Name: 腫瘍微小環境におけるリアルタイム多細胞ダイナミクスの拡張タイムラプス生体内イメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 24 s
Description: 学ぼう、マルチフォトン顕微鏡を用いた腫瘍微小環境のリアルタイムイメージング法。単一細胞解像度で血管透過性と多細胞相互作用の動態を可視化し、がん研究における細胞動態の理解を深める。

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この研究は、受賞番号（ASH、W81XWH-13-1-0010）、NIH CA100324、PPG CA100324、および統合イメージングプログラムの下で国防総省の乳がん研究プログラムによってサポートされていました。

記載されているすべての手順は、医療制度動物実験委員会のアルバート・アインシュタイン大学の事前承認を含む、脊椎動物の使用のためのガイドラインと規則に従って行われなければなりません。 1.生成蛍光標識腫瘍および腫瘍関連マクロファージ<ol><li>マウス乳腺腫瘍ウイルスの長い末端反復は、蛍光レポーターでトランスジェニックマウスを用いてポリオーマミドルT抗原（MMTV-PyMT）を駆動する自発的な、土着、遺伝子操作されたマウス乳腺癌モデル[ すなわち、強化緑色蛍光を交配することによって蛍光標識された腫瘍細胞を生成しますタンパク質（EGFP）、強化シアン蛍光タンパク質（ECFP）またはDendra2] 8,9。 </li><li>骨髄性細胞とマクロファージ特異的蛍光の記者と遺伝子操作されたマウスモデルを交配することにより、蛍光標識された腫瘍細胞とPyMT動物における蛍光ラベルマクロファージ[ すなわち、MacGrEEN 15またはMacBlueマウスCSF1R -GAL4VP16 / UAS-ECFP 16]。 </li><li>あるいは、蛍光標識されたPyMT腫瘍細胞（同系）、ヒト乳癌細胞株または初代ヒト患者由来の腫瘍（異種移植片）11,17の同所移植を介して蛍光標識された腫瘍を発生させます。 <ol><li>インプラント蛍光蛍光標識された腫瘍細胞および骨髄細胞13を有する動物を生成するために、蛍光タンパク質で標識した骨髄細胞を同系マウスにPyMT腫瘍細胞を標識しました。 </li></ol></li><li>開始2時間前に蛍光ラベルのマクロファージへのヒト細胞株または患者由来の原発性腫瘍の異種移植腫瘍と重症複合免疫不全（SCID）マウスに10 mgの静脈内（iv）の尾静脈による/ kgの蛍光70 kDaのデキストランの100μLを注入します生体内イメージングの。 </li></ol> 2.顕微鏡のセットアップおよびイメージングの準備注：この手順では、セットアップについて説明します多光子顕微鏡8での生体内イメージングのため。 <ol><li>二光子レーザーおよび検出器を含むすべての顕微鏡とレーザーのコンポーネントをオンにします。 </li><li>ステージを事前に温めるために30℃に加熱ボックスをオンにします。このステップでは、動物の生理的な温度を維持するために重要です。 </li><li>倒立顕微鏡で使用するための顕微鏡ステージ上のカスタムメイドステージインサートを配置します。カスタムインサートは、イメージングのための中央に貫通孔直径「ステージ挿入空間にと1と合うように機械加工厚のアルミニウム「1/8のシートです。 <ol><li> 70％エタノールと空気乾燥して顕微鏡ステージとステージインサートを拭いてください。 </li><li>カバーガラスと光学的に接触を維持するために、20X、1.05 NA顕微鏡対物レンズ上の水の大きな低下を置きます。 </li><li>顕微鏡ステージインサート上のイメージングポートを介してカバーガラス（＃1.5厚さ）を配置します。ラボテープで所定の位置に固定します。 </li><li> 2センチメートル×2センチの穴をパンチ穴パンチを使用します柔軟性のあるゴム製のパッドとカスタムステージインサートの穴に合うパッドの穴と顕微鏡ステージ上のラバーパッドを配置します。 </li></ol></li></ol>イメージング中に注射用尾静脈カテーテルおよび試薬の調製<ol><li>ポリエチレン（PE）管の長さ30cmをカット。 </li><li>それはプラスチック製フィッティングのオフに破断するまで鉗子を使用して、前後に31 G針の金属針を動かします。 </li><li>鉗子を使用して、PEチューブ内に切り離され、針の平滑端を挿入します。 </li><li> PEチューブのもう一方の端に31 G針を挿入します。 </li><li>滅菌リン酸緩衝生理食塩水（PBS）で1ccの注射器を記入し、31 G針に挿入し、PBSでチューブと針のうち、すべての空気をフラッシュします。 PBSは、水和および血液浸透圧9,18を維持するために使用され、ただし、等張食塩水を使用してもよいです。 </li><li> 3ミリグラム/ 155 kDaのデキストランテトラメチルkgの（TMR200μlで1ccの注射器を埋めます）または血管標識のための量子ドット。 </li><li>このような氷の上1ccの注射器と場所における血管内皮増殖因子A（VEGFA 165）の165アミノ酸アイソフォームなどの任意の他の注射のタンパク質を準備します。 0.05 mg / mlでの濃度を0.2mg / kgのVEGFA 165 19を注入します 。 </li></ol>留置尾静脈カテーテルの挿入4 <ol><li>キャリアガスとしてO 2、5％イソフルランで誘導チャンバーを用いて麻酔下で動物を置きます。 </li><li>それは完全に麻酔され、つま先のピンチに応答しない一度手術用プラットフォームにマウスを転送します。 </li><li>オープンイソフルラン麻酔ライン手術用プラットフォームに、誘導室に麻酔ラインを閉鎖し、動物の鼻の上にノーズコーンを配置します。 2.5％に5％からイソフルランを減らします。 </li><li>麻酔中の乾燥を防ぐために、マウスの眼に眼軟膏を適用します。 </li><li>加熱ランプの下で動物を加熱循環が深い麻酔で遅くなるように尾部に循環を高めるために、さらに2分間。 </li><li> 70％エタノールでマウス尾静脈を滅菌。 </li><li>動物の外側尾静脈に3章で構成されたカテーテルから31 G針の先端を挿入し2-3 mm単位で針を押し込みます。 </li><li>尾静脈内に配置されたカテーテルを確保し、血を見るために、注射器を後方に引いて。 </li><li>尾の長さに沿って静脈に代わり平行に針を保持するために、針の上に配置され、ラボのテープの長さ1cmを使用してください。 </li></ol> 5.皮弁外科的手順は、乳腺腫瘍を公開します<ol><li>外科的なプ​​ラットフォーム上の動物で、腫瘍および70％エタノールで腹面を綿棒。注：記載されているように、この手順は、完全に無菌的に行われません。感染が交絡因子になることができます長いイメージングセッションでは、適切な無菌技術を使用することをお勧めします。 </li><li> steriを使用しましたル鉗子、腹側皮膚や滅菌ハサミで持ち上げは、長さが腹側正中約1cmに沿って皮下切開を行います。切開中に腹膜を穿刺しないでください。 </li><li>静かに乳腺腫瘍を露出するように離れて腹膜から乳腺腫瘍を取り付ける結合組織を切断します。 </li><li>腫瘍脈管構造の完全性を維持し、出血を最小限に抑えながら、はさみ及び鉗子を使用して、穏やかに腫瘍の露出面から筋膜および脂肪を除去して切り取ります。このステップでは、腫瘍の腫瘍構造と血管系の供給を維持する上で重要です。 </li></ol>顕微鏡6.動物の準備<ol><li>イメージングのための顕微鏡の対物レンズを介してステージインサート上にカバースリップ上に配置された露出した腫瘍で予熱した撮影台に動物を転送します。針を除去しないように動物で穏やかに尾静脈カテーテルを転送するように注意してください。 </li><li>目を配置します3％のイソフルランに麻酔セットを維持するために、動物の鼻の上に電子麻酔ノーズコーン。 </li><li>腫瘍はゴムパッドの穴に置かれ、カバーガラスと接触するように動物を配置します。 </li><li>穏やかな場所に腫瘍を保持し、画像収集中に移動を低減するために、ラボテープで顕微鏡ステージにそれらを修正するために、2つのゴム製のパッドを使用してください。 </li><li>水和組織を維持し、カバーガラスと光学的接触を維持するためにPBSでゴム製パッドから室を埋めます。 </li><li>パルスオキシメータプローブを用いて動物のバイタルサインの監視を開始します。動物の大腿部にクリップセンサーを取り付けます。あるいは首にフィットするように構成されたカラーを使用することができます。 </li><li> 30°C 20を維持するために、動物を介して加熱ボックスを配置します。 </li><li>ゆっくり麻酔を維持し、血流を維持するために、0.5-1％のイソフルランのレベルを低下させます。 </li></ol> 7.画像取得とFluorescの注射ENT染料および注射用タンパク質<ol><li>腫瘍の表面上の蛍光腫瘍細胞の顕微鏡接眼レンズの焦点を使用。 </li><li>血管を流れるとの領域を見つけることによって、関心領域を選択します。血管を流れると関心領域の選択は、腫瘍の脈管構造を評価するために重要です。 </li><li>関心領域は、選択された後、多撮影モードに顕微鏡を切り替えます。 </li><li> Zシリーズの上限と下限を設定します。希望の開始位置に対物レンズを移動するフォーカス調整を使用し、Z位置「トップ」ボタンをクリックしてのzシリーズの上限を設定します。第二高調波発生（SHG）チャネルにおける腫瘍の表面でコラーゲン線維ネットワークを可視化しない細胞だけコラーゲン線維が表示されていないときに観察することにより、Zシリーズの上限を決定します。 <ol><li> （typica所望のイメージング深さに対物レンズを移動させることにより、Zシリーズの下限値をLLY 50から150ミクロン）とZ位置「下」ボタンをクリックします。 </li><li>ステップサイズフィールドに目的の値を入力して、ステップサイズを設定します。解像度と取得時間のための考慮事項に基づいて、ステップサイズを決定します（通常は2ミクロンはそうでない場合は、高解像度の3D再構成し、5μmのために使用されます）。 </li></ol></li><li>タイムラプスパネルに切り替えて、タイムラプスフィールドに希望の経過時間を入力することにより、タイムラプス間隔を設定します。最適な時間分解能のために連続撮影のために0秒に時間間隔を設定します。注：長いタイムラプスイメージングのためには、客観的な浸漬液を補充する買収の間に10秒の時間間隔を設定することをお勧めします。 </li><li>イメージングのためのパラメータが決定されると、ゆっくりと155 kDaのデキストランTMRを注入します。 <ol><li>尾静脈カテーテルをPBSで注射器を取り外し、李に気泡を導入しないように注意しながら155 kDaのデキストラン-TMRを含む注射器と交換ね。 </li><li>ゆっくりと200μlの最大容量で、マウスに155 kDaのデキストラン-TMRを注入し、PBSを含む注射器で注射器を交換してください。重要なステップ：ゆっくり注入を行い、静脈の外のソリューションを避けるための予防措置をとってください。 </li></ol></li><li>それらを押下するZ-スタックとタイムラプスボタンをクリックし、録音ボタンをクリックして、Zスタックタイムラプスイメージングの取得を開始します。 </li><li>他の蛍光デキストラン、 すなわち 、10kDaのデキストラン-フルオレセインイソチオシアネート（FITC）、またはタンパク質、 すなわち 、VEGFA 165は 、予め用意されている場合、0 =で分開始のための画像取得を開始した後にそれらを注入します。 <ol><li>尾静脈カテーテルをPBSで注射器を外し、ラインに気泡を導入しないように注意しながら10 kDaのデキストランFITCまたはVEGFA 165を含むシリンジと交換してください。 </li><li>ゆっくり尾静脈カテーテルを介してマウスに注射剤を注入しますおよびPBSを含む注射器と注射器を交換してください。 </li></ol></li><li>すべての30-45分は、ゆっくりと動物の水和を維持するために、PBSまたは生理食塩水を50μlを注入します。 </li></ol> 8.安楽死<ol><li>画像取得の終了時に、動物を安楽死させます。 <ol><li> 5パーセントにイソフルランを増やします。 </li><li>それは呼吸と段階から動物を除去するために停止した後、30秒まで5％イソフルランの下で動物を保​​管してください。 </li><li>完全な安楽死を確実にするために頸椎脱臼を実行します。 </li></ol></li></ol> 9.画像処理<ol><li>各時点での各チャンネルのために16ビットのTIFFファイルでの画像を取得し、順次保存します。 </li><li> ImageJの9で確立された方法を用いて、スペクトルの重複（ すなわち、GFPおよびCFP）、XYドリフトの除去とタイムラプス配列からの映画の世代の分離を行います。高解像度画像13の3次元表面再構成を実行します。 </li></ol>

