Name: 豚に心膜ターゲット・デリバリー・モデルでの薬剤の有効性をテストします (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-07T09:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: 学ぶ心膜ターゲット・デリバリー法を用いた豚モデルでの薬剤有効性評価。心房細動負荷の軽減と虚血保護効果を測定し、心臓手術および移植における治療戦略の最適化に貢献します。

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このプロジェクトを支援してくださったVisible Heart Laboratoryのスタッフと学生たちに心から感謝したいと思います。Nate Menningaさん、Lars Mattisonさん、Megan Schmidtさん。

このプロトコルは、ミネソタ州制度動物実験委員会の大学によって承認されました。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52600/52600fig1.jpg" /> 研究パラダイムの図1.図は、 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52600/52600fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 豚の1外科の準備<ol><li>筋肉内注射を介して豚（70〜80キロ）にチレタミン/ zilazipamの5-7mg / kgで投与します。耳静脈カテーテルを配置し、静脈内アクセスを経由して5-7ミリグラム/キログラムメトヘキシタールを管理します。気管内チューブを動物に挿管し、換気してください。 </li><li>麻酔の外科的平面を維持するために、家の空気と酸素の混合物で&gt; 1.2％イソフルランMACを提供します。動物がANESTの深い面内にあることを確認しますhesia顎音の不在を確認し、豚の最小肺胞内濃度の上に麻酔を維持することによって、任意の操作の前に。初期の麻酔深度チェックが顎トーンとイソフルランのレベルが存在しないことを保証することにより行われているが、麻酔の深い面を確保するための手順（&gt; 1.5 MAC）を通して連続的に監視されています。 </li><li>焼灼し、鈍的切開と右外頸静脈および頸動脈を慎重にアクセスします。外頸静で8.5Fスワンガンツカテーテルを置き、1.5 ccのバルーンを膨らませます。ウェッジ圧力が感じられるまで続いて右心房を通って、心室に肺動脈ダウン肺動脈弁を横断。 </li><li>バルーンを収縮し、この位置にカテーテルを残します。バルーンを用いて右心房圧および肺動脈圧を記録します。さらに、肺内のウェッジ圧力または圧力を記録（または肺が正常とみなされる場合には、また左記録トライアル圧）。 注：このカテーテルはまた、心拍出量の推定を可能にします。 </li><li>継続的に圧力を記録するために、外部頸静脈に、右心室に追加5.0Fバルーン圧力カテーテルを配置します。 </li><li>大動脈弁を通して5.0Fバルーン圧力頸動脈内カテーテル、脱出を置き、左心室に維持します。圧力変換器に接続された20単位/ ml heparanized食塩水ですべての圧力カテーテルをフラッシュし、そして左心室からすべての圧力データを記録し、右心室、肺動脈圧および右心房圧（および心拍出量を推定しました）。 </li><li>周辺監視は、リアルタイム血圧または血液ガス監視のため18Fカテーテルを配置することにより、大腿動脈の枝にアクセスします。手順中のレコードの心拍数と温度。 </li><li>焼灼し、鈍的切開で左外頚に慎重にアクセスします。 juguで2 11.0F止血導入器を配置LARと0絹縫合糸で固定します。イントロデューサで操縦可能なカテーテルを配置します。 </li><li>透視下では、プレースアクティブ固定は右心耳と右心室の頂点につながります。 注：固定リードが植え込まれたペースメーカーに心を接続する外科的に移植ワイヤです。 </li><li>プログラマを利用キャプチャするためのリードとテストにConnectanalyzerケーブル。 8V、0.25ミリ秒の持続時間にパラメータを設定し、そのときの固有速度よりも10拍以上の最低ペーシングレートを設定します。各リードの相対インピーダンスを記録します。 </li><li>胸鎖乳突筋筋の挿入近くに剣状突起から内側外科的切開を行います。胸骨の部分内側切開を有効にするには、胸骨（キールの骨）から前方突起を除去するために、胸骨のこぎりを使用します。胸骨骨構造の残りの部分を切断せん断を使用してください。胸骨心膜靭帯を解剖し、sternuを撤回メートル。 </li><li>胸膜ライニングから心膜を分離するために鈍的切開を使用してください。心膜に内側矢状切開（3-5センチ）を作成し、各コーナーに4本結びの縫合糸と心膜クレードルを作成（左、右、上位および下位のサイト）。 </li><li>左心室の先端領域に一時的な双極リードを置き、左心耳にユニポーラプランジ一時的ペーシングリードを配置します。 </li><li>安楽死は、除去することによって、深い麻酔下で心臓を達成されています。 </li></ol>電気生理学的モニタリングのための2.準備<ol><li>心臓マッピングシステム。 <ol><li>ブレイクアウトボックスで適切な設定にワニ口クリップと心耳に心室心外膜双極ペーシングリード及び心外膜リード線を接続し、心臓マッピングシステムのAF研究を選択します。システムにEKGと接地パッドを接続します。 </li></ol></li><li>オシロスコープと草刺激。 <ol><li>接続します電気的検証のためのオシロスコープに接続されている草の刺激にブレイクアウトボックス内のバイポーラ左心室ペーシングリードとユニポーラ心房リード。 </li></ol></li><li>プログラムされた電気生理学的刺激。 <ol><li>ペースメーカーの上にペースメーカー場所にプログラマテレメトリヘッドを右心房リードと右心室リード線を固定します。ペーシング電極刺激（PES）の研究を選択し、8Vにパラメータを設定します。すべての患者パラメータを削除します。 400ミリ秒（または300ミリ秒）で8パルスに設定さペーシング継続時間を設定します。 </li></ol></li></ol> その場の研究3. <ol><li>耐火期間：研究パラダイム。 <ol><li>ベースライン時に心房有効不応期（AERP）、心房心室ノード応期（AVNERP）および心室有効不応期（VERP）を決定し、化合物/薬剤/制御処理の30および60分後心膜配信で。