Name: 分化運命の空間組織を探るためのヒト多能性幹細胞のステンシルマイクロパターニング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 7 s
Description: 学ぶステンシルマイクロパターニング法を用いて、ヒト多能性幹細胞の分化運命を空間的に制御する手法。この簡便で頑健な技術は、組織パターニング研究において細胞接着パターンを精密に設計する新たな可能性を開きます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この作品は、付与（R-397-000-192-133）を起動し、ETPLギャップ・ファンド（R-397-000-198-592）NUSによってサポートされています。 GSはNUSの研究学者です。著者らは、細胞の微細化の彼女の技術サポートのために博士Jiangwa興に感謝したいと思います。

注：このプロトコルは、PDMSステンシルを使用してのhESCラインのレーザー切断および微細、H9によって千μmのパターンとPDMSステンシルの製造を説明しています。 1.設計とマイクロパターニングのためのPDMSステンシルの作製<ol><li>所望の形状や大きさ（ 例えば 、1000μmで丸）およびコンピュータ支援設計ソフトウェア10を使用して、ステンシルガスケットの貫通穴を有するステンシルシートを設計します。 </li><li>レーザーカット、それぞれ120から150μmの厚さ2mmのポリジメチルシロキサン（PDMS）シート上にステンシルシートとガスケットをCO 2レーザーカッター10を使用して。 </li><li>微細用PDMSステンシルを得るために3-4時間、60℃で液状の未硬化PDMSとベークを使用して、PDMSステンシルシートでPDMSガスケットを接着。 </li><li>使用前にオーブンで30分間、乾燥、120℃でオートクレーブ処理することによりPDMSステンシルを滅菌します。 </li></ol> 2.ヒトES細胞の主ナンス<ol><li>培養1×のhESC修飾基底膜マトリックス上で無フィーダー維持培地中でhESC株は、37℃で細胞培養プレートをコーティングし、5％CO 2。 </li><li>パッセージヒトES細胞を、彼らはディスパーゼ処理した37℃で3分間のインキュベーションにより約70％のコンフルエントであり、機械的に100から200μmの塊にhESCコロニーを解離。 6分割比：1での基底膜マトリックスでコーティングした組織培養ポリスチレン上で増殖エリア9.6 1cm 2当たり30〜50塊の密度でヒトES細胞の塊をプレート。 </li></ol>ヒト胚性幹細胞の3ステンシルマイクロパターニング<ol><li> 前の細胞パターニングへの準備 <ol><li>ペトリ皿に超純水で700μlの70％の分析グレードのエタノールを分配し、上部にステンシルを配置し、60 mmのペトリ皿上にPDMSステンシルを密封します。 </li><li>トン一晩せるためにバイオセーフティキャビネット内のペトリ皿を置きます彼は乾燥エタノール。 </li><li>全く気泡がステンシルは、ペトリ皿との良好なシールを形成することを確実にするために、ステンシルの下に存在していないか確認してください。これは、ECMコーティング液の漏れを防止します。それは細胞播種のための準備ができるまで、無菌条件下でのペトリ皿や店舗を封印。 </li><li>分析証明書に従ってhESCの修飾基底膜マトリックスのアリコートを準備します。ダルベッコ改変イーグル培地25mlに希釈した場合、各アリコート利回り1×hESCの修飾基底膜マトリックス溶液いることを確認してください：栄養混合物F-12（DMEM / F12）メーカーの製品シートによると。 </li><li> 1.5×のhESC修飾基底膜マトリックス溶液を作るためにDMEM / F12 16.7 mlのへのhESC修飾基底膜マトリックスの1つのアリコートを添加することにより、ECMの塗布液を調製。ゲル化を防止するために氷の上のすべてのECMコーティング液を保管してください。 </li><li> 10μMのROCK阻害剤（Y27632）でのhESCの維持培地を補います。 </li></ol></li><li><strong&gt; ステンシル基板上のECMコーティング <ol><li> 90秒間100 2 WOプラズマでペトリ皿を扱います。無菌性を確保するために、唯一の前のプラズマ処理をプラズマ室内ペトリ皿のカバーを開いて、すぐに処理が完了した後、ペトリ皿をバックカバー。これは、表面の濡れを促進し、ECMコーティング溶液の添加の間に貫通孔微細に気泡の形成を防止します。 </li><li>全体のステンシルをカバーする1.5倍のhESC修飾基底膜マトリックス溶液の450μlのを追加します。乾燥から溶液を防止し、使用前に37℃で5時間インキュベートし、例えば、パラフィルムのように、自己密封可能なフィルムをペトリ皿を密封します。 </li></ol></li><li> ステンシル基板上にヒトES細胞を播種 <ol><li>丸みを帯びた、しっかりpackeの典型的なヒトES細胞の形態の損失を示す分化した細胞領域を識別するために、6ウェルプレート中でhESCコロニーを調べ（ 例えば、損失D上皮形態、顕著な核小体を有する高核/細胞質比）。真空吸引器を使用して差別化領域を削除します。 </li><li>ウェル当たり2ミリリットルのDMEM / F12で二回洗浄します。 </li><li> 6ウェルプレートのウェルあたり、などのAccutaseなどの消化酵素の1ミリリットルを加え、8分間37℃でインキュベートします。基板から全てのコロニーを分離するために静かにプレートをタップします。 </li><li>消化酵素の1ミリリットル当たりDMEM / F12の少なくとも4ミリリットルで各ウェルを洗浄し、15ミリリットルコニカルチューブに細胞懸濁液を収集します。 </li><li>室温で3分間、200×gで細胞懸濁液を遠心します。 </li><li>吸引して上清を除去し、細胞を再懸濁するためにROCK阻害剤（ROCKI）を補充したhESC維持培地400μlのを追加します。単一細胞に塊を壊すために静かに上下に3回細胞懸濁液をピペットで。 </li><li>単一細胞懸濁液をよく混合し、DMEM / F12（1：20希釈）190μlの中に細胞サンプルを10μlを希釈。 hemocytomeを使用してくださいターストック細胞懸濁液中の細胞密度を決定します。 </li><li>与えられたステンシルのために必要な細胞播種密度を計算します。 注：例では、実験的に、単一の細胞のコンフルエントな単層を得るために、細胞播種密度が約4,444細胞/ mm 2で決定しました。したがって、450ミリメートル2の面積と400μlと播種量とのステンシルは2百万個の細胞/400μlの濃度になるように細胞懸濁液が必要になります。 </li><li> ROCKIを補充したhESC培養培地で（ステップ3.3.8を参照してください。注）必要な播種密度に株式細胞懸濁液を希釈します。 </li><li>各ステンシルへの細胞の必要な数を含有する細胞懸濁液の指定されたボリュームを追加し、ペトリ皿を残す細胞が沈降することを可能にするために室温で5分間フード内で平静。 </li><li>インキュベーターにペトリ皿を移し、細胞付着を可能にするために1時間インキュベートします。中にペトリ皿のレベルを維持するために注意してください細胞はステンシルで単層として残るように処理を移します。 </li></ol></li><li> パターン化されていない基板のステンシルの除去とパッシベーション <ol><li>細胞が適切に下にある基板上に付着しているかどうかを確認するために顕微鏡下でペトリ皿を調べます。 </li><li>ステンシルから細胞懸濁液を離れて吸引します。 </li><li>ステンシルの周囲にDMEM / F12中の0.5％の細胞培養適合性の非イオン性界面活性剤を2ml /ディッシュを加えます。 </li><li>静かにステンシルを剥離し、オートクレーブ処理ピンセットを使用してください。ステンシルは、乾燥から細胞を防ぐために剥離される非イオン性界面活性剤溶液を周囲に渦。視覚的にペトリ皿にマイクロパターン細胞を観察します。 </li><li> 37℃で10分間、0.5％の非イオン性界面活性剤、DMEM / F12溶液中の微細細胞をインキュベートします。 </li><li>吸引離れて非イオン性界面活性剤、DMEM / F12溶液。 2ミリリットル/ DMEM / F12の皿で3回洗浄します。 </li><li>ヒトES細胞の2ミリリットル/皿を追加します。維持培地は、ROCKIを補充し、37℃で一晩インキュベートします。 </li><li>一晩インキュベートした後、吸引のhESCの維持培地は、ROCKIを補充したDMEM / F12で一回洗浄し、100ng / mlのアクチビン、25 ngの/ mlのBMP4及び10ng / mLのFGF2で補充した分化培地2ml /ディッシュを添加することによりmesoendoderm分化を誘導します。 </li><li>位相コントラストイメージングを用いて微細パターンを評価し、以前に8説明したように、各パターンの平均短尾（T）の強度プロファイルを計算します。 </li></ol></li></ol>

