Name: 細胞株および組織試料中の脱ユビキチン化酵素の活性を測定する方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 45 s
Description: 学ぶ、細胞株および組織試料における脱ユビキチン化酵素の活性測定法。HA誘導体プローブとウェスタンブロッティングを用いて複数の酵素活性を可視化し、新規治療標的の同定に貢献する。

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我々は、使用されたマウスの脊髄の組織サンプルを提供するためのミネソタ大学の李研究室に感謝したいと思います。この作品は、MBにMBに、ランディシェーバーがん研究とコミュニティ基金MBにミネソタ卵巣癌アライアンス（MOCA）による国防総省の卵巣癌研究プログラム（OCRP）OC093424によってサポートされていました。資金提供者は、研究デザイン、データ収集と分析、公開することを決定または原稿の準備で何の役割も持っていません。

1.溶解緩衝液の調製<ol><li> 2 Mのストック溶液を作るために、脱イオン（DI）水にスクロースを溶解します。 0.22μmのポリフッ化ビニリデン（PVDF）フィルタを駆動し、真空を用いて、スクロースの2M溶液をフィルタリングします。 </li><li>嫌気条件下で500 mMのストック溶液およびストアを作成するためにDI水にジチオスレイトール（DTT）を溶解します。 100mMのストック溶液を作製するためにDI水に塩化マグネシウム（MgCl 2を） を溶解します。 50mMのストック溶液を作製するためにアデノシン三リン酸（ATP）DI水中の二ナトリウム水和物を溶解します。 </li><li> DI水中のトリズマ塩酸塩を溶解し、水酸化ナトリウム（NaOH）を用いてpHを調整することにより、pH7.4のTris溶液を作ります。 </li><li> 250 mMの、1mMの、5 ​​mMとのMgCl 2濃度は、1mMとATP濃度及び50mMのトリス濃度のDTT濃度のスクロース濃度で溶解緩衝液を作製するためにDI水に原液の部分を組み合わせます。例えば、トリス、50の535.3μLを混ぜます溶解緩衝液の10ミリリットルを作るためにMgCl 2を0μlを、スクロースの1.25ミリリットル、DTT20μlの、ATPを200μlとDI水の7.4947ミリリットル。これは、約20の実験のために使用することができます。 </li></ol>実験2.細胞を培養します<ol><li> 50mlコニカルチューブにDMEM + 10％ウシ胎児血清（FBS）の30ミリリットルを小分けして、メディアを作成します。 </li><li>ぬるま湯を入れた小さなビーカーに液体窒素保存から冷凍M17またはヒーラ細胞を転送します。 </li><li> 50mlコニカルチューブに細胞を移します。まず、セ​​ルバイアルに、いくつかのメディアを追加。その後、解凍の5秒以内に再懸濁した細胞を移します。 </li><li>細胞ペレットを得るために、5分間、450×gで細胞懸濁液を遠心。 T75フラスコに培地20mlのを追加します。 </li><li>吸引を用いて細胞からメディアを取り出します。細胞ペレットを再懸濁に新鮮な培地の5ミリリットルを追加します。 </li><li> T75フラスコ中の培地20mlに5ミリリットルの細胞懸濁液を移し、37℃でインキュベートします。 CH3日ごとにメディアをANGE。 </li></ol> 3.細胞の回収<ol><li>細胞に触れないように注意しながら、吸引を介してメディアを取り出します。 </li><li>リン酸緩衝生理食塩水（PBS）5mlで細胞を洗浄します。吸引を使用してPBSを削除します。 </li><li> T75フラスコにトリプシン - エチレンジアミン四酢酸（EDTA）を3mlを加え、3分間37℃でインキュベートします。 </li><li>フラスコに新鮮な培地の6ミリリットルを追加し、細胞を再懸濁。 </li><li> 5分間290×gで15ミリリットルコニカルチューブと遠心分離機にサスペンションを転送します。 </li><li>上清を除去し、5mlのPBSを追加します。静かにペレットを破壊するためにチューブの底をタップします。 5分間290×gで遠心分離します。 </li><li>繰り返し手順3.6三回。 </li><li> PBSを除去し、新鮮な1mlのPBSで細胞を懸濁します。エッペンドルフチュー​​ブ（1.5ミリリットル）に移します。 5分間290×gでスピン。 </li></ol> 4.細胞溶解<ol><li>ピペットANを用いてペレットのおおよその体積を測定大量にガラスビーズを秤量dは1：1：1の体積比。溶解緩衝液中のペレットの2倍容量を追加します。 注意：ガラスビーズを追加する前にバッファを追加します。 </li><li>を溶解低温室にボルテックスすることによって4℃で30分間攪拌最大でエッペンドルフチュー​​ブ中の細胞。 </li><li>ビーズを解決する30秒200×gで遠心分離する簡単。上清を収集します。 </li><li>上清を前のように、ガラスビーズの同じ量を加えます。 </li><li> 4℃で30分間、最大攪拌で再びボルテックス。 </li><li>ガラスビーズを解決する30秒200×gで遠心分離する簡単。上清を収集します。 </li><li>核、膜および破壊されていない細胞を除去するために5分間、5030×gで遠心分離します。細胞溶解物である上清を、収集します。 </li></ol> 5.組織の均質化<ol><li>溶解バッファーにマウス脊髄組織の9溶液：1の体積質量を行います。 注：このメソッドは、異なるさまざまなに適用可能ですENT組織サンプル。 </li><li>残っていないチャンクが存在しないことを確実にするために30秒間均質化にレベル2の設定を使用して組織を均質化します。 </li><li>核、膜および破壊されていない細胞を除去するために、3分間5030×gでスピンダウン。 </li><li>溶解液である上清を、収集します。 </li></ol> 6.サンプルの誘導体化<ol><li>ピアースBCAタンパク質アッセイキットプロトコルによって指定されるように、比色、96ウェルプレートリーダーを使用して組織溶解物のタンパク質濃度を決定するために、96ウェルプレート分析でビシンコニン酸（BCA）を実行します。 </li><li>脱イオン（DI）水を用いて50μlに合計20μgのタンパク質に対応するアリコートを持参してください。 </li><li>溶液に、HA-UB-ビニルスルホン（VS）の1.35μMの2μlを添加して、37℃で1時間インキュベートします。これは、最終反応混合物中のプローブの50 nmの溶解物20μgの結果。これは、機能のDUBのタグ付けを確実にするために、大モル過剰です。 </li><li>私95℃で5分間のレムリ試料緩衝液中でサンプルをncubate。 52μlの反応体積の使用2×試料緩衝液26μlを、4×試料緩衝液13μlあるいは6×サンプル緩衝液8.87μlのため。 </li><li>ゲルをロードする前に、氷上で冷却します。 </li></ol> 7.ウエスタンブロット<ol><li>調製した試料の40μlの12ウェル4〜20％トリス - グリシンゲルをロード</li><li>イオンフロントが底に到達するまで、95 Vでゲルを実行します。 </li><li>ポリフッ化ビニリデン（PVDF）膜上のゲルの一晩の転送を行います。 </li><li>アミドブラック染色で膜をインキュベートし、各レーン中のタンパク質の量を示す画像を得ることがmembaneをスキャンします。 </li><li>膜を脱色し、ブロックする1時間PBS中の5％ミルクでインキュベートします。 </li><li> 1の濃度の一次抗HA抗体で膜をインキュベートする：PBS中の5％ミルク10,000のいずれかを4℃で一晩または室温で4時間。 </li><li> fは3回の洗浄を行いますまたは0.1％のTween-20洗剤でPBS中で5分間ずつ。 </li><li> 1の濃度でマウス西洋ワサビペルオキシダーゼで膜をインキュベートする：少なくとも2時間、PBS 10,000 5％ミルク。 </li><li> 0.1％のTween-20洗剤でPBS中で5分間ずつ3回の洗浄を行います。 </li><li> PBSで5分間1回洗浄を行います。 </li><li> 10分間の化学発光検出試薬で膜をインキュベートし、化学発光検出器を用いて検出します。検出器の自動露出設定を使用してください。 </li></ol>