付加的な時点は、DESのように添加してもよいですIRED。 </li></ol></li><li>耐火期間：プログラマーセッティング。 <ol><li> 300ミリ秒ペーシングの最小に続いて8歩（400ミリ秒または300ミリ秒）にPES研究パラメータを誘導バースト。心室/心房までペーシングを減らして（それぞれ）に収縮することができません。これは、ペーシングリードのセンシングから注目されます。このように相対不応期を決定します。 </li></ol></li></ol><img alt="図2" src="/files/ftp_upload/52600/52600fig2.jpg" /> 図2. EnSiteSystem：AERP、AVNERPとVERPの決意が、 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52600/52600fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <ol start="3"><li>パラメータ：相対AF負担の決意。 <ol><li> 1分後、それは最大10分間AFしたまま放置し、AFでの動物の心を維持する： すなわち 、AFを終了する5ジュールでの直接のパドルで心房ショックを与える前に。エル各時点での10回までicit AF誘導。本研究では、注意してください。 AFは、P波が存在しないと不安定なリズムとして定義されます。 </li></ol></li><li> AF負担：草刺激とオシロスコープの設定。 <ol><li>プランジ​​ペーシングリード線を経由して左心耳（LAA）に2秒のパルス持続時間で4ヘルツを配信するために草の刺激のためのパラメータを最適化します。標準的なオシロスコープによってこれを確認。 AFを誘導するために、LAAに単一パルスを提供します。 </li></ol></li></ol> 4.ハート植と蘇生（移植モデル） <ol><li>大動脈ルートカニューレ。 <ol><li>慎重に上行大動脈の周りの心膜組織を解剖し、上行大動脈で2.0 Ethibond縫合糸のpericardium.Suture 2点（2〜3センチメートル離れて）を削除し、静脈内にヘパリンの30,000台を管理します。 </li><li>縫合点間の大動脈ルートカニューレを配置し、大動脈を確保。加圧された送達系で、Tを取り除きます彼は、ベベルスタイレットと流れを可能にしませカニューレ上のクランプを配置します。 </li></ol></li><li>心の準備。 <ol><li>加圧されたバッグを経由して150ミリメートル/ HGの圧力下行大動脈に冷たいセントトーマス心臓麻痺液を管理します。遠位端の3ウェイストップコックで加圧し心に取り付けられている灌漑カテーテルを固定します。 、大動脈ルートカニューレにストップコックを固定カテーテルを通して心臓麻痺の着実なフラッシュを解放し、大動脈ルートカニューレに固定します。 </li></ol></li><li>クロスクランプ。 <ol><li>ダイアフラムにだけ優れたatraumaticclamp 1〜2センチメートルと下大静脈をクランプします。大動脈ルートカニューレに優れた上行大動脈に非外傷性の角度を付けキャンプ1〜2センチメートルと上行大動脈をクランプします。 </li></ol></li><li>クロスクランプ/心臓麻痺。 <ol><li>大動脈弁とperfusを閉じ、大動脈ルートカニューレからクランプを外し、150ミリメートル/大動脈弁に向かってHgで心臓麻痺をフラッシュ冠状動脈をる。 </li><li>以上の心を加圧しないように、上大静脈をクランプし、肺動脈内の小さな切開を行います。心が冷たいクレブス - ヘンゼライト緩衝液の浴中（不全収縮）、消費税を停止し、胸や場所から心臓を削除されたら（〜3-8°C）。 </li></ol></li><li>蘇生。 <ol><li>大血管にカニューレを挿入し、可視ハートの方法論を利用して心の準備（3）。灌流心臓は37±5℃に達すると、心外膜パッチ電極を介して心室に34 Jショックを提供することにより、ネイティブの洞調律を回復。 </li></ol></li></ol> インビトロ研究パラダイム5. <ol><li>連続して60分後に蘇生のための心機能を監視します。ちょうど僧帽弁下のLVビュー：連続短軸ビューと2Dモードでの心エコー検査を監視します。 </li><li>心室壁の厚さと排出画分毎、10分後の蘇生を算出する（下記参照）。評価期間中に-5分および5分毎に冠状静脈洞（1 CC）からのサンプルを取ります。 </li><li>モニタリング。 <ol><li>圧力、フローおよび体積変化を含む左心室と右心室の両方のための血行動態を監視します。 </li></ol></li><li>心エコー検査：駆出率。 <ol><li>半ば乳頭短軸ビューをキャプチャし、心臓に直接経胸壁エコープローブを配置します。式を用いて、4室の作業モードで10分ごとに駆出率（EF％）を算出します。LV拡張末期容積 - LVエンド収縮期容積X 100 / LV拡張末期容積</li></ol></li><li>心エコー検査：左心室壁の厚さ。 <ol><li>時間後の蘇生のための10分間隔で半ば乳頭短軸窓から心室壁の厚さ（cm）を測定します。画面キャリパーを使用して、左心室の四隅を測定し、平均値を取ります。 </li></ol></li><li>心筋代謝。 <ol><li> steeraを配置冠状静脈洞（CS）でBLEカテーテル。蘇生の前にCS 5分からのサンプル1 ccで、1時間ごとに5分後に蘇生。乳酸およびグルコースレベルのためのサンプルをテストします。他の血液ガスも評価することができます。 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Richardson, E. S., Rolfes, C., Woo, S. O., Elmquist, W. F., Benditt, D. G., Iaizzo, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+Responses+to+the+Intrapericardial+Delivery+of+Metoprolol%3A+Target+Delivery+Compared+to+Intravenous+Administration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cardiovasc.+Translational+Research%22%5BJournal%5D)">Cardiac Responses to the Intrapericardial Delivery of Metoprolol: Target Delivery Compared to Intravenous Administration.</a> J. Cardiovasc. Translational Research. 5 (4), 535-540 (2012).</li>
