Name: における代謝プロファイルのリアルタイム分析エクスビボマウス腸陰窩オルガノイド培養 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-03T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 53 s
Description: 学ぶマウス腸陰窩オルガノイドのリアルタイム代謝プロファイル解析法。XF 24細胞外フラックスアナライザーを用いて酸素消費率と細胞外酸化率を測定し、幹細胞ニッチ動態と生理学的特性を詳細に研究できます。

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この研究は、国立衛生研究所からの助成金RO1 CA 135561、R01 CA151494、R01 CA174432およびP3013330によってサポートされていました。 私たちは、陰窩単離プロトコールを開発する上で彼らの貴重なコメントミケーレヒューストン、エレナDhima博士アンナVelcichに感謝したいと思います。 我々はまた、直接、それぞれ、タツノオトシゴ施設を運営糖尿トレーニングおよびNIH P60DK20541でサポートされているアルベルト·アインシュタイン医学校の研究センター、博士マイケル·ブラウンリー博士と雪-梁デュを、感謝します。

この研究は、国立衛生研究所の実験動物の管理と使用に関する指針の推奨に従って行った。プロトコルは、アルベルト·アインシュタイン医学校の動物実験の倫理委員会によって承認された。 1.陰窩単離および培養<ol><li>小腸から陰窩の単離： <ol><li>関心のある任意のマウスモデルから腸陰窩を分離します。頸椎脱臼に続いてCO 2を持つマウスを安楽死させる。 </li><li>縦方向に腹部を開き、氷冷リン酸緩衝生理食塩水、PBS（-Ca 2+ -Mg 2+）と小腸（SI）を埋める2倍の抗生物質-抗真菌（抗抗）で。急速に小腸を分離します。 </li><li>徹底的にメスを用いて腸間膜脂肪の自由な解剖。組織を穿孔しないように注意してください - すべての回での氷冷PBSで湿った組織を保つ。 INTEを開く縦方向スタイン、氷冷PBSで徹底的に洗浄してください。 </li><li>予冷されたスライドを使用して絨毛を掻き優しく、2セクションに小腸をカットし、湿った綿棒を使って平ら。氷冷PBS数回激しく洗う。 </li><li> 3mMのエチレンジアミン四酢酸（EDTA）当たり20ミリリットル1×PBS中で3分間インキュベート/0.5 mMのは、組織の非酵素的解離のためにジチオスレイトール（DTT）。 </li><li>予冷されたスライド上のカミソリの刃を使用して小片（2-4 mm）の中に組織を切断。 20ミリリットルの氷冷PBSを含む50ミリリットルチューブに作品を転送します。 </li><li>ピペットは、上下優しく10xの10ミリリットルの無菌の使い捨てピペットを用いて。組織片が重力によって沈降してみましょう。ピペットで上清を取り除きます。さらに3回繰り返します。上清が透明であることを確認してください。 </li><li> 2mMのEDTAあたり20mlのPBSを追加します。スワールとは穏やかに揺らしながら30分間、4℃でインキュベートする。 </li><li>組織土砂を聞かせて、上清を捨てる。 15ミリリットルの氷冷PBSおよびピペットを追加上下5倍10ミリリットルピペットで。組織片が堆積しましょう​​と画分1（F1）として上清を収集します。 F2-F5キーを収集を繰り返し、各分画を別々に維持した。 </li><li> 15ミリリットルの氷冷PBSと、この時間は15秒間手で激しく振る追加。 F6キーを収集し、F7、F8のために繰り返します。組織片が浮いて起動した場合、彼らが定住を支援するをタップします。 </li><li>顕微鏡下で各画分のアリコートを点検。陰窩を含む画分をプールする。 </li><li> 50ミリリットルチューブに陰窩を集め、70μmのナイロン細胞ストレーナーを通してプールした画分を渡します。 </li><li> 4℃で5分間100×gで遠心し、15mlチューブに2X抗抗転送陰窩と10ミリリットルの氷冷PBSに上清を再懸濁ペレットを捨てる。洗浄をもう一度繰り返します。 </li><li> 2X抗 - 抗 - 10ミリリットルの氷冷ADF、アドバンストDMEM / F-12（ダルベッコ &quot;sは改変イーグル培地/ハム&quot; S F-12）で一度陰窩を洗ってください。 </li><li> 10ミリリットルAで一回陰窩を洗うDFは - 抗 - 抗1倍。 </li><li>血球計数器を用い陰窩を数える。陰窩溶液量を調整し、再懸濁させ、最終的な暗号濃度はゼラチン状タンパク質混合物（マトリゲル）を50μlあたり100〜500陰窩になるよう1.5mlチューブに移す。ゼラチン状のタンパク質混合物中で4℃、再懸濁陰窩で5分間100×gで遠心。 </li><li>陰窩のプレートに50μl - 24ウェルプレート中でウェルあたりゼラチン状のタンパク質混合懸濁液（成長分野：2 cm 2）を 、慎重に各ウェルの中央にサスペンションの低下を置く。 CO 2に懸濁液が固化〜30分まで、37℃のインキュベーターをプレートを維持する。 </li><li>抗、10 mMの4-（2-ヒドロキシエチル）-1-ピペラジンエタンスルホン酸（HEPES）、1xのグルタMAX、1X B27サプリメント、1×N2サプリメント、1 mMの - 500μlの氷冷完全培養培地（1×抗による高度なDMEM / F12を追加N-アセチル-L-システイン（NAC）、50ng / mlの上皮増殖因子（EGF）、100ng / mlのノギン、500 / mlのRスポンジン）。 <ol><li> PBS中の0.1％ウシ血清アルブミン（BSA）中で増殖因子を再構成する。 </li></ol></li></ol></li><li>陰窩オルガノイド文化とパッセージ： <ol><li>通過陰窩オルガノイド14-21日後に播種（または必要に応じて）次のように： <ol><li>変化媒体毎週金曜日と月曜日。水曜、新鮮な培地で半分メディアを交換。 </li></ol></li><li>培養液を除去します。 5分間隔で500μlのPBSで2回サンプルを洗ってください。 </li><li> PBSを外し、静かに滅菌P1000マイクロピペットチップを使用したゲル状のタンパク質混合物を壊す。 </li><li>単一のウェルに1ミリリットルの完全培養培地を追加し、1ミリリットルのメディアにおけるオルガノイドを懸濁します。 </li><li>優しく（一貫性のある技術が開発されるまでの良い暗号収量との適切なオルガノイド解離のために顕微鏡下で確認してください）​​にピペッティングによって20-30xダウンP1000を使用してオルガノイドを混乱させる。 </li><li> 1.5ミリリットルマイクロチューブへ陰窩を移す。4℃、5分で100×gで遠心する。 </li><li> 1ミリリットルの完全培養培地で二回ペレットを洗浄。 </li><li> 3または1：1の割合で分割6必要に応じて、ウェルあたり50μlのマトリゲルにおける陰窩を再懸濁する。 （ セクション1.1.16-18）、上述のように実行します。 </li></ol></li><li>墓所オルガノイド凍結： <ol><li>培養液を除去します。 500μlのPBSにサンプルを洗ってください。 </li><li> P1000のピペットチップを用いてゲル状のタンパク質混合物を分散させる。 </li><li>単一のウェルに1ミリリットルのメディアを追加し、1ミリリットルのメディアにおけるオルガノイドを懸濁します。 </li><li>優しく上下20-30xピペッティングすることによりP1000を使用してオルガノイドを破る。 </li><li> 1.5ミリリットルチューブにオルガノイドを転送します。 4℃、5分で100×gで遠心。 </li><li> 1ミリリットルの完全培養培地で二回ペレットを洗浄。 </li><li>メディアを凍結500μlの中で再懸濁陰窩。 </li><li>クライオチューブへの転送陰窩は、-80℃の冷凍庫overniに冷凍コンテナとストア内チューブを配置GHT。 </li><li>液体N 2タンクに陰窩を転送します。 <ol><li>急速に37℃の水浴中で解凍し凍結した陰窩オルガノイドを回復します。前述のように100×gで、ゼラチン状のタンパク質混合物中で5分間再懸濁し、文化で500μlの完全培養ワンスメディア、遠心分離機を洗ってください。より良い回復のために、凍結メディアにROCK阻害剤（Y-27632）を追加します。 </li></ol></li></ol></li></ol> 2.クリプトオルガノイド代謝アッセイ<ol><li> 24ウェルプレートの調製： <ol><li> （陰窩通過のためのcrypt分離およびセクション1.2のためのセクション1.1を参照）のプロトコルに従って陰窩を隔離してカウントされます。 </li><li>ゼラチン状のタンパク質混合物中の再懸濁陰窩（20μLあたり100-200陰窩）。 </li><li> 24ウェルアッセイプレートにおけるプレートのcrypt-ゼラチン状タンパク質混合懸濁液（各サンプルについて少なくとも三連であることを確認してください）とサスペンションは、CO 2、37℃で固化することができますインキュベーター。その後500μlの完全な培養培地を追加します。 </li><li>文化陰窩（ セクション1.1で説明したように）と陰窩は完全に開発オルガノイドへと成長するまで、顕微鏡下で観察する。 </li></ol></li><li>細胞外フラックスアッセイ： <ol><li>一晩非CO 2水和物カートリッジ（0％CO 2）、37℃のインキュベーター。 </li><li>培地を除去し、500μlのDMEMで二回オルガノイドを洗浄（なし：グルコース、L-グルタミン、ピルビン酸ナトリウム及び重炭酸ナトリウム;及び付き：フェノールレッド）。 5分待ちます。 </li><li>各ウェルにウェルのアッセイ培地（2 mM L-グルタミンおよび5mM D-グルコースを含むDMEM）あたり675μlを添加する。 </li><li>オルガノイドとゼラチン状のタンパク質混合物は、洗浄の後に無傷であることを確実にするために、陰窩オルガノイド微視的形態を確認してください。非CO 2、37℃のインキュベーター内で1時間インキュベートする。 </li><li> 10μMの注射可能な化合物（オリゴマイシン、カルボニルシアニド-Pトリフルオロメトキシフェニル - ヒドラゾン（FCCP）を準備し、Rotenone）アッセイ培地中。 </li><li>セットアップカートリッジをカートリッジ順次ポートに10μMの75μlの注入可能な化合物をロードすることによって：ポートA - オリゴマイシン。ポートB - FCCP。そしてポートC - ロテノン（アッセイ中の最終濃度は、1μMとなります）。 </li><li>カートリッジ30分間インキュベートする- 37℃で1時間、非CO 2インキュベーター中。 </li><li>同時に、XFア​​ナライザをオンにし、アッセイプロトコルテンプレートを作成します。 </li><li> XFアナライザーにカートリッジとユーティリティプレートを置き、カートリッジを「キャリブレーション」を実行します。 </li><li>彼らはゼラチン状のタンパク質混合物に添付されていることを確認するために顕微鏡的に陰窩オルガノイドを確認してください。 </li><li>計器および実行アッセイプロトコルにロード細胞培養プレート。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

