li>細かい鉗子を使用して、左肺の中央の臓側胸膜の小さな領域（1×1mm角）をこすり。 </li><li>出血や空気の漏れが完全に制御されるまで滅菌綿棒を使用して領域に穏やかな圧力を適用します。 </li><li>フィブリノゲン/トロンビン（フィブリン糊）の新鮮な混合物（ステップ1.1.2。20＆＃少量を入れて181、p200とピペットチップを使用して領域にわたってリットル）。 </li></ol></li><li>優しくエリア（ 図1b）の上に小さな鉗子を用いて1フィブリンゲル（ステップ1.2）を配置。 <ol><li>ゲルが十分に肺の呼吸運動中にエリア上に固定されていることを確認します。 </li></ol></li><li>どちらも大規模な空気漏れや肺からの出血があることを確認してください。 </li><li>削除する必要はありません吸収性縫合糸、との緊密な切開（筋肉と皮膚層）。 </li><li>気胸を防ぐために27 G針および1mlシリンジを使用して胸腔を吸引する。 </li><li>機械的な換気を終了します。 </li></ol> 4.マウスの回復<ol><li>マウスが自然発生的にスムーズな方法（定期的な100〜150呼吸/分、ない逆説的または浅い呼吸）で呼吸していることを確認してください。 </li><li> IP脱水を防ぐために、予め温めておいた0.9％のNaClを1ml注入する。 </li><li>マウスは、循環温水パッド上で回復できるようにする。 </li><li> endotracheを削除マウスが安定した呼吸を持っていることを確認した後、他のチューブ。 </li><li>術後の鎮痛剤として3日間、メロキシカム（5 mg / kgを皮下注射（SC）を注入する。 </li><li>それは（その胃の上にロールバックすることが可能と直立のまま）胸骨で、意識的になるまで丁寧に15分間隔の最小のマウスの動きを監視します。 </li><li>回復後、手術をせずにマウスから単離された新しいケージにマウスを返す。 </li><li>毎日、以下の感染の兆候（発赤、腫脹、放電）、動物の基本的な生物学的機能（食品や水の摂取、排尿、排便、体重増加）だけでなく、臨床徴候苦痛のための手術部位（立毛、縮小運動）を監視外科的手技。 </li></ol> 5.収穫肺<ol><li> 7〜30日間、移植後、圧縮ガスの供給源を介してCO 2を使用して、マウスを安楽死させる。 </li><li>剣状突起の先端と胸骨の間に切開を作るノッチ（胸骨正中切開）と気管を切断し、心臓、肺、気管へのすべての接続を解剖することにより組織学的および生化学分析のために注入されたゲルと収穫肺全体。 </li><li> 、、4℃で一晩、4％パラホルムアルデヒド溶液で肺に移植されたゲルを固定OCT化合物に埋め込み、厚さ30μmの連続段部を取る。 </li><li>共焦点顕微鏡22,37,40を使用して（アクアポリン（AQP）5と界面活性タンパク質（SP）-B：CD31、上皮マーカー内皮マーカー）組織学的（ヘマトキシリン及びエオシン染色）および免疫組織化学的分析を実行します。 </li><li> 3D画像解析ソフトウェア37を使用して、肺の内皮および上皮細胞の三次元画像を形成する光学切片（厚さ30μm）のスタックをコンパイルする。 </li><li>画像解析ソフトウェア46を使用して、新しく形成された血管の投影面積を定量化する。 </li></ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

この記事では、成体マウスの生体の肺表面上の生体材料を注入するための新しい方法を紹介します。このシステムでは、ホスト肺由来の血管新生は、正常に材料内部に要約されている。このシステムは、研究者は内皮細胞、他の細胞（ 例えば 、上皮細胞、間葉系細胞、免疫細胞）とローカル血管新生50〜53と肺胞の再生24,54のために必要とされる様々なECM成分の間のクロストークを探索することができます。従来のin vivoでの皮下ヒドロゲル移植は、血管新生の研究37-39に広く使用されてきたが、これらの方法は、器官特異的血管形成を再現しない。ヒドロゲルは、肺表面に直接移植されるこのシステムは、成体マウスの肺における血管形成および肺再生における肺特異的微小環境の役割を探求する研究者を可能にする。これらのゲルは、様々なECMに富むbiomateから製造することができるリアル種々の化学的因子（ 例えば 、血管新生因子、成長因子）55,56、前駆細胞および/ ​​またはiPS細胞を補充することができる（ 例えば</em...