<li>Xiao, Y. F., Sigg, D. C., Ujhelyi, M. R., Wilhelm, J. J., Richardson, E. S., Iaizzo, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pericardial+delivery+of+omega-3+fatty+acid%3A+a+novel+approach+to+reducing+myocardial+infarct+sizes+and+arrhythmias%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Pericardial delivery of omega-3 fatty acid: a novel approach to reducing myocardial infarct sizes and arrhythmias.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 294 (5), 2212-2218 (2008).</li>
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<li>Fei, L., Baron, A. D., Henry, D. P., Zipes, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrapericardial+delivery+of+L-arginine+reduces+the+increased+severity+of+ventricular+arrhythmias+during+sympathetic+stimulation+in+dogs+with+acute+coronary+occlusion%3A+nitric+oxide+modulates+sympathetic+effects+on+ventricular+electrophysiological+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Intrapericardial delivery of L-arginine reduces the increased severity of ventricular arrhythmias during sympathetic stimulation in dogs with acute coronary occlusion: nitric oxide modulates sympathetic effects on ventricular electrophysiological properties.</a> Circulation. 96 (11), 4044-4049 (1997).</li>
<li>Ayers, G. M., Rho, T. H., Ben-David, J., Besch, H. R. Jr, Zipes, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amiodarone+instilled+into+the+canine+pericardial+sac+migrates+transmurally+to+produce+electrophysiologic+effects+and+suppress+atrial+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiovasc+Electrophysiol%22%5BJournal%5D)">Amiodarone instilled into the canine pericardial sac migrates transmurally to produce electrophysiologic effects and suppress atrial fibrillation.</a> J Cardiovasc Electrophysiol. 7 (8), 713-721 (1996).</li>
<li>Darsinos, J. T., Karli, J. N., Samouilidou, E. C., Krumbholz, B., Pistevos, A. C., Levis, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+of+amiodarone+in+heart+tissues+following+intrapericardial+administration%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Clin.+Pharacol+Ther%22%5BJournal%5D)">Distribution of amiodarone in heart tissues following intrapericardial administration.</a> Int. J. Clin. Pharacol Ther. 37 (6), 301-306 (1999).</li>
<li>Ujhelyi, M. R., Hadsall, K. Z., Euler, D. E., Mehra, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrapericardial+therapeutics%3A+a+pharmacodynamic+and+pharmacokinetic+comparison+between+pericardial+and+intravenous+procainamide+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiovasc+Electrophysiol%22%5BJournal%5D)">Intrapericardial therapeutics: a pharmacodynamic and pharmacokinetic comparison between pericardial and intravenous procainamide delivery.</a> J Cardiovasc Electrophysiol. 13 (6), 605-611 (2002).</li>
</ol>

