Name: ヒト腹腔器官培養における卵巣癌普及の初期段階のモデル化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-31T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: 学ぶ、ヒト原代間皮細胞と線維芽細胞を用いた3次元オルガノタイプ培養法により、卵巣がん細胞の接着・浸潤・増殖を解析する技術です。腹腔内微小環境を模倣したモデル構築により、がん微小環境相互作用の解明と治療標的の探索が可能になります。

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私たちは、すべての研修医と主治医、特にA.F.ヘイニー博士（シカゴ大学産婦人科）のオオトアル生検を収集してくださった方々に感謝します。また、この原稿を慎重に編集してくれたStacey Tobin氏とGail Isenberg氏に感謝します。この活動は、シカゴ・ベアーズ・フットボール・クラブ、国立神経疾患・脳卒中研究所(NINDS)のR21 NS075702、および国立がん研究所のE.L.への助成金R01 CA111882の慈善受益者であるベアーズ・ケアの支援を受けました。

記載されている全ての研究プロトコルは、シカゴ施設内倫理委員会の大学（IRB）によって検討されています。インフォームドコンセントは、手術前に各患者から得られたものであり、この研究は、シカゴ大学IRBによって承認されました。生物学的安全キャビネットタイプ2との手袋は、保護のためにヒト組織を取り扱う際に使用されるべきであり、細胞の汚染のリスクを低減します。 一次形質転換されていない間質細胞の単離および培養1。 <ol><li>ヒト組織収集と準備。 <ol><li>腹部手術の間に除去さヒト大網、2 cm 3での標本を取得し、直ちにRTリン酸緩衝生理食塩水（PBS）（ 図2A）の組織を浸します。 X 2センチメートル大網3センチメートルの作品は、一般的に100万初代ヒト中皮細胞（HPMC）20万の一次ヒト線維芽細胞または正常大網線維芽細胞（NOF）が得られます。 </li><li>組織が3用0.5×gで中に浸漬したPBSをスピンダウン分できるだけ早く採取後（PBS中&lt;2時間）、50mlのコニカルチューブに新鮮な20ミリリットルのPBSに組織を移します。直径15cm、無菌培養皿（ 図2B）にメスで切り刻むことによって5ミリメートル3個に組織をカット。 </li></ol></li><li>初代ヒト中皮細胞の単離8 <ol><li> HPMCを単離するために、50mlコニカルチューブにみじん切りの組織を転送し、固体片がトップ（ 図2C＆D）に浮動するために1分を待ちます。 HPMCおよび赤血球（RBC）は、底部に液体中に存在するであろう。チューブの底から、新しいコニカルチューブに液体を除去するために、ピペットを使用してください。 3分間0.5×gで液体をスピンダウンし、HPMC / RBCペレットから上清を吸引除去します。 <ol><li>プロセスを3回繰り返します。組織は、上昇ピペットでおよびHPMC / RBC管に底から液体を除去、スピンダウン、および削除することができ、みじん切り組織に20ミリリットルのPBSを追加上清。すべてのスピンが完了し、上清を吸引した後、ペレットは、HPMCおよびRBCを含みます。 </li></ol></li><li>プレート10％ウシ胎児血清[FBS]、1％MEMビタミン[93ミリグラム/ L]、1％MEM非必須アミノ酸[81.4との完全成長培地15mlの（DMEM中で75cm 2のフラスコ中に、ペレットから全セルMG / L]、1％のペニシリンストレプトマイシン[ペニシリン - ストレプトマイシン、100U / mlペニシリンおよび100μg/ mlストレプトマイシン]）。 </li><li>追加のHPMCを分離するために、二次PBS洗浄を行ってください。 <ol><li>組織はトップにフロートするために二PBS洗浄のため、200 rpmで、20mlのPBSで10分間、37℃で、残りの固形組織を振る、その後、1分待ちます。 、新しいチューブに、チューブの底部から液体を除去する3分間の0.5×gで遠心分離し、上清を吸引除去します。 </li><li>二PBSのプレートのすべてのHPMC / RBCが完全増殖培地15ml中の別々の75cm 2のフラスコ中で洗います。 </li></ol></li><li>任意のRを単離するために、ボリュームによってPBS溶液：1、0.25％トリプシンの25mM EDTA：HPMCをemaining、1 20mlに10分間、200 rpmで37℃の度を細分化した組織を横に振ります。組織が上昇することを許可する、新しい50mlチューブにチューブの底に液体を収集し、0.5 GX 3分でスピンダウン。 <ol><li>上清を吸引除去し、完全増殖培地15mlに別々の75cm 2のフラスコ内のすべてのHPMC / RBCをめっき。 </li></ol></li><li>培養メッキ37℃で細胞を加湿環境下で5％CO 2。フィードは、使用済み培地を除去せずに3日目および5に完全成長培地を15mlを加えることによって、細胞を播種しました。 HPMCは、分割前に5〜7日間培養することができます。 <ol><li>元の表現型の脱分化および変更を最小限に抑えるために、すべての実験で（継代2まで）の低継代HPMCを使用してください。位相コントラストcapabilitieプラスチック微分干渉コントラスト機能や4-20x目的とした20倍目的で、好ましくは広視野顕微鏡を使用して、S細胞のすべての画像を撮影する（顕微鏡の位相コントラストフィルタ）、および3,3&#39;-ジアミノベンジジン（DAB）染色を免疫組織化学的に分析する明視野で10倍対物レンズ（）。 </li></ol></li><li> HPMCは立方形であり、免疫組織化学8（ 図3A、C、E）を行うことにより 、サイトケラチン8およびビメンチンを発現することを確認します。 </li></ol></li><li> NOF分離8 <ol><li> 1：100Xペニシリン - ストレプトマイシンの1：1混合物をPBS中のヒアルロニダーゼの714単位の活動/ mlのコラゲナーゼタイプIIIの1500単位の活動/ mlの1を組み合わせることにより、コラゲナーゼタイプIII溶液（10倍）の株式の10ミリリットルを準備します。 </li><li> 1％MEMビタミン[93ミリグラム/ L]で無血清培地で希釈10倍コラゲナーゼタイプIII溶液10ml（DMEM中で6時間、200 rpmでHPMC分離後に残るみじん切り大網組織、37℃を振って、 1％MEM非必須アミノ酸[81.4 mg / Lで]、1％のペニシリンストレプトマイシン[ペニシリン - ストレプトマイシン、100U / mlペニシリンおよび100μg/ mlストレプトマイシン]）。消化された組織は、不透明になりますし、いくつかの繊維の破片（ 図2E）を有することができます 。 </li><li> NOF細胞を含有する溶液を遠心 室温で3分間0.5×gで懸濁液中で、上清を吸引し、完全増殖培地13ミ ​​リリットルで75cm 2のフラスコ中でペレットをプレート。 </li><li>古いメディアを削除し、24時間後に、新鮮な完全増殖培地15mlで交換してください。 NOFは、分割前に1-3日間培養することができます。細胞がコンフルエントに達したときにNOFの注意増殖が停止します。 </li><li>一次ヒト線維芽細胞は平坦であることを確認し、細長い細胞およびビメンチンを発現するが、免疫組織化学8（ 図3B、D、F）を行うことにより 8サイトケラチンありません。脱分化を最小限にするために（理想的に継代3前）の実験のための低通路NOFを使用します そして、元の表現型の修正。細胞の全ての位相画像を撮影するためのプラスチック製のDIC機能を搭載した20倍目的で広視野顕微鏡を使用して、と明視野で10倍の目的は、免疫組織化学的DAB染色を分析します。 </li></ol></li></ol> 2.メッキ器官培養8 <ol><li>わずか5分3ミリリットル0.25％のトリプシン/ 25mMのEDTAに続いて10mlのPBSですすいで75センチ培養フラスコからリリースNOF。完全増殖培地の少なくとも3倍のボリュームで、トリプシンを中和します。 </li><li> 50mlコニカルチューブにトリプシン処理した細胞を移し、0.5 GX 3分でスピンダウン。上清を除去し、完全増殖培地5mlにまで戻って細胞をもたらします。培養フラスコから回収した細胞をカウントするセルカウンタを使用してください。 </li><li>黒、透明底、96ウェルプレートに100μlのあたり2,000〜4,000 NOFをプレートに完全増殖培地の適切な量で細胞を希釈します。メッキ前に、細胞混合物をラット尾コラーゲンI0.5μgの/ 100μLを加えます。細胞は、少なくとも4時間、加湿環境において、または細胞になるまで5％CO 2中で37℃で放置プレート表面に付着します。 </li><li>ステップ2.1および2.2に記載したのと同じ方法を用いて培養フラスコからHPMCを解除してください。すでに96ウェルプレート中のI型コラーゲンでメッキNOFの上に50μlのあたり10,000〜20,000 HPMCをプレートに完全増殖培地の適切な量で細胞を希釈します。細胞は、実験を開始する前に、少なくとも18時間、加湿環境で、5％CO 2中、37℃で座ってみましょう。 </li><li>完全な増殖培地でHeyA8卵巣癌細胞を発現性培養緑色蛍光タンパク質（GFP）。 HeyA8卵巣癌細胞を蛍光カイアシ類CGFP（pCDH-CMV-MCS-EF1）を発現するレンチウイルスベクターの発現によって標識されています。 HeyA8卵巣癌細胞は、使用日の80〜90％コンフルエント（対数増殖期）でなければなりません。培養プレートから細胞を離し、初代培養細胞のためのステップ2.1から2.2に記載したのと同じ方法を使用してカウントします。 </li><li>卵巣癌細胞を、37℃で15〜20分間、完全増殖培地中で回復させます緩く密封された蓋付きの円錐管。 </li></ol> 3.接着アッセイ8 <ol><li>回収後、0.5×gで3分間回転させることにより卵巣癌細胞をペレット化し、上清を除去し、50,000細胞/ 100μlの濃度を達成するために、無血清培地の適切な量で細胞を希釈します。 </li><li>使用済み培地を除去し、各ウェルに無血清培地中の癌細胞懸濁液100μlを追加するHPMC / NOF器官培養物を96ウェルプレートを反転します。 