Name: 生物発光イメージングが続くマウス皮下モデルにおける医学関連の異物にカンジダ·アルビカンスバイオフィルム発展 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 31 s
Description: 学ぶCandida albicansバイオフィルムの生体内発達をマウス皮下モデルでバイオルミネセンスイメージングにより非侵襲的にモニタリングする手法。この方法は抗真菌薬の効果評価や動物実験数の削減に貢献する。

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この作業は、細菌および真菌バイオフィルムの生物学と生態学に関するFWO研究コミュニティであるKU Leuven PF 'IMIR'、およびFWOプロジェクトG.0804.11によって支援されました。SKは、PDMK 11/089フェローシップのKU LeuvenとポスドクフェローシップのFWOに感謝します。フィギュアの準備に協力してくれたNico Vangoethemに感謝しています。Celia Lobo Romero氏に対し、in vivo実験手順における技術支援に感謝いたします。

注：全ての動物実験は、KUルーベン（プロジェクト番号090/2013）の倫理委員会によって承認された。 KU Leuvenの動物保護ガイドラインに従って動物を維持します。 1. C.アルビカンスの成長<ol><li>二十四時間、動物実験開始前に、酵母抽出物の造粒物10g、細菌学的ペプトン20g及び造粒寒天を15g添加することにより、YPDプレートを準備する。 Milli-Q水とオートクレーブと900ミリリットルのボリュームを構成する。 </li><li>無菌の40％のグルコースの50ミリリットルを追加します。完全に混合し、ペトリ皿に注ぐ。冷却して凝固さ寒天プレートにしておきます。 注：本研究では、二つの株、すなわち野生型C.を使用アルビカンス SC5314 - GLUCネガティブ（WTと呼ぶ）歪みとC.野生型Cである。 アルビカンス SKCA23株、 SKCA23- Aという名前のこの株（.IN Clp10 :: Act1p-gLUC59プラスミド22で形質転換アルビカンス SC5314CTgLuc）Glucを（このプロモーターは、真菌の成長ならびに菌糸段階、酵母中で活性である）ACT1（アクチン）プロモーターの制御下にある内因PGA59遺伝子に融合した。この株は、教授のパトリック·ヴァンDijck、ルーヴェンカトリック大学、ルーヴェン、ベルギーの研究室から要求することができる。プラスミドClp10 :: Act1p-gLUC59プラスミド22は親切に教授C. D&#39;Enfert、パスツール研究所、パリ、フランスから寄贈されました。 </li><li> 、-80℃でグリセロールストックと店舗の両方での株の維持。 </li><li> YPDプレート上の任意の実験ストリーク株に先立ち。 37℃で一晩プレートをインキュベート。 </li></ol> 2.カテーテルの小品準備<ol><li>実験の前に、必要とされているどのように多くのカテーテルを決定します。これは、マウス当たり6カテーテル片（左3カテーテルおよび動物（ 図2Aの右側の3カテーテル）まで注入することが可能である。 </li><li>二十四時間後、動物の手術の前に、パックを開く生物学的安全キャビネットの下トリプルルーメンカテーテルを含む年齢。無菌のピンセットを持つすべての不要な部分を削除し、滅菌メスでカテーテルに取り付け部分をカット。プラスチックパッケージの下に定規を置き、定規の目盛り（図1）によると、正確に1cmのポリウレタンカテーテル片をカット。 注：これは、カテーテル片のこのタイプの燐光とBLI 18,19に適していないことを言及することが重要である。 </li><li> 2ミリリットルのマイクロチューブに15カットカテーテル片（ステップ2.2）の最大を置きます。常に密着性の期間の後、デバイスに取り付けカンジダ細胞の量を列挙するために使用されている余分3枚を準備。 </li><li> 100パーセントウシ胎児血清（FBS）の約1.8ミリリットルと補足カテーテル。 </li><li>激しくボルテックスし、100％のFBSの追加の100〜200μlを添加する。完全に血清を持つすべてのカテーテルの部分をカバーしています。 </li><li> 37℃で一晩インキュベートする。 </li&gt; </ol> 3.動物および免疫系の抑制<ol><li>標準の食料と水を自由に自由にアクセスできる個別に換気フィルタートップケージにメスのBALB / cマウス（生後約8週間）してください。 </li><li>動物の飲料水にデキサメタゾン（0.4ミリグラム/ L）を添加することにより、動物の手術の前に、免疫系の24時間の抑制を開始する。ホストの任意の細菌汚染を避けるために、抗生物質、例えば 、アンピシリンナトリウム粉末（0.5グラム/ L）を飲料水を補う。 </li><li> （最大6日間まで）全体の実験中の動物の免疫抑制してください。 </li></ol> 4.上のエクスビボC.アルビカンスの接着FBSでコーティングされたポリウレタン基質<ol><li>新鮮な1.5ミリリットルのマイクロチューブに各血清でコーティングされたカテーテルピースを転送します。 </li><li>いくつかのC.