Name: mRNAの崩壊料金の測定でサッカロマイセス·セレビシエ使い方 rpb1-1株 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 21 s
Description: 学ぶmRNA崩壊速度測定法でSaccharomyces cerevisiaeの遺伝子発現制御を解析する。温度シフトによる転写抑制とノーザンブロットを用い、個別mRNAの半減期を正確に定量できる。

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著者の研究室での研究は、テキサス高等教育調整委員会のノーマン・ハッカーマン高等研究プログラムとベイラー大学のスタートアップ資金によってサポートされています。

酵母細胞の1成長<ol><li> mRNAの減衰率測定のために利用される適切な酵母株を選択する。 RNAポリメラーゼIIの温度感受性対立遺伝子を使用して転写を阻害するために、rpb1-1突然変異1を保有する酵母株を使用しています。すでに1を持って研究室から、この酵母株を取得し、または特定の遺伝的背景が9必要な場合は、標準的な技術を用いて実験室でそれを生成する。 </li><li>無菌技術を使用して、標準的な手順10を用いて酵母培地を準備。何も選択が必要とされない場合には、そのようなYPDなどのリッチメディアを準備します。酵母細胞をプラスミドで形質転換され、選択が必要な場合あるいは、選択培地を調製する。メディアオートクレーブ。 </li><li>この酵母株を許容温度である28℃、で酵母細胞を成長させる。 2段階でこれを実行します。 <ol><li>最初のO / Nのために、飽和まで増殖培地5ml中の酵母細胞を成長させる。</li><li>二日目の終わりに第二のO / Nを設定します。第二のO / Nのために、第1のOから/ N（酵母細胞がする必要がある場合に応じて、100μlの1 mlの2ミリリットル以上までの範囲の増殖培地100〜150ミリリットル中に酵母細胞を異なる量の接種）次の日に収穫。文化の一つが正しいOD 600で、次の日であることを保証するために、この手順を行います。 </li></ol></li></ol> 2.収穫酵母細胞<ol><li>酵母細胞を採取するために準備します。このステップのタイミングは非常に重要です。必要なすべてのチューブにラベルを付け、一箇所ですべての必要な機器や材料を集める。 39℃に水浴を予熱し、28℃、60℃、成長培地二つの15ミリリットル試験管を予熱する。 NOTE：15ミリリットルの増殖培地の容積は、細胞が収穫される時点の数に応じて変化させることができる。 </li><li>彼らは0.7 OD 0.4の600に達したときに、酵母細胞を収穫。 TRANSFER 4個の細胞 - 6無菌の50ミリリットルは、キャップボトルをねじ込みます。 RTで5分間の高速遠心機において7500×gで遠心する。 </li><li>上清を捨て、28℃で平衡化した15ミリリットルの増殖培地中のペレットを再懸濁します。 1滅菌250mlのフラスコに酵母細胞をプールし、28℃の成長温度で約5分間インキュベートして平衡化。 </li><li>酵母細胞は、成長温度で平衡化した後、直ちに39℃（非許容温度）の温度を上昇させるために60℃で平衡化した成長培地15mlのを追加し、直ちに39℃の水浴でフラスコを置き。培養培地は、その転写がオフになっていることを確認するために残りの細胞を収穫する段階を通じて39℃の水浴中で残っていることを確認します。 </li><li> 39℃の水浴中にフラスコを置いた後、異なる時点で細胞を採取する。最初の時点では、39＆＃でフラスコを置いた直後に細胞を回収する176; C。 3ミリリットルアリコートを収穫し、2、1.5ミリリットルのマイクロチューブに3ミリリットルを配布。