4時間30分間、加湿環境中、5％CO 2中37℃でプレートをインキュベートします。 </li><li>培地および非接着細胞を除去するために、96ウェルプレートを反転させます。慎重に、ゆっくりと各ウェルに100μlのPBSをピペット、再度プレートを反転させるために、低電力でマルチチャンネルピペットを使用してください。 PBSで一回以上の洗浄を繰り返します。 </li><li> PBSを除去し、各ウェルに100μlの4％パラホルムアルデヒドを添加することが反転します。プレートは、20マイルのために座ってできるようにします細胞を固定する場合は、N。 20分後、プレートを反転し、100μlのPBSを追加します。 </li><li>ウェルの総蛍光を報告することができるか、細胞の数を定量することができることに留意されたいです。定量化のために、100万細胞/ mlの濃度でHeyA8細胞を用いて、重複の最初のプレートの標準曲線。 <ol><li> 、ダウン100万個の細胞をスピン培地を除去し、それらを20分間1ミリリットルの4％パラホルムアルデヒド中で座ってできるようにすることで、標準曲線を作成します。 </li><li>再び細胞をスピンし、1mlのPBS（再集計セルが100万/ mlの濃度を確認するために）で起動します。連でプレートそれぞれに50,000、40,000、30,000 20,000 10,000 5000 1000、および0細胞だけでなく、各ウェルに50μlの最終総容量をPBSを追加します。 </li></ol></li><li>ボトムは高いウェル（標準曲線上で50,000）をスケーリング、蛍光プレートリーダー（励起= 488nmで、放射= 528 nm）の上で培養プレートをお読みください。 organotypに付着何卵巣癌細胞を計算するために、標準曲線を使用して各ウェル（ 図4A-C）におけるIC文化。 </li></ol> 4.増殖アッセイ10 <ol><li>卵巣癌細胞を、0.5×gで3分間回転させることによって細胞をペレット化（工程2.5および上記2.6を参照）を回収した後、1％のFBS、1％MEMと1％FBS培地の適切な量（DMEMで細胞を希釈した後に4000細胞の濃度を達成するために、ビタミン[93ミリグラム/ L]、1％MEM非必須アミノ酸、[81.4ミリグラム/ L]、1％のペニシリンストレプトマイシン[ペニシリン - ストレプトマイシン、100 U / mlペニシリンおよび100μg/ mlストレプトマイシン]） / 150μL。 </li><li>使用済み培地を除去し、各ウェルに1％FBS培地中の癌細胞懸濁液の150μlを添加するHPMC / NOF器官培養物を96ウェルプレートを反転します。 72時間加湿環境で、5％CO 2中、37℃でプレートをインキュベートします。 </li><li>ボトムは、相対的な増殖を評価するために、一日一回（励起= 488nmで、= 528 nmの発光）蛍光プレートリーダー上で培養プレートを読みます細胞の。 48時間（ 図5A-C）でメディアを変え、96時間アッセイを続行します。 （プレートが望ましい反転）のメディアを変更する際の文化を乱さないように注意してください。 </li></ol> 5.浸潤アッセイ8 <ol><li> 3D培養をメッキする前に、24ウェル培養プレートインサート（8μmの孔径）に200μlのPBS中7.5μgのラット尾コラーゲンIを追加します。プレートをインキュベートするO / Nが、その後慎重にすぐにコラーゲン被覆インサート（上記のステップ2）にHPMC / NOFの器官培養液をメッキする前にピペットでPBSを削除してみましょう。 </li><li>ステップ3.1のように卵巣癌細胞を準備します。インサートの器官培養物に卵巣癌細胞をプレートに、慎重にインサートの上部から余分なメディアを削除するには、ピペットを使用しています。各ウェルに無血清培地中で卵巣癌細胞懸濁液100μlを加えます。 </li><li>で癌細胞を誘導するために十分に挿入下に完全成長培地750μlのを追加器官培養物にvasion。 24時間加湿環境で、5％CO 2中、37℃でプレートをインキュベートします。 注意：器官培養物が挿入を渡り、インサートの底面に残る侵入卵巣癌細胞を。 </li><li>空のウェルに挿入を移動した後、24時間後、トングと挿入を把握し、簡単に、PBSのビーカーでそれをすすいでください。 1分の合計のための綿棒の両側に各インサートの上部をスクラブ。すばやく各ウェル中の750μlの4％パラホルムアルデヒドを含むプレートにカバーを置きます。各インサートは750μlのPBSで満たされたウェルへの挿入を転送する前に、10分間パラホルムアルデヒド中で座ってできるようにします。 </li><li> 2.5倍の倍率で顕微鏡で浸潤した細胞（インサートの底部に接着固定）を表示します。ウェル全体が視野内にある場合、回避、10倍に倍率を調整し、5写真、ウェルの各象限における中央付近の1と1を取りますエッジに近すぎる画像を撮影します。各ウェルについての同じパターンに従ってください。 </li><li>そのプロトコルに従って、各ウェル内のフィールドごとに浸潤した細胞の平均数（ 図6A-C）を取得するには、各画像内のセルの数をカウントするために、製造元のプログラムを使用します。 </li></ol>