は削り取るアルビカンス細胞をYPDプレート（ステップ1）上で増殖させ、1mlのPBSでそれらを中断する。 </li><li> 缶を希釈する別々のマイクロ遠心チューブ内：ジダ細胞（100 1）。希釈されたサンプルの10μlのを取り、細胞計数室でそれを適用する。少なくとも16小さな正方形を数える。 </li><li> 5×10 4細胞/ mlの最終濃度になるようにRPMI 1640培地中のカンジダ·セル（個別株）を準備する。 </li><li>各血清でコーティングされたカテーテル片に細胞懸濁液1mlを加える。 </li><li>激しくボルテックスし、カテーテルが培地中に沈め、トップ上に浮いていないことを確認。 </li><li> 90分間37℃（接着の期間）にカテーテルをインキュベートする。 </li><li>無菌のピンセットでカテーテルを取り出し、1mlのPBSで二回洗っ。このステップの間に洗浄流体は非常に優しくカテーテルのフラッシュ中に垂直位置にカテーテルを保つことによって内腔を通って行くことを確認してください。重要なことは、付着した細胞の除去につながる可能性が強い流れを使用しないでください。 </li><li> TUごとに1枚（きれいな微量遠心チューブにそれぞれ洗浄したカテーテルを転送）である。 </li><li>氷の上に置き、手術までそこに保つ。 </li></ol> 5.麻酔<ol><li>メデトミジンの100μL（1mg / ml）をし、無菌生理食塩水の825μlのケタミンの75μlの（100ミリグラム/ ml）を混合することによって麻酔を準備します。 45〜60 mg / kgをケタミンおよび0.6〜0.8 mg / kgをメデトミジンの用量で、その結果、10グラムの体重あたりの麻酔薬カクテルの、腹腔内（IP）60〜80μLを管理します。 </li><li>麻酔の逆転のために、を0.5mg / kgの用量で、その結果、解毒剤として、腹腔投与、4.95ミリリットルの生理食塩水に10g体重あたり100μlを50μlのアチパメゾール（5 mg / mlの）で希釈する。 </li><li>麻酔の注射後、別々のケージに動物を配置し、それが完全に眠っているのを待ちます。 </li><li>光肌のピンチとつま先のピンチすることによって、動物の適切な麻酔を確認して、皮膚への損傷を引き起こさない。いずれの観察運動は、動物が十分に手術を行うために麻酔をかけていないことを示します。このような場合は、COUを待つ長い動物までの分のPLEは、皮膚や足指のピンチの際に動きの兆候を示していない。 </li></ol> 6.動物の手術<ol><li>転送は、加熱パッド上に置いクリーン組織にケージから動物を麻酔し、37℃に予め加温した（ 図2A（1））。 注：安価な代替は、電気的に加熱毛布を使用することです。これは、動物の手術前に電子レンジで暖機しなければならない等温パッドを使用することも可能である。 </li><li>目に眼軟膏を適用します。 </li><li>電気かみそりで動物の腰を剃る。すべての動物の毛を削除して、クリーンな組織上の動物を転送する。 （1％のヨウ素イソプロパノール又は70％アルコール中の0.5％クロルヘキシジンを、 例えば ）皮膚を消毒し、約1分間乾燥消毒領域を残す（ 図2A（2））。 </li><li>皮膚（左に1つ、動物の右側に1つ）の小さな切開する（約0.5＆＃8211; 1センチ）（ 図2A（3））。 </li><li> 2回の皮下トンネルを作成するためにハサミで皮下組織を解剖。各トンネルは約1.5センチと1cm幅にする必要があります。 </li><li>各トンネルで、以前にカンジダに感染して3カテーテル片を、挿入します。カテーテルは、水平配置で隣同士に嘘ことを確認し、彼らは全部で6カテーテルフラグメントの移植可能にするためにお互いをカバーしていないこと（ 図 2a を （4））。 </li><li>縫合糸で切開を閉じます。また、傷口を閉じるためにDERMABONDを使用しています。 </li><li> 70％アルコール中で、ヨウ素イソプロパノール（1％）で0.5％クロルヘキシジンで非常に穏やかに創傷を消毒する。 </li><li>に直接傷に局所麻酔薬（キシロカインゲル、2％）を適用します。 </li><li> 10gの体重を腹腔内に100μl：麻酔の逆転（プロトコル5、ステップ2）を管理する。 </li><li>きれいなケージに移し動物は、以前に加熱板上に置いた。動物を維持動物が完全に目を覚ましになるまで別々と暖かい。一方、次の動物の動作やインプラントを続行。一旦全ての操作動物が完全に目を覚ましている。 1ケージに移す。定期的に動物を監視します。 </li></ol> 7.生物発光イメージング：セレンテラジン（CTZ）の調製G.、基板ヨモギルシフェラーゼ <ol><li>酸性化したエタノールに5 mg / mlのCTZを溶解するか、製造元の指示に従ってにより新鮮なセレンテラジン（CTZ）ストック溶液を準備します。 </li><li>滅菌PBSで原液を1:10に希釈して1.2 mMの作業溶液を準備します。 注：カテーテルを囲む領域の皮下に100μlのCTZ作業溶液を注入。 CTZの皮下注射用のインスリンシリンジに使用します。 </li><li>常に暗闇でCTZを保つ（ 例えば 、アルミホイルでCTZを含むマイクロチューブをカバー）。実験の期間中、-80℃で保存溶液を保管してください。 </li></ol&gt; 8.生物発光イメージング<ol><li> BLIカメラを初期化します。 </li><li>インダクションボックスを使って動物を麻酔。 2から3パーセントで、酸素中のN 2 O / O 2、または空気をイソフルランの混合ガスを使用してください。 </li><li>誘導後、インダクションボックス内および1.5から2パーセントでイメージングチャンバー内の麻酔の維持。 </li><li>イメージングセッションを開始する前に、10cmのFOVに対応する位置Aにイメージングプレートを置く。確認ボックスに眠っている動物を配置することによって麻酔コンセントや動物の右の位置という。 </li><li>動物は、カメラの真下をFOVに、所望の撮影位置になるまで、いくつかの写真を撮る。 </li><li> 2のインスリン注射器CTZ作業溶液をそれぞれ含有する100μlのを準備します。 </li><li>ベンチに一匹を置き、ガス麻酔を提供するノーズコーンを介して眠ってそれを維持する。 </li><li>カテーテルは皮下に、周囲の所定の位置に注射器の針が持参し注入するCTZ同時にカテーテルの上に。 </li><li>注射直後、カメラボックス内の暖かいプレートに動物を配置し、生物発光画像取得を開始します。 </li><li>最大信号強度に到達するまで20〜60秒（信号強度に応じて）の範囲の取得時間との連続した​​スキャンを取得する。次のフレームの取得中に、このROIを通じて光子束を各カテーテルトリオの上にROIを配置し、測定することにより、先に取得したフレームのBLIの信号強度を測定する。 </li><li>次の動物（S）について、ステップ7から繰り返します。 </li><li>イメージングの後、彼らのケージに動物を返す。バイオフィルム形成の長手方向の、非侵襲的フォローアップのために実験中BLIを繰り返す。 </li><li>リビングイメージのソフトウェアを使用してBLIデータを分析します。各カテーテルトリオの上に固定サイズの長方形のROIを配置し、各ROIを通じて光子束（輝き）を測定する。すべての動物のためにこれを繰り返します。 </li><li>レポート毎秒光子束として各カテーテルトリオのBLI信号強度。平均と各グループの毎秒の光子束のSDをプロットし、対数スケールでBLIデータを表す。ログに10変換されたデータを統計分析を実行します。 </li></ol> 9.カテーテル外植<ol><li> 1mlのPBS、各カテーテル装置のための1つを含むマイクロ遠心チューブを準備し、氷上でそれらを保つ。 </li><li>頸椎脱臼により動物を安楽死させる（ 図2（b）（1））。 </li><li> 70％アルコール中で、ヨウ素イソプロパノール（1％）で0.5％のクロルヘキシジンと背中の皮膚を消毒する。 </li><li>カテーテル上記切開（約3cm）を確認します。 </li><li>皮下組織を切断し、カテーテル断片を、滅菌ピンセット（ 図2B、（2））を用いて、皮下組織の下から1枚ずつを削除します。 </li><li>垂直位置に優しくカテーテルを処理し、滅菌PBSの1ミリリットルで二回それを洗う。それぞれにカテーテルを置き（ステップ1で調製）を別々のマイクロ遠心チューブに一枚​​。 </li></ol>コロニー形成単位数（CFUを）と結果の統計分析によって10の定量バイオフィルム関連細胞<ol><li>超音波処理カテーテルは、以前に水浴超音波処理40,000 Hzで10分間PBSを1mlに入れ、氷の上に置きます。 </li><li>超音波処理の後、精力的に氷上で再び30秒と場所ボルテックス。 </li><li> PBS900μlのを含む二つの追加マイクロ遠心チューブを準備します。 </li><li>あなたの元のサンプル（カテーテルが含まれている1）から100の希釈し、氷上ですべてのマイクロチューブを保つ：1:10 1を加えます。 </li><li>元のサンプルのプレートを100μl、1：10〜1：重複でYPD寒天プレート上で100希釈液。 </li><li> 37℃で2日間プレートをインキュベートし、CFUをカウント。 </li><li> YPD寒天プレート上で生育したコロニー（コロニーの計数可能量、最大300個のコロニー/プレート）をカウントし、適切DILUでそれらを掛けるションファクター（1X-オリジナル、10倍または100倍希釈）。さらに、カテーテルを含む1mlチューブにコロニーの最終量に相当する、10倍、各カテーテル片を掛け。 10セル/標準偏差（SD）を有するカテーテルピースを記録するためにコロニーの最終量を持参してください。平均±SDとしてデータを発現する。 </li><li>上記の計算と統計分析を実行するために、スプレッドシート、および/または統計プログラムに各カテーテルおよび特定のグループのすべての値を置きます。比較するために、特定のグループを示す、 すなわち WT 対変異体または2日対 。 6日バイオフィルム形成とLOG10変換されたデータにテューキー事後テストで対応のないt検定と分散分析を行う。 <ol><li> p値によって有意水準を発現する。として表されるp値 &lt;0.05は、以下の場合は、この研究では有意性を示す：* P &lt;0.05、** P &lt;0.005、*** P &lt;0.0005。 </li></ol></li></ol>

