Name: 表面拡散と酵母染色体の免疫染色 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 6 s
Description: 学ぶ 出芽酵母の染色体表面拡散と免疫染色法。細胞壁除去、浸透圧ショックによる細胞溶解、蛍光顕微鏡で染色体結合タンパク質を可視化する技術を習得できます。

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この作業は、NIHのDKBへの助成金GM50936によって支援されました。

注：以下のプロトコルのいくつかのステップは、クリーンドラフト内での作業が必要です。さらに、この方法は、スフェロプラストを監視するために10X長作動距離対物レンズを装備した酵母四分子解剖顕微鏡を必要とします。顕微鏡は、事前にフード内に設定する必要があります。範囲からマイクロマニピュレータアームとプレートホルダーを外し、作業エリアから離れ、安全な場所にこれらの項目を配置します。 スフェロプラストの調製<ol><li>所望の条件下で酵母を成長させます。 OD600 1.4 = 5×10 7細胞/ mlで各試料について、約2×10 8細胞、例えば培養の4ミリリットルを使用してください。試料の即時の処理がある場合には好ましいかもしれないが、ほとんどの用途のために、細胞のアリコートを、処理される前に、8時間まで氷上で保存することができます。 </li><li>細胞をペレットに3分間5（2345 RPM / 857.5 XG）の設定で臨床遠心分離機中で15mlの遠心管とスピンに細胞懸濁液を転送します。 </lI&gt; <li>ペレットから細胞を失わないように注意しながら培地をデカント。静かに1ミリリットルのZKバッファーで細胞を再懸濁した後、40μlの1 Mジチオスレイトール（DTT）を追加します。穏やかに混合しながら2分間インキュベートします。以前のように細胞をペレット化する（ステップ1.2を参照してください）​​。 </li><li> 1ミリリットルのZKバッファで再懸濁ペレット。完全に混合されたザイモリアーゼ100Tの新たに調製した溶液5μLを加えます。細胞壁を除去し、スフェロプラストを製造するために、30℃で20〜30分間インキュベートします。 </li><li>スフェロプラストは、完全であるかどうかを決定するために顕微鏡スライド上の細胞懸濁液の10μlの液滴をアッセイ。カバーガラスなしで解剖顕微鏡下で観察した細胞。細胞が肥大化し、ラウンドではなく、わずかに楕円形に表示されますと、水20μlを添加した後溶解する必要があります。細胞が溶解するために失敗した場合、水誘導される溶解が容易に観察されるまで10分毎に、30℃にサンプルを返し、再分析。以前のように細胞をペレット化する（ステップ1.2を参照してください）​​。 </li><li>静かに再懸濁し、細胞ペレットを洗浄Inは2.5ミリリットルの冷MES /ソルビトールバッファ。以前のように細胞をペレット化する（ステップ1.2を参照してください）​​。ゆっくり300-400μlの冷MES /ソルビトール緩衝液に細胞ペレットを再懸濁します。細胞を、数時間、この段階で氷の上に保持することができます。 </li></ol>拡散2.染色体注：染色体が拡散さのいずれかのスライドやされる際にガラス表面カバースリップは、必要があります事前に用意すること。各スライドまたはカバースリップを水に沈めなければならず、その後エタノールは、その後、乾燥させ、レンズペーパーで研磨。染色体がカバーガラスに分散されます場合は、カバースリップは、スコッチテープやゴムセメントでスライドに貼付する必要があります。特に言及しない限り、プロトコルの残りはスライドまたはカバースリップ上に広げる説明します<ol><li>きれいなスライドの表面上にP20ピペッター、ピペット細胞懸濁液の20μlのを使用。 </li><li> P200ピペッターを使用して、3％PFA /スクロース溶液40μlを添加し、穏やかにsolutioを混ぜますシュリーレン線が消えるまで手でスライドを「旋回」されることによりn。