Name: マウスの脳の側脳室における上衣繊毛のライブイメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 58 s
Description: 学ぶマウス脳側脳室の上衣繊毛のライブイメージング技術。高解像度微分干渉顕微鏡を用いて繊毛の拍動と細胞内カルシウム振動を観察し、神経科学研究への応用を示します。

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著者は、Charisse Montgomeryの編集サービスに感謝します。A. Alomranの業績は、薬理学の修士号の要件を部分的に満たしています。この研究は、トレド大学のW.A.Aのための学内スタートアップ基金と、S.M.N.のためのNIH助成金（DK080640)によって資金提供されています。

動物使用のための手順は、国立衛生研究所と管理と使用のためのガイドでの制度的動物実験委員会のガイドラインに従ってトレド大学の施設内動物管理使用委員会（IACUC）によって承認されました実験動物の。 1.脳抽出、セクショニングおよび組織調製<ol><li>深く5分間のCO 2窒息で安楽死によって、野生型マウス系統C57BL / 6を生け贄に捧げます。頸椎脱臼により死を保証します。 </li><li> 70％エタノールでマウスのヘッドを清掃してください。 </li><li>最初の頭蓋骨を露出させるために頭の上から開始し、肌をオフに引いて、滅菌ハサミとピンセットを用いて頭蓋骨切除術を行います。 </li><li>その後、頭蓋骨が露出した時点で、骨の部分部分を剥離後側から開始し、前方側に移動させることで頭蓋骨を削除します。脳室を破壊しないように注意してください。 </li><li>脳全体を収集します。 </li><li>ペニシリン10,000単位/ mlおよびストレプトマイシンと予め温め10,000μgの/ mlを含有する10％ウシ胎児血清（FBS）を補充したDMEM /高グルコースおよび1％ペニシリン/ストレプトマイシン溶液を含む100mMペトリ皿に脳を置き37℃です。 </li><li>鋭利な刃で手で正中矢状面上の脳をスライスし、ビブラトームを用いて各半分から最初の100〜200ミリメートルのセクションを取得します。 </li><li>予め温めた37℃のリン酸緩衝生理食塩水（1×PBS）溶液を用いて脳組織をすすぎます。 </li><li>すぐにメディア37℃に予熱した高グルコースDMEM /脳セクションを配置します。 </li></ol> 2.ライブイメージング構成と​​セットアップ<ol><li>高グルコースDMEM /培地1mlを含む30ミリメートルのガラス底培養皿に脳組織切片を置きます。 95％/ 10％のO 2 / CO 2含有量37°C、（ 図1には、顕微鏡の密閉チャンバの環境を調整します</strオング&gt;）。 </li><li> 60X油浸対物レンズを使用して、最初の60X対物レンズで油滴を置き、定期的なDICを用いて細胞に着目して上衣細胞/繊毛画像を収集し、光を伝送されます。 </li><li>繊毛殴打がエリア内に気泡の動きのようなものを作成するようにそして、運動性上衣繊毛の場所へのガイドとして、DMEMバブル移動の方向に従ってください。 DICフィルタを使用して、脳の側脳室に運動性繊毛で健康な細胞を含む領域を選択してください。上衣繊毛が発見されると、光を調整し、良好な画像を得ること焦点を合わせます。 </li><li>をMetamorphイメージングソフトウェアを使用して、特定の目的に応じたライブイメージングパラメータを設定します。本デモでは、60X対物レンズと、5〜10ミリ秒の露光時間と合わせ、1×1のカメラビニングを設定して24ビットの画像を取得します。 </li><li>最小EXPを得るために最適なレベルに顕微鏡開口部を開くことにより、DIC画像を収集osure時間。遅滞なく迅速かつ即時の画像取得を提供するために、カメラにライブ映像ストリームを確認します。十分な画像コントラストを得るために、最小限の露光時間の要件に基づいて、繊毛の鼓動の速度を計算します。 </li></ol> 3.データの可視化と分析<ol><li> 1分で殴打数をカウントすることにより繊毛の殴打の数を計算します。ビデオの速度を減少させ、細胞カウンターまたは同様のツールを使用して、拍数をカウントすることによってこれを行います。 </li><li>殴打の頻度を計算するために、ビデオは秒数を取得し、取得したフレームまたはタイムラプス画像の数によって記録された露光時間を乗算します。 （例：露光時間5ミリ秒200フレーム=千ミリ秒または1秒）。 </li><li> 1秒あたりの鼓動の数として表現さ​​れる周波数を得るために、1秒間に殴打の数を計算します。 1秒のタイム間にわたって繊毛殴打の数を割ることによってこれを行いますvalが（例：繊毛= 1秒5ミリ秒、すなわち 5ミリ×200フレームの露光時間で記録された200枚の映像で50回を打つが、今1秒= 50 Hzの50ビートを分割します）。 </li><li>両方の電源と回復ストローク中に上衣繊毛によって撮影されたパスを評価することにより、繊毛運動の角度を計算します。小さ ​​な修正11で、前述した方法に従って、これを実行します。個々の繊毛の正確な動きは、完全な拍動サイクル中に観察されます。 </li><li>モニターの上に配置アセテートシートで、上衣エッジとパワーストロークの開始時の繊毛の正中位置を通る垂直線に沿って水平線を描画します。 </li><li>それは動力行程中に前進するように、フレームによって繊毛フレームの正確な位置をプロットします。同様に、回復ストローク中に繊毛の動きをプロット。 </li><li> T中の正中線から繊毛の最大偏差から繊毛運動の角度を計算します彼のパワーストロークだけでなく、回復ストローク。 </li></ol> 4.カルシウム信号記録<ol><li>脳をスライスした後、簡単に1×PBSまたはダルベッコPBS（pH7.0）で脳切片をすすぎます。蛍光消光を回避するために、良好な信号対雑音比を得るために、新鮮なのFluo-2を調製します。 </li><li> 、ジメチルスルホキシド（DMSO）中のFluo-2溶液の1mMストック溶液を調製し、混合のFluo-2が均一DMSOに溶解されていることを確認するために、少なくとも5分間、溶液をボルテックス。 </li><li> 20 mg / mlの最終濃度まで37℃に2％のB27を暖め予め添加したDMEM /高グルコース500ml中のFluo-2ストック溶液を希釈します。 注：B-27は、ビタミンA、酸化防止剤カクテルおよび海馬および他のCNSニューロンの短期または長期の生存性をサポートするために使用されるインスリンを含む最適化された無血清サプリメントです。 </li><li>直ちにガラス底プレート中で、37℃で30分間、20 mg / mlでのFluo-2で脳切片をインキュベートします。 </li><li>カルシウムフルオロフォアのFluo-2の最適添加濃度を決定するためにカルシウム色素細胞毒性を回避するために、ATPでのチャレンジ細胞、およびATPに応答してカルシウムシグナルの時間経過およびピークの大きさを決定することによって、細胞の生存率をチェックします。 </li><li> 488 nmおよび515 nmで、それぞれ（ 動画2）の励起波長および発光波長で、1秒（毎秒200フレーム）の最低5ミリ秒のキャプチャ速度でカルシウム振動のための映像を記録します。 </li><li>自家蛍光や動きアーチファクトからのFluo-2カルシウム信号を区別するために、515 nmで放出された強度を別々に監視されていることを確認。 注：フルオ-2は、細胞内カルシウムを定量化するのに適したカルシウムfluoremetricではありません。しかし、このようなカルシウム振動の速カルシウムの変化を検出するための優れた動的カルシウム色素です。より正確なカルシウム定量のために、フラ-2を推奨します。しかし、フラ-2の動的変化は、そのレシオメトリックによって制限されています染料の性質。 </li><li>正確な無料の細胞内カルシウム値を計算するために、製造業者によって提供される式に従ってください。例の[Ca 2+] = の K d×（R - R 分 ）/（R 最大 - R）。 K dはカルシウム放出された色素からの解離定数である場合、Rは、488で、測定された蛍光であり、そしてR minおよびR maxは、最小および最大のイオン濃度12で蛍光比です。 </li></ol> 5.免疫蛍光顕微鏡<ol><li> 4％パラホルムアルデヒド（PFA）で10分間、2％スクロースを含有するリン酸緩衝生理食塩水を用いて脳切片を固定します。あるいは、4％PFAで脳全体を修正してから、クライオスタットを用いて、50ミリメートルのセクションにセクション。 </li><li>毎回5分間、1×PBSで組織を3回洗浄します。 </li><li> solutiで脳切片をインキュベート5分間1×PBSで各回3回すすぎ、次いで5分間、1×PBS中0.1％のTriton-Xの上で、。 </li><li>室温（RT）で、または一晩、4℃で1時間、1×PBS中10％FBS中で5,000：マウス一次抗体を用いて脳切片をインキュベートし、1の希釈で用い、チューブリンをantiacetylated。 </li><li>毎回5分間、1×PBSで組織を3回洗浄します。 </li><li> 1の希釈で二次抗体で脳切片をインキュベートし、フルオレセイン抗マウスIgG：RTで1時間、1×PBS溶液中で、10％FBS中で500。 </li><li> 5分は、核（またはDNA）13を染色するための4 &#39;、6-ジアミジノ-2-フェニルインドール（DAPI）のセクション対比蛍光顕微鏡下で観察する前に。可能な最小露光時間で光退色、画像すぐにセクションを最小限に抑えます。 </li></ol>