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著者らは、開示することは何もありません。

腫瘍微小環境で自然に発生する細胞間相互作用は、腫瘍細胞の運動性と血管内に変化をもたらすことができます。生きた腫瘍組織の高解像度の生体内イメージングは、非常に過渡10,13,24であることができる多細胞ダイナミクスの可視化を可能にします。離散時間点で取得ビボアッセイまたはタイムラプス画像内のエンドポイントは、腫瘍微小環境内のプロセスの分子メカニズムに関する重要な情報を提供することができます。生体内イメージング研究は、血管新生、腫瘍細胞の遊走および薬物治療25-30に対する応答に新たな洞察を生成し、数日間にわたって生じる腫瘍微小環境内のプロセスを研究するために使用されています。しかし、これらのアッセイは、7,31を研究されているプロセスの時間スケールによる腫瘍微小環境における過渡事象の動態をキャプチャしない場合があります。一定のプロセスから複数の過渡事象を区別することは重要な広告です生体顕微鏡の見晴らしの良いです。 このプロトコルに記載生体イメージング技術は、複数の細胞系統および構造の...

プライマリ乳腺腫瘍からの腫瘍細胞の播種は、マクロファージおよび内皮細胞を含む間質細胞だけでなく、腫瘍細胞を含むが、ホストすることが示されています。さらに、腫瘍血管系は、透過性の増大1で異常です。したがって、腫瘍細胞、マクロファージ及び内皮細胞が原発腫瘍微小環境における血管透過性と腫瘍細胞の血管内を媒介することがどのように相互作用するかを決定することは理解転移のために重要です。血管透過性の動態を理解すること、腫瘍微小環境における腫瘍細胞の血管内および多細胞相互作用の根底にあるシグナル伝達機構は、抗癌治療の開発および管理に重要な情報を提供することができます。 インビボでの腫瘍血管透過性を研究するための主要な手段は、エバンスブルー2、高分子量デキストラン（155 kDaの）などの血管外色素の測定されています色素の注入後の一定の時点での3およびフルオロフォアまたは（アルブミンを含む）放射性トレーサー共役タンパク質4。顕微鏡の進歩は、動物モデルおよび蛍光色素は生体顕微鏡5を介して細胞プロセスと生きた動物における血管透過性の可視化を有効にしています。 いくつかの時点にわたる静止画像の取得、または短い時間経過配列とライブ動物イメージングは、腫瘍微小環境6,7の動的なイベントを完全に理解することができません。確かに、24時間にわたって静止画像の取得は、腫瘍血管が漏出性である、しかし、血管透過性のダイナミクスは6を観察されなかったことを実証しました。このように、12時間まで延長し、連続タイムラプスイメージングは​​、腫瘍の微小環境における動的なイベントの動態をキャプチャします。 このプロトコルは、拡張タイムラプスmultiphotの使用が記載されています生体顕微鏡で腫瘍微小環境における動的な多細胞事象を研究します。腫瘍微小環境中の複数の細胞型は、注射可能な色素または蛍光タンパク質を発現するトランスジェニック動物を用いて標識されます。血管色素またはタンパク質は、撮影開始後に注入することができる尾静脈カテーテルを使用して、腫瘍微小環境における多イベントの運動データを取得します。ライブセルイメージングのために乳腺腫瘍は、皮膚弁の外科的準備を介して公開されます。画像は複数の光電子増倍管（PMT）検出器8を備えた多光子顕微鏡を用いて12時間まで取得します。適切なフィルタを使用することにより、減算アルゴリズムは、腫瘍の微小環境を同時に9の5の蛍光信号を取得するために4 PMT検出器を可能にします。高解像度の多光子生体顕微鏡検査は、より良好につながる、腫瘍微小環境において腫瘍 - 間質相互作用の単細胞解像度画像を捕捉するU血管透過性および腫瘍細胞の血管内10-13のnderstanding。具体的には、拡張された生体内イメージングは13（転移、TMEM 14の腫瘍微小環境として定義される）、腫瘍細胞、マクロファージおよび内皮細胞間の相互作用の部位で選択的に発生する高度に局在化、過渡血管透過性のイベントを明らかにしました。さらに、腫瘍細胞の血管内のみTMEMで発生し、空間的及び時間的に血管透過性13と相関しています。これらのイベントのダイナミクスの単一細胞の解像度は、腫瘍微小環境内の蛍光標識された細胞の拡張タイムラプス多光子顕微鏡を使用することによって可能になりました。