全く開示はありません。

我々は、カルボニルシアニド、基礎速度の測定後、陰窩代謝オリゴマイシンを添加することにより評価した。ex vivoで 8ヶ月齢のマウスから単離した陰窩の酸素消費速度（OCR）および細胞外酸性化率（ECAR）を試験し、オルガノイドに成長順次-p-trifluoromethoxyphenylhydrazone（FCCP）およびロテノン、。 29分（ 図2Aおよび2B） - OCR基底および基底ECAR 0から記録した。 29日分で、（ポートAからの）オリゴマイシンは、（陰窩および対照ウェルの両方について、n = 3）を各ウェルに注入した。オリゴマイシンは、ATP合成阻害剤である。これは、状態3（リン）呼吸を防ぐために使用されます。従って、オリゴマイシンの注射は、ミトコンドリアにおけるATP合成の遮断に、OCRのわずかな低下をもたらし、かつ陰窩はECARの増加をもたらすATPのためのそれらの要件を満たす解糖に切り替える。 64 番目の分、FCCP（あちこちでm...

結腸直腸癌（CRC）は、米国における癌関連死亡原因の第3位である。それが人生の後半で生じたすなわち （&gt; 50歳）と、明確な素因遺伝因子を持つ- -散発大腸癌強く、長期的食事パターン1,2の影響を受けて発生率が全症例の〜80％ ​​を占め、。これらの腫瘍は、腫瘍細胞増殖3-5の高率を可能にし、おそらく駆動するために部分的に（グルタミノリシスを介して）利用可能な細胞のビルディングブロックとエネルギーのより高い濃度を行うことがワールブルク効果として知られている酸化的解糖への依存性に向けた代謝シフトを呈する。小腸癌を含む大腸癌の研究、ならびに他の胃腸癌は、腫瘍形成の原因に重要な洞察を提供する。 DETのを支援することができる胃腸器官系の、通常のプロ腫瘍形成及び腫瘍形成状態間の代謝の違いを調査腫瘍発生の相対リスクだけでなく、新生物の早期発見のermination。また、ミトコンドリア呼吸と解糖が関与する生体エネルギー代謝を理解することは、細胞生理学、老化や病気の状態が腸の恒常性を乱す方法に根本的な洞察を提供します。細胞外フラックス解析のための生体エネルギーアッセイ技術の利用は、リアルタイムで6,7、培養中で増殖する細胞で同時にミトコンドリアの呼吸と解糖の速度を評価することができます。 最近まで、小腸のin vitro試験で 8,9良性または悪性のいずれかの腫瘍由来の細胞株に限定されていましたし、正常な腸上皮の生理学および、それらが存在する微小環境の影響を表すものではありませんでした。 2009年には、佐藤らは 、10は、3次元（3D）マウス腸管上皮オルガノイド、またはepithを成長させるex vivoで培養システムを導入、実験的な診断および治療 ​​の研究10,11に適しelial「ミニ根性」、。また、カロリー制限されたマウスから単離された陰窩は、このような培養物12におけるオルガノイドとしての改変された成長特性を維持する。形質転換細胞株と比較して、陰窩オルガノイド培養物は、 インビボでの状態を理解することがはるかに優れたモデルを提示し、生理学的に関連するデータを生成するために使用することができる。 我々は、腸陰窩オルガノイドのエネルギー代謝をアッセイするために生体エネルギー分析技術に適合。マウス腸の陰窩オルガノイドは、提示さ陰窩オルガノイドエネルギー代謝研究を開発するためにex vivoで培養した。陰窩オルガノイドの酸素消費速度（OCR）および細胞外酸性化率（ECAR）の非存在下および存在下つの異なる代謝阻害剤（オリゴマイシン、ロテノン）のイオンキャリア（カルボニルシアニド-p-トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン）で測定した。陰窩orgaがこれらの化学化合物へのNOID代謝反応が正常に変化ECARとOCRの値を通して反映された。 セルラー生体エネルギー研究は、癌、肥満、糖尿病、代謝性疾患およびミトコンドリア病で代謝状態および疾患リスクと表現型の間の相互の相互作用を解明および翻訳医学のための直接的な意味合いを持つ事前スクリーニング方法を助ける。ここでは、小腸陰窩を分離し、培養陰窩オルガノイドにするための詳細なプロトコルを記述します。また、我々は、代謝アッセイのためのcryptオルガノイドの文化を使用するための新規な方法をご紹介します。

