Name: 光ファイバを用いて、液滴マイクロフルイディクスのための多色蛍光検出 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 21 s
Description: 学ぶ光ファイバーを用いた液滴マイクロフルイディクスの多色蛍光検出法。シンプルで低コストなシステムにより、スループットの高い生物学的スクリーニングや酵素の指向進化における希少表現型の同定を効率的に実現します。

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この作業は、DARPAの助成金番号84389.01.44908、NSF CAREER賞(DBI-1253293)、NIHの探索的/開発的研究助成金(CA195709)、NIHニューイノベーター賞(HD080351、DP2-AR068129-01)、およびUCSFリソース割り当てプログラムからのNew Directions助成金によって支援されました。

1. SU8マスター製作<ol><li>設計ソフトウェアを使用して、3層の製造のためのマイクロ流体構造を設計し、10μmの分解能で回路基板フィルム上のベンダーによって印刷されたデザインを持っています。デバイス設計の詳細は、添付文献6に記載されているチャネルの形状は、 図1に示されている。層は、各製造層8の機能を連結するために役立つ位置合わせマークを含むべきです。 </li><li>スピンコーター上の予め清浄3インチ径のシリコンウェハを置き、チャックに固定するために真空をオンにします。 80ミクロンの層の厚さを提供し、1750 rpmで、その後30秒間、500rpmで20秒間ウェハとスピンの中心にSU8-3050の1ミリリットルを適用します。 </li><li>ウェハを取り外し、30分間135℃のホットプレート上で焼きます。ウエハは、次のステップに進む前に室温まで冷却します。 </li><li>コリメートさ190メートル下の1 番目のレイヤーマスクに塗布されたウェハを公開W、365 nmのは、3分間のLED。露光後、次のステップに進む前に、室温まで冷却、1分間135℃のホットプレート上にウエハを配置します。 </li><li>スピンコーターにウェハを置き、チャックに固定するために真空をオンにします。 40ミクロ​​ンの追加の厚さを提供する層で、その結果、5,000 rpmで、その後30秒間、500rpmで20秒間ウェハとスピンの中心にSU8-3050の1ミリリットルを適用します。 </li><li>次のステップに移動する前に室温に冷却後、ウエハを取り出して、30分間、135℃のホットプレート上で焼きます。 </li><li> 1.3にパターニングジオメトリ上に2 番目のレイヤーマスクの位置を合わせ、3分間LED nmのコリメート190ミリワット、365に塗布されたウェハを公開します。露光の後、4分30秒135℃のホットプレート上の場所は、次のステップに進む前に、室温まで冷却。 </li><li>スピンコーターにウェハを置き、チャックに固定するために真空をオンにします。その後、500rpmで20秒間ウェハとスピンの中心に30をSU8-3050の1ミリリットルを適用します秒は1000rpmで、100μmの追加の厚さを提供する層が得られます。 </li><li>次のステップに移動する前に室温に冷却後、ウエハを取り出して、30分間、135℃のホットプレート上で焼きます。 </li><li> 1.3にパターニングジオメトリ上に第3層マスクの位置を合わせ、3分間LED nmのコリメート190ミリワット、365に塗布されたウェハを公開します。露光の後、9分間135℃のホットプレート上の場所は、次のステップに進む前に、室温まで冷却。 </li><li> 30分間のプロピレングリコールモノメチルエーテルアセテートの撹拌浴に浸漬して、マスクを作成します。 