<table><tbody><tr><td>155 kDa デキストラン-テトラメチルローダミン イソチオシアネート</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T1287</td> は <td>1x PBS で 20 mg/ml で再構成</td></tr><tr><td>70 kDa デキストラン-Texas Red</td><td>Life Technologies</td><td>D-1830</td> は <td>1x PBS で 10 mg/ml で再構成</td></tr><tr><td>10 kDa デキストラン-フルオレセインイソチオシアネート</td><td>Sigma Aldrich</td><td>FD10S 1x</td><td>PBS で 20 mg/ml で再構成</td></tr><tr><td>Qdot 705 ITK アミノ (PEG) 量子ドット</td><td>ライフ</td><td></td><td>Dilute 25 &#956 Q21561MP技術175 &#956のl。注射用1x PBSのl</td></tr><tr><td>MMTV-PyMTマウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td>2374</td><td></td></tr><tr><td>Csf1r-ECFPマウス (Csf1r-Gal4/VP16,UAS-ECFP)</td><td>ジャクソン研究所</td><td>26051</td><td></td></tr><tr><td>Csf1r-EGFPマウス</td><td>ジャクソン研究所</td><td>18549</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Life Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoethesia (イソフルラン)</td><td>Henry Schein Animal Health</td><td>50033</td><td>250 ml</td></tr><tr><td>Oxygen</td><td>AirTech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 ml シリンジ、ツベルクリン スリップ チップ</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>30 G x 1 (0.3 mm x 25 &nbsp;mm) ニードル</td><td>BD</td><td>305128</td><td></td></tr><tr><td>ポリエチレンマイクロ医療用チューブ&nbsp;</td><td>サイエンティフィック・コモディティーズ社</td><td>BB31695-PE/1</td><td>0.28 mm I.D. x 0.64 mm O.D.</td></tr><tr><td>顕微鏡カバーガラス</td><td>コーニング</td><td>2980-225</td><td>厚さ1.5、22 x 50&nbsp;mm</td></tr><tr><td>PhysioSuite MouseSTAT パルスオキシメータ、ソフトウェア、センサー</td><td>ケント科学</td><td></td><td></td></tr><tr><td>研究所 テープ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>159015R</td><td></td></tr><tr><td>軟質ゴムパッド</td><td>マクマスターカー</td><td>8514K62</td><td>超軟質ポリウレタンフィルム、3/16インチ厚さ、12 "x 12"、40 OOデュロメータ、プレーンバック</td></tr><tr><td>硬質ゴムパッド</td><td>McMaster-Carr</td><td>8568K615</td>高強度<td>ネオプレンゴムシート1/4 "厚さ、12 "x 12"、50&nbsp;デュロメータ</td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td></td><td>顕微鏡は、オリンパスIX-71スタンドをベースに、20X 1.05NAの対物レンズを使用したカスタムメイドの2レーザー多光子顕微鏡です。</td></tr><tr><td>7パンチセット</td><td>McMaster-Carr</td><td>3429A12</td><td>1/4 "から1"穴径、ハンマー駆動穴パンチ用</td></tr></tbody></table>

腫瘍微小環境におけるリアルタイム多細胞ダイナミクスの拡張タイムラプス生体内イメージング

Extended Time-lapse Intravital Imaging of Real-time Multicellular Dynamics in the Tumor Microenvironment

腫瘍微小環境では、宿主間質細胞が腫瘍細胞と相互作用して、腫瘍の進行、血管新生、腫瘍細胞の播種、転移を促進します。腫瘍微小環境における多細胞相互作用は、指向性腫瘍細胞の運動性や血管透過性などの一過性の事象を引き起こす可能性があります。 腫瘍の血管透過性の定量化では、血管色素の血管外漏出を測定するためにエンドポイント実験が頻繁に使用されてきました。しかし、多細胞相互作用と血管透過性の一時的な性質のため、これらの動的事象の速度論は識別できません。細胞や血管系を注射用色素や蛍光タンパク質で標識することにより、高解像度のタイムラプス生体内顕微鏡法により、腫瘍微小環境における一過性の事象を直接、リアルタイムで可視化することが可能になりました。 ここでは、多光子顕微鏡を使用して、腫瘍微小環境の多細胞動態を直接視覚化するために、生きたマウスで拡張生体内イメージングを行う方法について説明します。 この方法では、細胞標識戦略、乳房皮膚フラップの外科的調製、尾静脈カテーテルによる注射用色素またはタンパク質の投与、およびタイムラプス画像の取得について詳しく説明します。この方法から得られるタイムラプス配列は、腫瘍微小環境における運動性および血管透過性の細胞イベントの動態の可視化および定量化を容易にする。