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著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言。

宿主免疫系は、in vitroモデルで説明することはできないバイオフィルム形成に必須の因子であるので、微生物バイオフィルム専用の研究のための動物モデル、及び特に齧歯類モデルの使用は、非常に重要である。本研究では、比較的簡単な皮下C.を記述簡単に研究室に採用することが可能と強力な技術的なスキルを必要としないアルビカンスバイオフィルムマウスモデル、。このモデルは、もともとラット24に表皮ブドウ球菌のバイオフィルム形成を研究するために開発されました。 提示されたモデルにおいて、無コーティングされたポリウレタンカテーテルは、接着の期間（90分、37℃）中にカンジダ細胞をex vivoでチャレンジした。この最初のインビトロのステップがあるため、バイオフィルム感染過程の非常に最初の段階で、免疫系の欠如の制限要因として考えられるかもしれない。粘着力の前に続いてカテーテルインプラントは、非デバイスに関連する細胞は洗浄により除去される。接着期間の後、洗浄工程を回避する装置...

カンジダは皮膚や消化管及び膣内フローラの一部として、たとえば、健康な個体の異なるサイトで見ることができるの共生生物、ある。しかし、入院、および特に患者の免疫無防備状態は、感染1の広い範囲を引き起こす可能性がある。そのような個体では、免疫力が低下し、 カンジダ細胞が血流に普及し、生命を脅かす感染を引き起こすより深い組織に侵入することができます。また、中心静脈および尿道カテーテルなどの非生物基質の存在は、人工心臓弁、関節、 カンジダアタッチメント 2のためのニッチを提供することができる。そのような基材への密着性は、主に多糖類2からなる、細胞外の高分子材料に埋め込 ​​まれた酵母と菌糸細胞の層を表し、さらにバイオフィルム開発のための前提条件である。C.アルビカンスカテーテル -関連の感染症高い死亡率と関連している。バイオフィルムの一般的な特徴は、そのようなアゾール3,4-として知られている抗真菌剤、に彼らの減少した感受性である。このようなエキノカンジンおよびアンホテリシンBのリポソーム製剤などの抗真菌薬の唯一の新しいクラスは、カテーテル関連感染症5-7に対して活性であることが判明した。そのため抗真菌薬にバイオフィルムの回復力のため、治療的アプローチは、非常に多くの場合、カテーテルの除去およびソールソリューションとして、その後の交換につながる、制限されています。 Cの私たちの現在の理解の大半albicansのバイオフィルムの発達は、上述したデバイス、 すなわち、シリコーン、ポリウレタン2の製造に用い、非生物ポリスチレン等の基板、またはプラスチック上のin vitro研究に由来する。これらのモデルは非常に進んでいるし、可能な限り生体内での状況を模倣しようとする。しかしながら、これらのシステムは、連続的な血流及びtを含まない彼のホスト、免疫系。これは、中心静脈カテーテル（CVC）モデル8-10、口腔カンジダ11の義歯の口内炎モデルおよびカテーテル関連カンジダ12用のマウスモデルとしてのin vivoモデル系の開発をもたらした。さらに、C. albicansのバイオフィルムの開発は、膣13と口腔14からのものとして粘膜表面上の生体内で検討した。私たちの研究室では、皮下C.の設立で貢献Sprague Dawleyラット15の背面に感染したカテーテル片の移植物に基づいているアルビカンスバイオフィルムモデル。このモデルは、成功したフルコナゾールにバイオフィルムの感受性をテストし、薬5,16をエキノカンジン、ジクロフェナク及びカスポファンギン17の組合せ療法の効果を研究するために我々の研究室で使用された。より最近では、我々は、BALB / cマウス18,19で使用するためにこのシステムを適合される。でin vivoモデル他との比較が、この皮下モデルの主な利点は、埋め込 ​​まれたカテーテル片を内腔の内側に開発動物ごとに複数のバイオフィルムを研究する可能性がある。 実験動物の数を減らすために、我々は、Cの開発を研究するためにこのモデルを適応しているアルビカンスバイオフィルム非侵襲的に生物発光イメージング（BLI）18,19を使用します。この方法は、動物の犠牲を回避する、（我々の場合に移植カテーテルの面積）は、関心のある領域における特定のBLIシグナルを測定することによって、バイオフィルムを定量するために用いることができる強力な技術であることが判明した。 C.などにより、特定のluxオペロン20の導入遺伝子および生物発光反応に必要な基質の両方を発現することができる細菌の比較では、ほとんどの真核生物、 アルビカンスは、と結合し、ルシフェラーゼ遺伝子の異種発現に依存している例えば、D-ルシフェリンまたはセレンテラジン21などの特定の基質、の外用投与。おそらく、真菌細胞壁およびCの存在に起因しアルビカンスの形態形成、ルシフェラーゼ酵素の基質の細胞内送達は、主な課題21でした。この問題を解決するために、Enjalbert ら 22は、合成C.株を設計し自然分泌型ガウヨモギルシフェラーゼ遺伝子（GLUC）のアルビカンスコドン最適化バージョンは 、C。に融合させたアルビカンスPGA59遺伝子は、GPI-は、細胞壁アンカータンパク質。なぜなら、細胞壁でのルシフェラーゼの存在、基質の細胞内アベイラビリティに関する問題を回避することができる。この特定のシステムはC.によって引き起こされる表面的な感染症を研究するために使用したアルビカンス 22。ごく最近、BLIは、また、口腔咽​​頭カンジダ症およびそのpossiblの進行を追跡するために使用された、電子処理23。このような所見は、自由生活細胞だけでなく、デバイス関連感染によって引き起こされる感染症を研究するための有望な技術としてBLIの使用をサポート。 本研究では、Cを記述するBLIを使用したポリウレタンカテーテルBALB / cマウスでピースとその定量化にalbicansのバイオフィルムの開発。私たちは、生きた動物のマウスに移植すると、その後のバイオフィルムの開発に続く接着の期間中にポリウレタンカテーテルのin vitroでの植民地化の詳細なプロトコルを提供する。別にC.によって放出されるBLI信号を測定するからアルビカンス細胞は、我々はまた、バイオフィルムの真菌負荷の定量化のための標準的な手法との比較のためにコロニー形成単位を決定する。