顕微鏡下でスライドを置き、細胞が焦点になっていることを確認します。 PFA溶液は、使用日のドラフト内で新たに準備する必要があります。 注：目的のタンパク質は、以前の方法により検査されていない場合、それは、タンパク質の保持は、固定条件に敏感であるかどうかを決定するために2及び4％PFAを含む溶液を用いて、追加のスライドを用意することが望ましいです。 4％PFA /スクロース溶液は、それが関連付けられたチューブリンの微小管を可視化することが望ましい場合に使用されます。高い固定剤濃度の欠点は、染色体が「underspread、「2％PFAであろうこともまた「underspread」染色体を生じる傾向があります。 </li><li> P200ピペッターを使用して、できるだけ完全に溶液を混合する前のように旋回、タイマーを開始、1％Lipsolの80μlを添加します。 Lipsolが使用できない場合は、80μlの1％NP40または80μlののdH 2 Oであってもよいです置換された（代表的な結果、図2を参照）。 </li><li>慎重に細胞を見て、ゆっくりと15秒毎のスライドを旋回。細胞の約80％が溶解したら、すぐに顕微鏡からスライドを削除し、タイマーを停止PFA /スクロース溶液80μlを添加し、渦が混合する（消えました）。溶解は、タイマーを起動した後30〜90秒から発生する必要があります。 注：いくつかのスライドがほぼ同時に溶解を示した場合は、1は、最終的には、スライドの残りの微細なモニタリングを省略し、単に慎重lipsolと固定剤の最終アリコートの添加の添加の間の期間を時間を計ることができます。同じサンプルから複数のスライドを調製する場合しかし、この短いカットが唯一の信頼性があります。それは別のスライドを異なる時間に、または異なる培養物から採取した試料から調製されたときに、顕微鏡で各サンプルの溶解を監視するのが最善です。 </li><li>きれいな平らな面にスライドを置き、全体unfrosted surfac全体に液体を広げます「水たまり」のメニスカスの下にはなく、スライド自体の表面上に保持清潔、使い捨て牧草ピペットの側面を使用して、スライドの電子、 すなわち 。ピペットでスライドの表面を「熊手」はありません。サンプルの汚染を避けるために別のスライドにピペットを再使用しないでください。 </li><li>ドラフト内で一晩乾燥さスライドにしておきます。不溶性の核成分は、スライド表面上に定着し、それに結合します。大規模な実験のために、乾燥工程のためのスペースの使用を計画することが重要です。 </li><li>乾燥した後、最適な結果は、同じ日に免疫染色段階に進行することによって得られます。しかし、乾燥したスクロース溶液は、サンプルの凍結を可能にする「蜂蜜」のスプレッド染色体を埋め込む：スライド、プラスチックスライドボックスに移し、年間-20℃で保存することができます。 </li></ol> 3.免疫染色<ol><li>ディップは、30秒間0.2％のフォトフローにスライドします。蜂蜜を除去しました。上リーンスライドエッジは、エッジはペーパータオルで休んで、残留フォトフローを除去しました。 </li><li> 5分間の1×TBSでディップスライドを洗浄します。エッジでスライドを傾斜さ、過剰な液体を除去するが、それらが乾燥させてください。 </li><li>スライドのunfrosted部分全体のスライド上にスライドつや消し面を上にし、ピペット300μlのTBS / BSAを置きます。 </li><li> 15分間、室温で湿ったチャンバー内でインキュベートします。 （飽和ペーパータオルで有孔金属板やプラスチックスライドボックスの下に水飽和ペーパータオルを敷いた大きなプラスチック容器）。 </li><li>ペーパータオル上でスライドの短辺休止して（例えば、試験管ラックなど）適切なサポートに対するスライドを傾斜さスライドを排出します。