Name: 心臓形態学的および心エコーイメージングによって横大動脈狭窄のマウスモデルにおける機能の変更の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 5 s
Description: 学ぶ心エコーイメージングによる横大動脈狭窄マウスモデルの心機能評価法。Bモード、Mモード、ドップラー技術を用いて非侵襲的に心疾患の進行を経時的にモニタリングし、心血管研究における心肥大と心不全の理解に貢献します。

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プロトコルは、ワシントン大学の施設内動物管理使用委員会のガイドラインに従います。 1.手術手順およびイメージングのための準備<ol><li> TACまたは偽手術の対象とC57BL / 6マウスは、以前に10を説明しました。 </li><li>一週間TACまたは偽手術後、1リットル/分のO 2を混合し、2％イソフルランで誘導チャンバ内でマウスを麻酔。つま先や尾のピンチに無反応により適切な麻酔を確認してください。麻酔下ながら乾燥を防ぐために、目に獣医の軟膏を使用してください。脱毛クリームを適用することにより、胸毛を削除してください。 70％エタノールでマウスの皮膚を消毒します。 </li><li>仰臥位で動物取扱プラットフォームにマウスを固定します。 1リットル/分のO 2と混合した1％イソフルラン-麻酔の安定したレベルを維持するために、0.5を提供するためにノーズコーンを使用しています。 </li><li>マウスの足に電極ゲルを適用し、電極パッドにそれらをテープ。 </li><li>体温を監視するための直腸プローブを挿入します。加熱パッドまたはランプを経由して37℃の体温を維持。 </li><li>マウス胸、心臓を覆う主領域に予熱した超音波ゲルの層を適用します。注：超音波ゲルを除去し、イメージング処理後、滅菌ガーゼでマウスを乾かします。 </li></ol>大動脈弓ビューで、[使用するBモードとドップラーイメージングは​​、横大動脈狭窄を評価します<ol><li>大動脈、主要幹線分岐し、狭窄部位を可視化するために、大動脈弓のビューを取得するためにBモードの設定を使用します。 <ol><li>左側臥位にマウスを回転させることが可能な限りプラットフォームの左側を傾けます。垂直位置で待機することにより、超音波トランスデューサを持ち、ノッチがマウスのあごに向いて、右傍胸骨ラインに沿って胸の上に置きます。注：transdを下げたときに、マウスの胸部を圧縮しないでください。ucer;圧力の最小量が必要とされます。 </li><li>肩甲骨のレベルでトランスデューサを傾け、大動脈弓が見えてくるまで少し時計回りに回転。腕頭動脈（IA）および左総頸動脈（LCCA）（ 図1）の分岐との間に配置される横方向の大動脈狭窄部位を観察します。 注：いいえくびれは、偽手術マウスでは検出されませんでした。 </li></ol></li><li>狭窄サイト全体の血流の方向と速度を監視するために、カラードプラモードに切り替えるには、ワークステーションの「カラードップラー」ボタンをクリックします。 「シネストア」ボタンをクリックして画像を取得し、保存します。 </li><li>最高速度で狭窄ジェットを検索するための狭窄部位のすぐ遠位波ドプラモード、および場所のサンプルボリューム（破線のカーソルボックス）パルスに切り替えるに「PWドップラー」ボタンをクリックし、「PWド​​ップラー」ボタンをクリックしてください大動脈FLの波形を取得しますOWとメジャーピーク速度（ 図2）。 </li><li>圧力勾配= 4×V maxの2：変更されたベルヌーイの式を用いて狭窄サイト全体の圧力勾配を計算します。唯一の更なる分析のために40〜80 mmHgの範囲の圧力勾配をマウスに含まれています。 </li></ol>傍胸骨長軸ビューで、[使用するBモードとMモードイメージングは​​、心臓寸法及び収縮を評価します<ol><li>マウスがプラットフォーム上で仰臥位で横たわっていると、ノッチは、マウスの頭を指している垂直な方法でトランスデューサーを保持します。