<ol><li>Graf, T., Stadtfeld, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneity+of+embryonic+and+adult+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Heterogeneity of embryonic and adult stem cells.</a> Cell Stem Cell. 3 (5), 480-483 (2008).</li>
<li>Nishikawa, S., Goldstein, R. A., Nierras, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+promise+of+human+induced+pluripotent+stem+cells+for+research+and+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The promise of human induced pluripotent stem cells for research and therapy.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (9), 725-729 (2008).</li>
<li>Guilak, F., Cohen, D. M., Estes, B. T., Gimble, J. M., Liedtke, W., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+stem+cell+fate+by+physical+interactions+with+the+extracellular+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Control of stem cell fate by physical interactions with the extracellular matrix.</a> Cell Stem Cell. 5 (1), 17-26 (2009).</li>
<li>Dalby, M. J., Gadegaard, N., Oreffo, R. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Harnessing+nanotopography+and+integrin-matrix+interactions+to+influence+stem+cell+fate%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Mater%22%5BJournal%5D)">Harnessing nanotopography and integrin-matrix interactions to influence stem cell fate.</a> Nat Mater. 13 (6), 558-569 (2014).</li>
<li>Joddar, B., Ito, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+niche+substrates+for+embryonic+and+induced+pluripotent+stem+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Artificial niche substrates for embryonic and induced pluripotent stem cell cultures.</a> J Biotechnol. 168 (2), 218-228 (2013).</li>
<li>Warmflash, A., Sorre, B., Etoc, F., Siggia, E. D., Brivanlou, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+to+recapitulate+early+embryonic+spatial+patterning+in+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A method to recapitulate early embryonic spatial patterning in human embryonic stem cells.</a> Nat Methods. 11 (8), 847-854 (2014).</li>
<li>Peerani, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Niche-mediated+control+of+human+embryonic+stem+cell+self-renewal+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Niche-mediated control of human embryonic stem cell self-renewal and differentiation.</a> EMBO J. 26 (22), 4744-4755 (2007).</li>
<li>Lee, L. H., Peerani, R., Ungrin, M., Joshi, C., Kumacheva, E., Zandstra, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+of+human+embryonic+stem+cells+dissects+the+mesoderm+and+endoderm+lineages%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Micropatterning of human embryonic stem cells dissects the mesoderm and endoderm lineages.</a> Stem Cell Res. 2 (2), 155-162 (2009).</li>
<li>Hwang, Y. S., Chung, B. G., Ortmann, D., Hattori, N., Moeller, H. C., Khademhosseini, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microwell-mediated+control+of+embryoid+body+size+regulates+embryonic+stem+cell+fate+via+differential+expression+of+WNT5a+and+WNT11%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Microwell-mediated control of embryoid body size regulates embryonic stem cell fate via differential expression of WNT5a and WNT11.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (40), 16978-16983 (2009).</li>
<li>Toh, Y. C., Xing, J., Yu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+integrin+and+E-cadherin-mediated+adhesions+to+spatially+control+heterogeneity+in+human+pluripotent+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Modulation of integrin and E-cadherin-mediated adhesions to spatially control heterogeneity in human pluripotent stem cell differentiation.</a> Biomaterials. 50 (0), 87-97 (2015).</li>
<li>Xing, J., Toh, Y. C., Xu, S., Yu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+human+teratogen+detection+by+geometrically+confined+cell+differentiation+and+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">A method for human teratogen detection by geometrically confined cell differentiation and migration.</a> Sci Rep. 5, 10038(2015).</li>
<li>Falconnet, D., Csucs, G., Grandin, H. M., Textor, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+engineering+approaches+to+micropattern+surfaces+for+cell-based+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Surface engineering approaches to micropattern surfaces for cell-based assays.</a> Biomaterials. 27 (16), 3044-3063 (2006).</li>
<li>Bauwens, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+human+embryonic+stem+cell+colony+and+aggregate+size+heterogeneity+influences+differentiation+trajectories%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Control of human embryonic stem cell colony and aggregate size heterogeneity influences differentiation trajectories.</a> Stem Cells. 26 (9), 2300-2310 (2008).</li>
<li>Khademhosseini, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Co-culture+of+human+embryonic+stem+cells+with+murine+embryonic+fibroblasts+on+microwell-patterned+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Co-culture of human embryonic stem cells with murine embryonic fibroblasts on microwell-patterned substrates.</a> Biomaterials. 27 (36), 5968-5977 (2006).</li>
<li>Mohr, J. C., de Pablo, J. J., Palecek, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3-D+microwell+culture+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">3-D microwell culture of human embryonic stem cells.</a> Biomaterials. 27 (36), 6032-6042 (2006).</li>
<li>Yao, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hepatic+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells+as+microscaled+multilayered+colonies+leading+to+enhanced+homogeneity+and+maturation%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Hepatic differentiation of human embryonic stem cells as microscaled multilayered colonies leading to enhanced homogeneity and maturation.</a> Small. 10 (21), 4311-4323 (2014).</li>
<li>Mei, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combinatorial+development+of+biomaterials+for+clonal+growth+of+human+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Mater%22%5BJournal%5D)">Combinatorial development of biomaterials for clonal growth of human pluripotent stem cells.</a> Nat Mater. 9 (9), 768-778 (2010).</li>