<table><tbody><tr><td>BD マトリゲル基底膜マトリックス、GFR、フェノールレッドフリー、LDEVフリー</td><td>BD Biosciences</td><td>356231</td><td></td></tr><tr><td>PBS(リン酸緩衝生理食塩水)、マグネシウムなし、カルシウムなし、pH 7.2</td><td>Life Technologies</td><td>20012-027</td><td></td></tr><tr><td>Advanced DMEM/F-12 (1x)</td><td>Life Technologies</td><td>12634-028</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ&プライム;sモディファイドイーグル&プライム;グルコース、L-グルタミン、フェノールレッド、ピルビン酸ナトリウム、重炭酸ナトリウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5030</td><td></td></tr><tr><td>フェノールレッドナトリウム塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4758</td><td>DMEM (D5030) の最終濃度 15 mg/l - step 2.2.2</td></tr><tr><td>Antibiotic-Antimycotic、100x、100 ml</td><td>Life Technologies</td><td>15240-062</td><td>最終濃度 1x または 2x</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン、リキッド</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ15140-122</td><td>最終濃度1x</td></tr><tr><td>Gibco&reg;GlutaMAX&trade;サプリメント</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ 35050061</td><td>最終濃度 1x</td></tr><tr><td>Gibco&reg;HEPES (N-2-ヒドロキシエチルピペラジン-N-2-エタンスルホン酸)、1 M</td><td>Life Technologies</td><td>15630-080</td><td>最終濃度 10 mM</td></tr><tr><td>N-アセチル-L-システイン、25 g</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9165-25G</td><td>最終濃度 1 mM</td></tr><tr><td>100x N-2 サプリメント、液体</td><td>Invitrogen</td><td>17502-048</td><td>最終濃度 1x</td></tr><tr><td>50x B-27&reg; サプリメント マイナスビタミン A、液体</td><td>Invitrogen</td><td>12587-010</td><td>最終濃度 1x</td></tr><tr><td>組換えマウス R-Spondin 1, CF, 50 &mu;g</td><td>アール&D Systems</td><td>3474-RS-050</td><td>最終濃度 500 ng/ml</td></tr><tr><td>組換えマウス EGF、100 &mu;g</td><td>Peprotech</td><td>315-09</td><td>最終濃度 50 ng/ml</td></tr><tr><td>組換えマウス Noggin, 20 &mu;g</td><td>Peprotech</td><td>250-38</td><td>最終濃度 100 ng/ml</td></tr><tr><td>Gibco&reg;L-グルタミン、200 mM</td><td>Life Technologies</td><td>25030-081</td><td>最終濃度 2 mM</td></tr><tr><td>Gibco&reg; グルコース粉末</td><td>Life Technologies</td><td>15023-021</td><td>最終濃度 5 mM</td></tr><tr><td>Ambion&reg; 0.5 M EDTA (エチレンジアミン四酢酸)、pH 8.0</td><td>Life Technologies</td><td>AM9260G</td><td>最終濃度 3 mM step 1.1.5、2 mM step 1.1.8</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>DTT (dithiothreitol), 1M</td><td>Life Technologies</td><td>P2325</td><td>最終濃度 3 mM</td></tr><tr><td>ウシ血清からのアルブミン (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2058</td><td>0.1% in PBS</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>Life Technologies</td><td>16000-044</td><td>1% in PBS</td></tr><tr><td>Recovery&trade;細胞培養凍結媒体</td><td>生命技術</td><td>12648-010</td><td></td></tr><tr><td>ROCK阻害剤(Y-27632)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Y0503</td><td>最終濃度10 &mu;M</td></tr><tr><td>オリゴマイシン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>O4876</td><td>最終濃度 1 &mu;M</td></tr><tr><td>シアン化カルボニル-p-トリフルオロ-メトキシ-フェニル-ヒドラゾン (FCCP)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2920</td><td>最終濃度 1 &mu;M</td></tr><tr><td>ロテノン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R8875</td><td>最終濃度 1 &mu;M</td></tr><tr><td>水酸化ナトリウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>221465</td> PBS XF24 細胞外フラックス分析装置<td>における最終濃度 0.1 N</td></tr><tr><td>(XF 分析装置)</td><td>タツノオ</td>トシゴ バイオサイエンス<td></td><td></td></tr></tbody></table>

における代謝プロファイルのリアルタイム分析エクスビボマウス腸陰窩オルガノイド培養

Real Time Analysis of Metabolic Profile in Ex Vivo Mouse Intestinal Crypt Organoid Cultures

腸管腔に突出し、絨毛および成熟した腸細胞、杯細胞および腸内分泌細胞から成る;小腸粘膜は、2つの基本的な構造に編成され、繰り返しのアーキテクチャを示し、及び陰窩、粘膜下層および筋の近位に常駐成体幹細胞および前駆細胞を保有し、パネート細胞成熟、ならびに間質および陰微小環境の免疫細胞。ここ数年までは、小腸のin vitro試験で 、良性または悪性のいずれかで腫瘍に由来する細胞株に限定されていた、と正常な腸上皮の生理学および、それらが存在する微小環境の影響を表すものではありませんでした。ここでは、佐藤らから適応する方法を実証している。（2009）C57BL / 6マウス由来の初代マウス腸陰窩オルガノイドを培養する。さらに、メジャーによってリアルタイムに陰窩代謝プロファイルをアッセイする陰窩オルガノイド培養物の使用を提供する基礎酸素消費、解糖率、ATP産生および呼吸容量のメント。オルガノイドは、それらのソースで定義された特性を維持し、酸素消費量と細胞外酸性化率で反射されたそれらの代謝適応の側面を保持している。この陰窩オルガノイド培養系におけるリアルタイム代謝研究は、陰窩オルガノイドエネルギー代謝を研究するための強力なツールであり、それは、栄養および薬理学的因子によって調節することができる方法。