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<li>White, E. A., Kenny, H. A., Lengyel, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+modeling+of+ovarian+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Drug+Deliv.+Rev%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional modeling of ovarian cancer.</a> Adv. Drug Deliv. Rev. 79-80, 184-192 (2014).</li>
<li>Kenny, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+high+throughput+screening+using+a+primary+human+three-dimensional+organotypic+culture+predicts+in+vivo+efficacy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Comm%22%5BJournal%5D)">Quantitative high throughput screening using a primary human three-dimensional organotypic culture predicts in vivo efficacy.</a> Nature Comm. , (2015).</li>
<li>Sawada, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((c-Met+overexpression+is+a+prognostic+factor+in+ovarian+cancer+and+an+effective+target+for+inhibition+of+peritoneal+dissemination+and+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">c-Met overexpression is a prognostic factor in ovarian cancer and an effective target for inhibition of peritoneal dissemination and invasion.</a> Cancer Res. 67, 1670-1680 (2007).</li>
<li>Kenny, H. A., Lengyel, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MMP-2+functions+as+an+early+response+protein+in+ovarian+cancer+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+cycle%22%5BJournal%5D)">MMP-2 functions as an early response protein in ovarian cancer metastasis.</a> Cell cycle. 8, 683-688 (2009).</li>
<li>Sawada, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loss+of+E-cadherin+promotes+ovarian+cancer+metastasis+via+alpha+5-integrin%2C+which+is+a+therapeutic+target%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Loss of E-cadherin promotes ovarian cancer metastasis via alpha 5-integrin, which is a therapeutic target.</a> Cancer Res. 68, 2329-2339 (2008).</li>
<li>Mitra, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ligand-independent+activation+of+c-Met+by+fibronectin+and+%CE%B1%285%29%CE%B2%281%29-integrin+regulates+ovarian+cancer+invasion+and+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Ligand-independent activation of c-Met by fibronectin and α(5)β(1)-integrin regulates ovarian cancer invasion and metastasis.</a> Oncogene. 30, 1566-1576 (2011).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