著者は開示するものは何もありません

ここでは、心膜空間にターゲット配信化合物の潜在的有効性をテストするためのユニークなアプローチを実証しました。パラダイムは、現在の市場をテストするために利用することができる。この研究では、このように様々な臨床設定に直接翻訳アプリケーションを提供し、医薬品または実験化合物をリリースしました。この治療戦略の中で心膜腔に医薬品を供給するための2つの主要な臨床応用があります：1）オープン心臓や低侵襲性の心臓の外科的処置は、および2）心臓移植や臓器保存。また、本研究のパラダイムは、より良いこれらの記載の治療戦略の中の薬剤そのものの予測有効性を理解するために分析することができ、複数のパラメータがあり、その場でのパラメータが含まれる：1）AVN、心房および/ ​​または心室の相対不応期; 2）相対AF感受性/負担の決意。および3）hemodynam。ICと心拍数応答のin vitroのパラメータが含まれます：1）相対駆出率を、 2）LV壁厚応答。 3）心臓代謝の変化;そして4）血行動態と心拍数の変化。私たちがここで紹介する過去のデータは、これらの記述されたパラメータの選択を示しています。これらの研究の最も注目すべき翻...

現在、オープンハートの手順で、臨床医は全身抗不整脈および他の治療薬を利用します。しかし、これは多くの患者、すでに臨床的に危険にさらされている特に人のために問題となる可能性があります。例えば、静脈内治療は、血圧または腎機能障害における全身低下をもたらすことができます。さらに、彼らは麻酔管理の問題および/または他の長期的な副作用を作成することができます。 ここでは、心膜腔への薬剤の投与の有効性を試験するためのモデルを作成しました。例えば、この方法は、心臓機能の増大および/または外科手術後の心筋の回復を促進する可能性の化合物を研究し、抗不整脈薬を試験するために利用することができます。静脈内投与対心膜腔への治療のターゲット配信に利益が観察されている： 例えば 、私たちの研究室ではウパスの木の局所的送達を実証しました血圧1の減少を最小限に抑えながら、例えばメトプロロールのようなリズミカルな薬剤は、不整脈の発生に対して保護的です。この標的送達戦略はまた、全身レベルを最小限に抑えながら、高い局所濃度を投与するための機会を提供します。例えば、脂肪酸の静脈内送達濃度の高いレベルは、溶血を生じ得るが、心膜送達はこの懸念2を最小にします 。 この研究のパラダイムは、心膜配信化合物の有効性を決定するために3つの主要な目的で構成されています：1） その場での心房心室ノードの不応期の決意、心房と心室に 、治療と30と60分後の処理の前に; 2）相対その場で治療し、30および60分後処理前のAF負担（追加の時点は、多くの場合、追加された）は、心臓の3）機能分析は3株式会社を生き返らされた後、血行動態モニタリング、心拍数をluding、冠状静脈洞、駆出率（EFの％）と、心室壁の厚さ（cm）からサンプリング心臓代謝（乳酸およびグルコース）は、この治療戦略のモデルは、私たちはの効果を観察することができ、すべての10分後に蘇生を監視し心臓切開手術または移植中および後に、心臓不整脈および/または虚血性損傷の発生率を減少させることができる薬理学的薬剤。

<table><tbody><tr><td>SelectSecure 3830リード</td><td>メドトロニック</td><td></td><td>ペーシングリード&nbsp;</td></tr><tr><td>C304 たわみ可能カテーテル&nbsp;</td>リード線を配置するための<td>Medtronic</td><td></td><td>ステラブルカテーテル&nbsp;</td></tr><tr><td>SelectSecure 3830 リード</td><td>メドトロニック</td><td></td><td>アクティブ固定ペーシングリード&nbsp;</td></tr><tr><td>Grass S48 刺激装置</td><td></td><td></td><td>電気刺激装置&nbsp;</td></tr><tr><td>プレミアム6500ユニポーラペーシング&nbsp;</td><td></td><td></td><td>LAA</td></tr><tr><td>EnSite Cardiac Mapping</td><td></td><td></td><td>電気生理学マッピング マッピング CareLink</td></tr><tr><td>Programer 2092</td><td>ペーシング リード用</td><td>Medtronic</td><td></td> プログラマー</tr><tr><td>GEM II ペースメーカー&nbsp;</td><td>メドトロニック</td><td></td><td>ペースメーカーはできます&nbsp;</td></tr><tr><td>DLP大動脈根カニューレ</td><td>Medtronic</td><td></td><td>移植用大動脈根カニューレ&nbsp;</td></tr><tr><td>Cアーム透視</td><td>Ziehm&nbsp;</td><td></td><td>透視イメージング&nbsp;</td></tr><tr><td>オシリスコープ</td><td>・テクトロニクス&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>11F 止血イントロデューサー</td><td>SafeSheath</td><td></td><td>止血イントロデューサー</td></tr><tr><td>スワンガンツカテーテル 8.0F</td><td>ICU Medical&nbsp;</td><td></td><td>熱希釈カテーテル&nbsp;</td></tr><tr><td>静脈造影バルーン&nbsp;</td><td>Oscor</td><td></td><td>圧力監視&nbsp;</td></tr><tr><td>Ultraview SL</td><td>Spacelabs</td><td></td>の<td>心電図と血圧&nbsp;</td></tr><tr><td>s / 5 Avance</td><td>General Electric</td><td></td><td>麻酔器</td></tr><tr><td>Atrial 6492 &ndash;ユニポーラ一時的な心房ペーシングリード</td><td>メドトロニック</td><td></td><td>の一時的なペーシングリード&nbsp;</td></tr><tr><td>VIVID i</td><td>ゼネラル・エレクトリック</td><td></td><td>2D心電図装置&nbsp;</td></tr></tbody></table>

豚に心膜ターゲット・デリバリー・モデルでの薬剤の有効性をテストします

Testing the Efficacy of Pharmacological Agents in a Pericardial Target Delivery Model in the Swine