ミニ遠心機で10秒間細胞をペレットや急減速でpicofuge、上清を注ぐ。 </li><li>直ちにドライアイス/エタノール浴中で、または液体窒素中でペレットを凍結する。細胞を、ゼロ時点としてで収穫された最初の時点を指定する。 </li><li>実験的に関心のあるmRNAのに応じて、パイロット実験により細胞がその後に収穫された時点を決定する。通常は、以下の時点で収穫酵母細胞：0、3、6、9、12、18、25及び35分（ 図2B）。 mRNAの半減期は、上述した時点を用いて決定することができない場合は、これらの時点を調整する。例えば、予想される半減期の短いmRNAのために、短い時間のポイントを使用し、（ すなわち、0、1、2、3、4、6、9、12、18分）、および予想される長い半減期を有するmRNAのために、延長時間点。 </li><li>細胞の後ヘクタールであるRNA抽出が行われるまでrvestedは、-80℃の冷凍庫に保存する。 </li></ol>酵母細胞から3.抽出RNA <ol><li>プロトコルのRNA抽出部は、RNaseによるRNAの分解を防ぐために、RNaseを含まない技術を使用する。 RNAの抽出に使用するRNaseを含まないソリューション、ガラス製品、プラスチックウェアを準備します。 </li><li>標準的なプロトコルに従って酵母細胞からRNAを抽出します。一般的に、ホットフェノール法12を使用します。代替的に、酵母細胞からRNAを抽出するために使用することができるキットを使用。 </li><li>通常はナノドロップを用いたRNAの260と280 2μlので吸光度を測定することにより、RNAの量および純度を決定します。濃度に基づいてA 260からのRNAの濃度を測定、DEPC処理水を使用してを1μg/μlにRNAを希釈。 NOTE：A 280分の260の比をtについての情報を提供RNAの彼は純度。 A 260 / A 280比は2.0±0.1である場合にRNAサンプルは純粋である。 </li></ol> 4.ノーザンブロット分析注：mRNAレベルを定量化し、転写産物のサイズに関する情報を取得するために、ノーザンブロットを使用してください。また、同じmRNAの複数のアイソフォームを生成するmRNAを検出するためのノーザンブロットを使用しています。 <ol><li> 1.0％アガロース - ホルムアルデヒドゲルを準備します。標準プロトコル12に従って電気泳動によりアガロースホルムアルデヒドゲル上のサンプルRNAの等量を実行します。 RNAサンプルと一緒にRNAラダーを実行し、ノーザンブロット上で検出されたRNAのサイズを決定するためにそれを使用。膜へのアガロースホルムアルデヒドゲル上で分離したRNAを転写する前に、ゲルからのRNAラダーとレーンを切断し、臭化エチジウムを用いて可視化する。 注：また、全体のゲルはRNAの転写前、臭化エチジウムで染色することができる。 </li><li> A押え上げRNA試料をRNaseを含まない技術を用いてメンブレンにトランスファーRNA、ゲル上の適切な距離まで移動する。メンブレン12-13へのRNAを転送するために利用可能ないくつかのプロトコルのいずれかを使用してください。メンブレンにRNAを転写するために、ゲルとほぼ同じ大きさの膜を切断する。標準プロトコル12に従ってRNAを転送します。 </li><li> UVを製造業者の説明書に従ってUVクロスリンカーを用いて膜にRNAをクロスリンクする。代替的に、1時間80℃でオーブン設定で膜を焼く。それは特定のプローブにハイブリダイズされるまで無期限にビニール袋に入れて-20℃で膜に保管してください。 注：乾燥膜は、濾紙の間にRTで保存することができる。 </li></ol> 5.ハイブリダイズするプローブメンブレンに興味のRNAに相補的な注：膜上mRNAを検出する1つの方法は、32 P標識DNAプローブをハイブリダイズすることである。