表面が乾燥しないようにしてください。 </li><li>すぐに一次抗体の適切な希釈を含むTBS / BSA緩衝液80μlのを適用します。抗体が制限されている場合は、40μlの22×22ミリメートルのカバーガラスを使用しています。粗製ウサギ血清の場合、これは、典型的には1/50および1/500希釈の間です。 注意：新しい抗体調製のための滴定を行います。バックグラウンド以上の高い信号を生成する最も希薄準備が選択されています。前免疫血清で染色されるべきバックグラウンド染色のレベルを制御するために、核は適切な欠失変異株および/または重複したスライドから準備する必要があります。 </li><li>バブルを回避スライド上の洗練された22×50mmのカバースリップを置きます。一方の短辺に近い位置での長い縁に沿って親指と人差し指の間にカバーガラスを保持することによってこれを行います。それだけで「水たまり」スライドのつや消しの領域に最も近いのエッジの内側にスライド上に載るまでスライドする30度の角度でカバーガラスを保持し、指の短辺最も遠いが低下します。そして、ゆっくりとスライドタッチベンチを保持する指まで滑らかな動きでカバースリップを下げ、その後、離します。それは着地後にカバーガラスの位置を調整しようとしないでください。 注：染色体スプレッドは上に調製した場合（スライドの表面上に直接ではなく）固定されたカバーガラス、このサンプルカバースリップを染色し、洗浄工程全体にスライドに固定されたままになります。追加のカバーガラスを均一に染色した後、廃棄の際に抗体溶液を分配するために、サンプルカバースリップの上に配置されます。 </li><li>密封された湿ったチャンバー内の場所スライド、4℃で一晩インキュベートします。 </li><li>つや消しのエッジを保持することは、スライドガラスの染色ラックにスライドを転送し、TBSを含む染色ジャーに水没します。 </li><li>静かにカバースリップを削除するには、上下にスライドを浸します。これを行うにはあまりにも多くの力を使用しないようにしてください。 TBSに浸漬することによって、スライド2×10分間洗浄します。ラックからスライドを取り外し、ペーパータオルに端をタッチすることで、過剰な液体を排出します。表面を乾燥させないでください。 </li><li>直ちに蛍光色素結合二次抗体（または22×22ミリメートルのカバーガラス40μL）の1 /千倍希釈を含む80μlのTBS / BSAを追加し、落ち着いた光の下での作業。広告以前とDのカバースリップと暗闇の中で湿ったチャンバー内で2時間4℃でインキュベートします。 </li><li> 、以前のようにカバースリップを削除するスライドを排出し、暗所で1〜2時間空気乾燥さ表面を可能にします。以前のようにペーパータオル上リーンスライドします。 注：拡散がマウントカバースリップ上で実行された場合は、乾燥前のスライドからカバースリップを切り離します。前のステップでのスライドで説明したようにカバーガラスを乾燥されます。 </li><li>抑えた光の下での作業、DAPI（310μlの滴）を含む培地を搭載する約30μlを添加した後、慎重にカバースリップを下げます。スプレッドがカバーガラス上にある場合、スライド上に、下に清潔なスライド上に封入剤の液滴を配置し、カバーガラスを下げ、染色体側。 </li><li>まだ落ち着いた光の下では、明確なマニキュアでカバースリップの端を解決し、密封するためにカバースリップのために2分を待ちます。フラットスライドボックス内にスライドを配置します。 注：STED顕微鏡の場合は、延長ゴールドでマウントします。延長金の30μLを使用DAPIのない、一晩硬化させます。マニキュアで封止することは不要です。 </li><li> DAPIが集中するために、適切なフィルターセットを用いて、40または100倍を目的とした広視野落射蛍光顕微鏡による表示スライド。必要に応じて数週間、4℃で暗所でスライドを保存します。凍結しないでください。 </li></ol>