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</ol>

利害の衝突は宣言されていません。

ライブイメージングおよび脳室上衣内繊毛の迅速かつ高感度近接観察を提供し、蛍光顕微鏡の両方のマウス脳組織の調製のためのプロトコールは、ここで説明します。この技術は、側脳室のみに限定されません。それは、他の脳室に繊毛を観察するために利用することができます。このイメージング技術は、ex vivo環境で繊毛運動によってCSFの動きに似ているライブストリームを提供します。また、繊毛の方向の動きの分析を可能にします。これは主に、高解像度DICおよび蛍光画像化システムを使用することによって促進されます。このシステムの利点は、顕微鏡は、温度、湿度、CO 2レベルの微調整を可能にする環境チャンバー内に封入されているということです。これらは、ライブイメージングEXPERを行う際に、細胞および組織の生存のために考慮すべき非常に重要なパラメータであります形態。システムはまた、繊毛の動きなどの動的な細胞の挙動のイメージングを容易にするための重要な特徴であるそのすべてが、自動XYとZモジュールだけでなく、デジタルカメラや波長フィルタ切替が装備されています。顕微鏡は、コンピュータに接続され、高品質な画像の取得は、ソフトウェアを...

繊毛は、細胞外環境に細胞表面から延びる感覚微小管ベースの細胞小器官です。 「9 + 0」または「9 + 2 &quot; - それらの微小管の組織に応じて、繊毛は、2つのタイプに分類することができます。機能的には、それらの運動性に基づいて、これらの運動性または非運動性繊毛1のように分類することができます。一次繊毛は、一般に「9 + 0 &quot;非運動性繊毛を示すために使用される用語です。これらは（「9」によって示される）9平行二重微小管を有し、微小管の中心対は（ &#39;0&#39;で示される）中心シース内に存在しません。しかし、胚の左右差を調節するような結節繊毛のようないくつかの「9 + 0」の繊毛は、2運動性です。一方、運動性繊毛は、微小管のダブレットの追加の中央対によって、9平行微小管のダブレットに加えて、特徴とし、運動性を容易にするために、ダイニンモータータンパク質に関連します。また、いくつかの「92」は、嗅覚繊毛のような繊毛は3非運動性です。脳室および脊髄の中心管の内側を覆う上衣細胞は、脳室4に沿って脳脊髄液（CSF）を推進運動性繊毛によって特徴付けられます。 この方法の全体的な目標は、運動性繊毛のダイナミクスと構造異常を研究促進することです。脳の健康と開発は多額の脳室内のCSFの効率的な循環に依存します。例えば、正常なCSFの流れおよび流体バランスは正常な鼓動ひいては神経細胞の指向性移動の調節に重要な役割を果たし、細胞遊走7幹機能上衣繊毛5,6を必要とします。このような、異常な上衣繊毛機能や構造などの水頭症に関連付けられている異常なCSFの流れにおいて、a、bの心室におけるCSFの異常な蓄積がある医学的状態につながることができます雨。この結果、頭蓋内圧亢進とヘッドの進行性肥大、痙攣、トンネルビジョン、精神障害8を引き起こす可能性があります。 独自の繊毛拍動頻度と叩解角度に基づいて、I、II、およびIII：既存の方法に対するこの手法の利点は、三つの異なる上衣細胞タイプを報告する最初の時間に許可することです。これらの上衣細胞は、脳室内の特定の領域内に局在しています。また、年齢や、上衣細胞型またはそれらのローカライズを変更することで、アルコールおよびシロスタゾールなどの薬理学的薬剤の効果は、上衣細胞のこの分類の前には不可能であった、実証することができます。シロスタゾールは、ホスホジエステラーゼ3の阻害剤、cAMPのAMPへの代謝酵素であり、それはまた、細胞内カルシウムを調節する9。高速蛍光画像分析を使用して、ユニークな細胞内のイメージングおよび定量化を可能にします上衣細胞のカルシウム振動特性。例えば、アルコールおよびシロスタゾールの両方が大幅に順番に、上衣繊毛10による脳脊髄液の体積交換の変化につながる可能性上衣繊毛運動の周波数だけでなく、細胞内のカルシウム振動特性を変化させました。要約すると、この手法は、異なるカルシウム振動特性を有する上衣細胞の三つの異なる種類の最初の証拠を提供するための鍵でした。 次のセクションでは、手順の詳細なステップバイステップの概要は、組織調製および取り扱いに細心の注意を払って、提供されます。