<li>Melkoumian, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+peptide-acrylate+surfaces+for+long-term+self-renewal+and+cardiomyocyte+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Synthetic peptide-acrylate surfaces for long-term self-renewal and cardiomyocyte differentiation of human embryonic stem cells.</a> Nat Biotechnol. 28 (6), 606-610 (2010).</li>
<li>Evans, N. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate+stiffness+affects+early+differentiation+events+in+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Cell+Mater%22%5BJournal%5D)">Substrate stiffness affects early differentiation events in embryonic stem cells.</a> Eur Cell Mater. 18, 1-13 (2009).</li>
<li>Carter, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haptotactic+islands%3A+a+method+of+confining+single+cells+to+study+individual+cell+reactions+and+clone+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Haptotactic islands: a method of confining single cells to study individual cell reactions and clone formation.</a> Exp Cell Res. 48 (1), 189-193 (1967).</li>
<li>Jimbo, Y., Robinson, H. P., Kawana, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+measurement+of+intracellular+calcium+and+electrical+activity+from+patterned+neural+networks+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Simultaneous measurement of intracellular calcium and electrical activity from patterned neural networks in culture.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 40 (8), 804-810 (1993).</li>
<li>Wright, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reusable%2C+reversibly+sealable+parylene+membranes+for+cell+and+protein+patterning%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Reusable, reversibly sealable parylene membranes for cell and protein patterning.</a> J Biomed Mater Res. A. 85 (2), 530-538 (2008).</li>
<li>Jinno, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfabricated+multilayer+parylene-C+stencils+for+the+generation+of+patterned+dynamic+co-cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res+A%22%5BJournal%5D)">Microfabricated multilayer parylene-C stencils for the generation of patterned dynamic co-cultures.</a> J Biomed Mater Res A. 86 (1), 278-288 (2008).</li>
<li>Jackman, R. J., Duffy, D. C., Cherniavskaya, O., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+elastomeric+membranes+as+dry+resists+and+for+dry+lift-off%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Using elastomeric membranes as dry resists and for dry lift-off.</a> Langmuir. 15 (8), 2973-2984 (1999).</li>
<li>Folch, A., Jo, B. H., Hurtado, O., Beebe, D. J., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfabricated+elastomeric+stencils+for+micropatterning+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res%22%5BJournal%5D)">Microfabricated elastomeric stencils for micropatterning cell cultures.</a> J Biomed Mater Res. 52 (2), 346-353 (2000).</li>
<li>Park, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfabrication-based+modulation+of+embryonic+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Microfabrication-based modulation of embryonic stem cell differentiation.</a> Lab Chip. 7 (8), 1018-1028 (2007).</li>
<li>Choi, J. H., Lee, H., Jin, H. K., Bae, J. S., Kim, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+of+neural+stem+cells+and+Purkinje+neurons+using+a+polydimethylsiloxane+%28PDMS%29+stencil%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Micropatterning of neural stem cells and Purkinje neurons using a polydimethylsiloxane (PDMS) stencil.</a> Lab Chip. 12 (23), 5045-5050 (2012).</li>
<li>Li, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NeuroArray%3A+a+universal+interface+for+patterning+and+interrogating+neural+circuitry+with+single+cell+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">NeuroArray: a universal interface for patterning and interrogating neural circuitry with single cell resolution.</a> Sci Rep. 4, 4784(2014).</li>
<li>Guvanasen, G. S., Mancini, M. L., Calhoun, W. A., Rajaraman, S., DeWeerth, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polydimethylsiloxane+Microstencils+Molded+on+3-D-Printed+Templates%5BTitle%5D)+AND+%22J+Microelectromech+S%22%5BJournal%5D)">Polydimethylsiloxane Microstencils Molded on 3-D-Printed Templates.</a> J Microelectromech S. 23 (5), 1045-1053 (2014).</li>
<li>Palchesko, R. N., Zhang, L., Sun, Y., Feinberg, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+polydimethylsiloxane+substrates+with+tunable+elastic+modulus+to+study+cell+mechanobiology+in+muscle+and+nerve%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Development of polydimethylsiloxane substrates with tunable elastic modulus to study cell mechanobiology in muscle and nerve.</a> PLoS One. 7 (12), 51499(2012).</li>
<li>Chowdhury, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Material+properties+of+the+cell+dictate+stress-induced+spreading+and+differentiation+in+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Mater%22%5BJournal%5D)">Material properties of the cell dictate stress-induced spreading and differentiation in embryonic stem cells.</a> Nat Mater. 9 (1), 82-88 (2010).</li>
<li>Gjorevski, N., Boghaert, E., Nelson, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+Epithelial-Mesenchymal+Transition+by+Transmission+of+Mechanical+Stress+through+Epithelial+Tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Microenviron%22%5BJournal%5D)">Regulation of Epithelial-Mesenchymal Transition by Transmission of Mechanical Stress through Epithelial Tissues.</a> Cancer Microenviron. 5 (1), 29-38 (2012).</li>
<li>Thery, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+as+a+tool+to+decipher+cell+morphogenesis+and+functions%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Micropatterning as a tool to decipher cell morphogenesis and functions.</a> J Cell Sci. 123, (Pt 24) 4201-4213 (2010).</li>
<li>Eroshenko, N., Ramachandran, R., Yadavalli, V. K., Rao, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+substrate+stiffness+on+early+human+embryonic+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Eng%22%5BJournal%5D)">Effect of substrate stiffness on early human embryonic stem cell differentiation.</a> J Biol Eng. 7 (1), 7(2013).</li>
</ol>