<ol><li>Loidl, J., Nairz, K., Klein, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meiotic+chromosome+synapsis+in+a+haploid+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Chromosoma%22%5BJournal%5D)">Meiotic chromosome synapsis in a haploid yeast.</a> Chromosoma. 100 (4), 221-228 (1991).</li>
<li>Loidl, J., Klein, F., Engebrecht, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+and+morphological+approaches+for+the+analysis+of+meiotic+chromosomes+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Genetic and morphological approaches for the analysis of meiotic chromosomes in yeast.</a> Methods in cell biology. 53, 257-285 (1998).</li>
<li>Lydall, D., Nikolsky, Y., Bishop, D. K., Weinert, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+meiotic+recombination+checkpoint+controlled+by+mitotic+checkpoint+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A meiotic recombination checkpoint controlled by mitotic checkpoint genes.</a> Nature. 383 (6603), 840-843 (1996).</li>
<li>Bishop, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RecA+homologs+Dmc1+and+Rad51+interact+to+form+multiple+nuclear+complexes+prior+to+meiotic+chromosome+synapsis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">RecA homologs Dmc1 and Rad51 interact to form multiple nuclear complexes prior to meiotic chromosome synapsis.</a> Cell. 79, 1081-1092 (1994).</li>
<li>Rabitsch, K. P., Galova, M., Schleiffer, A., Buonomo, S. B., Nasmyth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+genomics+identifies+Monopolin%3A+a+kinetochore+protein+required+for+segregation+of+homologs+during+meiosis+I%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Functional genomics identifies Monopolin: a kinetochore protein required for segregation of homologs during meiosis I.</a> Cell. 103 (7), 1155-1168 (2000).</li>
<li>Gasior, S. L., Olivares, H., Ear, U., Hari, D. M., Weichselbaum, R., Bishop, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+of+RecA-like+recombinases%3A+Distinct+roles+for+mediator+proteins+in+mitosis+and+meiosis%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Assembly of RecA-like recombinases: Distinct roles for mediator proteins in mitosis and meiosis.</a> PNAS. 98 (15), 8411-8418 (2001).</li>
<li>Biggins, S., Murray, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+budding+yeast+protein+kinase+Ipl1%2FAurora+allows+the+absence+of+tension+to+activate+the+spindle+checkpoint%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+%26+Development%22%5BJournal%5D)">The budding yeast protein kinase Ipl1/Aurora allows the absence of tension to activate the spindle checkpoint.</a> Genes & Development. 15 (23), 3118-3129 (2001).</li>
<li>Dresser, M. E., Giroux, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meiotic+chromosome+behavior+in+spread+preparations+of+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Meiotic chromosome behavior in spread preparations of yeast.</a> The Journal of Cell Biology. , (1988).</li>
<li>Lao, J. P., Cloud, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meiotic+crossover+control+by+concerted+action+of+Rad51-Dmc1+in+homolog+template+bias+and+robust+homeostatic+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Genetics%22%5BJournal%5D)">Meiotic crossover control by concerted action of Rad51-Dmc1 in homolog template bias and robust homeostatic regulation.</a> PLOS Genetics. 9 (12), e1003978-e1003978 (2013).</li>
<li>Vonesch, C., Unser, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fast+thresholded+landweber+algorithm+for+wavelet-regularized+multidimensional+deconvolution.+IEEE+transactions+on+image+processing+%3A+a+publication+of+the%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Signal+Processing+Society%22%5BJournal%5D)">A fast thresholded landweber algorithm for wavelet-regularized multidimensional deconvolution. IEEE transactions on image processing : a publication of the.</a> IEEE Signal Processing Society. 17 (4), 539-549 (2008).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益はないと宣言している。