<table><tbody><tr><td>DMEM/高血糖</td><td>セルグロ・メディアテック(株)</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>ハイクロン</td><td>SH30088-03</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>Thermo Scientific</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>Thermo Scientific</td><td>SH30256-01</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド&nbsp;</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>15710-SP</td><td></td></tr><tr><td>ショ糖</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-2395</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T9284</td><td></td></tr><tr><td>Fluo-2&nbsp;</td><td>TEF Labs</td><td>#0200</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Gibco</td><td>17504044</td><td></td></tr><tr><td>VECTASHIELD HardSet Mounting Medium with DAPI</td><td>Vector Labs</td><td>H-1500</td><td></td></tr><tr><td>Anti-acetylated a-tubulin antibody</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T7451&nbsp;</td><td>クローン6-11B1</td></tr><tr><td>FITC 抗マウス抗体</td><td>Vector Labs</td><td>FI-2000</td><td></td></tr><tr><td>Cell Culture Plate</td><td>VWR Vista Vision</td><td>30-2041</td><td></td></tr><tr><td>Cover Slip (18 x 18)</td><td>VWR Vista Vision</td><td>16004.326</td><td></td></tr><tr><td>Vibratome</td><td>Leica Biosystems</td><td>Leica VT1200S</td><td></td></tr><tr><td>Cryostat</td><td>Leica</td><td>Biosystems Leica CM1860</td><td></td></tr><tr><td>倒立蛍光顕微鏡</td><td>ニコン&nbsp;</td><td>ニコン TE2000</td><td>60X オイル&nbsp;</td></tr><tr><td>顕微鏡カバーガラス 24 x 60 mm2</td><td>VWR Vista Vision</td><td>16004-312</td><td></td></tr><tr><td>埋込媒体 with DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1500</td><td></td></tr><tr><td>DAPI filter cube</td><td>Chroma Technology</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マウスの脳の側脳室における上衣繊毛のライブイメージング