<table><tbody><tr><td>酵母抽出物粒状</td><td>メルク</td><td>MERC1.03753.0500</td><td></td></tr>細菌<tr><td>学的ペプトン</td><td>オキソイド</td><td>LP037B</td><td></td></tr><tr><td>寒天粒状</td><td>Difco</td><td>214530</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-グルコース</td><td>フルカ</td><td>49159-5KG</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水&nbsp;</td><td>実験室で</td><td>1Lの10x PBS用に調製:80 g NaCl、2 g KCl、14.4 g Na2HPO4、2.4 g KH2PO4</td>RPMI1640 L-グルタミンを含み、炭酸ナトリウムを含まない&nbsp;<td></td></tr><tr><td></td><td>シグマ</td><td>R6504-1L</td><td>カンジダアルビカンスの薬剤感受性試験のプロトコルに従って準備します&nbsp;</td></tr><tr><td>3-(N-モルホリノ)プロパンスルホン酸(MOPS)</td><td>シグマ</td><td>M1254</td><td>MOPSは、RPMI培地(pH 7.0)</td></tr><tr><td>胎児ウシ血清(FBS)</td><td>シグマ</td><td>F7524</td><td></td></tr><tr><td>ポリウレタン胃袋ルーメン静脈内カテーテルピース(直径2.4mm、Certofix Trio S730)の</td>pHを調整するために使用されます。<td>BBraun</td><td>CV-15703</td><td>ポリウレタン部分を1cmにカット</td></tr><tr><td>デキサメタゾン</td><td>ファグロン SAS, フランス</td><td>611139</td><td>免疫抑制剤 (原液 10 mg/ml)</td></tr><tr><td>アンピシリン&nbsp;</td><td>Duchefa Biochemie、オランダ</td><td>A0104</td><td>抗菌予防</td></tr><tr><td>ケタミン 1000</td><td>ファイザー</td><td>804 119</td><td>麻酔</td></tr><tr><td>薬 ドミター</td><td>ファイザー</td><td>134737-1</td><td>麻酔</td></tr><tr><td>薬 抗セダン</td><td>ファイザー</td><td>134783-2</td><td>麻酔の逆転</td></tr><tr><td>キシロカインゲル (2%) - これはリニソル</td><td>アストラゼネカ</td><td>352 1206</td><td>皮膚の局所麻酔薬です</td></tr><tr><td>テラマイシン/ポリミキシン-b眼科用軟膏</td><td></td><td></td><td>眼の乾燥と感染を防ぐため</td></tr><tr><td>セレンテラジン&nbsp;</td><td>Prolume(ナノライト)</td><td>NF-CTZ-FB</td><td>感光剤(暗所に保管する必要があります)</td></tr><tr><td>ヨウ素イソプロパノール(1%)</td><td>3M&trade;デュラプレップ&トレード;&nbsp;</td><td></td><td>皮膚用消毒剤</td></tr>:<tr><td>アルコール70%中0.5%クロルヘキシジン&nbsp;&nbsp;</td>皮膚用<td>セジウム</td><td></td><td>消毒剤</td></tr><tr><td>機器</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>細胞計数室</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>インスリン注射器 (0.3ml)</td><td>テルモ Myjector 29G</td><td>324826</td><td>セレンテラジン注射用</td></tr><tr><td>電気カミソリ</td><td></td><td></td><td>小動物用</td></tr><tr><td>滅菌手術器具</td><td></td><td></td><td>はさみ、ピンセット2組、メス</td></tr><tr><td>ヒーティングパッド</td><td>ライカ</td><td>14042321474</td><td></td></tr><tr><td>皮膚縫合糸</td><td>Johnson&ジョンソン</td><td>K890H</td><td>外科用糸、針</td></tr><tr><td>ウォーターバスソニケーター</td><td>ブランソン2210BLI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>カメラ(IVIS Spectrum)&nbsp;</td><td>パーキン・エルマー、アラメダ</td><td>IVISSPE</td><td></td></tr><tr><td>リビングイメージソフトウェア&nbsp;</td><td>パーキン・エルマー、アラメダ</td><td></td><td>(バージョン4.2)&nbsp;</td></tr></tbody></table>

生物発光イメージングが続くマウス皮下モデルにおける医学関連の異物にカンジダ·アルビカンスバイオフィルム発展

Candida albicans Biofilm Development on Medically-relevant Foreign Bodies in a Mouse Subcutaneous Model Followed by Bioluminescence Imaging

生物的および/ ​​または非生物表面上のカンジダ·アルビカンスのバイオフィルムの開発は、入院患者のための具体的な脅威を表します。これまでのところ、C.アルビカンスのバイオフィルムは、 インビトロで 、主に研究されてきたが、 インビボ条件下で 、この動的なプロセスをよりよく理解するための重要な必要性がある。私たちは、Cを勉強するin vivoでの皮下ラットモデルを開発しましたalbicansのバイオフィルム形成 。我々のモデルで、（9までの）多数のカンジダ感染したデバイスは、動物の背中部分に注入される。それは私たちが一匹で複数の独立したバイオフィルムを研究することができますように、これは中心静脈カテーテルのモデルシステムを介して私たちに大きな利点を提供します。最近、我々はC.を研究するこのモデルを適応BALB / cマウスにおけるアルビカンスバイオフィルムの発達。本モデルで、C成熟アルビカンスバイオフィルムは48時間以内に発症し、典型的な3次元バイオフィルムのアーキテクチャを示しています。真菌のバイオフィルムの定量化伝統的に死後に分析し、ホスト犠牲を必要としている。これは速度論的研究を行うために多くの動物を使用する必要があるため、我々は、長手方向に成熟で、生体内フォローアップまでの非侵襲的生物発光イメージング（BLI）を適用私たちの皮下モデルで開発アルビカンスバイオフィルム。C. albicansの細胞は細胞壁に付着ガウヨモギルシフェラーゼ遺伝子（Glucを ） を発現するように操作した。生物発光シグナルを測定することができる光に加え、基質セレンテラジン変換ルシフェラーゼによって生成される。 BLI信号が外植カテーテルから得られた細胞数に似ていた。 in vivoでのバイオフィルム形成に定量化するための非侵襲的イメージングは、より良い理解するために、ここに貢献だけでなく、宿主-病原体相互作用に基づいて、研究のためのインビボ条件下でスクリーニングし、抗真菌薬の検証のための即時のアプリケーションを提供し、カテーテル関連感染症の病因のる。