注意：Resea32 Pでの作業rchersは汚染を防ぐために保護手順を使用する必要がある。放射性物質の使用に関する制度的なガイドラインに従ってください。 <ol><li> 25標識したDNAプローブを調製- DNA 50ngの標準的なプロトコル12に従って膜にハイブリダイズされる。 PCRまたはプラスミドの消化によりDNAフラグメントを生成する。取り込まれなかったヌクレオチドは、12を除去した後に放射性標識したDNAプローブの1μLをカウントすることにより、DNAプローブの比活性を決定します。 </li><li> 42℃で予熱プレハイブリダイゼーション/ハイブリダイゼーション緩衝液。膜12を100 1cm 2当たりプレハイブリダイゼーション/ハイブリダイゼーション緩衝液の〜10ミリリットルを使用してください。 </li><li>関心12のmRNAを検出するためのハイブリダイゼーションオーブン内膜O / Nへのハイブリダイゼーション緩衝液1ml当たり放射性標識DNAプローブの5×10 6 cpmの1 -ハイブリダイズする。ハイブリダイゼーションの間に、ハイブリダイゼーションオーブン回転がその方向にあることを確認してください膜全体が適切なハイブリダイゼーションを確実にするために、ハイブリダイゼーション溶液に曝露させる。 </li><li> 2×SSPE 50mlを15分間で12倍SSPE / 2％SDS、50 mlの65℃で1時間と室温で15分間、膜を2回洗浄する。それが完全に乾くまたは蛍光ス​​クリーンを汚染しないことを確実にするためにラップで膜を包みます。 </li><li>ガイガーカウンターを用いて、膜上の放射能の強さを推定する。 注：この推定値は、膜が適切な時間蛍光体スクリーンに曝露されることを保証する。放射能の低い量を有する膜のためのより長い露光時間を使用してください。 </li><li>ノーザンブロットのために、等量のRNAが各スポットにロードされていることを確認するためにローディングコントロールを使用しています。これを行うには、膜を除去し、検査されているプロセスによって影響されないRNAでそれを再プローブ。 XS剥離液（0.1％SDS / 0.01を200mlの沸騰を含むガラストレイ内に配置することによって膜ストリップ2分間SC）。剥離液を注ぎ、手順5回12を繰り返します。 注：ローディングコントロールとして使用されるRNAの例は、SCR1 SCR1は安定しており、豊富なRNAポリメラーゼIII転写物ですSCR1 RNAの存在量は、RNAポリメラーゼII阻害の短い期間の間に大きく変化してはならない。。 </li></ol> 6.膜に結合されたRNAを定量化 NOTE：蛍光スクリーンに膜をさらす、膜上の放射能の量を定量するために。適切な露光時間の後、ホスホイメージャを使用して蛍光面をスキャンします。 <ol><li>ホスホイメージャのメーカーが提供する指示を使用して蛍光面をスキャンします。 </li><li>各時点でmRNAを定量化する。をImageQuantソフトウェアまたは関連するソフトウェアを使用してmRNAレベルを定量化する。ローディングコントロールに各時点でmRNAを正規化する。 SCR1、ロードとして使用された場合コントロールは、SCR1に半減期のノーザンを正常化。 </li><li> mRNAの半減期は、時刻0（初期時点）でのmRNAの存在量によって、各時点で残っているmRNAの量を割ることによって計算される。片対数プロット（ 図2C）に対時間残り％のmRNAをグラフ化。次の式でのmRNAの半減期を計算します。 T 1/2 = -0.693 / K（負0.693） </li><li> kは、ベストフィット線の傾きであり、t 1/2は、mRNAの半減期である。 </li></ol>