Live Imaging of the Ependymal Cilia in the Lateral Ventricles of the Mouse Brain

Multiciliated上衣細胞は、成人の脳内脳室を裏打ちします。上衣繊毛の異常機能または構造は、様々な神経障害と関連しています。運動性上衣繊毛技術の現在のex vivoでのライブイメージングは、いくつかの手順に従って、毛様体のダイナミクスの詳細な研究を可能にします。これらの手順は次のとおりです。マウス二酸化炭素で安楽死をトレドの施設内動物管理使用委員会（IACUC）の大学のプロトコルに従って、頭蓋骨切除術は、脳の除去と上衣繊毛を可視化することができる脳側脳室を介して、非常に薄い部分を得るためにビブラトームまたは鋭利​​な刃で矢状脳解剖を行いました。 95％/ 5％Oの存在下で、2 / CO 2混合物を37℃でのダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）/高グルコースを含むカスタマイズされたガラス底プレート中の脳のスライスのインキュベーションは、生きた組織を維持するために不可欠です間に実験。繊毛の鼓動のビデオは、高解像度の微分干渉顕微鏡を用いて記録されています。ビデオは、次に、繊毛拍動頻度を計算するために、フレーム毎に解析されます。これは彼らの繊毛運動の周波数と角度に基づいて三つのカテゴリーやタイプに上衣細胞の明確な分類を可能にします。さらに、この技術は、上衣細胞の固有の細胞内カルシウム振動特性ならびにカルシウム振動における薬剤の効果および繊毛拍動頻度を特徴付ける高速蛍光イメージング分析の使用を可能にします。また、この技術は、毛様体及び毛様体構造タンパク質の局在化研究のための免疫蛍光イメージングに適しています。これは、疾患の診断および表現型の研究において特に重要です。脳組織が死ぬことを始めると技術の主な制限は、ライブ運動性繊毛運動の減少に起因します。

生きたマウスの脳において上衣繊毛機能の測定このプロトコールに記載された方法は、マウス脳から切除新鮮組織における上衣繊毛の機能と構造を監視するため、並びに繊毛拍動頻度を監視し、研究するために使用されます。完全な実験を遂行するために、その後の工程は、概略フローチャート（図1）に示されています。それは非常に実験が可能な限り積極的な運動性繊毛を維持するために、短い時間枠内で実施されることをお勧めします。代表的なタイムラプスムービーと上衣細胞とその運動性繊毛の画像も表示されます（動画1 そして図2a）。得られたストリーム内のデータの分析は、移動繊毛の鼓動と角度パターンを計数することにより達成されます。三種類に繊毛を分割するための基準は、上衣繊毛の存在はconfiで表1に提示されています-チューブリンアセチル化繊毛マーカーでrmed、および上衣細胞は、核（図2b）を示すためにDAPI（DNAマーカー）で対比...

高解像度の微分干渉コントラスト（DIC）顕微鏡を用いて、マウス脳室の中に位置運動上衣繊毛の鼓動のex vivo観察ライブイメージングによって実証されます。技術はユニークな繊毛運動の周波数の記録や暴行角度ならびにそれらの細胞内カルシウム振動ペーシング特性を可能にします。

Multiciliated ependymal cells line the ventricles in the adult brain. Abnormal function or structure of ependymal cilia is associated with various ...