腹膜微小環境の器官モデルは、卵巣癌の普及における微小環境の細胞と生来のコンポーネントの両方の個人や集団の機能（複数可）を評価するために設立されました。卵巣癌細胞の接着、増殖、および浸潤を調べるために、3次元器官型培養物をプレーティングし、カスタマイズするための特定のプロトコルが提供されます。初代ヒト大網中皮細胞及び線維芽細胞は、患者から単離し、正常な形態および患者の変化を維持するために初期の継代で使用しました。このモデルでは、通常の大網線維芽細胞とECM（一般的にコラーゲンタイプI）は、一次ヒト中皮細胞単層を積層しました。このモデルは組織学的には、腹膜ライニングを模倣し、私たちは再作成および卵巣癌細胞の接着、増殖、および浸潤8,27を含む卵巣癌転移における重要なイベントを調べることができます。 以前は、限定された3Dモデルを持っていますこの3D器官モデルは腹膜腔の中皮ライニングの建設を再現する最初のものですが、微小環境13,14,21-25と卵巣癌と ​​の相互作用を調査するために確立されて。人間の大網は、年齢や健康状態に変化患者から採取...

卵巣癌は最も致命的な婦人科悪性腫瘍です 1.患者の大多数は、がんが腹腔全体に広がった後に診断されます。がんが腹腔全体に拡がると、腫瘍縮小手術や化学療法はがんの再発や化学療法を防ぐのに十分な治療法ではないことが多く、5年生存率は30%未満になります。卵巣がんの転移は主に腹腔に限定され、胃がん、膵臓がん、結腸がんなど、他のいくつかの種類のがんが腹腔内の同じ解剖学的部位に転移します。一般に、卵巣がん細胞は、卵管または原発性卵巣腫瘍のin situがんから剥離し、単一細胞またはスフェロイドとして腹水中を移動し、大網、腸、および腹壁2の中皮が並ぶ表面に付着します。
腫瘍微小環境は、多くの癌3-6における疾患の進行と化学療法抵抗性において重要な役割を果たしています。腹腔は、中皮細胞単層が表面の大部分を覆う独特の微小環境です(図1A)7。中皮の内層は、低摩擦の表面を作り出すバリアとして機能し、がん細胞の接着から保護する傾向があります8。この中皮が裏打ちされた表面のすぐ下には、主に線維芽細胞と細胞外マトリックス(ECM)で作られた層があり、がん細胞の接着と浸潤を促進します8。卵巣がん細胞は、卵巣がん細胞の接着、浸潤、および転移を促進する中皮細胞内層の変化を誘発する因子を分泌します9,10。卵巣がん細胞は、インテグリンおよびCD44媒介メカニズムを介して中皮表面に付着します(図1B)11-16。
歴史的に、卵巣癌と微小環境との相互作用を調査するために、いくつかの3Dモデルが開発されてきました。最初のモデルのいくつかは、卵巣がん-ECMインターフェース17-21、卵巣がん-中皮細胞コミュニケーション13,14,21-24、またはその両方を研究しました25(私たちによってレビューされました26)。ニードバラ他卵巣癌細胞は、中皮細胞やプラスチック単独よりもECMへの接着が迅速かつ堅固であることを発見しました25。しかし、これらのモデルは組織学的に腹膜微小環境に似ていませんでした。そこで、卵巣がんの微小環境をより徹底的に再現するための3次元器官型モデルを確立しました。卵巣がんの腹膜播種における微小環境の役割とがんと腹膜細胞との相互作用をより深く理解するために、腹腔内層の3D器官型in vitro培養モデルを開発しました(図1Cの概略図)。提案されたモデルは、初代ヒト線維芽細胞とECMで構成され、初代ヒト中皮細胞の層で覆われています-各細胞タイプはヒト大網から単離されています。組織学的には、このモデルは正常な腹膜または大網の内層に似ており、腫瘍微小環境、がん細胞と正常組織との相互作用、およびがん細胞の接着、浸潤、および増殖のプロセスを研究できる表面を提供します8。