今日まで、多くの薬理学的薬剤は、望ましくない全身性の副作用を作成し、オープン心臓の場合に不整脈を治療または予防するために使用されます。例えば、静脈内に投与抗不整脈薬は、すでに損なわ心臓病患者における全身の圧力の低下を生成することができます。オープンハートの手順を実行している間、外科医は、多くの場合、どちらかの小さなポートを作成したり、操作するのに適したフィールドを作成するには、心膜クレードルを形成することになります。望ましくない副作用なしに心筋組織への直接の標的薬理学的デリバリー（抗不整脈や虚血プレコンディショニング剤）のためにこのアクセ​​ス利回りの機会。 私たちは、心嚢液内の標的送達のための薬理学的薬剤をテストするための豚のモデルを開発しました。完全に麻酔をかけている間、各動物は、左と右心室圧カテーテルと同様にスワンガンツカテーテルが装備され、ペーシングリードは、右心耳と右に配置しました心室。内側胸骨切開は、その後行われたと心膜アクセスクレードルが作成されました。プランジ​​ペーシングリードは、左心耳内に配置し、双極ペーシングリードは、左心室の中に入れました。プログラマと心臓マッピングシステム、房室結節（AVN）の不応期を利用して、心房と心室を決定しました。また、心房細動（AF）の誘導が観察されたAFで草刺激と時間を利用して製造しました。これらの測定は治療前と同様に、心膜処理後30分および60分に行きました。追加の時間点は、選択された研究のために添加しました。次に心臓をcardioplegedと4室の作業モードで生き返らせました。圧力測定値と機能は、蘇生後1時間記録しました。この処理モデルは中に、私たちは心不整脈および/または虚血性損傷の発生率を減少させることができる薬理学的薬剤の効果を観察することができ戦略とAFター開心術。

これらの結果は、ブタにおける薬剤のこの目標配信モデルを利用して収集することができるデータの特徴です。このデータは、 その場での DHAの注入後、これらの心室の有効不応期（VERP）の顕著な増加を示しました。また、データは、 インビトロでの対照と比較して、DHAの左心室圧の上昇を確立します。 DHA処置した心臓におけるLV圧は、いくつかの時点で対照と比較して有意に高かったです。このデータは、in situおよびin vitroで治療戦略をテストするための薬理学的なウィンドウを検証します。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/52600/52600fig3.jpg" /> 心室有効不応期（VERP）図3.変更。心室有効不応期（VERP）は、制御AGの心膜送達される前に5分を決定しました耳鼻咽喉科の治療または制御のいずれかの30と60分後に心...

私たちは、心膜腔/液体内での薬理学的薬剤の標的送達のための豚モデルを開発しました。このアプローチを使用して、誘発性心房細動、相対的な不応期、および/または虚血性防御に対する投与された薬剤の相対的な利点を調査できます。

To date, many pharmacological agents used to treat or prevent arrhythmias in open-heart cases create undesired systemic side effects. For example, ...