拡張タイムラプス生体顕微鏡は、腫瘍の微小環境における多細胞プロセスの単一細胞分解能イメージングを可能にします。蛍光標識腫瘍細胞、マクロファージ、血管領域、及び第二高調波発生信号を使用してコラーゲン繊維ネットワークを可視化することにより、腫瘍微小環境内の複数の区画を同時に撮像中に追跡されます。 Dendra2（ 図1A）で標識された乳腺腫瘍細胞を、MMTV-PyMT-Dendra2マウスにおいて行われたような蛍光タンパク質で標識された腫瘍細胞は、トランスジェニックマウスで生成することができます。 ECFPで標識されたマクロファージを持ってCSF1R -GAL4VP16 / UAS-ECFPのマウスを用いたこれらのトランスジェニックマウスを、交雑することによって、腫瘍細胞とマクロファージの両方がMMTV-PyMTマウスでラベル付けされています。腫瘍細胞およびマクロファージの二重標識方式で2つのセルタイプの直接的な相互作用をリアルタイムで可視化することができる（ 図1A）。また、GFPを形質導...

このプロトコルは、単一細胞の解像度で、生体内で 、リアルタイムで多細胞相互作用の延長タイムラプスイメージングを実行するための多光子顕微鏡の使用を記載しています。

In the tumor microenvironment, host stromal cells interact with tumor cells to promote tumor progression, angiogenesis, tumor cell dissemination and ...