<table><tbody><tr><td><ストロング>1.初代細胞の単離と培養</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>SH3001304</td><td></td></tr><tr><td>片刃カミソリの刃</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>12-640</td><td></td></tr><tr><td>15 cm 培養皿</td><td>BD バイオサイエンス 353025</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ガラスフラスコ</td><td>?</td><td>?</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清(FBS)</td><td>Life Technologies</td><td>16000044_3616914956</td><td></td></tr><tr><td>DMEM with L-Glutamine</td><td>コーニング</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>MEMビタミン</td><td>コーニング</td><td>25-020-Cl</td><td></td></tr><tr><td>MEM 非必須アミノ酸</td><td>コーニング</td><td>25-025-CI</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>コーニング</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>シェーカー&nbsp;</td><td>Thermo-Fisher</td><td>MaxQ 4450</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>5702</td><td></td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>Thermo-Fisher</td><td>Forma Series II ウォータージャケット CO2 インキュベーター モデル 3100</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン EDTA、1x (0.25%)</td> <td>Corning</td><td>25-053-CI</td><td></td></tr><tr><td>ヒアルロニダーゼ</td><td>ワージントン 生化学</td><td>LS002592</td><td></td></tr><tr><td>T-75 フラスコ</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td>353136</tr><tr><td>T-175 フラスコ</td><td>BD Biosciences</td><td>353112</td><td></td></tr><tr><td>ピペットチップ</td><td>レイニン</td><td>P2、P10、P20、P200、P1000</td><td></td></tr><tr><td>ピペットチップ</td><td>コーニング</td><td>フィルターチップ P2、P10、P20、P200、P1000</td><td></td></tr><tr><td><ストロング>試薬名/機器名</ストロング></td><td><ストロング>会社名</スト</td>ロング<td><>ストロング>カタログ番号</ストロング></td><td>コメント/説明</td></tr><tr><td>2.プレーティング 3D 培養</ストロング></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>セル カウンター</td><td>Invitrogen</td><td>Countess</td><td></td></tr><tr><td>Countess Cell Counting, Chamber Slides</td><td>Invitrogen</td><td>C10313</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue Stain (0.4%)</td><td>Gibco</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Collagen Type I (Rat Tail)</td><td>BD Biosciences</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>96 well plate, clear bottom, black</td><td>BDバイオサイエンス</td><td>353219</td><td></td></tr><tr><td>試薬名/装置</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント/説明</td></tr><tr><td>3.接着アッセイ</強力></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>マルチチャンネルピペット</td><td>Eppendorf</td><td>Xplorer 300</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド溶液 PBS</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-281692</td><td></td></tr><tr><td>プレートリーダー</td><td>分子デバイス</td><td>Minimax</td><td></td></tr><tr><td>試薬名/機器名</td><td>会社名</td><td>カタログ番号</td><td>コメント/説明</td></tr><tr><td>5.インベージョンアッセイ</ストロング></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>細胞培養インサート(8um、24ウェル)</td><td>BD Biosciences</td><td>353097</td><td></td></tr><tr><td>綿棒</td><td>Qチップ</td><td>綿棒</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td>アクシオーバー 200m</td><td></td></tr><tr><td>セルプロファイラー</td><td>パブリックドメイン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>24ウェルプレート</td><td>BD Biosciences</td><td>353047</td><td></td></tr><tr><td>試薬/機器の名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>strongコメント/説明</td></tr><tr><td>6。抗体</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>抗インテグリン&アルファ;V&ベータ;3抗体、クローンLM609</td><td>EMD Millipore</td><td>MAB1976</td><td></td></tr><tr><td>Beta 1&nbsp;</td><td>Oncosynergy</td><td>OS2966</td><td></td></tr><tr><td>Alpha 5 [CD49e]</td><td>ID Pharmingen</td><td>555615</td><td></td></tr><tr><td>Beta 4 [CD104]</td><td>EMD Millipore</td><td>MAB 2058</td><td></td></tr></tbody></table>

ヒト腹腔器官培養における卵巣癌普及の初期段階のモデル化

Modeling the Early Steps of Ovarian Cancer Dissemination in an Organotypic Culture of the Human Peritoneal Cavity