本実験の全体的な目的は、外科的手術中の副作用を軽減し、または移植後の転帰を改善させる可能性のある、心膜腔に投与される薬理学的薬剤を特定することである。不応期を測定するため、右心房および右心室にペーシングリードを留置する。プログラマーを用いたパルス電気刺激試験により、心房、房室結節、および心室の不応期を決定する。AF負荷（AF burden）を決定するために、左心耳に電気ショックを与えて心房細動を誘発します。薬剤は心膜腔に投与されます。心膜投与から30分後および60分後の不応期とAF負荷を測定し、ベースラインと比較します。次に、大動脈経路のカニューレを介して心停止液を投与し、心停止させます。これにより、心室不整脈および／または虚血性損傷の発生率を低下させる可能性のあるさまざまな薬理学的薬剤について、心臓手術および移植の両方における実用性を評価することができます。豚を選択することにはいくつかの利点があります。これにより、複数のセンシングカテーテルおよびペーシングリードを留置することが可能です。ブタの心臓解剖学的構造は成人人間と類似しています。また、これらの動物では外科的な心膜クレードルの形成が容易であり、心膜液量、血行動態、および電気生理学的特性が人間と類似しています。心膜への治療剤投与は、投与、心臓外科手術、移植のための臓器回収など、さまざまな臨床処置において有用となり得ます。この手法はまた、心臓の診断および治療に関する重要な臨床的疑問、例えば、心房細動（AF）の負荷を軽減し、あるいは心臓処置に伴う不整脈を予防するために、心膜投与においてどの薬剤が最も有効であるかといった点に答える上でも役立ちます。70〜80 kgのブタに麻酔を施して挿管し、室気と酸素の混合ガスを用いてイソフルランを投与します。手順を進める前に、下顎の緊張が消失していることを確認し、豚が深い麻酔状態にあることを保証します。電気メスと鈍的剥離を用いて、右外頸静脈および総頸動脈を慎重に露出させ、手術を開始します。露出後、8.5 french のスワンガンツカテーテルを外頸静脈に挿入し、バルーンを 1.5 CCs まで膨らませます。次に、カテーテルを右心房から心室へ、肺動脈弁を通って肺動脈へと進め、ウェッジ圧が感知されるまで挿入します。この時点でバルーンを脱気し、カテーテルをこの位置に留置します。バルーンを用いて、右心房圧および肺動脈圧を記録します。次に、5Frenchバルーン圧力カテーテルを外頸静脈に挿入し、右心室まで進めます。別の5Fバルーン圧力カテーテルを頸動脈に挿入し、大動脈弁を通過させて左心室内に配置します。その後、すべての圧力カテーテルを20 units/mLのヘパリン生理食塩水でフラッシュし、左心室、右心室、肺動脈圧、および右心房圧のすべての圧力データを記録します。次のステップは、左外頸静脈に慎重にアプローチすることです。アプローチ後、11 frenchの止血用イントロデューサーを2本頸静脈に挿入し、縫合糸で固定します。その後、ステアブルカテーテルをイントロデューサー内に配置します。次に、透視ガイド下での操作を開始します。右心房耳および右心室心尖部にアクティブ固定リードを留置します。インプランテーションしたリードにアナライザーケーブルを接続し、プログラマーを用いてキャプチャを確認します。パラメータを8回（eight folds）、0.25 millisecondsに設定し、ペースをその時の固有速度より10 beats per minute高く、あるいはさらに高く設定します。その後、各リードの相対インピーダンスを記録します。次に、剣状突起から胸鎖乳突筋の付着点付近まで正中切開を行います。次に、胸骨構造の残りの部分を剪断し、胸骨を牽引するために胸骨心膜靭帯を切開します。胸骨を牽引した状態で、鈍的剥離を行い、心膜を胸膜から分離します。