<ol><li>Nonet, M., Scafe, C., Sexton, J., Young, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eukaryotic+RNA+polymerase+conditional+mutant+that+rapidly+ceases+mRNA+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Eukaryotic RNA polymerase conditional mutant that rapidly ceases mRNA synthesis.</a> Mol. Cell. Biol. 7, 1602-1616 (1987).</li>
<li>Santiago, T. C., Purvis, I. J., Bethany, A. J., Brown, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+relationship+between+mRNA+stability+and+length+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">The relationship between mRNA stability and length in Saccharomyces cerevisiae.</a> Nucleic Acids Res. 14 (21), 8347-8360 (1986).</li>
<li>Jimenez, A., Tipper, D. J., Davies, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mode+of+action+of+thiolutin%2C+an+inhibitor+of+macromolecular+synthesis+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Mode of action of thiolutin, an inhibitor of macromolecular synthesis in Saccharomyces cerevisiae.</a> Antimicrob Agents Chemother. 3 (6), 729-738 Forthcoming.</li>
<li>Herrick, D., Parker, R., Jacobson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+Comparison+of+stable+and+unstable+mRNAs+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification and Comparison of stable and unstable mRNAs in Saccharomyces cerevisiae.</a> Mol Cell Biol. 10 (5), 2269-2284 Forthcoming.</li>
<li>Grigull, J., Mnaimneh, S., Pootoolal, J., Robinson, M. D., Hughes, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+Analysis+of+mRNA+Stability+Using+Transcription+Inhibitors+and+Microarrays+Reveals+Postranscriptional+Control+of+Ribosome+Biogenesis+Factors%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Genome-wide Analysis of mRNA Stability Using Transcription Inhibitors and Microarrays Reveals Postranscriptional Control of Ribosome Biogenesis Factors.</a> Mol Cell Biol. 24 (12), 5534-5547 (2004).</li>
<li>Tani, H., Akimitsu, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+technology+for+determining+RNA+stability+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22RNA+Biology%22%5BJournal%5D)">Genome-wide technology for determining RNA stability in mammalian cells.</a> RNA Biology. 9 (10), 1233-1238 (2012).</li>
<li>Pelechano, V., Perez-Ortin, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+transcriptional+inhibitor+thiolutin+blocks+mRNA+degradation+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Yeast%22%5BJournal%5D)">The transcriptional inhibitor thiolutin blocks mRNA degradation in yeast.</a> Yeast. 25, 85-92 (2008).</li>
<li>Kervestin, S., Jacobson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NMD%3A+a+multifaceted+response+to+premature+translational+termination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">NMD: a multifaceted response to premature translational termination.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 13, 700-712 (2012).</li>
<li>Kolodziej, P. A., Woychik, N., Liao, S. M., Young, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+Polymerase+II+subunit+composition%2C+stoichiometry+and+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">RNA Polymerase II subunit composition, stoichiometry and phosphorylation.</a> Mol Cell Biol. 10 (5), 1270-1275 (1990).</li>
<li>Ausubel, F. M., Brent, R., Kingston, R. E., Moore, D. D., Seidman, J. G., Smith, J. A., Struhl, K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAusubel%2C+FM+%22Current+Protocols+in+Molecular+Biology%22">Current Protocols in Molecular Biology</a>. , John Wiley and Sons, Inc.. (1998).</li>
<li>Kebaara, B. W., Nazarenus, T., Taylor, R., Atkin, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+background+affects+relative+nonsense+mRNA+accumulation+in+wild-type+and+upf+mutant+yeast+strains+Current+Genetics%29%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Genetic background affects relative nonsense mRNA accumulation in wild-type and upf mutant yeast strains Current Genetics).</a> 43, 171-177 (2003).</li>
<li>Kebaara, B. W., Baker, K. E., Patefield, K. D., Atkin, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+Nonsense-Mediated+mRNA+Decay+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Analysis of Nonsense-Mediated mRNA Decay in Saccharomyces cerevisiae.</a> Current Protocols in Cell Biology. 27 (27.3), 27.3.1-27.3.39 (2012).</li>
<li>Hu, W., Coller, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+measuring+mRNA+Decay+Rate+in+Saccharomycescerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Methods for measuring mRNA Decay Rate in Saccharomycescerevisiae.</a> Methods in Enzymology. 530, 137-155 (2013).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言する。