拡散核の出現は、固定と溶解/界面活性剤処理のバランスに大きく依存します。 上で説明したように、さまざまな細胞構造を保存するには、異なるPFA濃度を使用する必要があります。ほとんどのタンパク質では、3%PFAが最適です。ただし、スピンドルの保存には 4% PFA の使用が必要です。 試薬を1セット使用した場合でも、固定に対する溶解のタイミングも拡散核の品質に影響を与える可能性があります。 最も一貫した結果を得るには、光学顕微鏡で溶解を直接観察することにより、各スフェロプラストサンプルの溶解時間を正規化する必要があります。 訓練された目には、丸い球状体は溶解前に膨らむにつれて暗くなります。溶解後、細胞の残骸は浮遊する「幽霊」として現れます。 実験的に最適化された試薬濃度とタイミングのサンプル間標準化の組み合わせにより、一貫して十分に広がった核が得られます。 
拡散染色体を視覚化するために使用される蛍光色素と顕微鏡の選択は、目的の構造によって異なります。 一般に、広がった核は非常に薄く(約200nm以下)、可溶性タンパク質は手順によって除去されます。 したがって、共焦点または全反射蛍光(...

出芽酵母サッカロマイセス·セレビシエは、染色体の機能を制御するタンパク質の研究を含む、生物学的過程の分子機構の研究のために多くの利点を提供しています。 、遺伝的分子、および生化学的研究のために、出芽酵母のよく知られている利点があるが、細胞の核内のタンパク質の分布の細胞学的研究は、その小さなサイズによって複雑になります。典型的な酵母核は、可視光の約5倍の解像度の限界である1ミクロン未満の直径を有します。したがって、従来の免疫染色から、または緑色蛍光タンパク質（GFP）などの蛍光タンパク質タグを使用することによって得ることができる核タンパク質の分布に関する情報の量が限られています。タンパク質の核内分布を特徴付けるに有用なアプローチは、拡散染色体面です。このアプローチは、細胞壁を除去し、細胞膜および核膜を破壊し、Aを含みますllowing核の不溶性内容は顕微鏡スライドの表面に安定します。これらの不溶性成分は、核マトリックスと染色体が含まれます。クロマチン結合タンパク質を検出する能力を高め、可溶性核内容物の除去を可能にすることに加えて、そのような拡散核が約3〜5μmの直径を有すること（二倍体減数分裂核のための）染色体の実質的な減圧でメソッド結果を拡散染色体と二倍体分裂核のために2〜3ミクロン。この減圧は無傷の核に解決することが比較的困難または不可能である核部分構造の検出を可能にします。 染色体拡散に明らかな欠点は、拡散手順が部分的にまたは完全に目的の構造を破壊する可能性です。特に懸念されるのは、特定の染色体に結合したタンパク質は、拡散処理の結果として失われる可能性があるということです。この潜在的な合併症の寿データを解釈する際にLDが念頭に置いておきます。拡散手順に敏感なタンパク質の一例は、β-チューブリンです。いくつかの条件の下では、主にチューブリンから構成されているスピンドルは、3を広げる時に保存されています。スピンドルの可視化は、多くの場合、目的の核をステージに便利です。しかし、チューブリンを可視化することは、高濃度の固定剤を用いた治療を必要とします。スピンドルは、以下に記載される標準的な条件の下で失われます。この例では、以前に特徴付けられていないタンパク質の分布を分析する場合、それは、タンパク質は、そのような変化に敏感であるかを決定するために、固定剤の濃度を変化させることが重要であることを示しています。染色体構造上の拡散条件の影響に関する懸念にもかかわらず、拡散方式の有用性とパワーは、多くの状況で実証されており、有糸分裂と、特に減数分裂のセル4-7の特性に広い有用性を有します。 TWO拡散方法が広く使用されてきました。ドレッサーとジルー8によって開発されたこれらの方法の第一は、洗剤の使用を回避し、DNA特異的色素DAPIについて染色したときに、比較的よく保存された染色体の形態を有するように見えるスプレッドの準備を得ることができます。しかし、この方法は、完全に比較的困難であり、スライドの一方の領域を他の領域と比較されたときにスプレッド核の品質が、劇的に変化します。この問題は、データ収集の偏りを回避するために、1つのスライドから多くの選択されていない核画像化伴う定量的アプローチを複雑にすることができます。 Loidlとクライン1によって開発された方法を、2次拡散染色体は、洗剤溶液によって促進溶解およびクロマチン解凍して、パラホルムアルデヒドによる固定をバランスすることを含みます。適切に実行すると、この方法は、ドレッサーとジルーの方法に比べて少ない地域への領域の変動と非常に再現性のある結果が得られます。このプレゼンテーションでは、modifieに焦点を当てて理由は、その信頼性とシンプルさのLoidlとクラインの方法、のDバージョン。 拡散染色体は複雑で時間のかかるではありません。最大100のスライドを一日で免疫染色のために調製することができます。また、スプレッド製剤は、免疫染色の前に年間の冷凍庫に保存することができ、したがって、ラボでは新たな生物学的疑問が生じたり、新しい染色試薬が利用可能になったときに使用することができる冷凍染色体スプレッドのリポジトリを開発することができます。 染色体拡散方法は、最も一般的に免疫染色し、広視野蛍光顕微鏡法と組み合わせて使用​​されるが、それは、誘導放出の枯渇（STED）顕微鏡法などの超解像光学顕微鏡法のためにスライドを調製することも可能です。