1分間135℃のホットプレート上でイソプロパノールとベークでウエハを洗浄します。ポリジメチルシロキサン（PDMS）成形用の100ミリメートルペトリ皿に開発されたマスターを配置します。 </li></ol> 2. PDMSデバイスの製造<ol><li>プラスチック製のカップに硬化剤5gでシリコーンベースの50グラムを組み合わせることにより、1 PDMS：10を準備します。攪拌棒を取り付けた回転工具で内容を混ぜます。 DEG30分間、デシケータ内部に混合物として、または全ての気泡が除去されるまで。 </li><li>マスターの上に3ミリメートルの厚さを与え、さらにガス抜きのために戻ってデシケーターに配置するためにPDMSを注ぎます。一旦全ての気泡が除去され、80分間80℃でデバイスを焼きます。 </li><li>パターン化された面を上にして清浄な表面上メスと場所を使用して、金型からデバイスをカットし、0.75ミリメートル生検パンチで流体入口と出口をパンチ。 120μmから220μmの背の高い形状は、デバイスの側からアクセス可能であるように、デバイスを切断しなければなりません。 </li><li>プラズマは、300 Wのプラズマクリーナーで20秒間1ミリバールのO 2プラズマで3インチのガラススライドにより予め洗浄2インチと共に、機能面を上にして、デバイスを扱います。スライドガラスのプラズマ処理面上にPDMSデバイスのパターン形成された側を配置することによってPDMSデバイスを結合。 80℃のオーブンにデバイスを配置し、40分間組み立てられた装置を焼きます。 </li><li>チャンネルをレンダリングフッ素化された表面処理液を用いてデバイスを洗い流すために、注射器を用いて、疎水性。 10分、溶媒を蒸発させるために直ちに80℃でデバイスを焼きます。 </li></ol>光学部品の調製<ol><li> 105μmのコア、125μmのクラッド、NA = 0.22の光ファイバの最後の5ミリメートルから絶縁体を除去することにより、レーザ励起光ファイバを準備します。 </li><li> 2 回目の同一の繊維3.1を繰り返すことにより、2 番目のカラーレーザー励起ファイバーを準備します。 </li><li> 200μmのコア、225μmのクラッド、NA = 0.39の光ファイバ用の3.1を繰り返すことにより、蛍光信号を収集するための光ファイバを準備します。 </li><li>先端が平らな面で終わっていない場合は、ファイバスクライブと端を再切断する - 全ての繊維の先端を点検します。 </li><li> 50 mWのにレーザーファイバーカプラを接続し、405 nmのレーザー、レーザーに105ミクロンコアファイバの1を添付してください。レーザパワーのセンサーでストリッピング終了を指示メータは、レーザパワーを最大化するためにレーザカプラの微調整を使用します。 </li><li> 50ミリワット、473 nmのレーザーのために3.5を繰り返します。 </li><li>レーザー光を遮断し、放出される蛍光を送信するために、レンズチューブを使用して、PMT上446/510/581/703 nmのクワッドバンドパスフィルタをマウントします。光はPMTに到達する前にフィルタを通過するように、ファイバカプラを取り付けます。 </li><li> 3.3から3.7に組み立てられたユニットに光ファイバを接続します。 </li></ol> 4.オフライン混合乳剤の生成<ol><li> 60ミクロン×60ミクロンのオリフィスを有するフロー焦点マイクロ流体dropmaker装置を得ます。 </li><li> 2％のイオン性フッ素系界面活性剤9とHFE 7500油と1ミリリットル注射器を埋めます。 </li><li> PBS中で1ミリリットルフルオレセインの次の組み合わせでシリンジ（FITC）およびデキストランコンジュゲートの青色色素（CB）のシリーズを埋める：1 nMのFITC / 10 nMのCB、10 nMのFITC / 10 nMのCB、1 nMのFITC / 100 nMでCB、および10nMのFITC / 100 nmのCB。 </li><li>反転マイクロ​​のステージにdropmakerデバイスをマウント対処とシリンジポンプに水と油の注射器。カップルPE-2のチューブを使用して、デバイスへの注射器。 </li><li>油のための500μL/ hrであり、水溶液のための250μL/時でシリンジポンプを実行して、4.3からソリューションを含む80ミクロン液滴の混合物を作成します。水性試料の種類ごとに、交差汚染を除去するために、新鮮なdropmakerデバイスを使用します。空のシリンジに各色素の組み合わせからエマルジョンの〜200μLを収集します。 </li><li> 4滴型は単一収集シリンジに収集された後、繰り返し注射器を回転させることによってエマルションを混合します。 </li><li>繰り返し水溶液はPBS中0.1、1、10、及び100nMのFITCを含有する4.2〜4.6ステップ。 </li></ol> 5.光ファイバの挿入<ol><li> &lt;100マイクロ秒のシャッタースピードの可能なデジタルカメラと接続された倒立顕微鏡のステージ上のステップ2で作製したマイクロ流体チップを置きます。 </li><li>側から慎重に作業し、inse主流路にを通して穿刺しないように注意しながら、最も遠い上流120μmのチャネルに473 nmのレーザーに結合された繊維を室温。 </li><li> 300ミクロンの繊維間隔を提供し、最下流120μmでハイサイドチャネルに405 nmのレーザーに結合された光ファイバを挿入します。 </li><li> 2レーザー励起繊維に通常の220μmの背の高いチャネルにPMT結合繊維を挿入します。 </li></ol>混合エマルジョンの6蛍光検出<ol><li> PE-2のチューブで検出装置のスペーサーオイル入口に​​2％のイオン性フッ素系界面活性剤とHFE 7500を充填した5ミリリットル注射器を取り付けてください。 </li><li> PE-2のチューブを使用してデバイスの液滴再注入入口に垂直に配向されたシリンジポンプやカップルでの混合FITC / CBエマルジョンを含む注射器をマウントします。廃棄物容器にデバイスの出口からPE-2チューブの長さを接続します。 </li><li>総理の両方まで、千マイクロリットル/時間でポンプのそれぞれを実行して、デバイス石油や液滴は、定期的にデバイスに結合し、下流に流れるされるように見られています。 </li><li>スペーサーオイルが検出領域を通って移動する液滴との間に有意な間隔を提供し、6000μL/ hrで、100μlの/時の液滴で実行されるように流量を調整します。 </li><li> 、レーザーをオンにするデータ収集プログラムを起動し、ベースラインのノイズ・フロアを100倍以上ある信号を提供するためにPMTのゲインを調整します。二重ピークのすべてが単一の、直線的にスケーリングされたtimetraceにはっきりと見えるようにレーザーパワーを調整します。 </li><li>少なくとも20kHzでPMT電圧timetraceの60秒を取得します。 MATLABなどのコンピューティングのプログラムにデータをインポートし、カスタム・コンピューティング・プログラム・スクリプトを使用して記録ダブレットのピークの高さを測定します。 注：これは、補足情報として提供されます。 </li><li>繰り返しは、405 nmレーザーをオフにし、4.7で作成されたFITC-のみの混合エマルジョンを使用して6.2から6.7を繰り返します。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