著者には、競合する金融利害関係を持っていません。

微細ステンシルの作製 ステンシル微細ニッチ媒介分化のパターニングを調査するためのHPSCの微細パターンを生成するための理想的な方法を提供します。このようなマイクロコンタクト印刷及び光パターンのような他の微細技術上のステンシルパターン形成の重要な利点は、それが表面改質を必要とせず、従来のTCPS基板上に実装することができることです。したがって、異なるHPSCラインの最適化培養培地およびECMコーティングは容易にステンシル微細に転送することができます。 良い微細パターンの生成に寄与する細胞ステンシルの製造中の重要なステップの数があります。 HPSCの微細パターンで設計された形状を再現の忠実度は、ステンシルシートの貫通穴加工の品質と一貫性に依存します。多micropatを含む研究のため&gt;1000μmでのアジサシ、貫通孔を直接プリキャストPDMSシートのレーザ切断によって作製することができます。レーザー切断の解像度は、レーザビームのスポットサイズ及びレーザービームの経路を制御...

胚性幹細胞（hESC）と人工多能性幹細胞（hiPSCs）を含む、ヒト多能性幹細胞（hPSCs）は、広くすべての細胞系譜に、それらの分化能の正常および罹患器官の実験モデルならびに再生医療に利用されます三胚葉1,2。 hPSCsの分化運命は、物理的な手がかり3-5によって媒介される1と同様にメカノプロセスをシグナリングオートクリンまたはパラクリンを調節することができる地域の環境要因に対して非常に敏感です。セルの微細化は、空間的に、このような細胞-細胞相互作用6及び細胞-マトリックス相互作用を3として、局所的な細胞の微小環境を制御するための手段として、細胞集団の幾何学的形状と位置を整理するために開発された技術の集合を含みます。 hPSCsの文脈では、細胞は、微細ニッチ依存する方法に重要な洞察を得るために使用されていますENT自己分泌シグナル伝達は、初期胚の分化パターン6へのhESC多能性分化の決定7および組織を調節します。 2Dおよび3D微細hPSCsは、順番に3種の胚層8,9への分化決定に影響を与え、多パターンのコロニーの大きさを制御するために使用されています。我々は、インテグリンEカドヘリンクロストークは、細胞運命の異質10を生じさせることができるか調べるためにHPSCコロニー内の細胞-細胞および細胞-マトリックス相互作用の程度を調節するために多HPSCの微細パターンを採用しています。上記レポート発達疾患11のための薬物毒性スクリーニングのための実験モデルとしてhPSCsの多微細パターンの適用に向けたオープンな新しい道からデモンストレーション、組織または器官、開発中の成長因子およびホルモンの効果を研究するために、との形成を解明します組織パターン。 セルmicropatterの無数Falconnet らによって見直さとしてニング技術が開発されています。アル。12しかし、そのようなマイクロコンタクトは7,8,13印刷などのほんの一握りは、マイクロウェル文化14,15、光パターンは6とmicrostencils 16が正常に hPSCsで実装されています。微細hPSCsでのチャレンジは、その脆弱性と細胞の付着と生存のための特定の細胞外マトリックス（ECM）と成長条件の厳しい要件です。 2D HPSCパターンについて、マイクロコンタクト印刷は、組織培養、ガラス基板13上にHPSCの微細パターンを生成するための最も一般的な方法の一つです。方法は、マトリゲルなどラミニンおよび基底膜マトリックス、を含むHPSC文化、で使用されるパターンの共通ECMに使用することができます。しかし、それは、典型的には、ポリ-D-リジンにより支援二段階コーティングプロセスを必要とし、hPSCsは6,13に付着するための安定したECMの微細パターンを作製するために、特定の不活性大気の湿度条件を必要とします。各微細法の最も重要な考慮事項は、周辺地域への非特異的な細胞の付着を最小限に抑えながら、表面改質政権が希望の幾何学的な解像度でHPSC接着ECMパターンを生成することができるかどうかです。 ここでは、前に取り付けるためのhPSCs用接着ECMパターンの生成に追加の表面改質工程なしHPSCの微細パターンを生成するための簡単​​な方法として、ステンシル微細の使用を報告しています。細胞ステンシルは、スルーホール物理的にECMコーティングし、その後播種hPSCsを格納するための細胞培養基板上にシールサイズをミリメートルミクロンで、薄い膜、 例えば、ポリジメチルシロキサン（PDMS）シートで構成されています。ステンシルパターニングは物理的にHPSCにアクセスし、基礎となるECMコーティングされた基板に直接接続することができる場所を抑制することによって動作したように、この方法は、HPSC培養をサポートすることができる様々な基板と互換性があります。のみrequirementは、ステンシル材料の選択は、基板と可逆的シールを形成することができるということです。これらの基板は、従来の組織培養ポリスチレン（TCPS）17、リガンド共役基材18と同様に、調整可能な剛性を有するエラストマー材が挙げられる（ 例えば 、PDMS）19。この方法はまた、適切な取り付けとhPSCsの分化を可能にするために、このようなビトロネクチン（またはVTNタンパク質）、ラミニンおよび基底膜マトリックス（ 例えば 、マトリゲルとGeltrax）として異なるECMのコーティングを可能にします。したがって、我々は最適な細胞 - マトリックス接着、生存および分化のためのステンシル微細に特定のHPSCラインのための最適化されたECM-基板の構成を転送することができます。最近、同様の方法はまた、ポリ（メチルメタクリレート）（PMMA）マイクロステンシルアレイ16を使用してヒトES細胞を微細によって肝臓分化を導くことが報告されています。 細胞ステンシルが満たさ含む、異なる材料から製造することができますALS 20,21、ポリ（p-キシリレン）ポリマー22,23、PMMA 16、最も一般的には、PDMS 24-28。シリコン及びポリ（p-キシリレン）は、ステンシルは、貫通孔生物ユーザーへのアクセス可能性を制限する特殊な装置20-23との直接エッチングを必要とするポリマーです。 PDMSステンシルは、典型的には3ミクロンから2,000ミクロン11,26-29の範囲で必要な特徴の大きさに応じて異なる方法で製造することができます。小さ ​​な特徴が所望される場合には、薄いステンシルシートは、微細パターン28のレリーフを含む微細加工シリコンテンプレート上にプレス成形PDMSプレポリマーによって製造することができます。機能&gt;千μmのために、CO 2レーザーカッターは、直接ステンシル製作中プレキャストPDMSシート上のパターンをカットするための簡単かつ低コストの方法を提供します。 PDMSステンシルのリサイクルにも十分な一貫性のある一連の実験を実施するためにそれら費用対効果になります。 10をもたらした方法空間を調査するために、凝集のhESCコロニー内のインテグリンの程度およびE-カドヘリン媒介性接着を調節するために使用しました。