この研究では、マウスにおけるin vivo C. albicansのバイオフィルム開発中にカテーテルインプラントと植片の外科的手順を示しています。さらに、我々は古典的なCFUの列挙ではなく、またBLIによってのみならず、成熟したバイオフィルムの定量化を表示します。 図1Aに示すように、非燐光ポリウレタンカテーテル片1cmのデバイスに切断し、その後血清でコーティングした。それはカンジダ細胞は非血清コーティングされたインプラント15と比較して、より迅速に基板に付着することを可能にするため、この手順は非常に重要です。これは、任意の温度に、その前には言及することは重要でアルビカンスの実験は、まず私たちのデバイス18のバックグラウンド発光を記録した。装置の高燐光gLuc-から特定 ​​の生物発光信号強度と信号動態の評価を妨害するため、この手順はすべてのBLIを実行する前に、非常に重要です発現細胞。次に、C.アルビカン...

マウス皮下モデルにおけるカンジダ・アルビカンスのバイオフィルム開発の実験的手順を提示します。真菌バイオフィルムは、コロニー形成単位の数を決定し、生成される光の量が生細胞の数に対応する非侵襲的な生物発光イメージングによって定量化されました。

Candida albicans biofilm development on biotic and/or abiotic surfaces represents a specific threat for hospitalized patients. So far, C. albicans ...