<ol><li>Ovaa, H., Kessler, B. M., Rolén, U., Galardy, P. J., Ploegh, H. L., Masucci, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity-+based+ubiquitin-specific+%28USP%29+profiling+of+virus-infected+and+malignant+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Activity- based ubiquitin-specific (USP) profiling of virus-infected and malignant human cells.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 101 (8), 2253-2258 (2004).</li>
<li>Wilkinson, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitination+and+deubiquitination%3A+Targeting+of+proteins+for+degradation+by+the+proteasome%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Ubiquitination and deubiquitination: Targeting of proteins for degradation by the proteasome.</a> Semin Cell Dev Biol. 11 (3), 141-148 (2000).</li>
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<li>Poon, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%CE%B2-Amyloid+%28A%CE%B2%29+oligomers+impair+brain-derived+neurotrophic+factor+retrograde+trafficking+by+down-regulating+ubiquitin+C-terminal+hydrolase+UCH-L1%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">β-Amyloid (Aβ) oligomers impair brain-derived neurotrophic factor retrograde trafficking by down-regulating ubiquitin C-terminal hydrolase UCH-L1.</a> J Biol Chem. 288 (23), 16937-16948 (2013).</li>
<li>Nijman, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+deubiquitinating+enzyme+USP1+regulates+the+Fanconi+anemia+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">The deubiquitinating enzyme USP1 regulates the Fanconi anemia pathway.</a> Mol Cell. 17 (3), 331-339 (2005).</li>
<li>Stevenson, L. F., Sparks, A., Allende-Vega, N., Xirodimas, D. P., Lane, D. P., Saville, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+deubiquitinating+enzyme+USP2a+regulates+the+p53+pathway+by+targeting+Mdm2%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">The deubiquitinating enzyme USP2a regulates the p53 pathway by targeting Mdm2.</a> EMBO J. 26 (4), 976-986 (2007).</li>
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<li>Colla, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoplasmic+Reticulum+Stress+Is+Important+for+the+Manifestations+of+%CE%B1-Synucleinopathy+In%5BTitle%5D)+AND+%22Vivo.+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Endoplasmic Reticulum Stress Is Important for the Manifestations of α-Synucleinopathy In.</a> Vivo. J Neurosci. 32 (10), 3306-3320 (2012).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

ユビキチン化は、基本的な細胞活動であるので、調節機構を理解することは、疾患や病態のプロセスを発掘するための鍵である可能性があります。 HAの使用は、UB-媒介タンパク質分解を研究するための簡単​​な、しかし非常に適用可能な方法を提供し、ここで報告したUb由来の活性部位特異的プローブをタグ付け。この方法は、個別のDUBのそれぞれの研究よりも速く、安価です。 ガラスビーズを用いた - この方法では、細胞の溶解は、機械的手段を介して達成されます。溶解のこの穏やかな方法は、代謝、細胞内の画像を保存します。しかしながら、この溶解法の主な欠点は、約60〜70％の低い効率です。これは、細胞の多くは、溶解物を実験のために十分に濃縮されていることを確認する必要があることを意味します。 80付きT75フラスコ - 90％コンフルエントの細胞層を濃縮溶解物を生成するために使用されるべきです。また、実験のトリプシン処理工程が非常に重要です付着した細胞のほとんどは、溶液中に懸濁させなければならないからです。培養中の細胞の大部分が50 mlチューブに移す前に浮遊していることを確認するために、顕微鏡下でフラス...

ユビキチン - プロテアソームシステム（UPS）は、哺乳動物細胞内の主要な分解経路の一つとして機能します。プロテアソームで分解のためにバインドされた基板は、共有結合、ユビキチン（Ubが）1のポリマーとタグ付けされています。標的基質は、分解のためのプロテアソームに入る前に、ポリユビキチンタグを削除する必要があります。脱ユビキチン化酵素として知られる酵素のクラス（のDUB）はユビキチン分子2の除去とリサイクルを担当しています。これは、セル3内の作業約100のDUBがあることがヒトゲノムから予測されています。 UB-媒介細胞プロセスを制御するのDUBのような大規模な数と、これらの酵素を研究するだけで発現レベルに関する情報を提供するmRNA技術が活性およびウェスタンブロッティングの情報を与えないので、課題を提示します。 インフルエンザ赤血球凝集素（HA）の使用は、共有結合を可能にするMOD活性部位指向プローブをUB-由来、タグ付け機能のDUBのification、したがって、ウェスタンブロット4のこれらの酵素の活性の直接可視化を提供します。プローブは、活性部位のシステイン残基5ため自殺基質として作用するC末端のチオール反応性基を有します。これらのプローブによれば、細胞の病理学的および生理学的状態の両方で、多くのDUB活性の潜在的な発現を研究することが可能です。 DUB活性の変化は、パーキンソン病、アルツハイマー病、貧血および様々な癌6-10のような病理学的条件の範囲に関与しています。この技術は、疾患の研究のための強力なツールを提供します。本論文では、ガラスビーズを用いて溶解されているHeLa細胞およびM17細胞におけるこの技術の適用を示します。さらに、我々は、マウスの脊髄組織サンプルでこのメソッドを使用する方法の概要を示します。この技術から得られた情報を識別するための出発点として使用することができ治療標的ならびに異なる疾患状態の研究のためのモデルを確立します。この技術の真の有用性は、単一のアッセイで複数のDUBに関する情報を提供する能力にあります。