光ファイバ検出は、流体チャネルに対する光ファイバの位置合わせを必要とします。我々のデバイスは、多層フォトリソグラフィーで作製ガイドチャネルを利用しているので、互いに対するマスクの配置が非常に重要です。ファイバガイドチャネルは、流体チャネルに近づきすぎている場合、流体の漏れの可能性があります。ガイドチャネルが離れすぎて配置又はずれている場合、検出ファイバーによって集め蛍光シグナルが著しく減少することができます。適切な位置合わせは、フォトパターニング時に同じ場所に配置されるマスクに例えば同心円として、アライメントマークを設計することによって支援することができます。さらに、デバイスへの光ファイバーの手動挿入が使用できなく、それらをレンダリング、デバイス内の繊維の先端を破壊する可能性を秘めた繊細なプロセスです。 PDMSデバイスに結合したスライドガラスに対して繊維を拘束し、顕微鏡で観察しながら、ゆっくりと繊維を挿入するSUCCするキーですessfulファイバ挿入。予め形成されたエマルジョンの最後、再注入は、取り扱いを最小限に抑えて発生する必要があります。エマルションが作られ、空のシリンジに直接堆積された後、それは液滴再注入のために使用されるまで...

液滴マイクロフルイディクスは、キャリアオイル1に懸濁水性液滴の多数の実験を区画化することにより、高スループット生物学のためのプラットフォームを提供します。液滴は、単一細胞分析2、デジタルポリメラーゼ連鎖反応（PCR）3のように変化させるような用途に使用され、進化4酵素されています。彼らの明るい信号と高速時間応答がキロヘルツのレートでサブナノリットルの液滴の体積を検出すると互換性があるとして蛍光アッセイは、液滴マイクロ流体の検出の標準モードです。多くのアプリケーションは同時に、少なくとも2色のための蛍光検出を必要とします。例えば、私たちの研究室では、一般的に、アッセイの結果を一つの検出チャネルを使用した実験をソートPCR活性化液滴を行い、アッセイ陰性滴可算5にするために、二次背景染料を使用しています。 液滴マイクロ流体のための典型的な検出局はBAです落射蛍光顕微鏡上のsed、およびサンプルに集中するために、顕微鏡に自由空間レーザからの励起光を導入するために、複雑な光の操作スキームを必要とします。蛍光を液滴から出射された後、各検出チャンネル一光電子増倍管（PMT）は、波長帯を中心に利用するように、放出された蛍光を光がフィルタリングされます。落射蛍光顕微鏡ベースの光検出システムは、それらの費用、複雑さに参入障壁を提供し、メンテナンスを必要としました。光ファイバは、ファイバが手でマイクロ流体デバイスに挿入することができるので、ミラーベースの光経路の必要性を除去し、簡略化された堅牢な検出スキームを構築する手段を提供し、光路は、光ファイバコネクタを使ってインターフェースされることを可能にします。 本稿では、光学ファイバのアレイを利用することにより、多色蛍光検出を実行するためのコンパクトなモジュラー方式の組み立てと検証を記述しますダ単一の光検出器6。光ファイバは、個々のレーザに結合され、規則的な空間的オフセットでL字型の流路に垂直に挿入されます。蛍光収集ファイバは、励起領域に平行に配向され、単一のPMTに接続されています。液滴が異なる時間にレーザービームを通過するため、PMTによって記録されたデータは一時的にそのユーザが液滴がそれぞれ別個のレーザ光により励起された後に放出される蛍光とを区別することを可能にするオフセットを示しています。この時間的なシフトは、ダイクロイックミラーとバンドパスフィルタのシリーズを使用して、別個のPMTへの光を分離する必要がなくなります。検出器の有効性を検証するために、我々は、異なる色や濃度の染料をカプセル化液滴集団で蛍光を定量します。システムの感度は、単一色の蛍光検出のために調査、および0.1 nMの、200倍感度インプレッションまでの濃度で液滴を検出する能力を示してい文献7に報告され、最近の光ファイバベースの手法と比較してovement。