左胸骨傍のラインに胸部平行にトランスデューサを下げ、30°反時計回りに回転させます。 </li><li>心の完全長軸「サジタル」ビューを得るために、Bモードイメージングを使用してください。トランスデューサの角度を調整し、左心室、室内隔壁、および右心室壁のわずかな部分を可視化する深さに焦点を当てます。 S心臓壁の厚さおよびチャンバ寸法の後の測定用の画像をaveの。このようなIVSまたはLVAW、LVID、およびLVPWなどの選択パラメータは、「心臓パッケージ」を使用して、その後、測定値を得るために、各パラメータに対応する線を描画するには画像をクリックしてください。 </li><li>心臓壁運動パターンを観察し、無動、運動低下、および非同期性を含む可能性運動異常、かどうかを確認します。 注：無動と運動低下は、心臓壁の動きの完全および部分的な損失を示し、それぞれ。非同期は、不規則な、まとまりのない心臓壁の動きを示しています。 </li><li>乳頭筋のレベルでLVの壁に垂直にMモード、場所Mモードカーソルに切り替えて、心臓の寸法および短縮率（ 図3）の後の測定のための画像を取得します。 </li></ol>傍胸骨短軸ビュー、心臓形態と機能を評価するために使用するBモードとMモードイメージング4. <ol><li>金曜日オム傍胸骨長軸ビューは、トランスデューサ90°時計回りに回転させることにより、胸骨傍短軸像を得ます。はっきりと見えると右（2と4時の位置）に位置する乳頭筋の両方で、Bモードで心臓の水平断面「横」ビューを提供するために、トランスデューサを調整します。 </li><li> Mモードに切り替えて、左心室のミッドレベルでMモードの軸を配置します。心臓壁の厚さ、チャンバーの寸法、および短縮率（ 図4）の後の測定のために画像を取得して保存。 IVSまたはLVAW、LVID、およびLVPW含む「心臓パッケージ」、SAXでの選択パラメータ（短軸）を使用し、測定値を得るために、各パラメータに対応する線を描画するには画像をクリックしてください。 注：ここで得られた測定値は、傍胸骨長軸ビュー（ 図5）で得られたものと密接に相関するはずです。 </li></ol>アピカル四腔像、使用5.収縮期および拡張期機能を評価するためにドップラーイメージング<ol><li>画面下部の心房と左と右の両方の心室を視覚化するために心尖部四腔像を取得します。 Bモードでは、短軸像から、ダウン角にマウスの頭を、プラットフォームの左上隅を傾け、マウスの右の肩に向けてトランスデューサを向けます。これは頂点に向かって見上げる心の「冠状」ビューを達成するために本質的です。 </li><li> Bモードで僧帽弁を可視化し、カラードプラモードに切り替えて、僧帽弁の先端に試料容量（破線カーソルボックス）を配置します。 </li><li>僧帽弁を横切る流れのパターンを評価するためにPWドプラモードに切り替えます。僧帽弁血流の方向にドップラープローブカーソルを平行に合わせます。ピーク速度（ 図6）を決定するためにプローブの角度20°未満を使用してください。 </li><li>後で測定のための画像を保存します。 「心臓パッケージ」を使用し、選択して &quot;MV流れ。「各パラメータをクリックして、測定値を得るために、対応する線を描画可能な測定は、次のとおりです。ピークE速度（初期のアクティブ心室弛緩を充填）、速度（心房収縮と後半充填）ピーク、僧帽弁等容性弛緩と収縮時間（IVRTをし、それぞれIVCT）、および駆出時間（ET）。 </li><li> MPI =（IVCT + IVRT）/ ETにより心筋の性能指数（MPI）を計算します。 </li></ol>動物の6.術後の治療<ol><li>必要なときに腹腔内手術用動物に鎮痛および/または滅菌生理食塩水を与えます。 </li><li>動物が腹臥位に加熱パッド上で回復させます。それは胸骨横臥位を維持するのに十分な意識を取り戻したまで無人の動物を放置しないでください。完全に回復するまで、他の動物の会社に手続きを経た動物を返さないでください。 </li></ol>