続いて、心膜に3〜5 cmの正中矢状切開を加え、四隅を4つのスクエアノット（正方形結び）で縫合して心膜クレードルを作成します。最後に、左室の心尖部に一時的バイポーラリードを留置し、左心耳にユニポーラプランジ型の一時的ペーシングリードを留置します。まず、PES試験を開始します。最初に、PES試験パラメータのバースト誘発をプログラムし、待機ペーシング時間を400または300ミリ秒に設定します。次に、最低 300 milliseconds のペーシングをプログラムし、心腔が収縮しなくなるまでペーシングの間隔を短縮します。これはペーシングリードによるセンシングで確認され、相対不応期を決定します。続いて、プランジペーシングリードを介して、Grass刺激装置を左心耳に接続します。パルス幅2秒、周波数4Hzに設定します。これらの設定をオシロスコープで確認してください。次に、心房細動（AF）を軽減させるため、左心耳にシングルパルスを印加します。相対的なAF負荷を決定するために、AFが1分間持続するまで、1分に1回の頻度で最大10回、Grass刺激装置を使用します。その後、最大10分間、動物をAF状態のままにします。この時間がAF負荷量となります。10分経過しても心房細動が停止しない場合は、ダイレクトパドルを用いて5ジュールで心房に電気ショックを与え、心拍を同期させます。保護剤として想定される薬剤の心膜内投与を開始します。薬剤の心膜内投与から30分後および60分後に、不応期とAF負荷を再度測定します。心臓を摘出するため、まず大動脈ルートカニューレを留置します。上行大動脈周囲の心膜組織を慎重に剥離し、心膜を除去します。次に、上行大動脈に2.0 Ethibond縫合糸を用いて、約2～3 cmの間隔でカニューレを固定します。縫合後、ヘパリン30,000 unitsを静脈内に投与します。次に、大動脈ルートカニューレを大動脈に縫合します。デリバリーシステムを加圧した状態でスタイレットのベベルを取り除き、カニューレにクランプを装着して血流を停止させます。続いて、150 mmHgで投与できるよう、冷却Saint Thomas心停止液を準備します。灌流カテーテルを3方活栓を用いて加圧心停止液ラインに接続します。次に、その活栓を大動脈ルートカニューレに接続します。その後、クロスクランプを行います。心停止液を大動脈弁に向かって注入して心臓を洗浄し、これにより弁を閉鎖させ、冠動脈に灌流させます。心臓への過剰な圧加圧を防ぐため、肺動脈を切開します。心停止を確認後、心臓を摘出し、冷却した Krebs-Henseleit 緩衝液に移します。心臓を再拍動させるために、可視化心臓法を用いて大血管にカニュレーションを行います。灌流した心臓の温度が37 °Cから5度以内になったら、心外膜パッチ電極を介して心室に34 jouleの電気ショックを与え、正常な洞調律を回復させます。in situで測定したのと同様の圧力を用いて、1時間にわたり心機能をモニタリングします。5分ごとに、冠状静脈洞から1 CCのサンプルを採取します。10分ごとに、心室壁厚と駆出率を算出します。上述のプロトコルを用いた結果、in situでのDHA注入後に、心室有効不応期の顕著な延長が認められました。蘇生後の最大圧力を測定したところ、対照群と比較してDHA処理した心臓では左心室圧の上昇が認められました。処理した心臓の左心室圧は、複数の時点において有意に高くなっていました。この手法により、手術を含む心臓処置を受ける患者への臨床応用や、移植用心臓の機能回復に使用できる標的送達治療薬の評価が可能になります。この実験的アプローチを採用することで、心房細動を軽減し、心筋損傷を抑え、それに伴う再灌流障害を低減させる新しい薬剤や治療戦略を、外科医や研究者が探索する道が開かれる可能性があります。