墓所オルガノイドは、8ヶ月齢のC57BL / 6マウスから樹立し、栄養76A（AIN76A）の齧歯類ダイエットアメリカの協会で精製供給した。腸の陰窩オルガノイドは、単一のcrypt（ 図1A、シングル赤矢印）から長期間培養で増殖させることができる。オルガノイド培養物（ 図1B、赤い矢印）で18-20日で暗号のような構造を成長させる。陰窩は3週間毎に継代し、オルガノイドを効率的に各継代後に回収。 タツノオトシゴ生体エネルギーの計装は、リアルタイムで培養中の増殖する細胞で同時にミトコンドリアの呼吸と解糖の速度を評価することができます。私たちは、陰窩オルガノイド代謝を検定するためにこの技術を適応。 8ヶ月間AIN76A精製飼料を与えたマウスから誘導されたオルガノイドで、我々は測定された：1酸素消費速度を、OCRは、 図2Aに示さ-陰窩オルガノイドの酸素消費速度（モル/分）を表す赤線、青目である唯一のマトリゲル（ゼラチン状タンパク質混合物）を含む電子制御ウェル。 <str...

小腸の陰窩オルガノイド培養ex vivoで幹細胞およびそれらのニッチに依存する陰窩の成長を再現する組織培養系を提供する。私たちは、初代マウス陰窩オルガノイドリアルタイムで代謝プロフィールをアッセイする方法を確立した。私たちは、オルガノイドは、それらのソースで定義された生理学的特性を維持した。

The small intestinal mucosa exhibits a repetitive architecture organized into two fundamental structures: villi, projecting into the intestinal lumen and ...