<table><tbody><tr><td>Photomasks</td><td>CadArt Servcies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3インチ シリコン ウェーハ、P タイプ、バージン テスト グレード</td><td>大学ウェーハ</td><td>447</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 3035</td><td>Microchem</td><td>Y311074</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 2050</td><td>Microchem</td><td>Y111072</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 シリコーン エラストマー キット</td><td>Krayden</td><td>4019862</td><td></td></tr><tr><td>1 ml シリンジ</td><td>BD</td><td></td><td></td>309628</tr><tr><td>10 mlシリンジ</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>27 gaugue 針</td><td>BD</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>PE 2ポリエチレンチューブ</td><td>Scientific Commodities, Inc.</td><td>B31695-PE/2</td><td></td></tr><tr><td>Novec 7500</td><td>Fisher Scientific</td><td>98-0212-2928-5</td><td>一般に HFE 7500</td></tr><tr><td>イオン性クライトックス界面活性剤</td><td></td><td></td>として知られている <td>ref #10</td></tr><tr><td>Dextran-conjugated cascade blue dye</td><td>Life Technologies</td><td>D-1976</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescein sodium salt</td><td>Sigma</td><td>28803</td><td></td></tr><tr><td>Quad bandpass filter</td><td>Semrock</td><td>FF01-446/510/581/703-25</td><td></td></tr><tr><td>PMT</td><td>Thorlabs</td><td>PMM02</td><td></td></tr><tr><td>ファイバーポート</td><td>Thorlabs</td><td>PAFA-X-4-A</td><td></td></tr><tr><td>レンズチューブ</td><td>Thorlabs</td><td>SM1L05</td><td></td></tr><tr><td>パッチケーブル 200 &#956;mコア / 225 &#956;1つのストリップエンドと1つのFC / PCコネクタ</td><td>Thorlabs</td><td>カスタム</td><td></td>パッチケーブルを備えたmクラッディング光ファイバー105</tr><tr><td>&#956;Mコア / 125 &#956;m被覆加工された光ファイバ、ストリップされた端部とFC/PCコネクタ1つ付き</td><td>Thorlabs</td><td>Custom</td><td></td></tr><tr><td>125 &#956;mファイバーストリッピングツール</td><td>Thorlabs</td><td>T08S13</td><td></td></tr><tr><td>225 &#956;mファイバーストリッピングツール</td>ThorlabsT10S13<td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>レーザーファイバー</td><td>アダプターOptoEngine</td><td>FC / PC</td>アダプター405nmCW<td></td></tr><tr><td>レーザー50&nbsp;mW</td><td>OptoEngine</td><td>MDL-III-405</td><td>CNIレーザー用ディストリビューター</td></tr><tr><td>473 nm CWレーザー 50&nbsp;mW</td><td>オプトエンジン</td><td>MLL-FN-473-50</td><td></td></tr></tbody></table>

光ファイバを用いて、液滴マイクロフルイディクスのための多色蛍光検出

Multicolor Fluorescence Detection for Droplet Microfluidics Using Optical Fibers

蛍光アッセイは、その明るいシグナルと速い時間応答のために、液滴マイクロ流体工学で使用される最も一般的な読み出しです。マルチプレックスアッセイ、酵素進化、分子生物学的強化細胞選別などのアプリケーションでは、2色以上の蛍光を検出する必要があります。自由空間レーザーを落射蛍光顕微鏡に結合する標準的なマルチカラー検出システムは、かさばり、高価で、メンテナンスが困難です。この論文では、光ファイバーに結合されたレーザーを使用してマイクロ流体チャネルの離散領域を励起することにより、マルチカラー検出を実行するスキームについて説明します。放出された光は、単一の光検出器に結合された光ファイバーによって収集されます。励起は異なる空間位置で発生するため、放出された光の同一性を時間シフトとしてエンコードでき、より複雑な光フィルタリングスキームが不要になります。このシステムは、4つのユニークな色素の組み合わせを含む液滴集団の検出や、フルオレセインのサブナノモル濃度の検出に使用されています。

光ファイバの挿入を可能にするPDMSデバイスの製造は、種々の高さ（ 図1）のチャネルを作成するために、多段階のフォトリソグラフィ手順を必要とします。まず、SU-8の80μmの背の高い層は、シリコンウェハ上にスピンコートし、流体ハンドリングジオメトリを作成するために、マスクを用いてパターニングされます。次に、SU-8の追加の40μmの層がウェハ上にスピンコートし、120μmの背の高いレーザファイバ挿入チャネルを形成する機能を作成するために第2のマスクを用いてパターニングされます。最後に、100ミクロン以上のSU-8は、ウェハ上にスピンコートし、220ミクロントール検出ファイバ挿入路を与えるようにパターニングされます。マスターが開発され、今度はスライドガラスに接着されたPDMSデバイスを成形するために使用されます。最終的な製造は、デバイスの上部にパンチ穴と120ミクロンとの側面を介してアクセスさ220μmの背の高い光ファイバ・チャネルを介してアクセス、80μmの背の高い流動形状が含まれていますデバイス。 <p class="jove_...