卵巣癌の転移パターンは、他のほとんどの上皮性腫瘍のそれとは著しく異なります。なぜなら、それはめったに血を引かないためです。代わりに、原発腫瘍から剥離した卵巣がん細胞は、腹水によって腹腔内の転移部位に運ばれます。これらの部位、特に腹部腹膜と大網は、中皮が裏打ちされた表面で覆われた臓器です。卵巣がんの播種過程を調べるために、腹腔の内壁をin vitroで再構築する複雑な三次元培養系を組み立てました。初代ヒト線維芽細胞および中皮細胞をヒト大網から単離した。次に、線維芽細胞を細胞外マトリックスと混合し、初代ヒト中皮細胞の層で覆って、転移した卵巣癌細胞が遭遇する腹膜表面と軟膜表面を模倣しました。得られた器官型モデルは、図示されているように、がん細胞の接着、浸潤、増殖など、卵巣がん播種の初期段階を調べるために使用されます。このモデルは、早期卵巣がん播種における微小環境(細胞性および非細胞性)の役割を調査するための多くの研究で使用されています。また、ハイスループットスクリーニングにも成功裏に適応しており、卵巣がん転移の阻害剤の同定と試験に使用されています。

器官培養物を、最初にI型コラーゲンと初代ヒト線維芽細胞を混合した後、中皮細胞の5倍の数でこの文化を重ねることによって組み立てました。卵巣癌細胞の接着、浸潤または増殖を研究するために追加された前培養物を少なくとも18時間インキュベートしました。各アッセイは、複数を繰り返した（N = 5）及び浸潤アッセイ（N = 3）（N = 3~5）の異なる患者及び多数のウェルから得られた三次元培養を接着するための各条件で試験した（n = 5）を、増殖。 4時間（ 図4）の後に3次元器官培養物に付着した卵巣癌細胞は、72時間（6回HeyA8細胞倍加時間）（ 図5）の後に文化に増殖し、24時間（ 図6）の後に侵入しました。 HeyA8卵巣癌細胞の接着、増殖および浸潤は、インテグリン依存性（ 図4-6）でした。具体的には、RGDペプチド、ブロッキングantib5 -インテグリン、β1インテグリンとの αvβ3</su...

ここでは、卵巣癌細胞の接着、浸潤、増殖を調査するツールとして、初代ヒト中皮細胞と細胞外マトリックスで層状にされた線維芽細胞からなる腹腔の内層の3次元in vitroモデルを構築するためのプロトコルを提示します。

The pattern of ovarian cancer metastasis is markedly different from that of most other epithelial tumors, because it rarely spreads hematogenously. ...

この実験の全般的な目的は、腹腔内の微小環境を模倣した器官型モデルを作成し、卵巣がんの生物学的理解を深めることです。この手法は、がん細胞と微小環境の相互作用が疾患の病態形成にどのように寄与するか、また、これらの相互作用に対する潜在的な阻害剤をどのように検証できるかといった、卵巣がん分野における重要な疑問への回答に寄与します。本手法の主な利点は、腹腔表面を覆う中皮を形成する実際の人類一次細胞を、卵巣がん細胞の共培養に使用している点にあります。この手法は卵巣がんの知見を得るために有用ですが、胃がん、膵臓がん、大腸がんなど、腹腔内に播種する他の癌の研究にも適用可能です。外科的に採取したヒト大網検体を入手後、直ちに室温のPBSに浸します。浸漬から2時間以内に、大網を20 mLの新鮮なPBSを含む50 mLコニカルチューブに移します。一次ヒト中皮細胞（HPMC）および赤血球を含む残りのPBS洗浄液を新しい50 mLコニカルチューブに移し、遠心分離して細胞を回収します。次に、チューブの内容物を10 cmの滅菌培養皿に注ぎ、2本のメスを用いて組織を5 mm³の断片に細切にします。初代ヒト中皮細胞（HPMC）を単離するために、大網の断片を50 mLのコニカルチューブに移し、1分間待ちます。固形片が上部に浮上すると、HPMCは赤血球とともにチューブの底に沈殿します。ピペットを使用して、中皮細胞と赤血球を含むPBS洗浄液を、細胞ペレットが入ったチューブに移し、遠心分離して細胞を沈降させます。次に、大網に20 mLの新鮮なPBSを加え、HPMCと赤血球を含むPBSを回収し、この操作を最初の細胞ペレットへの回収と同様にさらに3回繰り返します。最終的な遠心分離後、細胞を15 mLの完全成長培地とともに75 cm²フラスコに播種します。大網サンプルからさらにHPMCを分離するために、残りの固形組織を20 mLのPBSに入れ、200 RPM、37 °Cで振盪します。10分後、固形組織がチューブの上部に浮き上がるまで、サンプルを1分間静置します。その後、先ほど示した方法で、チューブの底からHPMCとRBCを回収します。次に、この2回目の洗浄で得られた細胞を遠心分離で回収し、15 mLの完全成長培地と共に別の75 cm²フラスコに播種します。残りのHPMCを単離するため、今度はPBSと10 mLのtrypsin EDTAの混合液中で組織をさらに10分間振盪し、これらのHPMCおよびRBCを75 cm²フラスコに播種します。その後、培養物を37 °C、5% CO2の加湿環境下でインキュベートし、3日目と5日目に、使用済みの培地を除去せずに15 mLの新鮮な完全成長培地を添加します。HPMCは、その立方体状の形態と、cytokeratin 8およびvimentinの発現によって同定可能です。正常な