本手順の全体的な目的は、マウス脳室内に位置するMotr append CLIAの拍動をex vivoで観察することです。まず全脳を採取し、次に側脳室を含む薄い切片を作成することでこれを達成します。その後、実験中に組織を生かしておくため、高グルコース培地を入れたカスタム仕様のガラスボトムプレートを用いて、体温で切片をインキュベートします。最後に、高解像度の微分干渉コントラスト顕微鏡を用いて繊毛の拍動を記録します。最終的に、免疫蛍光イメージングによって繊毛の構造とタンパク質の局在を可視化することができます。我々の既存の手法に対するこの技術の主な利点は、独自の繊毛拍動頻度と角度に基づいて、表皮細胞を3つの明確なグループに分類することを可能にした初めての技術である点にあります。これは良好な結果です。この技術の意義は、水頭症の治療へと展開されます。なぜなら、心室周囲上皮細胞（CLIA）の機能異常は、脳内における脳脊髄液の蓄積を招くためです。心室の手順を実演するのは、当研究室の非常に優秀な学生であるZaha AlamさんとHannahさんです。まず、成マウスの頭部を70% ethanolで洗浄します。次に、頭頂部から開始し、滅菌済みの剪刀とピンセットを用いて皮膚を取り除き、頭蓋骨を露出させます。次に、後側から前側に向かって、骨を少しずつ接合します。頭蓋骨を取り除くため、脳全体を選択し、37 °Cの高グルコース培地を入れた100 mmのペトリ皿に置きます。鋭利な刃を用いて、脳を正中矢状面に沿って切断し、各半球から最初の100〜200 µmの切片を得ます。その後、切片を37 °CのPBSで洗浄し、直ちに組織を37 °Cの高グルコース培地に置きます。切片のイメージングを行うため、脳切片を1 mLの高グルコース培地を含む30 mmガラスボトム培養皿に入れ、密閉型顕微鏡チャンバー内の環境を60倍油浸対物レンズを用いて37 °C、5% carbon dioxideに調整します。次に、通常のDIC透過光を用いて細胞にピントを合わせます。次に、DMEMの気泡が移動する方向をガイドとして、運動性のependymal cilia（室管膜繊毛）の位置を特定します。DICフィルターを使用して、脳の側脳室において運動性CLIAを持つ健全な細胞を含む領域を選択してください。ependymal ciliaを特定した後、光量とフォーカスを調整し、十分な画像を取得します。次に、イメージングソフトでライブイメージングのパラメータを設定します。例えばここでは、60x対物レンズを用い、カメラビンニングを1×1に設定して24bit画像を取得しており、露光時間は5〜10msに設定しています。露光時間を最小限に抑えるために顕微鏡の絞りを最適レベルまで開き、DIC画像を取得します。遅延なく迅速かつ即座に画像を取得するため、カメラにストリーミングされるライブ画像を観察します。その後、カルシウムシグナリングを記録するために十分な画像コントラストを得るのに必要な最小露光時間に基づいて、心拍速度を算出します。脳をスライスした後、組織をPBSで軽くすすぎ、直ちにガラスボトムプレート内で、新しく調製した20 µg/mLのlu O2に切片をインキュベートします。37°Cで30分間静置した後、キャプチャレート5ミリ秒で、最低1秒間のカルシウム振動を記録します。まず励起波長488nmで記録し、次に蛍光波長515nmで記録します。免疫蛍光顕微鏡により目的の細胞マーカーを可視化するため、サンプルをPBS中の4%パラホルムアルデヒドおよび2%スクロースで10分間固定します。組織をPBSで5分間ずつ3回洗浄します。次に、脳切片を0.1% Triton Xで5分間インキュベートします。デモンストレーションした通りにサンプルを洗浄した後、マウス抗アセチル化α-チューブリン抗体でインキュベートします。再度PBSで洗浄した後、サンプルをフルオレセイン標識抗US IgGで室温にて1時間インキュベートします。最後に、切片をDPIで5分間対比染色し、最短の露光時間で直ちに細胞を撮影します。penal CLIAの存在は、DPI対比染色を併用した繊毛マーカーのアセチル化α-tubulinにより確認します。核を特定し、penal CLIAの運動性の流れを解析するために、移動する細胞の拍動頻度と角度パターンをカウントします。これらのデータに基づき、CLIAを3つのグループのいずれかに分類することができます。重要な点として、CLIAを0.25% Ethanolにさらすと、そのタイプに関わらずCLIAの拍動頻度が有意に抑制されます。さらにCLIAを屈曲させると、繊毛依存性の細胞内カルシウムシグナリングが誘発され、これにより脳室内の細胞内カルシウムシグナルの測定が可能になります。この手法を習得し、適切に実施すれば、1時間で完了させることができます。この手順を行う際は、脳室の発達後にそれを破壊しないよう、脳組織を丁寧かつ効率的に扱うことが重要です。この手法により、神経科学分野の研究者が、生きたマウスの脳組織においてappend CLIAの機能を探索する道が開かれました。

live-imaging-ependymal-cilia-lateral-ventricles-mouse

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

ここでは、のために必要なツールを開発...