mRNA合成の阻害は、新しい合成の非存在下でのmRNAの代謝回転を監視するには、しばしばmRNA崩壊速度を測定するために使用される方法である。 S.でセレビシエは、RNAポリメラーゼIIの温度感受性対立遺伝子を使用して転写を阻害することによってmRNA崩壊率の測定は、最も頻繁に使用される方法の一つである。この方法は、具体的にはRNAポリメラーゼIIを阻害する。この技術を用いたmRNA減衰率を決定するための最も重要な手順は次のとおりです。1）酵母細胞を収穫する前に、その転写は39℃での文化を維持することによって遮断されていることを確認。 2）プロトコルのRNA抽出およびRNAゲル電気泳動工程の間、RNaseを含まない技術が使用されることを保証する。 3）予想通り、RNAの等量がロードされたことを、実験治療が機能していることを確実にするために正規化のためにコントロールRNAを使用します。 4）再現性のANを確実にするために少なくとも3回mRNA崩壊速度測定を繰り返す半減期の測定値のd精度。 rpb1-1酵母株は、通常、転写を阻害...

特定のmRNAの転写および減衰は、遺伝子発現の重要な決定因子である。特定のmRNAの合成及び減衰率​​は、その特定のmRNAの定常状態レベルを決定する。 mRNAの定常状態レベルは、mRNAの豊かさを支配し、タンパク質合成のために提供されてどのくらいの各mRNAの決定する。 mRNAの半減期の測定は、mRNAの減衰率を決定するために広く使用されている。 mRNAは、mRNAおよび環境条件によってコードされるタンパク質の機能の特徴に関連して異なる速度で特定のmRNAの崩壊。 mRNA崩壊速度を決定するために利用された技術に応じて、減衰率の測定は、グローバルに、または個々の転写物について決定することができる。酵母S.でセレビシエ 、最も一般的にグローバルなmRNA崩壊速度を測定するために使用される技法は、RNAポリメラーゼII及び化学transcの温度感受性対立遺伝子を保有する酵母菌株を利用含まそのようなthiolutin 1,10-フェナントロリン1-5としてriptional阻害。これらの方法は、個々のmRNA崩壊率4を測定するために利用することができる。他の方法もまた、mRNA崩壊速度を測定するために利用することができる。これらの方法は、定常状態の標識のみを選択条件において発現される調節されたプロモーターから発現されるmRNA分子の利用へのアプローチを含む。これらの技術は、それぞれ特定の利点と制限があります。ここに記載の技術は、RNAポリメラーゼIIの温度感受性対立遺伝子を利用する。この方法では、Sを使用してcerevisiaeのモデルとして、特定の転写阻害技法6を用いて、他のシステムに変更され、利用されことができるが。 RNAポリメラーゼIIの温度感受性対立遺伝子を用いたmRNAの半減期の測定は、広範囲のmRNA崩壊4-5の両方のゲノム全体および個々の測定のために使用される。この技術は、specifの使用を必要とするRNAポリメラーゼII、rpb1-1 1の温度感受性対立遺伝子を保有するでIC酵母株。この技術の原理は、非許容温度に温度感受性酵母株の曝露は、mRNA合成を阻害することである。転写が阻害された後に続いて、既存のmRNAの崩壊は、様々な時点で監視される。既存のmRNAの消失は、転写がオフにされた後の異なる時点での酵母細胞からRNAを抽出することによって監視される。酵母細胞が収穫される時点は、パイロット実験により所定の、および研究されて転写物およびシステムに依存している。より長い時点長く生き転写物のために使用されている間より速い時点は、短命の転写物のために使用される。その後、mRNAの崩壊は、ノーザンブロット分析、定量的PCRまたはRNAseqいずれかによって監視される。 TEを使用して、mRNAの半減期の測定RNAポリメラーゼIIのmperature敏感な対立遺伝子は、その利点を持っています。第一に、この技術は、簡単で単純である。酵母株は、実験室で取得又は生成されると、第二の、mRNAの半減期の測定は、異なる成長条件で測定することができる。 mRNA分解の環境影響の決定を可能にする。第三に、mRNA崩壊速度は、ゲノム全体を監視することができる。他の転写抑制技術の使用は、利点および限界を有する。例えば、誘導性プロモーターの使用は、調節されたプロモーターの制御下にあるmRNAを生成するためにサブクローニングを必要とする。 Thiolutinは容易に入手できないと利用可能な場合に高価である。また、アクションのthiolutinのモードは完全には理解されず、mRNA崩壊7の阻害を含む他の細胞プロセスに影響を与えることが報告されている。また、1,10-フェナントロリンは、より容易に利用可能である。さらに、転写を阻害するために使用される技術の全ては、PERTでき細胞機能をURBと異なる方法で異なるmRNAに影響を与えることができる。研究者は、最も信頼性の高い結果を得るために彼らの実験条件で使用する最も適切な方法を決定する必要がある。彼らのアプリケーションに最も適している方法を決定するために、研究者が研究されている転写産物によりコードされるタンパク質の転写物および機能を特定する必要があります。最も信頼性の高いmRNA崩壊速度測定は、複数の技術を使用して決定し、同一の減衰速度を示しているものである。単一の技術は常に最善ではない、と最も適切な手法は、特定の状況に依存します。 S.で多数の研究セレビシエは、様々な条件や遺伝的背景においてmRNA崩壊速度を測定した。 mRNA崩壊速度がで測定されている条件が検討され、特定の実験に依存しています。異なる細胞環境におけるmRNA崩壊速度を測定する条件があるか否かを判断する優先的に特定のmRNAの崩壊率に影響を調べた。 mRNAの減衰率も使用されている酵母株に依存して変化し得る。例えば、mRNA崩壊速度は、非機能的ナンセンス変異依存mRNA分解（NMD）経路と、野生型酵母細胞、酵母細胞で測定することができる。このmRNA分解経路は、これまでに検討されている全ての真核生物に見られ、それは早期翻訳8を終了し、mRNAの分解を誘発する。 NMDは当初早期終結コドンまたはナンセンスコドンとmRNAを分解する経路として同定されたが、今も自然なmRNAを含む非ナンセンスの発現を調節する経路として認識されている。経路の標的であるmRNAは急速に機能的なNMD経路を酵母細胞内で分解し、非機能的なNMD経路を酵母細胞中で安定化されている。したがって、この経路の直接の標的であるmRNAの半減期は、野生型酵母のセルが短い非機能的なNMD経路を有する酵母細胞と比較してのl​​s。