<table><tbody><tr><td>PowerGen 125 (ホモジナイザー)</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>14-261-02P</td><td></td></tr><tr><td>真空駆動フィルター 0.22 & マイクロ;m</td><td></td><td>BPV2210</td><td></td></tr><tr><td>ガラスビーズ、酸洗浄&le;106 &マイクロ;m (~140 U.S. sieve)</td><td>Sigma-aldrich</td><td>G4649-10G</td><td></td></tr><tr><td>ショ糖</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>S6-212</td><td></td></tr><tr><td>DL-ジチオスレイトール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0632</td><td></td></tr><tr><td>塩化マグネシウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8266</td><td></td></tr><tr><td>アデノシン 5'-三リン酸二ナトリウム塩水和物</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A26209</td><td></td></tr><tr><td>Trizma 塩酸塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T3253</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium</td><td>Life Technologies</td><td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>Life Technologies</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>組織培養フラスコ 75 cm2 フィルターカップ付き 250ml 120/cs</td><td>Cellstar</td><td>T-3001-2</td><td></td></tr><tr><td>0.05% Trypsin-EDTA (1x)</td><td>Life Technologies</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>HI FBS</td><td>Life Technologies</td><td>16140-071</td><td></td></tr><tr><td>マウスで産生されたモノクローナル抗HA抗体</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H9658</td><td></td></tr><tr><td>ユビキチンビニルスルホン(HAタグ)</td><td>Enzo Life Sciences</td><td>BML-UW0155-0025</td><td></td></tr><tr><td>Laemmli's SDS-Sample Buffer (4x, reducing)</td><td>Boston BioProducts</td><td>BP-110R</td><td></td></tr><tr><td>Pierce BCA Proteinアッセイキット</td><td>Thermo Scientific</td><td>23225</td><td></td></tr></tbody></table>

細胞株および組織試料中の脱ユビキチン化酵素の活性を測定する方法

Method for Measuring the Activity of Deubiquitinating Enzymes in Cell Lines and Tissue Samples

ユビキチン - プロテアソーム系は、最近、神経変性疾患および癌を含む種々の病態に関与しています。この観点から、このシステムの調節機構を研究するための技術は、上記疾患の細胞および分子プロセスを解明するために不可欠です。本稿で概​​説した赤血球凝集素由来のユビキチンプローブの使用は、このシステムの研究のための貴重なツールとして機能します。本稿では、酵素活性を脱ユビキチン化の直接的な可視化を与えるアッセイを実行することを可能にする方法を詳述します。脱ユビキチン化酵素は、プロテアソーム分解を制御し、ユーザーが1つのアッセイで複数の酵素の活性を調査することができ、それらの活性部位での機能的相同性を共有します。溶解物を、穏やかな機械的な細胞破壊を介して得られた活性部位指向プローブと共にインキュベートします。非アクティブな酵素が結合していないままで機能的酵素は、プローブでタグ付けされています。実行で寧このアッセイは、ユーザが迅速かつ簡単な方法で活動し、複数の脱ユビキチン化酵素の潜在的な発現の両方の情報を取得します。現在の方法は、ヒト細胞における予測百脱ユビキチン化酵素のための個々の抗体を使用するよりも大幅に効率的です。