この手順の目的は、初代マウス陰窩オルガノイドの代謝プロファイルをリアルタイムでアッセイすることです。これは、最初にマウスの小腸を収集し、続いてアンドレがマトリゲルで曲げた腸の陰窩を分離することによって達成されます。2番目のステップは、完全に成長した陰窩オルガノイドを形成するまで地下室を培養することです。次のステップは、代謝研究のためのカートリッジアッセイの調製です。最後のステップは、カートリッジとユーティリティプレートをXF 24細胞外フラックスアナライザーにロードし、細胞外フラックス分析を実行して、K cryptオルガノイドの酸素消費率と細胞外酸性化率を測定することです。最終的に、この手順により、初代マウス腸管陰窩オルガノイドの代謝プロファイルをリアルタイムで研究することができます。この手法は、代謝エッセイに細胞培養を使用するような既存の方法よりも優れている点は、腸管暗号臓器の代謝をリアルタイムで評価できることです。オルガノイド培養は、免疫状態をより正確にし、これによりより生理学的な関連データを生成するのに役立ちます。この技術は、他のXI 3Dオルガノイド培養の分析にも拡張できます。この方法は、腫瘍形成中の小腸クリップスの代謝変化の特徴付けや、正常な状態と疾患状態の代謝の比較などの糖尿病および代謝研究など、がん分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この手順を開始するには、安楽死させたマウスの腹部を縦方向に開きます。氷のように冷たいカルシウムとマグネシウムを含まないPBSと2つの抗生物質抗真菌薬で小腸を満たします。その後、小腸を迅速に分離します。腸間膜脂肪をメスで取り除きます。組織に穴を開けないように注意し、手順全体を通して組織を氷冷PBSで湿らせてください。腸を開き、氷冷したPBSでよく洗います。その後、小腸を2つのセクションに切ります。濡れた綿の先端を使用してそれらを平らにします。次に、プレコスライドを使用してVIIをそっとこすり落とします。氷冷したPBSで組織を数回激しく洗います。次に、20ミリリットルの1つのXPBSに3ミリモルのEDTAと0.5ミリモルのDTTを入れて3分間インキュベートします。その後、プレコスライドで組織を2〜4ミリメートルにカットします。かみそりの刃を使用して、20ミリリットルの氷冷PBSを含む50ミリリットルのチューブにピースを移します。その後、10ミリリットルの滅菌使い捨てピペットを使用して、10回静かに上下させます。組織片が重力によって沈降した後、ピペットでSUPナタムを取り出します。手順をさらに3回繰り返し、上清が透明であることを確認します。次に、組織片を20ミリリットルのPBSを含む50ミリリットルのチューブに移し、2ミリモルのEDTA SWで混合物を摂氏4度で30分間インキュベートします。その後、組織を落ち着かせ、仰臥位を廃棄します。15ミリリットルの氷炭PBSとパイプを5回上下に追加します。組織片を沈殿させ、仰臥位をフラクション1として収集します。手順を繰り返して、分数2から分数5を収集し、分数を分離します。次にPBSと呼ばれる氷を15ミリリットル加え、手で15秒間激しく振る。小数部6を収集し、小数部7と小数部8の手順を繰り返します。ティッシュペーパーが浮き始めたら、チューブを軽くたたいて落ち着かせます。次に、顕微鏡下で各画分のアリコートにクリップスがないか調べます。これは悪い分数の例であり、これは良い分数の例です。クリップスが入っているものを一緒に引っ張ります。