このプロトコルの全体的な目標は、研究者は肺血管および肺発達の分子機構を特徴づけることができ、成体マウスの肺表面にフィブリンゲルを注入する方法を導入すること、及び可能な生体模倣材料を開発するためにこの知識を活用することである様々な肺疾患を治療するための生理的な肺の血管および肺胞形成を反復するの。 35以上の万人のアメリカ人が慢性閉塞性肺疾患および肺線維症を含む慢性肺疾患に苦しむ。これらの患者は大幅に日常生活1-3を損なうような息切れ、胸部圧迫感、しつこい咳、および疲労などの長期的な慢性呼吸器症状を持っている。これらの肺疾患のための効果的な治療法を開発する努力が多量にもかかわらず、現在、治療法は存在しない。そのため、これらの患者の生活の質が悪いと経済で、人的コストがhiであるGH 4-7。現在、肺移植は、末期慢性肺疾患を有する患者を保存する唯一の方法である。しかし、移植ドナー、高コスト、深刻な合併症、および低い生存率8-11の不足のため、移植が最適なアプローチではありません。組織工学技術の最近の急速な進歩は、前駆細胞または人工多能性幹（iPS）細胞12,13の様々なタイプの脱細胞化肺全体を再増殖することにより、移植可能な肺をbioengineerする研究者を可能にした。しかし、これらの生体工学肺が唯一の注入12,14,15後に数時間の宿主動物において機能的である。肺の複雑な構造および機能を再生するために生体材料を利用しても、かなり成功していない。成人の肺の再生を支配する主要な生物学的プロセスが十分に検討されていないためと考えられる。肺では、血管系の形成が早いと最も重要なイベントの一つ対応時間は限らですNGの開発と再生16-21。肺で新たに形成された血管系は、酸素、栄養素や器官形成に必要な各種の細胞成分を提供するだけでなく、細胞の22〜25の周囲に有益な調節シグナルを提供するだけでなく。このように、血管新生は、成人肺24,26,27回生肺胞形成において重要な役割を果たしている。また、調節解除された血管新生は、慢性閉塞性肺疾患（COPD）28、気管支肺異形成（BPD）、21-23、および肺線維症29のような慢性の肺疾患に寄与する。したがって、肺のエンジニアリングまたは慢性肺疾患を治療するためのより効率的な戦略を開発するためには、肺特異的血管形成の基本的メカニズムを理解する必要がある。 各器官は生理学的および病理学的条件30〜33の間で異なる場合がありますユニークな機械的および化学的特性を、表示されます。これらの器官特異microenvironメンツは、内皮細胞の挙動を調節し、器官特異的に24,34-36に血管網の形成を調整する。したがって、肺の再生のためのより効率的な戦略を開発するために、肺特異的血管形成の基礎となるメカニズムは、理解される必要がある。皮下ヒドロゲル移植のような従来のin vivoでの血管形成アッセイは、血管形成の研究37-39ために広く使用されてきたが、これらの方法は、器官特異的血管形成を再現しない。最近、マウス肺弾性モールドにマトリゲルを移植するための新規な方法が開発され、成功したゲル22中に血管および肺上皮細胞を動員することが示されている。このユニークなアプローチは、研究者は肺特異的血管形成の機構、ならびに生理的および病的状態における血管および非血管肺細胞間の相互作用を探索することを可能にする。 1）マトリゲルは臨床応用には適していないので。 2）Eゲルをキャストするために使用ラスチック金型は、ヒドロゲルおよびホスト肺組織との間の相互作用に影響を与える可能性があり、3）肺弾性モールドは、潜在的に、より臨床的に関連するアプローチ、血管新生因子を含む3次元フィブリンマトリックスとして、呼吸中に肺機能および疼痛障害を引き起こす（血管内皮増殖因子（VEGF）/塩基性線維芽細胞増殖因子（bFGF））、弾性モールドに鋳造することなく、マウス肺に移植された、成功したホスト肺由来の血管新生を要約されている。フィブリンゲル、トロンビン切断されたフィブリノゲンから生成されたポリマー原線維は、トラップする生体 40,41 で血管新生を促進させるようなbFGFおよびVEGFなどの血管新生因子の様々な知られている。 、その再生能力及び生分解性の性質42、フィブリンゲルが広く組織工学の分野で用いられている。 この記事では、生きているADULの肺の表面にフィブリンゲルを注入する新規かつユニークなアプローチを紹介しますトンマウスとホスト肺由来の血管新生は、in vivoでのゲルの内部に要約されていることを示している。肺特異的血管形成を研究するための研究を可能にし、この方法は、可能性肺疾患の様々なタイプの新しい治療アプローチの開発につながると有意に正常成体肺を再生する取り組みを進めます。