この手順の全体的な目的は、高解像度の生体内多光子顕微鏡を用いて、腫瘍微小環境内の動的なイベントを可視化することです。この手法は、血管透過性や多細胞間相互作用にどのような動的イベントが関与しているかなど、腫瘍微小環境に関する重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、腫瘍微小環境におけるイベントのキネティクスを観察および測定できることです。手順を開始する前に、2光子レーザーおよび検出器を含む、すべての顕微鏡およびレーザーコンポーネントの電源を入れます。また、ステージを予熱するため、ヒーティングボックスを30 °Cに設定します。顕微鏡ステージとステージインサートを70% ethanolで拭き取ります。ステージが乾燥している状態で、カバーガラスとの光学的な接触を維持するために、25 x 1.05 NAの顕微鏡対物レンズに水の一滴を大きく滴下し、インサートイメージングポートの上に厚さ1.5のカバーガラスを配置します。次に、ポリエチレンチューブを30 centimeterの長さに切断します。カバーガラスの上にラバーパッドを置きます。ピンセットを使用して、31ゲージの針をプラスチック製継手から切り離し、針ハブの鈍端をチューブに挿入します。PEチューブのもう一方の端に31ゲージの針を挿入し、取り付けます。次に、1 ccシリンジに滅菌PBSを満たし、そのシリンジを31ゲージの針に取り付けます。PBSを使用して、チューブと針からすべての空気を押し出します。次に、1 ccシリンジ1本に200 µLの適切な血管ラベルを、もう1本のシリンジに適切な注入用タンパク質を充填します。手術を開始する前に、足指へのピンチ刺激に対する反応がないことで適切な麻酔状態であることを確認し、麻酔下にあるマウスに眼軟膏を塗布します。次に、動物を加熱ランプの下の手術台に置き、尾の血行を促進させます。2分後、尾を70% ethanolで滅菌し、31ゲージのカテーテルの先端を外側尾静脈に2〜3 mm挿入します。その後、1 cmのラボテープをカテーテルに貼り、針が尾の走行に沿って静脈と平行に保持されるようにします。カテーテルを固定した後、腹側および腫瘍表面を70% ethanolでスワブします。次に、腹部の皮膚をかき上げ、滅菌剪刀を用いて腹側正中線に沿って約1 cmの皮下切開を行い、腹膜を穿刺しないよう注意します。乳腺および腫瘍を腹膜から切り離すように結合組織を慎重に切断し、腫瘍を露出させます。次に、鋏とピンセットを用いて、腫瘍の露出面から筋膜と脂肪を慎重に取り除きます。腫瘍が露出したら、マウスをあらかじめ温めておいたイメージングステージに移します。ラボテープを使用してカバーガラスを固定し、顕微鏡対物レンズ上のカバースリップを覆っているラバーパッドの穴に腫瘍を配置します。動物を定位置に配置した後、組織の保湿を維持し、カバーガラスとの光学的な接触を保つため、ラバーパッドチャンバーにPBSを満たします。動物のバイタルサインをモニタリングするため、パルスオキシメータープローブのカラーセンサーを首に装着し、ヒートボックスを動物の上に設置します。次に、顕微鏡のIPを使用して、腫瘍表面の蛍光腫瘍細胞および血流のある血管が存在する領域に焦点を合わせます。関心領域を選択した後、顕微鏡をマルチフォトンイメージングモードに切り替え、フォーカス調整器を使用して対物レンズを目的の開始位置まで移動させます。次に、「Z position top」ボタンをクリックしてzシリーズの上限を設定し、第二高調波発生（SHG）チャンネルで腫瘍表面のコラーゲン繊維ネットワークを可視化します。その後、対物レンズを目的のイメージング深さまで移動させ、「z position bottom」ボタンをクリックしてzシリーズの下限を設定します。次に、ステップサイズのフィールドに希望の値を入力します。その後、「Time Lapse」パネルに切り替え、適切なタイムラプス時間を入力してください。イメージングパラメータが決定したら、カテーテルに取り付けられたシリンジを血管標識染料のシリンジに交換し、染料溶液が静脈に入っていることを確認しながら、最大 200 µL の染料溶液をゆっくりと投与します。注入後、PBSシリンジをカテーテルに戻し、zステップタイムラプスイメージングを開始します。すべての画像が得られたら、ライン内に気泡が入らないように注意しながら、PBSシリンジを注入用タンパク質を含むシリンジに交換します。その後、タンパク質懸濁液をマウスにゆっくりと注入し、シリンジをPBSを含むシリンジに交換します。マクロファージは、食細胞であるマクロファージ内に蓄積する蛍光標識された70 kilodaltonおよびデキストランを用いて追跡することが可能です。腫瘍細胞とマクロファージの両方を二重標識することで、これら2種類の細胞の直接的な相互作用をリアルタイムで可視化できます。また、腫瘍の血管透過性の変化を可視化するために、量子ドットを用いて血管腔を標識することも可能です。これらは、動脈間隙を容易に拡散しない十分に大きなサイズであるためです。連続的な高解像度イメージングにより、血管透過性の事象を捉え、デキストランの血管外漏出および消失のキネティクスを定量化することが可能になります。この例の視野では、血管外のTMRシグナルによって示されるように、血管外漏出のピークが29分から34分の間に観察されます。血管透過性を誘導するために追加の血管染料またはタンパク質を注入することで、血管透過性を制御するシグナル伝達事象に関する知見を得ることができます。実際に、注入後の数秒以内に、10 kilodaltonsのdextran FITCが血管外に漏出するのが観察される一方で、155 kilodaltonのdextran TMRは血管内にとどまります。この手法を習得すれば、適切に実施することで1時間で完了させることが可能です。この手順を行う際は、腫瘍の表面を傷つけないように結合組織を慎重に除去し、腫瘍表面を常に湿潤状態に保つことが重要です。この細胞ダイナミクスの手順に従うことで、腫瘍細胞の遊走や血管内浸潤といった現象を可視化し、腫瘍細胞の遊走方向や浸潤に関するさらなる疑問を解明することができます。このビデオを視聴することで、生体多光子顕微鏡を用いて腫瘍微小環境におけるダイナミックな細胞イベントを可視化する方法について、十分に理解できるはずです。

extended-time-lapse-intravital-imaging-real-time-multicellular

Research

JoVE Journal

Medicine

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乳腺腫瘍微小環境の生体内イメージングのためのラベルフリーセグメンテーションアプローチ

学ぼう、マルチフォトン顕微鏡を用いた腫瘍微小環境のリアルタイムイメージング法。単一細胞解像度で血管透過性と多細胞相互作用の動態を可視化し、がん研究における細胞動態の理解を深める。

腫瘍微小環境におけるリアルタイム多細胞ダイナミクスの拡張タイムラプス生体内イメージング

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