その後、引っ張った画分を70ミクロンのナイロンセルストレーナーに通し、クリップスを50ミリリットルのチューブに集めます。その後、サンプルをGの100倍で摂氏4度で5分間遠心分離し、すり酸を廃棄し、PTを10ミリリットルの氷冷PBSに再懸濁し、2つの抗生物質抗真菌剤を添加します。次に、クリップスを15ミリリットルのチューブに移し、もう一度洗浄を繰り返します。次に、氷冷の10ミリリットル、DFアドバンスドD-M-E-M-F 12で1回陰窩を洗います 2つのx抗生物質抗真菌薬が含まれています。その後、1つのx抗生物質抗真菌薬を含むDFの10ミリリットルで陰窩を1回洗浄します。その後、ヘモサイトメーターを使用して陰窩を数えます。陰窩溶液の量を調整し、再懸濁したときの最終的な陰窩濃度が20マイクロリットルのゼラチン状タンパク質混合物あたり100〜200陰瞳になるように、1.5ミリリットルのチューブに移します。次に、クリプト溶液をGの100倍で摂氏4度で5分間遠心分離します。Sennaを取り外し、ゼラチン状タンパク質混合物に陰窩を再懸濁します。その後、24ウェルユーティリティプレート内のウェルあたり20マイクロリットルのクリプトゼラチン状タンパク質混合物懸濁液をプレート化する。プレートをCO2インキュベーターに37°Cで30分間保管し、懸濁液が固まるまで待ちます。次に、500マイクロリットルの氷冷した完全な培養培地を各ウェルに加え、完全に発達したオルガノイドに成長するまでクリップスを培養しますこの手順では、カートリッジを37°Cの非二酸化炭素インキュベーターで一晩水和します。次に、培地を取り出し、オルガノイドを500マイクロリットルのDMEMで2回洗浄します。5分後、それぞれに675マイクロリットルのアッセイ培地を加えます。次に、陰窩オルガノイドの顕微鏡形態をチェックして、摂氏37度の非二酸化炭素インキュベーターで1時間インキュベートします。その後、アッセイ培地に10マイクロモルの注射用化合物を調製します。75マイクロリットルの10マイクロモル注入可能な化合物をカートリッジのポートに順番にロードして、カートリッジをセットアップします。次に、カートリッジを37°Cの非二酸化炭素インキュベーターで30分から1時間インキュベートします。同時に、XFアナライザーの電源を入れ、アッセイプロトコルテンプレートを作成します。カートリッジとユーティリティプレートをXFアナライザーに入れ、カートリッジのキャリブレーションを実行します その後、細胞培養プレートを装置にロードしてアッセイを実行します。ここに示されているプロトコルは、生後8ヶ月のC 57ブラックシックスマウスから2日または18日で得られた陰窩オルガノイドです。文化。この図は、生後8ヶ月齢のC 57 black sixマウス由来のオルガノイドを用いた代謝アッセイで、酸素消費率と細胞外酸性化率を示したものです。クリプトは赤で示され、コントロールは青で示されます。カートリッジにプリロードされた試薬は、オリゴマイシン、B-F-C-C-P、およびCロテノンとして順次注入されました。この技術は、がんと代謝の分野の研究者が、患者由来の陰窩オルガノイドの代謝変化を調査する道を開きました。このビデオを見れば、腸管陰窩、オルガノイド代謝をリアルタイムで測定する方法をよく理解できるはずです。ご覧いただきありがとうございます、そしてあなたの実験に頑張ってください。

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