<table><tbody><tr><td>ヒト胎盤由来フィブリノーゲン</td><td>Sigma</td><td>F4883</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血漿由来フィブリンゲルの作製 トロンビン</td><td>ΣT9549</td><td></td><td>フィブリンゲルの作製</td></tr><tr><td>組換えマウス VEGF 164</td><td>R&D</td><td>493-MV</td><td>フィブリンゲル</td></tr>リ<tr><td>コンビナントマウスbFGF</td><td>R&D</td><td>3139-FB</td><td>フィブリンゲルへの補給用</td></tr><tr><td>げっ歯類挿管スタンド</td><td>Braintree Scientific INC</td><td>RIS 100</td><td>挿管用</td></tr><tr><td>光ファイバー光源</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-565-35</td><td>挿管用</td></tr><tr><td>21 G 弾性カテーテル</td><td>B.Braun</td><td>4251652-02</td><td>挿管用</td></tr><tr><td>MiniVent 人工呼吸器</td><td>ハーバード装置</td><td>CGS-8009</td><td>換気</td></tr><tr><td>ステミ DV4 胸像顕微鏡</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>12-070-515</td><td>手術用</td></tr><tr><td>アブソバブル縫合</td>糸 <td>エチコン</td><td>PDP304</td><td>CD31に対する外科用縫合</td></tr><tr><td>糸</td><td>BD バイオサイエンス</td><td>553370</td><td></td></tr><tr><td>AQP5</td>に対する免疫組織化学抗体 <td>アブカム</td><td>AB78486</td><td></td></tr><tr><td>SP-B</td><td>に対する免疫組織化学抗体アブカム</td><td>AB40876</td><td>免疫組織化学</td></tr></tbody></table>

肺特異的血管形成を研究するためにマウスの肺にフィブリンゲルの移植

Implantation of Fibrin Gel on Mouse Lung to Study Lung-specific Angiogenesis

幹細胞研究と生物工学技術の最近の重要な進歩は、再生し、整形外科や歯周分野のシンプルな組織における損傷を修復するために生体材料を利用することで大きな進歩を遂げている。臓器再生の生物学的プロセスはよく検討されていないので、肺などのより複雑な三次元（3D）の構造と機能を再生しようとする臓器は非常に成功していない。これは、血管新生は、新しい血管の形成は、臓器再生において重要な役割を果たしていることが明らかになってきている。新たに形成された血管系は、酸素、栄養素や臓器再生のために必要とされる様々な細胞成分を提供するだけでなく、再生地元の組織に有益な信号を提供するだけでなく。首尾成人肺を再生成するため、それは血管新生が局所肺組織の再生を駆動する肺特異的微小環境を再現することが必要である。共同もののnventional インビボでのそのようなヒドロゲル（ 例えば 、フィブリンまたはコラーゲンゲルまたはマトリゲル-エンゲルブレス-ホルム-スウォームマウス肉腫細胞によって分泌ECMタンパク質の混合物）がリッチ細胞外マトリックス（ECM）の皮下移植などの血管新生アッセイ、広く探求するために利用される肺における生体材料の同所移植のための方法は十分に確立されていないため、血管新生の一般的なメカニズムは、肺特異的血管新生は、十分に特徴付けられていない。このプロトコルの目的は、ゲル内部ホスト肺由来の血管新生の成功要約を可能に、生きている成体マウスの肺の表面にフィブリンゲルを注入するユニークな方法を導入することである。このアプローチは、肺特異的微小環境が正常および病的両方の条件で血管新生および肺胞の再生を制御するメカニズムを探求する研究者を可能にします。注入された生体材料のリリース以来隣接lの物理的および化学的な信号を供給し、長官組織、罹患肺におけるこれらの生体材料の注入は、潜在的に肺疾患の様々なタイプの新しい治療アプローチを開発するための研究を可能にする、隣接した病変組織を正常化することができる。