<table><tbody><tr><td>&nbsp;厚さ2mmのPDMSシート</td><td>Specialty Silicone Products Inc.、米国</td><td>SSPM823-.005</td><td>ステンシル</td></tr><tr><td>120-150 &mu;m 厚いPDMSシート</td><td>Specialty Silicone Products Inc., USA</td><td>SSPM823-.040</td><td>ステンシルの形成に使用&nbsp;</td></tr><tr><td>60 mm ペトリ皿</td><td>Nunc Nunclon Delta</td><td>150326</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Accutase, Merck Millipore, Singapore</td><td>SCR005</td><td>H9 細胞を単一細胞に分解する酵素</td></tr><tr><td>Activin&nbsp;&nbsp;</td><td>R&D Systems、シンガポール</td><td>338-AC-010</td><td>H9 分化</td></tr><tr><td>BMP4 の成長要因&nbsp;</td><td>R&D Systems, Singapore</td><td>338-BP-010</td><td>H9分化プラズマシステムの成長因子</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Femto Science、韓国</td><td>CUTE-MP</td><td>ステンシル</td></tr><tr><td>Dispase</td><td>StemCell&tradeのプラズマ酸化用;Technologies, Singapore</td><td>7923</td><td>Enzyme used to weaken the cell-ECM adhesion during passaging</td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>GIBCO, USA</td><td>11330032</td><td>H9細胞用基礎培地</td></tr><tr><td>FGF2</td><td>R&D Systems、シンガポール</td><td>233&ndash;FB&ndash;025</td><td>H9分化のための成長因子</td></tr><tr><td>H9細胞株</td><td>WiCell Research Institute, Inc., USA</td><td>WA09</td><td>ヒト胚性幹細胞</td></tr><tr><td>hESC認定基底膜マトリックス</td><td>Matrigel, BD Biosciences, Singapore</td><td>354277</td><td>H9細胞の増殖をサポートする細胞外マトリックスコーティング</td></tr><tr><td>倒立顕微鏡</td><td>Leica Microsystems, Singapore</td><td>DMi1</td><td>明視野捕捉用画像</td></tr><tr><td>レーザーカッター</td><td>Epilog Helix 24 レーザーシステム</td><td></td><td>PDMSシート</td></tr><tr><td>mTeSR&tradeのスルーホールを生成するために使用されます。1 中盤&nbsp;</td><td>ステムセル&トレード;Technologies, Singapore</td><td>5850</td><td>H9細胞PDMS用メンテナンス培地</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>SYLGARD&reg; 184, Dow Corning Co., USA</td><td>3097358-1004</td><td>PDMSステンシルとリサービオールの貼り付けに使用</td></tr><tr><td>ROCKi Y27632</td><td>Calbiochem, Merck Millipore, Singapore</td><td>688000</td><td>H9細胞を単一細胞として維持します&nbsp;</td></tr><tr><td>STEMdiff&trade; APEL&trade; 中&nbsp;</td><td>ステムセル&トレード;テクノロジーズ、シンガポール</td><td>5210</td><td>H9細胞用分化培地</td></tr><tr><td>ポリエチレンテレフタレートフィルム</td><td>SureMarkシンガポール</td><td>SQ-6633</td><td>ステンシルの形成に使用&nbsp;</td></tr><tr><td>細胞培養適合非イオン性界面活性剤</td><td>プルロン酸F-127、シグマ、シンガポール</td><td>P2443</td><td>非マイクロパターン基質における細胞接着をはじく不動態化試薬</td></tr></tbody></table>

分化運命の空間組織を探るためのヒト多能性幹細胞のステンシルマイクロパターニング

Stencil Micropatterning of Human Pluripotent Stem Cells for Probing Spatial Organization of Differentiation Fates

ヒト多能性幹細胞(hPSC)は、胚性幹細胞と人工多能性幹細胞を含み、3つの胚葉すべてに分化する固有の能力を持っています。これにより、再生医療や正常器官形成と疾患器官形成の実験的モデリングに魅力的な細胞源となっています。しかし、in vitroでのhPSCの分化は不均一であり、空間的に無秩序です。細胞マイクロパターニング技術は、幹細胞の微小環境を空間的に制御し、結果として生じる分化運命を組織化する手段を提供する可能性があります。hPSCのマイクロパターニングには、hPSCの生存と維持に関する厳しい要件を考慮する必要があります。ここでは、ステンシルマイクロパターニングをhPSCと高い親和性を持つ方法として説明します。hPSCマイクロパターンは、細胞ステンシルスルーホールの形状によって指定され、hPSCが下にある細胞外マトリックスコーティング基板にアクセスして付着できる場所を物理的に閉じ込めます。この動作モードにより、他の細胞マイクロパターニング法と比較して、hPSCを適切にサポートできる基質を使用する柔軟性が高くなります。また、hPSCマイクロパターンの生成を成功させるための重要なステップについても説明します。一例として、hPSCのステンシルマイクロパターニングを使用して、細胞-細胞および細胞-マトリックス接着の空間分極を調節し、それが中内胚葉の分化パターンを決定することができることを示します。このシンプルで堅牢な方法でhPSCをマイクロパターン化すると、初期胚発生における組織組織化とパターン形成を研究するための実験モデルを確立する可能性が広がります。

本稿では、1000μmでの特徴を生成するために、レーザーカッターを使用することにより、細胞ステンシルの製作を説明します。貫​​通孔微細パターンを含む薄いステンシルシート（厚さ約100〜200ミクロン）、およびECMコーティング溶液又は細胞懸濁液を含有するPDMSガスケット：ステンシルは2部品で構成しました。ここでは、127ミクロン及び厚さ2mmの市販のPDMSシートは、それぞれ、ステンシルシートおよびガスケットとして使用しました。スピンコーティングのような制御可能な厚さのPDMSシートを製造するための他の方法は、また、部品を製造するために使用することができます。二つの成分は、接着剤やプラズマ結合のような液体未硬化のPDMSプレポリマー架橋剤の混合物を使用して互いに結合し、3~4時間、60°C（ 図1）で焼成しました。 ステンシルシートの材料は、細胞培養物の選択に基づいて選択しました。ubstrate。培養基質のような従...

ヒト多能性幹細胞（hPSCs）は差別化した別個の組織パターンに自己組織化するための固有の能力を持っています。これは、空間的な環境勾配の提示を必要とするが。我々はHPSC分化パターンを制御するための生化学的および機械的な勾配を生成するためのシンプルかつ堅牢な方法としてステンシル微細を提示します。

Human pluripotent stem cells (hPSCs), including embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells, have the intrinsic ability to differentiate into ...