<table><tbody><tr><td>高速遠心分離</td>機 <td>エッペンドルフ</td><td>22628169</td><td></td></tr><tr><td>ミニ遠心分離</td>機 <td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>05-090-100</td><td></td></tr><tr><td>Genescreen プラス メンブレン</td><td>パーキンエルマー</td><td>50-905-0169</td><td></td></tr><tr><td>ハイブリダイゼーションオーブン</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>95-0030-01</td><td></td></tr><tr><td>ナノドロップ分光光度計</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td>ND-8000</td><td></td></tr><tr><td>蛍光体スクリーン</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>28-9564-78</td><td></td></tr><tr><td>台風リン光像</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>29004080</td><td></td></tr><tr><td>UV架橋剤</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>80-6222-31</td><td>あるいは、膜を80°Cに設定されたオーブンで焼くことができます。</td></tr><tr><td></td><td>ライフテクノロジー</td>ズ<td>AM8677</td><td></td></tr><tr><td>rpb1-1変異</td><td></td>を持つ酵母株 <td>酵母株は、実験室から入手することも、特定の背景</td><td></td>で作成することもできます</tr></tbody></table>

mrnaの崩壊料金の測定で<em&gt;サッカロマイセス·セレビシエ</em&gt;使い方<em&gt; rpb1-1</em&gt;株

Measurement of mRNA Decay Rates in Saccharomyces cerevisiae Using rpb1-1 Strains

mRNAの定常状態レベルは、環境条件に応じて変化する。 mRNAの定常状態の蓄積レベルの調節は、タンパク質の正確な量は、細胞の特定の増殖条件のために合成されることを保証する。 mRNA崩壊速度を測定するための一つのアプローチは、転写を阻害し、続いて、既に存在するmRNAの消失を監視している。 mRNA分解の速度を定量することができ、正確な半減期は、いくつかの技術を利用して決定することができる。 S.でセレビシエは 、mRNAの半減期を測定するためのプロトコルが開発され、RNAポリメラーゼII、rpb1-1の温度感受性対立遺伝子を保有する菌株を用いて、mRNAの転写を阻害することが含まれている。 mRNAの測定のための他の技術の半減期は、調節可能なプロモーターの制御下にあるmRNAを利用することにより、あるいはそのようなthiolutin又は1,10-フェナントロリンなどの転写阻害剤で転写を阻害する、または含むガラクトース誘導性プロモーター及びTETオフシステムとして。ここでは、Sの測定を説明RNAポリメラーゼIIの温度感受性対立遺伝子を使用した出芽酵母のmRNA減衰率。この技術は、個々のmRNAまたはゲノムワイドのmRNA崩壊速度を測定するために使用することができる。

<html> RNAおよびノー​​ザンブロット法を抽出しながら、正確なmRNA減衰率を測定するために、このプロトコルの能力は、転写の阻害、適切な時点での酵母細胞の収穫、およびRNaseフリーの技術の利用に依存します。それぞれ、不安定で安定していることが知られている2つのコントロールのmRNAのためにプロービング、実験が働いていることを確信しています。例えば、これは、CYH2 mRNA前駆体およびmRNAの両方を検出するプローブでプロービングすることによって達成することができる。 図2Bは、転写阻害後の異なる時点での野生型及びNMD変異酵母株におけるCYH2 mRNA前駆体の消失を示した。 CYH2 mRNA前駆体は、機能NMD経路（UPF1）非機能的なNMD経路（UPF1）と酵母細胞と比較してより高速な酵母細胞中で分解される。 40fig1highres.jpg &quot;/&gt;...