液滴マイクロ流体における多色蛍光検出には、通常、かさばる複雑な落射蛍光顕微鏡ベースの検出システムが含まれます。ここでは、単一の光検出器によって収集されたマルチカラーデータを時間的にエンコードするために、光ファイバーのアレイを利用するコンパクトでモジュール化されたマルチカラー検出スキームについて説明します。

Fluorescence assays are the most common readouts used in droplet microfluidics due to their bright signals and fast time response. Applications such as ...

この手順の全体的な目的は、光ファイバーを用いた液滴マイクロフルイディクスの蛍光検出の簡便な応用例を示すことです。この手法は、希少な表現型の特定や酵素の指向性進化など、ハイスループットなバイオスクリーニングにおける重要な課題の解決に役立ちます。本技術の主な利点は、液滴マイクロフルイディクスにおいて、簡便かつ低コストに蛍光検出を適用できることです。まず、事前に洗浄した直径3インチのシリコンウェーハをスピンコーターの真空チャックに設置します。次に、ウェーハの中心にSU-8 3050を1 mL滴下し、ウェーハを回転させて厚さ80 µmのフォトレジスト層を形成します。コーティングしたウェーハをスピンコーターから取り出し、135 °Cに予熱したホットプレートの上に置きます。30分後、ウェハーを取り出し、室温まで冷却させます。次に、ウェハーを平らな面に置き、第1層のマスクをウェハー上に合わせます。コリメートされた190 milliwatt、365 nanometerのLEDを用いて、ウェハーを3分間露光します。露光後、ウェハーを135 °Cのホットプレートに1分間置き、その後、室温まで冷却させます。冷却後、ウェハーをスピンコーターに戻し、チャックに固定します。ウェハーの中央にさらに1 mLのSU-8 3050を塗布し、500 r.p.m.で20秒間スピンさせます。続いて、5,000 r.p.m.で30秒間遠心分離します。次に、ホットプレート上でウェハーを焼き付けます。室温まで冷却させた後、再びマスクアライメント面に配置します。解剖顕微鏡を使用して、第2層マスクをウェハー上のパターン形成されたアライメントマークに合わせて手動で調整します。適切に調整されたら、前回と同じ条件で、コーティング済みウェハーを4分30秒間露光します。露光後、ウェハーを135 °Cのホットプレート上に1分間置き、その後ウェハーを冷却してスピンコーターに再度固定します。SU-8 3050を1 mL、3回目にウェハーに塗布し、スピンコートしてフォトレジストをさらに100 µm追加します。ウェハーを取り出し、135 °Cに設定したホットプレートで30分間ベークします。その後、室温まで冷却し、アライメント面に配置します。3層目のマスクを前工程の形状に合わせて配置し、前述の条件で9分間、コーティングしたウェハーを露光します。露光後、ウェハーを135 °Cのホットプレート上に1分間置き、その後室温まで冷却します。冷却後、ウェハーを攪拌した現像液に30分間浸し、マスクを現像します。最後に、ウェハーをイソプロパノールで洗浄し、ホットプレートを用いて135 °Cで1分間、最後にもう一度ベイクします。現像したマスターは、成形まで100 mmのペトリ皿に保管します。プラスチックカップに50 gのシリコンベースと5 gの硬化

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

この記事では、我々は、自動走査型共焦点顕微鏡を用いて表面に固定化された個々のDNA分子からのトレースをFRETの取得方法について説明します。...

表面固定化生体分子の単一分子蛍光測定のための自動化システム

lenslessオンチップの蛍光顕微鏡のプラットフォームは、復号アルゴリズムに基づいて圧縮サンプリングを使用して&lt;4μmの分解能を持つなどの超広角視野上の画像蛍光灯のオブジェクトを、&gt;...

チップ上Lensless蛍光顕微鏡

彼らはkHzのレートで安価にピコリットル、自己区分血管を生成することができるので、液滴ベースのマイクロ流体プラットフォームは、ハイスループットの実験のための有望な候補である。...