ホスト肺由来の血管形成は、肺に移植生体材料の中に要約されているかどうかを調べるために、主要な血管新生因子のVEGFおよびbFGF（0、10および100ng / mlの各）を補充したフィブリンゲルのように生きたマウスの肺の表面に移植したマトリゲル22を用いて報告した。 図1aに示すように、これらの血管新生増殖因子を含むフィブリンゲル47を作製した。開胸後、左肺表面の小さな領域は、鉗子を用いて掻き取り、そして製造されたフィブリンゲルは、FDAが承認され、広く停止させる効果的なシール材として使用されるフ​​ィブリン接着剤の少量を用いて、成体マウスの肺に移植した空気漏れや肺手術48,49（ 図1b）の出血減らす。ほとんどのマウスは、重篤な呼吸器症状（ 例えば 、気胸、呼吸困難）することなく回復した。七日、移植後、マウスを安楽死させ、肺をハーヴあったSTED。注入されたフィブリンゲルは、7日間注入（ 図1c）の後に、宿主の肺に取り込まれた。共焦点蛍光画像の3D再構...

>jove_content<局所的な血管新生を刺激する臓器特異的微小環境の再現は、損傷した組織の正常な再生に不可欠です。本報告は、成体マウスにおいて、肺特異的微小環境が血管新生と肺胞再生をどのように調節するかを探るために、生きたマウスの肺表面にフィブリンゲルを移植する新しい方法を示すものである。

Recent significant advances in stem cell research and bioengineering techniques have made great progress in utilizing biomaterials to regenerate and ...