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Research

JoVE Journal

Medicine

医学

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豚の長期心血管運動テストのためのカテーテルの外科的配置

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組織と血液サンプリング手順の標準化による閉胸ブタ心筋梗塞モデルの改善

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幹細胞治療のための心筋梗塞後心不全の豚モデルの確立

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虚血性心疾患に対する心筋遺伝子治療は、将来の治療法に大きな期待を寄せています。ここでは、虚血性心拍における遺伝子治療の有効性を評価するための大型動物モデルを紹介します。...

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ブタ心筋梗塞モデルにおける心役活性治療薬の送達

聴覚とリスニングスキルに貢献して認知能力の詳細な評価を行うためのテストバッテリー（IMAP）が記述されています。それは言語的混乱させるから、子供向けとフリーを管理するためのクイックです。スティミュラス生成とプロトコルの管理は、複製可能な手続を確保するためのソフトウェアプラットフォーム（IHR -...

IMAPのテストバッテリー：リスニングの意味を理解する

大型動物モデルは、新生児仮死の生理学や薬理学の試験で良い並進値を持っています。生まれたばかりの子豚を使用して、我々は全身の血行動態および地域的、生化学的および病理学的経路と相関を持つ酸素の輸送を研究の利点を持っている新生児仮死をシミュレートするための実験プロトコルを開発しています。...

新生児仮死の新型モデル

学ぶ心膜ターゲット・デリバリー法を用いた豚モデルでの薬剤有効性評価。心房細動負荷の軽減と虚血保護効果を測定し、心臓手術および移植における治療戦略の最適化に貢献します。

豚に心膜ターゲット・デリバリー・モデルでの薬剤の有効性をテストします

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