<table><tbody><tr><td>ジモリアーゼ</td><td>US Biological&nbsp;</td><td>Z1004</td> 2<td>%グルコースを添加した50 mM Tris pH 7.5に20 mg/mL溶液を調製します。新鮮な各実験を準備し、4°Cで保管します。使用する準備ができるまでC。</td></tr><tr><td>リップソル&nbsp;</td><td>L.I.P.株式会社&nbsp;</td><td>もはや市販されていません</td><td>水に1%(v / v)溶液を調製します。氷の上に保存します。</td></tr><tr><td>NP-40</td><td>USB</td><td>19628</td><td>水に1%(v / v)溶液を準備します。氷の上に保存します。</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma</td><td>P2287</td><td></td></tr><tr><td>スライド</td><td>コーニング</td><td>2948-75x25</td><td></td></tr><tr><td>標準カバースリップ</td><td>フィッシャー</td><td>12-544-E または 12-540-B</td><td></td></tr><tr><td>高解像度カバースリップ</td><td>フィッシャー</td><td>12-542-B</td><td></td></tr><tr><td>Photo-Flo 200 ソリューション</td><td>コダック</td><td>P-7417</td><td>水中で 0.2% (v/v) 溶液を調製します。&nbsp;</td></tr><tr><td>TBS</td><td></td><td></td><td>137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 24.7 mM Tris, pH 8</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A2153</td><td>TBSに1%(w/v)溶液を調製します。4°Cで保存します。Cは最長1ヶ月間。</td></tr><tr><td>一次抗体</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Rabbit</td><td>Invitrogen</td><td>A-21206</td><td></td></tr><tr><td>IgG (H+L) 抗体</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vectashield 封入剤 with DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr><tr><td>ProLong Gold</td><td>Invitrogen</td><td>P36930</td><td></td></tr><tr><td>プラスチックスライドボックス</td><td>Fisher</td><td>03-448-1</td><td>乾燥スプレッドを含むスライドは、-20°Cのスロットに保管します。また、ウェットチャンバーとしてもご使用ください。</td></tr><tr><td>段ボール製スライドボックス</td><td>フィッシャー</td><td>12-587-10</td><td>染色/密封されたスライドを便利に輸送したり、4°Cで保管したりするために使用します。</td></tr><tr><td>Coplin jar</td><td>Fisher</td><td>08-816</td><td>スライドの洗面台として使用します。&nbsp;</td></tr></tbody></table>