ヒト多能性幹細胞を対象としたこのステンシルベースのマイクロパターニング法の全体的な目的は、幹細胞の分化パターンを制御する空間的な環境勾配を生成するための、シンプルで堅牢な手段を提供することです。この手法は、細胞間および細胞-マトリックス間の接着力の空間的勾配が、幹細胞の分化運命の組織化にどのように寄与するかなど、ヒト幹細胞モデルを用いた組織パターニングにおける重要な疑問を解決するのに役立ちます。本手法の利点は、細胞が付着するための細胞接着性ECMパターンを形成するために、追加の表面修飾を必要としないことです。これは、本手法が各細胞株に応じたさまざまなECMおよび基質の構成に適合することを意味します。マイクロパターニングの手順は習得が困難であり、ステンシルと細胞の精密かつ慎重な取り扱いが求められるため、本手法を視覚的に実演することが極めて重要です。この手順を行う前に、PTMSステンシルを設計および作製しておく必要があります。同様に、ヒトEFC細胞を基底膜マトリックス上で培養し、手順の後半で播種できる状態で準備しておきます。まず、ディッシュに超純水で調製した70%分析グレードエタノールを700 µL分注します。次に、PDMSステンシルを溶液の上に配置し、ディッシュをバイオセーフティキャビネットに入れて一晩乾燥させます。翌日、ステンシルの下に気泡が形成されていないことを確認します。その後、細胞をステンシル上に播種できるまで、ディッシュを保持します。DMF12を16.7 milliliters添加して1.5x溶液とし、ヒトESC品質の基底膜マトリックスのアリコートを調製して氷上に保持します。基質を100 wattsの酸素プラズマで90秒間処理します。ディッシュはプラズマチャンバーの中に入れるまで開けないでください。また、処理後は速やかに蓋をしてください。この処理により、基板を溶液に浸した際に気泡が生じるのを防ぐことができます。次に、あらかじめ調製した1.5x basement membrane matrix溶液を450 µL、ステンシルに滴下して覆います。その後、ディッシュをパラフィルムで密閉し、5時間インキュベートします。次に進む前に、準備したHESCコロニーの6ウェルプレートを確認します。典型的なHESCの形態を失い、分化した細胞のコロニーを特定し、吸引して除去してください。コロニーはすべて円形で、密に詰まった上皮様形態を示し、核細胞質比が高く、明瞭な核小体を有している必要があります。次に、播種した細胞の各ウェルを2 mLのDMF12で2回洗浄します。2回目の洗浄後、Accutaseなどの消化酵素を各ウェルに1 mL加え、プレートを37 °Cで8分間インキュベートします。インキュベーション後、プレートを軽く叩いて、すべてのコロニーを基質から剥離させます。次に、各ウェルに適用した消化酵素1 mLにつき、少なくとも4 mLの培地で各ウェルを洗浄し、細胞懸濁液を1本の15 mLコニカルチューブに回収します。室温で200 gで3分間遠心分離し、細胞ペレットを形成させます。その後、上清を吸引し、10 µMのROCK阻害剤を添加した400 µLのHESC維持培地で細胞を再懸濁します。細胞の凝集を解消するため、穏やかに3回トリチュレーションを行います。次に、懸濁液の密度を調整します。十分に混合し、培地を用いて200 µLの1:20希釈液を作成します。ヘモサイトメーターを用いて、希釈液中の細胞数を計測します。その後、ROCK阻害剤を含む培地を用いて、必要に応じてメインの細胞懸濁液を希釈します。次に、準備した各ステンシルに規定数の細胞を添加してください。細胞を単層で堆積させる必要があるため、均一に広げてください。細胞を沈降させるため、ステンシルをそのまま5分間静置します。その後、ディッシュを水平に保ったまま、細胞をロードしたステンシルを慎重にインキュベーターへ移動させます。1時間のインキュベーションを行い、細胞をステンシルに接着させます。細胞の接着後、顕微鏡下で適切に接着しているかを確認してください。ステンシルをフードに戻し、未接着の細胞を吸引して除去します。次に、DMFに溶解した0.5%の適合性非イオン界面活性剤を2 mL、ステニルの周囲に加えます。溶液を軽く回してステニル全体を覆います。その後、オートクレーブ滅菌済みのピンセットを用いて、ディッシュからステニルをゆっくりと剥がします。ステンシルを取り除いた後、顕微鏡下でマイクロパターン形成された細胞を確認します。非イオン性界面活性剤により、これらの細胞の乾燥が防止されます。マイクロパターン形成された細胞を、界面活性剤を添加した培地溶液中で、37 °Cで10分間インキュベートします。10分後、溶液を吸引して除去し、2 mLの通常DMF12培地でプレートを3回洗浄します。洗浄後、ROCK阻害剤を含むHESC維持培地を2 mL添加します。再度細胞を観察し、マイクロパターンが適切に形成されているかを確認します。その後、細胞を37°Cで一晩インキュベートします。翌日、培地を吸引し、細胞をDMF12で1回洗浄した後、添加物を加えた分化培地を2 mL加え、細胞に中内胚葉分化を誘導します。その後、結果を解析します。レーザーカッターを用いて作製したセルステンシルにより、1000 µmの微細構造を実現しました。このステンシルは、マイクロパターニングされた貫通孔を持つ薄いステンシルシートと、細胞を保持するためのPDMSガスケットで構成されていました。このツールを用いて、中胚葉および内胚葉への分化過程におけるマイクロパターニングされたHESCsの検討を行いました。H9-HESCコロニーの辺縁部は、コロニー内部の細胞よりもインテグリン接着が高くなっています。そのため、activan、BMP4、およびFGF2で誘導すると、これらの細胞はbrachiary T陽性の中内胚葉細胞へと分化します。このような細胞を異なる幾何学的形状の単層にパターン化したところ、幾何学的な等方性直角や凸曲率部分において、インテグリン介在性の牽引力が局所的に集中し、その結果、中内胚葉への分化が促進されました。単一コロニー内の異なる部位におけるTの発現強度は、正方形および長方形のコロニーの鋭い角、および半円弧の凸曲面において、中内胚葉誘導の程度が実際に高かったことを示しました。これは、上述の方法を用いて、細胞接着に起因する機械的な力を調節できることを証明しています。本手順を試みる前に、使用する特定のヒト多能性幹細胞株に合わせて、マトリックスコーティング時間、および細胞の消化・接着時間を最適化することが重要です。