特定のmRNAの定常状態レベルは、mRNAの合成および減衰の速度によって決定される。ゲノムワイドなmRNAの分解速度または特定のmRNAの崩壊速度は、mRNAの半減期を決定することによって測定することができる。このプロトコルは、Saccharomyces cerevisiae中のmRNA減衰率の測定に焦点を当てています。

mRNAの崩壊料金の測定で<em&gt;サッカロマイセス·セレビシエ</em&gt;使い方<em&gt; rpb1-1</em&gt;株

mRNA steady state levels vary depending on environmental conditions. Regulation of the steady state accumulation levels of an mRNA ensures that the ...

次の実験の全体的な目標は、酵母Saccharomyces visiのmRNA崩壊速度を測定することです。これは、最初に酵母細胞を増殖させて、許容温度で対数相にすることによって達成されます。次に、細胞をより高い温度にシフトし、全mRNA合成を阻害します。その後、酵母サンプルは、各サンプルの所定の時点で収穫されます。全RNAをゲル電気泳動で分離して抽出し、メンブレンに転写します。最後に、ノーザンハイブリダイゼーションを行い、mRNAレベルの経時的な変化を確認します。最終的に、このプロトコルは、個々のmRNAまたはゲノム全体のさまざまな増殖条件のmRNA崩壊速度を測定するために使用できます。この方法は、DO RNAの崩壊速度が細胞の状態や遺伝的背景によって異なるなど、RNA崩壊分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。この手順を実演するのは、私の研究室の大学院生であるMegan Pelliです。まず、検討中の菌株に適した選択培地の5ミリリットルに単一の酵母コロニーを接種することにより、スターター培養物を準備します。菌株が温度感受性のRNAポリメラーゼ2の対立遺伝子を保有している場合は、摂氏28度の許容温度で一晩で細胞を飽和まで成長させます。翌日、それぞれが総量100〜150ミリリットルの一連のより大きなオーバーナイト培養物を設定し、異なる量のスターター培養物を成長培地に接種します。最適な希釈係数の範囲は、菌株の倍加時間と総成長時間の両方がわかっている場合に推定できます。新しい培養物を3日目と細胞採取前に摂氏28度で一晩成長させます。15ミリリットルの新鮮な培地が入った2本のチューブを、それぞれ摂氏28度と摂氏60度で予熱します。また、収穫予定時期に専用のウォーターバスを摂氏39度で予熱します。すべての文化のOD600を測定します。対数期成長中の細胞を含むフラスコを選択し、その全内容物を数本の滅菌50ミリリットルチューブに移します。室温で細胞を5分間スピンダウンし、温度を遠心分離し、デカントします。細胞をプールするための上清。まず、28°Cの予熱した培地を15ミリリットルのセルペレットを含むチューブに加えます。Resusの後、ペレットを懸濁すると、その内容物全体が次のチューブに移されます。すべての細胞が単一の50ミリリットルにプールされるまで、シリアルレスサス懸濁液プロセスを繰り返します。円錐の。プールした細胞を250ミリリットルのフラスコに移します。細胞懸濁液を28°Cで5分間インキュベートして平衡化します。主な実験を開始するには、摂氏60度の15ミリリットルを追加します。細胞に予熱した培地を、フラスコを数回撫でて混合し、すぐにフラスコを摂氏39度の水浴に入れ、ラボタイマーを開始します。この39°Cでの非許容温度シフトは、RNAポリメラーゼ2を不活性化し、ゲノムワイ

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

全細胞RNAは、短期的RNA合成と崩壊の変化と同様に、RNAプロセシングの動態を研究するための貧乏人のテンプレートが用意されています。ここでは、これらの制限を克服することができ、新たに転写されたRNAのチオール特有のビオチン化および精製し、4  -...