modeling-early-steps-ovarian-cancer-dissemination-an-organotypic

Research

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Medicine

医学

ここで説明した中皮クリアランスアッセイは、蛍光標識細胞とタイムラプスビデオ顕微鏡可視化と定量的に卵巣癌多細胞スフェロイドと中皮細胞単層の相互作用を測定するために利用しています。このアッセイは、卵巣癌転移の初期段階をモデル化します。...

in vitroで中皮クリアランスアッセイでそのモデルの卵巣がんの転移の初期段階を

我々は、確立するための方法論を記述する...

三次元異<em&gt; in vitroで</em卵巣がんの発生と進行中に間質相互作用の上皮&gt;モデリング

このビデオでは、腹腔の内壁のin vitro...

腹腔内層における卵巣癌転移のモデリング:腹膜内層のin vitro 3Dモデルを確立する方法

この動画では、GFP発現卵巣がん細胞を重ね合わせた生体外臓器培養を確立し、大網外植片内での卵巣がんのコロニー形成を研究します。このプロトコルは、転移を促進する乳白色の斑点として知られる大網内の免疫細胞構造を分析します。...

Otrial Cancer Cell Colonizationのモデリング:Murine Oothitum Explantsにおける蛍光標識卵巣癌細胞の乳白色スポットコロニー形成を確立するためのex vivo法

腹膜の中皮ライニングに卵巣癌細胞の浸潤は、時間とともに動的なプロセスである。実時間分析器を利用して、回転楕円体、中皮細胞の共培養モデルにおける卵巣癌細胞の浸潤能は、転移のプロセスを調節する因子への洞察を提供し、長期の期間にわたって定量化することができる。...

リアルタイムで中皮細胞の卵巣癌スフェロイドアタッチメントおよび浸潤の評価

私たちは、腹膜脂肪組織、特に大網の卵巣癌のコロニー形成を研究するために、in vivoおよびex...

生体内および生体外では腹膜脂肪にミルキースポット構造の卵巣がん転移性コロニー形成を研究するためのアプローチで

卵巣癌の腹膜播種の多段階プロセスを明確にするために、現在の研究では、これらの腫瘍細胞と同所接種を介して元の腫瘍の開発と腹膜転移のマウス実験モデルを提示します。...

オリジナル腫瘍の開発のマウス実験モデルと腹膜転移<em&gt;経由で</em卵巣癌細胞で&gt;同所接種

生理学的に関連するモデルにおける卵巣腫瘍の進行を研究するために、多細胞スフェロイドは、シミュレートされた流体の流れの下でのマイクロデバイスで培養しました。このダイナミックな3Dモデルは、卵巣癌転移が起こる細胞および機械部品を腹腔内環境をエミュレートします。...

ダイナミックな3D腹膜のマイクロデバイスに卵巣癌多細胞スフェロイドの挙動のモデル化

このプロトコルは癌の細胞大網の相互作用の三次元(3D) ex vivo...

ヒト大網を用いた卵巣癌腹膜転移の Ex vivo モデル

このプロトコルは、 in vitro および in vivoでの高悪性度漿液性卵巣癌(HGSOC)マウスモデルの開発について詳しく説明しています。マウス卵管オルガノイドの誘導から,ヒトHGSOC遺伝学を再現するための遺伝子組み換え,および腫瘍の in vivo...

高悪性度漿液性卵巣癌モデリングのための卵管上皮細胞からのマウス由来オルガノイド株の開発

学ぶ、ヒト原代間皮細胞と線維芽細胞を用いた3次元オルガノタイプ培養法により、卵巣がん細胞の接着・浸潤・増殖を解析する技術です。腹腔内微小環境を模倣したモデル構築により、がん微小環境相互作用の解明と治療標的の探索が可能になります。

ヒト腹腔器官培養における卵巣癌普及の初期段階のモデル化

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