表面拡散と酵母染色体の免疫染色

Surface Spreading and Immunostaining of Yeast Chromosomes

>jove_content<出芽酵母Saccharomyces cerevisiaeの核のサイズが小さいため、クロマチン結合タンパク質の核内分布を分析するための光学顕微鏡の有用性が制限されます。酵母核の表面拡散は、結合タンパク質を失うことなくクロマチンの増殖をもたらします。DNA結合タンパク質の固定と界面活性剤処理のバランスをとった表面拡散法です。示された方法は、Josef LoidlとFranz Kleinによって記述された方法からわずかに修正されています1,2。この方法は、有糸分裂細胞周期のさまざまな段階で多くのクロマチン結合タンパク質の局在を特徴付けるために使用されてきましたが、減数分裂レコンビノソームやシナプトネマ複合体などの減数分裂染色体構造の研究に特に有用です。また、独自の洗剤であるLipsolを使用する必要のない変更についても説明します。これは、元の手順で求められていたが、もはや市販されていません。染色体拡散法と適合する免疫染色プロトコルも記載されている。

スプレッド核の出現は、批判的に染色体固定およびデコンパクションとの間のバランスに依存します。試薬が適切にバランスしている場合であっても、染色体の脱圧縮の程度の変化および/または別のスライド間の同じスライドの異なる領域で起こり得ます。画像が解釈される前にこのように、スライドの所定の領域に広がるの品質が評価されるべきです。 「overspreading &quot;と&quot; underspreading」の効果は、減数分裂期組換えタンパク質に対する抗体を用いて説明することができます。 図1では、減数分裂核はDAPIを用いたDNAについて染色2真核生物の鎖交換タンパク質のRad51とDMC1とカウンタについて免疫染色の二重です。最適に広がる核の2つの例は、 図1Aに示されている。 図1Bは、underspread核二包む核の図1Cの実施例の一例を示しています。注意Rad51のとDMC1の少ない病巣が正しく核を拡散するために比較を超えるとunder...

出芽酵母から染色体の表面拡散方法が提示されています。この方法は、Loidl と Klein によって以前に記述された方法から派生しています。さらに、スプレッド染色体の免疫染色の手順を実演します。

The small size of nuclei of the budding yeast Saccharomyces cerevisiae limits the utility of light microscopy for analysis of the subnuclear distribution ...

本手順の全体的な目的は、蛍光顕微鏡を用いて染色体に結合したタンパク質を可視化することです。これは、まず酵素処理によって細胞壁を除去することで達成されます。ここでは、oliseを用います。第2ステップでは、通常は界面活性剤を用いて浸透圧ショックにより細胞を溶解させ、核膜を露出させます。これは、タンパク質構造を維持するために低濃度の固定液が存在する状態で行われます。細胞の溶解後、タンパク質構造をさらに安定させるために固定液の濃度を高めます。次に、溶解した細胞を顕微鏡スライドに滴下し、核をスライド表面に沈降させます。最終ステップは、サンプルの免疫染色です。ここで実演する間接免疫染色法では、目的のタンパク質に結合する一次抗体と、その一次抗体に結合する蛍光標識二次抗体を使用します。最終的に、染色体結合タンパク質の分布を調べるために免疫蛍光顕微鏡法が用いられます。これらの代表的な画像は、組み換えタンパク質であるDMC1およびRAD51を免疫染色した、展伸された有糸分裂核のものです。Mike DresserおよびCraig Deruによって導入された他の一般的な手法と比較した本手法の主な利点は、スライド表面の大部分に最適に展伸された核が存在するため、1枚のスライドから多数の展伸核の画像を容易に取得できることです。この手法は、2つのタンパク質が共局在しているか、あるいは特定の核内部分構造の形成が目的の遺伝子の機能に依存しているかなど、核内構造の研究における重要な疑問への回答に役立ちます。なお、この手法は元々Franz KleinとYosef Loleによって開発されたものであることを強調しておきます。このビデオが、我々が改良したこの技術を習得される方々の助けとなることを願っています。目的の条件下で培養した酵母細胞からスプラットを作成します。各サンプルに約2×10⁸個の細胞を使用してください。細胞懸濁液を15 mL遠心チューブに移します。臨床用遠心分離機を用いて、設定5で3分間チューブを遠心分離し、細胞をペレット化します。ペレットの細胞を紛失しないように注意しながら、培地をデカンテーションで除きます。細胞を1 mLのZK bufferで穏やかに再懸濁し、次に1 M dihiを40 µL加えます。室温で2分間、緩やかに混合しながらインキュベートします。前と同様に細胞をペレット化し、再懸濁します。各ペレットを1 mLのZKバッファーに懸濁します。十分に混合した、調製直後のzy liase 100 T溶液を5 µL添加します。30 °Cで20〜30分間インキュベートし、細胞壁を除去してスフェロプラストを生成させます。細胞懸濁液10 µLを顕微鏡下で観察し、スフェロプラスト化が完了しているか確認してください。細胞壁除去前、酵母細胞はわずかに長楕円形に見えます。スフェロプラスト細胞は、