培養M17およびHeLa細胞は、プロトコル（3細胞収穫）に詳述する方法を用いて回収し、マウスの脊髄組織が得られました。細胞ペレット/脊髄組織は、試薬調製の項に記載の溶解緩衝液を用いて管に入れました。細胞ペレットをホモジナイザー（ 図1B）を用いてホモジナイズしたガラスビーズ（ 図1A）およびマウス脊髄組織サンプルを用いて溶解しました。溶解または均質化の後、試料をガラスビーズおよび/ ​​または破壊されていない膜およびオルガネラ（ 図2）を除去するために、5030×gで遠心分離しました。これらの方法の両方は、酵素活性を保持する溶解の機械的な手段です。細胞のタンパク質濃度は、その後、BCA法を用いて決定しました。全タンパク質の20μgを、37°C（ 図3）で1時間1.35μMプローブ2μlのインキュベートしました。次いで、試料を4倍のLaemmliの中でインキュベートしました。反応をクエンチするために95℃でサンプルバッファー。調製した試料は、4〜20％トリス - グリシンゲル上にロードし、イオンフロント下...

現在のプロトコルは、機能的に相同脱ユビキチン化酵素の活性を測定する方法を詳述します。特殊なプローブは、共有結合酵素を変更し、検出を可能にします。この方法は、新たな治療標的を同定する可能性を保持しています。

The ubiquitin-proteasome system has recently been implicated in various pathologies including neurodegenerative diseases and cancer. In light of this, ...

本実験の全体的な目的は、細胞内における脱ユビキチン化酵素の活性を可視化することです。これを実現するために、まず細胞を高密度に培養して回収し、第2ステップとして濃縮ライセート（細胞溶解液）を調製します。さらに、細胞質内の代謝状態を維持したライセートを得るため、緩やかな機械的溶解法を用います。次に、活性部位のシステイン残基と反応させることで脱ユビキチン化酵素を標識するため、酵素をヘマグルチニン由来のプローブとともにインキュベートします。その結果、ウェスタンブロッティングおよびその後の化学発光検出に基づいた、多くの脱ユビキチン化酵素の活性プロファイルが得られます。通常のウェスタンブロッティングなどの既存の手法に対するこの技術の主な利点は、複数の酵素の活性を可視化できることです。ある実験において、細胞培養用培地を調製します。具体的には、30 mLのDMEM（10%胎児牛血清添加）を50 mLコニカルチューブに分注して培養します。実験に使用する細胞として、凍結保存されたM 17またはhe A細胞を液体窒素保存庫から取り出し、ぬるま湯を入れた小型ビーカーに移します。次に、これらの細胞を30 mLの培地が入った50 mLコニカルチューブに移します。続いて、細胞バイアルに少量の培地を加え、解凍後5秒以内に再懸濁した細胞を移送します。細胞懸濁液を450 Gsで5分間遠心分離し、細胞ペレットを得ます。次に、T 75フラスコに20 mLの培地を加えます。吸引を用いて細胞から培地を除去します。5 mLの新鮮な培地を細胞ペレットに加え、再懸濁します。この5 mLの細胞懸濁液をT 75フラスコ内の20 mLの培地に移し、37 °Cでインキュベートします。3日ごとに培地を交換し、細胞を回収します。細胞に触れないように注意しながら、吸引により培地を除去します。5 mL のリン酸緩衝生理食塩水（PBS）で細胞を洗浄します。PBS を吸引して除去します。次に、T 75フラスコに3 mLのtrypsin EDTAを加え、37 °Cで3分間インキュベートします。インキュベート後、フラスコに6 mLの新鮮な培地を加え、細胞を再懸濁します。懸濁液を15 mLコニカルチューブに移し、290 Gsで5分間遠心分離した後、上清を除去して5 mLのPBSを加えます。チューブの底を軽く叩いてペレットをほぐしてから、290 Gsで5分間遠心分離します。PBSによる洗浄を3回繰り返した後、古いPBSを除去し、1 mLの新鮮なPBSで細胞を再懸濁します。その後、細胞をエッペンチューブに移し、290 gで5分間遠心分離します。細胞溶解を行うために、ピペットを用いてペレットの概算体積を測定し、質量対体積比が1:1となるようにガラスビーズを量り取ります。ペレットの2倍の量の溶解バッファーをペレットに加えます。次に、ペレット

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

ユビキチン化は、3つの酵素のセットによって行わキー翻訳後修飾である。この変更に関与する遺伝子の変異が様々なヒト疾患に関連付けられています。ここで、我々は培養細胞でのタンパク質のユビキチン化を検出するためのプロトコルを説明...