マイクロ流体液滴のプラットフォームのための蛍光検出法

このビデオでは、蛍光揺らぎ分光法を使用して、細胞間接触における細胞表面タンパク質間の相互作用を検出する方法を示します。蛍光タンパク質で標識された目的の膜貫通接着受容体を発現し、スペクトル的に分離された2つの蛍光標識を持つ2つの異なる細胞集団を混合することにより、異なる色の蛍光を持つ2つの隣接する細胞の受容体間の相互作用が、蛍光強度の変動の相互相関を介して評価されます。...

細胞接触部でのタンパク質相互作用を研究するための蛍光変動分光法

蛍光コアマイクロキャビティセンサは、シリカマイクロキャピラリーのチャンネルに高屈折率の量子ドットのコーティングを採用しています。チャネルの中程度を分析するために使用することができるマイクロキャビティ蛍光スペクトルにおける毛管チャネル原因シフトに圧送流体の屈折率の変化。...

Refractometricセンシング用蛍光コアマイクロキャビティの合成と操作

私たちは、細胞内の複数の種類の蛍光標識分子を同時にイメージングするための蛍光光活性化局在化顕微鏡(FPALM)の使用を実証します。記載されている技術は、単一細胞内で数十ナノメートルの精度で、数千から数十万の個々の蛍光標識タンパク質の局在をもたらします。...

蛍光光活性化局在顕微鏡による生体構造の同時マルチカラーイメージング

この作品は、空気圧、液滴操作プラットフォーム上で多塩基多型を検出するためのシンプルで視覚的な方法を提示します。提案手法では、多塩基多型の液滴操作および検出を含む全体の実験は、高度な機器の助けを借りずに、23℃付近で行うことができます。...

空気圧液滴操作プラットフォームのマルチ塩基多型の視覚比色検出

生きた細胞の細胞内小器官のマルチカラー単一膜蛋白質のローカリゼーションのためのプロトコルを紹介します。蛍光物質を添付、自己ラベリング タンパク質を使用します。~ 18 の精度と同じ細胞小器官の異なる膜コンパートメントに位置するタンパク質をローカライズできる...

単一の膜タンパク質生きた哺乳類細胞の細胞内小器官のマルチカラー ローカリゼーション顕微鏡

従来のエピ蛍光イメージング、分子検出に基づく超解像イメージング、およびマルチカラー単一分子検出を結合、統合された顕微鏡システムの構築の実践的なガイドの紹介など単一分子蛍光共鳴エネルギー移動イメージング、コスト効率の高い方法の 1...

1 蛍光顕微鏡を用いた複数の画像モードを実施

マイクロ流体チャンバーを介して研究される視覚的な単一分子生化学は、ガラスバレル、気密シリンジ、チューブとフローセルへのチューブの安定した接続、およびシリンジとチューブの間に切り替えバルブを配置することによる気泡の除去を使用して大幅に促進されます。このプロトコルは、DNAトランザクションと分子間相互作用の視覚化を可能にするデュアルオプティカルトラップを記述します。...

1分子研究のためのデュアル光ピンセットとマイクロ流体工学の使用

このプロトコルは、個々のヒト末梢血単核細胞のサイトカイン分泌動態を定量的に測定するための高度なマイクロ流体プラットフォームを説明しています。このプラットフォームは、例としてリポ多糖で刺激された個々の細胞ごとに最大3つのサイトカイン(IL-6、TNFα、およびIL-1β)を並行して測定します。...

個々の多機能細胞の同時および逐次サイトカイン分泌を解明するためのマイクロ流体アプローチ 

学ぶ光ファイバーを用いた液滴マイクロフルイディクスの多色蛍光検出法。シンプルで低コストなシステムにより、スループットの高い生物学的スクリーニングや酵素の指向進化における希少表現型の同定を効率的に実現します。

光ファイバを用いて、液滴マイクロフルイディクスのための多色蛍光検出

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