次の実験の全体的な目標は、カンジダアルビカン細胞によるin vivoバイオフィルム形成の非侵襲的モニタリングのためのルシフェラーゼ発現株の使用を検証することです。これは、カンジダ・アルビカンスの株を発現するルシフェラーゼがコロニーを形成したカテーテル断片をマウスの背部に移植することによって達成されます。第2ステップでは、酵母は細胞外マトリックス内に埋め込まれた細胞の厚い層に成長させられ、カテーテルの内側に成熟したバイオフィルムを生成します。次に、ルシフェラーゼ酵素によって変換される基質が添加されます。この反応により、測定可能な光が生成されます 生物発光イメージングまたはBLIは、次に、生きている宿主内のバイオフィルムの形成を記録および定量化するために使用されます。この技術が他の既存の技術(中央Venmoシステムなど)と比較した場合の主な利点は、1匹の動物内で最大6つのバイオフィルムを試験できるため、統計分析に必要な動物の数を大幅に減らすことができることです。この技術の意味は、私たちの方法が既存および新規の抗真菌成分の簡単なテストを可能にするため、カンジダアルビカンスのバイオフィルム形成の治療にまで及びます。また、この方法は、カンジダ・アルビカンス、真菌のバイオフィルムについての洞察を提供することができます。また、バクテリアや他の楽しい種などの他の微生物にも適用できます。提案された手順は、外科的処置の24時間前に動物施設にアクセスできる任意の実験室で簡単に実装できます 生物学的安全キャビネット内のトリプルルーメンカテーテルを含むパッケージを開ける。滅菌ピンセットを使用して不要な部分をすべて取り外し、滅菌メスを使用してカテーテルに取り付けられている部分を切断します。次に、プラスチックパッケージの下に定規を置き、ポリウレタンカテーテルを1センチメートルの長さにカットします。次に、各カテーテルに約1.8ミリリットルの100%胎児ウシ血清を充填し、37°Cで一晩インキュベートします。翌朝、各血清コーティングカテーテル片を個々の1.5ミリリットルのマイクロ遠心チューブに移し、YPDプレートのCアルビカンスを1〜100希釈の別のマイクロ遠心チューブで1ミリリットルのPBSにこすり落とします。カウント後、細胞懸濁液を1ミリリットルあたり4番目の細胞の10の5倍の最終濃度に希釈します。そして、血清コーティングされたカテーテル片のそれぞれに1ミリリットルの細胞を追加します。細胞を摂氏37度で90分間カテーテルに接着させます。次に、滅菌ピンセットでチューブを垂直位置に保持します。各ピースをルーメンに2回、1ミリリットルのPBSで優しく洗い流して、カテーテルを配置します。温熱パッドに配置された生後8週間の雌の麻酔マウスの腰を剃ることから始めます。次に、皮膚を消毒し、動物の両側に0.5〜1センチメートルの小さな切開を1回行います。次に、ハサミでサブキュを解剖し、長さ約1.5センチ、幅約1センチの2つの皮下トンネルを作成します。各トンネルに3つのカテーテルピースを挿入し、ピースが重ならないように水平に並んでいることを確認します。縫合糸で切開部を閉じてから、消毒剤で傷口を非常に優しく洗浄します。次に、切開部に直接局所麻酔薬を塗布し、動物が完全に回復するまで動物を監視する麻酔逆転剤を投与します。適切な実験時点でのバイオフィルム形成を画像化するには、麻酔をかけた動物のカテーテルを含む各領域に、新たに調製したコイルとテレジンを100マイクロリットルの皮下注射します。次に、最大信号強度に達するまで、20秒から60秒の範囲の収集時間で連続スキャンを取得します。