タンパク質のユビキチン化の検出

複雑な生体試料から生じるユビキチン化タンパク質を起源とするdiGlyペプチドの精製、検出、同定方法を紹介します。提示された方法は、ユビキチノメ分析の深さのレベルに関して、再現性、堅牢性、および優れたメソッドを上回る。...

ペプチド濃縮と質量分析によるタンパク質ユビキチン化部位の検出

ユビキチン化は、細胞プロセスで重要な役割を果たし、デュビキチン化によって緊密に調整される翻訳後修飾です。両方の反応の欠陥は、人間の病理の下にある。精製成分を用いてインビトロでユビキチン化・デュビキチン化反応を行うためのプロトコルを提供します。...

ヌクレオソームヒストンのインビトロユビキチン化とデュービキチン化アッセイ

このプロトコルは、げっ歯類の脳の異なる細胞区画におけるユビキチンプロテアソーム系(UPS)活性を効率的に定量するように設計されている。ユーザーは、同じ動物の核、細胞質およびシナプス画のUPS機能を調べることができ、これらの複雑な分析を行うために必要な時間と動物の数を減らすことができます。...

げっ歯類脳における細胞内ユビキチンプロテアソーム活性の定量化

このプロトコルは、治療または表現型などの特定の状態に関連するこれらの種類の翻訳後修飾(PTM)の変化を同定するために、ユビキチン(Ub)およびユビキチン様(Ubls)特異的プロテオームを確立することを目的としています。...

ユビキチンおよびユビキチン様依存性翻訳後修飾のプロファイリングと有意な変化の同定

この方法はユビキチン鎖トポロジーにおけるグローバルな変化の評価を記述する。この評価は、質量分析法に基づく標的プロテオミクスアプローチの適用によって行われます。...

並列反応モニタリングによるユビキチン連鎖解析

本研究は、E3ユビキチンリガーゼ触媒活性の分析のための詳細な インビトロ ユビキトリメンテーションアッセイプロトコルを提供する。組換えタンパク質は 、大腸菌...

イン・ヴィトロ E3ユビキチンリガーゼ関数の解析

本プロトコルは、トポイソメラーゼ阻害剤およびホルムアルデヒドによって誘導されるユビキチン化、SUMO化、およびADPリボシル化を含む、DNA-タンパク質架橋(DPC)およびそれらの翻訳後修飾(PTM)を検出および定量するための改変方法を強調し、それによってDPCおよびそのPTMの形成および修復の研究を可能にする。...

DNA-タンパク質架橋とその翻訳後修飾の定量的検出

このプロトコルでは、組換えタンパク質精製とユビキチン鎖切断アッセイを組み合わせることにより、神経発達障害に関連する遺伝的変異が脱ユビキチン化酵素活性に及ぼす影響を測定する方法を説明しています。...

In vitroユビキチン鎖切断アッセイによる神経発達障害関連脱ユビキチン化酵素の酵素活性の測定

ここで使用した実験は、分子ドッキングとプローブ技術を組み合わせて、伝統的な漢方薬の低分子とタンパク質標的との間の相互作用を予測および検証する方法を示しています。...

分子ドッキングおよび脱ユビキチン化酵素プローブ技術に基づくUCHL3活性阻害のための漢方薬化合物のスクリーニング

ユビキチン化は細胞内タンパク質機能の重要な調節因子です。ここでは、哺乳類細胞における基質タンパク質のユビキチン化レベルを検出するための2つの細胞溶解法を説明し、それらのユビキチン化レベルの解析効果を比較します。HEK293T細胞内のタンパク質過剰発現は一時的なトランスフェクションによって誘導され、ウビキチン化タンパク質はウェスタンブロット解析によって検出されました。...

SMAD2/SMURF2をモデルとした哺乳類細胞溶解液におけるユビキチン検出の比較戦略

学ぶ、細胞株および組織試料における脱ユビキチン化酵素の活性測定法。HA誘導体プローブとウェスタンブロッティングを用いて複数の酵素活性を可視化し、新規治療標的の同定に貢献する。

細胞株および組織試料中の脱ユビキチン化酵素の活性を測定する方法

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