ex vivoでマウス神経上皮における単一細胞分裂のライブイメージング

出典: Maruoka, H., et.al. 覚醒マウスにおけるミクログリアダイナミクスとニューロン活動の同時イメージング J. Vis. Exp.

覚醒マウスにおけるミクログリア動態と神経活動の同時イメージング

出典: Wiegreffe, C., et. Time-lapse Confocal Imaging of Migrating Neurons in Organotypic Slice Culture of Embryonic Mouse Brain using In Utero エレクトロポレーション. J. Vis. Exp. (2017)...

形質導入マウス胚脳切片における皮質ニューロン放射状移動のタイムラプスイメージング

出典:アルオムラン、A.J.、他.マウス脳の側脳室における上衣繊毛のライブイメージング. J. Vis. Exp. (2015).

マウス脳切片における上衣細胞繊毛活性のライブイメージング

神経前駆有糸分裂は、神経新生の重要なパラメータである。神経前駆糸分裂の我々の理解の多くは、固定された組織の分析に基づいている。胚性脳スライス内のライブイメージングは​​、制御された環境で、高い時間·空間分解能で有糸分裂を評価するための汎用的な手法である。...

発生中のマウス胚性皮質における有糸分裂のライブイメージング

この方法では、マウスは顕微鏡イメージングや動物の頭をしっかり固定を必要とする単一セルの電気生理学的記録、中に移動し、探索するための具体的な、使い慣れた環境を作成します。...

フラットの床の空輸プラットフォーム：げっ歯類の移動自由アウェイクに顕微鏡または電気生理学と行動を組み合わせるための新しい方法

多光子イメージングは組織表面からの限られた深さでしか効果がありませんが、pCLEを介して任意の深さで3μm分解能のイメージングを達成することが可能です。ここでは、発作性マウスと野生型マウスの海馬の微小血管動態を測定するためのpCLEイメージングを実施するためのプロトコルを提示します。...

覚醒マウスの海馬毛細血管の In Vivo ファイバー結合前臨床共焦点レーザー走査内顕微鏡 (pCLE)

ここでは、共焦点顕微鏡とライブ イメージング技術に適したマウス胚から electroporated...

Ex 子宮エレクトロポレーションと gaba 作動性介在ニューロンの移行のライブ イメージング用マウス萌芽期の脳の脊髄スライス培養

ここで組織をクリア、蛍光標識と、それによって、大脳新皮質の細胞型の三次元組織の可視化を可能にするマウスの脳組織の大規模なイメージング手順をについて説明します。...

マウス大脳皮質における細胞組織の大規模三次元イメージング

ここでは、覚醒マウスにおけるミクログリア動態と神経活動を同時にイメージングするためのアデノ随伴ウイルス注入と頭蓋窓移植を組み合わせたプロトコルについて説明します。...

大脳皮質の発達中、ニューロンとグリア細胞は、心室の内側を覆う心室ゾーンで発生し、脳表面に向かって移動します。このプロセスには多くの遺伝子が関与しています。このプロトコルでは、移動するニューロンとグリア前駆細胞のタイムラプスイメージングの技術を紹介します。...

マウス胚脳切片における移動するニューロンとグリア前駆細胞のタイムラプスイメージング

学ぶマウス脳側脳室の上衣繊毛のライブイメージング技術。高解像度微分干渉顕微鏡を用いて繊毛の拍動と細胞内カルシウム振動を観察し、神経科学研究への応用を示します。

マウスの脳の側脳室における上衣繊毛のライブイメージング

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