次の手順の全体的な目標は、フィブリンゲル移植を使用して、マウスの肺の血管および肺胞の再生を研究することです。これは、最初に血管新生因子を補充したフィブリンゲルの滴を調製することによって達成されます。第2ステップでは、実験動物を機械的に換気し、胸部を開きます。次に、フィブリンゲルをフィブリン接着剤でマウスの肺に注意深く取り付けます。そして、最終ステップでは、肺と埋め込まれたゲルを7〜30日後に採取し、組織学的分析を行います。最終的には、ゲルインプラント内の血管と肺胞の形成は、免疫組織化学的分析によって評価できます。この方法は、血管生物学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます、例えば、臓器が微小環境をどのようにリスクにさらすか、血管新生を制御し、臓器の形態形成を実証する手順は、私たちの研究室の同僚をモデル化します VEGFとBFGFの両方を含むフィブリンゲルを準備するには、摂氏マイナス80度、フィブリノーゲンとトロンビンのストックを室温に温めることから始めます。ストックが完全に解凍されたら、1.5ミリリットルのチューブ内のフィブリノーゲン溶液にトロンビン塩化カルシウムVEGFおよびBFGFを追加します。そして、ピペッティングで溶液を混合します。次に、200マイクロリットルの混合物を静かにピペットで動かし、滅菌プラスチック皿に一滴ずつ滴下します。液滴を摂氏37度で固まるまで30〜60分間インキュベートします。次に、小さな手術用ハサミを使用して、ゲルを約3×3×3ミリメートルの立方体にトリミングします。8〜12週齢のマウスでつま先をつまんで完全な鎮静を確認した後、乾燥を防ぐために動物の目を獣医軟膏で覆い、胸郭の左側で毛を剃ります。気管内挿管の場合は、マウスを70度の角度で配置した挿管スタンドに置き、上切歯をスタンドの上部にある小さな輪ゴムに引っ掛けて動物を所定の位置に保持します。鈍い鉗子を使用して舌を片側に静かに引っ込めてから、光ファイバーグースネック顕微鏡イルミネーターを使用して喉頭を視覚化します。次に、21ゲージの気管内弾性カテーテルを気管に挿入します。マウスが自発的にスムーズに呼吸していることを確認してから、動物を解剖顕微鏡下で腹臥位に置きます。げっ歯類の人工呼吸器を使用して、毎分150回の呼吸とキログラムあたり7ミリリットルの潮汐量で動物を機械的に換気します。次に、肋骨を数えて、4番目と5番目の肋骨の間の肋間腔を見つけます。次に、アルコールとポビドンヨードでその領域を完全に拭き取り、滅菌フィールドを作成し、手術領域を滅菌トラで覆ってゲルを肺に配置します。次に、肋間腔に1センチメートルの横方向の皮膚切開を行います。次に、4本目と5本目の肋骨の間に筋肉を切開します。肋骨の間に解剖リトラクターを挿入して左肺を完全に視覚化し、次に細い鉗子を使用して、滅菌綿棒を使用して左肺の中心から1ミリメートル四方の内臓胸膜をこすり落とします。次に、出血と空気漏れが完全に制御されるまで、その領域に穏やかな圧力をかけ、次に少量のuns固化フィブリノーゲントロンビン接着剤をその領域に分配します。次に、1つのフィブリンゲルを接着剤にそっと置き、肺の呼吸運動を観察して、ゲルがしっかりと固定されていることを確認します。次に、吸収性縫合糸で切開部を閉じます。気胸を防ぐために27ゲージの針を備えた1ミリリットルの注射器で胸腔を吸引し、その後、人工呼吸器を終了します。マウスの呼吸が順調に進んでいることを確認した後、戦前の0.9%塩化ナトリウムを腹腔内に1ミリリットル注入して脱水症状を防ぎ、循環式温水パッドでマウスを回復させます。動物が安定した呼吸を示したら、気管内チューブを取り外し、術後鎮痛薬を注入します。.動物が完全に回復したら、手術なしでマウスから分離された新しいケージに戻し、感染や合併症の兆候がないか動物を毎日監視します。移植後7〜30日で、プロトコルに従ってマウスを安楽死させ、剣状突起の先端と胸骨ノッチとの間に切開を行います。次に、肺から心臓と気管へのすべての接続を解剖して気管を切断し、肺全体と埋め込まれたゲルを採取し、翌日にゲルと肺組織を摂氏4度の4%パラホルムアルデヒド溶液内に一晩固定し、肺組織をOCTコンパウンドに埋め込み、肺とゲルの連続ステップセクションを30マイクロメートルの厚さで収集します。切片をヘマチンとエオイン、および目的の適切なマーカーに対する抗体で染色します。そして、切片のZack画像を撮った後、光学切片のスタックをまとめて、肺内皮細胞と上皮細胞の3次元画像を形成します。3D画像解析ソフトウェアを使用する。最後に、適切な画像解析ソフトウェアを使用して、新しく形成された血管の投影領域を定量化します。移植の7日後、フィブリンゲルを宿主の肺に組み込んで、共焦点蛍光画像の3D再構成は、宿主由来のCD31陽性内皮細胞が、A-V-E-G-F-B-F-G-Fの用量依存的な方法で移植7日後にゲル内に血管網を形成することを示しており、1型アクアポリン5陽性および2型界面活性剤プロテインB陽性肺上皮細胞も、補充されたゲル内の新たに形成された血管に沿って動員されるVGFとB、FGFH、およびdの濃度が高い。組織切片の染色により、他の種類の宿主細胞も移植後7日でゲルに移動することが明らかになりました。これらの知見を総合すると、宿主肺由来の再生血管網および肺胞形成は、血管新生因子の補給および成体マウス肺の表面への移植後に、フィブリンゲル内で成功裏に構築されることを示唆している。この技術は、肺生物学や一次医学の分野では、正常な血管新生のメカニズムと、それがマウスの肺の疾患状態にどのように作用するかを探求する研究者が少ないための道を開きました。

implantation-fibrin-gel-on-mouse-lung-to-study-lung-specific

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

肺は全身気管支動脈と肺動脈の両方によって灌流される。ほとんどの肺の病変では、堅牢な血管新生を示す小さい全身の血管系である。肺血流の停止は好調気管支血管新生を促進する。我々は気管支血管新生を促進し、左肺動脈の虚血を誘導手術の詳細を提供します。...