次のフレームの取得中に、カテーテルの各トリオに関心領域を配置して、以前に取得したフレームの生物発光イメージングまたはBLI信号強度を測定します。固定サイズの長方形の関心領域を制御領域にも配置して、リビングイメージソフトウェアで背景信号を測定します。各カテーテルトリオの関心領域と背景の関心領域を通る光子束を測定します。バイオフィルム形成中にすべての動物および異なる時点でこれらの測定を繰り返した後、各カテーテルトリオのBLI信号強度は、毎秒の光子束として報告されます。データは、スプレッドシートプログラムに直接コピーして貼り付けることができます。縦断的実験の最後に、皮下組織を切開した各動物を犠牲にし、滅菌ピンセットを使用してカテーテル片を1つずつ除去します。先ほど示したように、1ミリリットルのPBSでカテーテルを2回洗浄します。次に、新しいマイクロ遠心分離チューブで、水浴中で40, 000ヘルツの新鮮なPBSの1ミリリットルでピースを超音波処理します。10分後に超音波処理し、カテーテルを含むチューブを氷上に配置し、元のサンプルの100マイクロリットルをYPD寒天プレート上に1〜100希釈でプレートします。重複して。最後に、コロニー形成単位の平均と標準偏差をプロットします。そして、対数スケールでの各動物のBLI信号。この画像では、バイオフィルム現像の6日後に示される関心領域とともに生物発光シグナルを示す代表的な動物が示されています。コントロールバックグラウンド領域にシグナル伝達が欠如していることに注目し、バイオフィルムがカンジダコーティングカテーテルのすぐ隣接する領域に限定されていることを裏付けています。この代表的な実験では、ビオフィルムを発現するルシフェラーゼが産生する明瞭なBLIシグナルが観察されるのに対し、野生型株はバックグラウンドシグナルしか産生されないように見えます。このシグナルの増加は、バイオフィルムあたりのコロニー形成単位の増加と、動物の各グループの光子束測定と同じ傾向に従います。これらのデータは、BLIが皮下マウスモデルにおけるin vivo成熟Cアルビカンスバイオフィルム形成をモニタリングおよび定量するための強力な技術であることを示しています。カンジダ細胞によるデバイスの感染をマスターすると、2時間かかる場合がありますが、カテーテルインプラントはマウス1匹あたり10分で完了します。BLIイメージングは、マウス1匹あたり5分で行うことができます。BLIを使用する大きな利点は、同じ動物でバイオマスとバイオフィルムの発達を繰り返し監視できることです。時間の経過とともに この手順に続いて、MRIやCTなどの他の方法で、正確な大聖堂の位置に関する情報を提供できます。この情報は、深部静脈カテドラルモデルのようなより複雑なモデルでの定量化に使用できます。このビデオを見た後、マウスでin vivo、皮下バイオフィルム、ssを実行する方法について非常によく理解しているはずであり、これは宿主病原体の相互作用のさらに詳細な分析の基礎を形成する可能性があります。

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医学

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生物発光イメージングが続くマウス皮下モデルにおける医学関連の異物にカンジダ·アルビカンスバイオフィルム発展

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