stencil-micropatterning-human-pluripotent-stem-cells-for-probing

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

特定の細胞へのヒトES細胞の監督分化、再生医療に大きな関心を生成しています。我々は決定するための簡潔な、ステップバイステップのプロトコルを提供する...

テラトーマ形成により、ヒト胚性幹細胞の運命のマッピング

単一細胞の遺伝子発現アッセイは、幹細胞の不均質性を理解するために必要とされる。...

定量的RT-PCRによって個々のヒト胚性幹細胞のプロファイリング

分化したヒト神経幹細胞(hNSC)上のmiRNAの変化を特徴づける目的で、3次元システム上でのhNSC分化、miRNA...

三次元培養、マイクロRNAの分析と推定標的遺伝子上のヒト神経幹細胞株の分化

ここで、提示ひと多能性幹細胞 (hPSC) 培養のプロトコル、CD34 に hPSCs を区別するために使用される+造血前駆細胞。このメソッドは、排他的に決定的なまたは原始的な造血プログラムのいずれかのセルを指定するカノニカル WNT...

ひと多能性幹細胞からプリミティブかつ決定的な造血前駆細胞の分化を監督

効率的な一括、および急速な化学復帰従来系列プライミングひと多能性幹細胞 (hPSC) の epigenomically 安定した素朴な着床前胚盤葉上層のような多能性状態にするためのプロトコルを提案します。このメソッド結果減少系統プライミング遺伝子発現と分化多能でマーク付きの改善で従来の hPSC...

従来のひと多能性幹細胞の向上多能分化と素朴なような状態の復帰化学

ここで提示する方法は、マイクロパターニングと定量イメージングを使用して、哺乳類培養における空間的組織を明らかにする。この技術は、標準的な細胞生物学研究室で確立することが容易であり、インビトロでのパターニングを研究するための扱いやすいシステムを提供しています。...

マイクロパターンと定量イメージングを用いた哺乳類細胞の新しい空間組織のマッピング

細胞外マトリックスリガンドは、ポリアクリルアミドヒドロゲル上にパターン化することができ、準拠基板上の閉じ込められたコロニーにおけるヒト胚性幹細胞の培養を可能にする。この方法は、トラクション力顕微鏡と生化学アッセイと組み合わせて、組織形状、細胞発生力、および運命指定の相互作用を調べることができます。...

組織レベルの力学を制御するための準拠基板上のヒト胚性幹細胞コロニーの幾何学的パターン化

細胞リプログラミングでは、多能性細胞状態を調節し維持する主要遺伝子の導入が必要です。記載されたプロトコルは、ウイルス/統合方法なしでヒト皮膚線維芽細胞からの誘導多能性幹細胞(iPSC)コロニーの形成を可能にするが、非修飾RNA(NM-RNA)を免疫回避因子と組み合わせて細胞防御機構を低下させる。...

腹部皮膚からの成人ヒト皮膚線維芽細胞の分離と非積分法を用いた人工多能性幹細胞の生成

このプロトコルは、限られたバイオエンジニアリングのバックグラウンドを持つ人が簡単でアクセスできるリソグラフィーフリーのマイクロパターン化方法を導入しています。この方法は、カスタマイズされたレーザーカットステンシルを利用して、細胞形態を調節するために目的の形をした細胞外マトリックスタンパク質をマイクロパターン化します。マイクロパターン化の手順は、人工多能性幹細胞由来の心筋細胞を用いて実証される。...

レーザーカットステンシルを用いたシンプルリソグラフィフリーシングルセルマイクロパターニング

我々は、新皮質発生の2Dおよび3Dヒト人工多能性幹細胞(hIPSC)ベースのモデルの生成および特性評価のための詳細なプロトコル、ならびに初代繊毛(PC)生合成および機能の定性的および定量的分析を可能にする補完的方法論を提示する。...

2Dおよび3Dヒト人工多能性幹細胞ベースのモデルにより、新皮質発生中の原発性繊毛の関与を解剖

利用可能な多能性幹細胞(PSC)から機能細胞への分化システムは、現在、深刻なライン間およびバッチ間のばらつきの問題によって妨げられています。ここでは、心臓の分化を主な例として、画像ベースの機械学習に基づいてPSCの分化プロセスをインテリジェントに監視および調整するためのプロトコルを紹介します。...

多能性幹細胞の分化を監視するための生細胞画像ベース機械学習戦略

学ぶステンシルマイクロパターニング法を用いて、ヒト多能性幹細胞の分化運命を空間的に制御する手法。この簡便で頑健な技術は、組織パターニング研究において細胞接着パターンを精密に設計する新たな可能性を開きます。

分化運命の空間組織を探るためのヒト多能性幹細胞のステンシルマイクロパターニング

さらに動画を探す