虚血ラットの肺の血管新生

内皮グリコカリックス/内皮表面層は、理想的には生体顕微鏡を用いて研究されています。生体顕微鏡検査は、肺などの臓器に移動技術的に困難である。私たちは、同時明視野と蛍光顕微鏡を自由に移動させる際に内皮表面層の厚さを推定するために使用することができる方法を示してい...

マウス肺内皮表面層の in vivo測定における

ここでは、血管形成生体内可視化するプロトコルを提案と多光子顕微鏡による 3 D 足場でリアルタイム。重要な性マウス頭蓋骨骨欠損モデルにおける血管新生遺伝子組み換え足場を調べた。コントロールの治療群よりもより新しい血管を認めた.

頭蓋骨の重要な骨欠損修復の多光子顕微鏡In Vivo遺伝子組み換え 3 D-PLGA/nHAp 足場による血管新生を可視化

非侵襲的なマルチ モーダル イメージング ブレオマイシンの二重気管内投与によるマウス肺線維症モデルの縦断的評価のマイクロ CT と蛍光分子トモグラフィを用いた手法について述べる.

マウスにおけるブレオマイシン誘発肺線維症の縦断的評価マイクロ CT と蛍光分子トモグラフィーに基づくマルチ モーダル イメージング手法

事前の負傷で気道をコンディショニングすることでマウスの肺に肺癌細胞の同所性同種移植を大幅に強化する手法について述べる。このアプローチは肺微小環境、転移播種、肺癌併存、間質相互作用の研究にも適用可能性があり、派生した異種移植片をより効率的に患者を生成します。...

同所性同種肺がん細胞生着の効率を高めるブレオマイシンとマウスの気道をプレコンディショニング

ここでは、C57BLにおけるブレオマイシンの気管内注射による肺損傷の誘導後に臍帯全体から得られた静脈内注入ヒト間葉間質間質細胞の抗線維活性を調べるための有効な方法を提示する。/6マウス。このプロトコルは、他の治療薬の前臨床試験に容易に拡張することができる。...

ブレオマイシンの気管内注射によるマウス肺損傷の誘導

ここでは、肺の高解像度の生体内イメージングを可能にするマウス胸郭用の永久に留置された光学窓の外科的移植のためのプロトコルを提示する。ウィンドウの永続性は、肺の動的細胞プロセス、特に播種された腫瘍細胞の転移進行など、ゆっくりと進化している細胞プロセスの研究に適しています。...

肺への癌転移を調査するための永久的な窓

この原稿は、同所注射された乳房腫瘍からの自然肺転移の確立および縦断的成長モニタリングの方法論を説明しており、転移カスケードのすべての段階での介入に適しています。...

インビボ 同所注射された乳房腫瘍細胞の自然肺転移を測定するためのイメージング

ここでは、移植したマウスの左肺を2光子顕微鏡で生体内イメージングするプロトコールを紹介します。これは、マウス肺移植後の細胞動態と相互作用をリアルタイムで研究するための貴重なツールです。...

移植されたマウス肺の生体内2光子顕微鏡検査

この論文では、脱細胞化および再細胞化法を使用してバイオエンジニアリングされたマウス肺を作成する方法を説明します。また、その後の同所性肺移植についても詳しく説明しています。...

脱細胞化マウス肺と初代ヒト内皮細胞を用いた生体工学的肺移植

細胞療法は、前駆細胞を使用して損傷した組織を修復し、肺機能を改善することにより、肺線維症に対する有望な介入を提供します。イメージングは細胞統合の追跡において極めて重要な役割を果たすため、ここでは、マウスモデルにおける肺線維症の細胞療法の磁性粒子イメージングガイド下 in vivo...

磁性粒子イメージングを用いた肺線維症のための移植された遠位肺上皮前駆細胞の画像誘導 In vivo 追跡

学ぶマウス肺へのフィブリンゲル移植法で血管新生と肺胞再生を研究する手法。血管新生因子を含むゲルを肺表面に移植し、組織学的・免疫組織化学的解析で肺特異的微小環境の役割を解明する。

肺特異的血管形成を研究するためにマウスの肺にフィブリンゲルの移植

さらに動画を探す