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

遺伝子欠失と蛋白質の過剰発現は、タンパク質の機能を研究するための一般的な方法です。この記事では、我々は、人口および単一細胞レベルでのタンパク質の濃度の関数として表現型の開発の分析のためのプロトコルを記述する...

出芽酵母のタンパク質濃度の関数としての形態学的表現型の開発の分析

光および電子顕微鏡用切片可能に酵母のコロニーを埋め込むための方法。このプロトコルは、真菌、コミュニティ内での細胞型の組織を理解するための新しいツールを提供してコロ​​ニー内に胞子形成細胞と偽菌糸細胞の分布を決定することができます。...

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このプロトコルは、酵母の遺伝子発現（内...

マイクロアレイ解析のためのサッカロマイセスセレビシエ</em

このプロトコルは、蛍光を実行するための実験手順を説明...

蛍光を用いたmRNA分子の可視化と分析<em&gt;その場で</emで&gt;ハイブリダイゼーション<em&gt;サッカロミセス·セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）</em

私たちは、分裂酵母の性的なライフサイクルの長期顕微鏡検査のための再現可能な基本的な方法を提供します。説明されているわずかな調整で、提示されたプロトコルは、生殖プロセスのさまざまなステップに研究の焦点を当てることができます。...

分裂酵母セクシャルライフサイクルの顕微鏡観察

ここでは、有分裂・マイオシス時の生きた核分裂酵母細胞におけるタンパク質挙動や核ダイナミクスを研究者が研究できる非毒性顕微鏡法である生細胞イメージングを紹介する。...

蛍光生細胞顕微鏡によるミトティック・マイオシス酵母核ダイナミクスの検討

このプロトコルの目的は、哺乳動物の消化管におけるカンディダ・アルビカンス細胞の形状および局在を可視化することである。...

上皮内蛍光を用いたマウス消化管におけるカンダアルビカンスの可視化

タイムラプス顕微鏡は、出芽酵母の減数分裂を研究するための貴重なツールです。このプロトコルでは、細胞周期同期、タイムラプス顕微鏡、および標的タンパク質の条件付き枯渇を組み合わせて、減数分裂染色体分配中の特定のタンパク質の機能を研究する方法を実証する方法について説明しています。...

S. cerevisiaeの減数分裂を研究するためのタイムラプス顕微鏡とタンパク質のステージ特異的核枯渇の使用

ここでは、分裂酵母を異種宿主として利用し、FtsZやMreBなどの細菌細胞骨格タンパク質をGFPとの翻訳融合タンパク質として発現させ、それらの重合を可視化します。また、重合に影響を与える化合物は、蛍光顕微鏡を用いたイメージングによって同定されます。...

細菌の細胞骨格タンパク質を標的とする抗菌薬スクリーニングのプラットフォームとしての分裂酵母

このプロトコルは、酵母細胞周期停止とオプションの放出の2つの方法を詳述し、 S.

出芽酵母における細胞周期依存過程の操作と解析

学ぶ 出芽酵母の染色体表面拡散と免疫染色法。細胞壁除去、浸透圧ショックによる細胞溶解、蛍光顕微鏡で染色体結合タンパク質を可視化する技術を習得できます。

表面拡散と酵母染色体の免疫染色

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