細胞培養におけるRNA合成、処理およびディケイの高解像度遺伝子発現プロファイリングのための新規転写されたRNAの代謝標識

変動試験により測定された若いサッカロミセス·セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）細胞における突然変異率が異なる複製年齢の母細胞のための突然変異頻度を予測するために使用される。磁気ソーティングフローサイトメトリー予測さ突然変異周波数からの逸脱を識別するために、実際の突然変異頻度及び母細胞の年齢を測定するために使用される。...

母細胞と変動試験の磁気ソーティングを組み合わせることでの有糸分裂細胞老化中に、ゲノム不安定性を分析するためにサッカロマイセス·セレビシエ

ここでは、ユビキチン-プロテアソームシステムによるタンパク質分解の相対的な速度を定量化するための堅牢な生物学的アッセイについて説明します。アッセイの読み出しは、液体培養における酵母の増殖速度であり、これは必須代謝マーカーに融合した分解シグナルを含むレポータータンパク質の細胞レベルに依存します。...

タンパク質分解の体系的な分析のためのレポーターベースの成長アッセイ

この記事では、タンパク質分解の遺伝的要件を決定するための酵母増殖ベースのアッセイについて説明します。また、ウェスタンブロッティングに適した酵母タンパク質の迅速な抽出方法を示し、分解要件を生化学的に確認します。これらの技術は、さまざまなタンパク質の分解を監視するために適応させることができます。...

増殖に基​​づく決定とタンパク質分解に対する遺伝的要件の生化学的確認で<em&gt;サッカロマイセス·セレビシエ</em

ここでは、RNA シーケンスを使用して酵母細胞の低酸素応答中に時間をかけての mRNA...

S の酵母酵母の低酸素応答中に時間をかけての mRNA のレベルを測定

転写減衰率を監視および差動腐食の遺伝子を識別する生成する増殖の静止プライマリひと真皮線維芽細胞、プロトコルについて述べる。...

ひと線維芽細胞の増殖静止ゲノムワイドな転写減衰率を決定します。

ここで説明されているプロトコルは、4-チオウラシルが付いた酵母から精製した新しく合成された mRNA のゲノムワイドな定量化に基づいています。このメソッドは、mrna から非 mRNA 合成を測定することができ、したがって、RNA のポリメラーゼ II...

酵母4 チオウラシルの定量化とラベリング代謝新しく合成された mRNA RNA ポリメラーゼ II の活性のためのプロキシとして

リボヌクレオチドは真核生物の核 DNA 複製時にゲノムに組み込む最も豊富な非正規のヌクレオチドです。正しくない削除、DNA 損傷と突然変異誘発リボヌクレオチドが発生します。リボヌクレオチド混入 DNA とその変異原性効果の豊かさを評価するために使用される 2...

勉強リボヌクレオチド定款: 酵母ゲノムとリボヌクレオチド誘発突然変異を測定のリボヌクレオチド鎖特異的検出

cDNAの速度論的架橋と解析は、生細胞におけるタンパク質-RNA相互作用のダイナミクスを高い時間分解能で調べることができる方法です。ここでは、酵母細胞の増殖、UV架橋、収穫、タンパク質精製、次世代シーケンシングライブラリ調製ステップなど、プロトコルについて詳しく説明します。...

χCRACを用いたin vivoでのタンパク質-RNA相互作用ダイナミクスの高時間分解能モニタリング

ここでは、光漂白後の線虫 カエノールハブディティス・エレガン...

カエノハブディティス・エレガンスにおけるデノボタンパク質合成率の評価

本プロトコルは、アクチノマイシンD処理、RT-qPCR、非線形回帰解析を用いて、マウス胚性幹細胞における遺伝子間および遺伝子内強化RNAの安定性と半減期を定量的に測定します。位置特異的な正規化戦略を組み込み、文脈依存的なeRNA崩壊動態を正確にモデル化します。...

マウス胚性幹細胞におけるエンハンサーRNA安定性の最適化された定量的評価

学ぶmRNA崩壊速度測定法でSaccharomyces cerevisiaeの遺伝子発現制御を解析する。温度シフトによる転写抑制とノーザンブロットを用い、個別mRNAの半減期を正確に定量できる。

mRNAの崩壊料金の測定で

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