<ol><li>Rockman, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+atrial-specific+and+inducible+expression+of+an+atrial+natriuretic+factor+transgene+in+an+in+vivo+murine+model+of+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 88 (18), 8277-8281 (1991).</li>
<li>Tanaka, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transthoracic+echocardiography+in+models+of+cardiac+disease+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Transthoracic echocardiography in models of cardiac disease in the mouse.</a> Circulation. 94 (5), 1109-1117 (1996).</li>
<li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+models+of+heart+failure%3A+development+of+novel+therapies%2C+past+and+present%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2 (2), 138-144 (2009).</li>
<li>Heineke, J., Molkentin, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+cardiac+hypertrophy+by+intracellular+signalling+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Regulation of cardiac hypertrophy by intracellular signalling pathways.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 7 (8), 589-600 (2006).</li>
<li>Oka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac-specific+deletion+of+Gata4+reveals+its+requirement+for+hypertrophy%2C+compensation%2C+and+myocyte+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Cardiac-specific deletion of Gata4 reveals its requirement for hypertrophy, compensation, and myocyte viability.</a> Circ Res. 98 (6), 837-845 (2006).</li>
<li>Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+assessment+of+left+ventricular+mass+and+systolic+function+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic assessment of left ventricular mass and systolic function in mice.</a> Circ Res. 76 (5), 907-914 (1995).</li>
<li>Respress, J. L., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transthoracic+echocardiography+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transthoracic echocardiography in mice.</a> J Vis Exp. (39), e1738(2010).</li>
<li>Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+echocardiography+and+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Murine echocardiography and ultrasound imaging.</a> J Vis Exp. (42), e2100(2010).</li>
<li>Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+pulse+wave+and+color+flow+Doppler+echocardiography+in+mouse+models+of+human+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Echocardiogr%22%5BJournal%5D)">Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease.</a> J Am Soc Echocardiogr. 15 (7), 708-714 (2002).</li>
<li>deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transverse+aortic+constriction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. (38), e1729(2010).</li>
<li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Bátkai, S., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nat Protoc. 3 (9), 1422-1434 (2008).</li>
<li>Larsen, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolated+working+mouse+heart%3A+methodological+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">The isolated working mouse heart: methodological considerations.</a> Pflugers Arch. 437 (6), 979-985 (1999).</li>
<li>Roth, D. M., Swaney, J. S., Dalton, N. D., Gilpin, E. A., Ross, J. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+anesthesia+on+cardiac+function+during+echocardiography+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Impact of anesthesia on cardiac function during echocardiography in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 282 (6), H2134-H2140 (2002).</li>
<li>Pearlman, A. S., Stevenson, J. G., Baker, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Doppler+echocardiography%3A+applications%2C+limitations+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Doppler echocardiography: applications, limitations and future directions.</a> Am J Cardiol. 46 (7), 1256-1262 (1980).</li>
<li>Bauer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Echocardiographic+speckle-tracking+based+strain+imaging+for+rapid+cardiovascular+phenotyping+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Echocardiographic speckle-tracking based strain imaging for rapid cardiovascular phenotyping in mice.</a> Circ Res. 108 (8), 908-916 (2011).</li>
</ol>

この研究は、NIH/NHLBI の助成金 R00HL0908076 と R01HL116507 (Q.L. への) によって部分的に支援されました。

心エコー検査は、広く心疾患2,6の齧歯類モデルにおいて心機能を評価するために使用されてきました。このような圧力-容積ループ測定11などの侵襲的または端末の方法論などに比べると、ex vivoでの心臓12は 、心エコー検査は、生きている動物で進行中の心臓の構造的および機能的変化を評価するための強力な、非侵襲的なツールを提供して取り組んでいます。信頼性のあるデータを得るためには、慎重な加熱装置と麻酔のレベルを調整することにより、生理的範囲13内の体温と心拍数を維持することが重要です。すべての画像は、異なる株または遺伝子型のマウスとの間の比較を容易にするために、一貫して標準化されたイメージング手順に従って取得され、分析されるべきです。 TACは、一般的に、マウス1における心肥大および心不全を誘導するために使用されます。ドップラーにより狭窄サイト全体の圧力勾配の非侵襲的測定イメージングは​​、マウスの圧負荷の程度の信頼性の評価を表しています...

TACや心筋梗塞(MI)などの心臓病のマウスモデルは、疾患のメカニズムを研究するだけでなく、新しい治療戦略を開発するためにも価値があることが証明されています3。TACは最初は代償性肥大を誘発しますが、長時間の圧力過負荷は心拡張と心不全につながります4。大動脈収縮の圧迫感は、心肥大の程度とその心不全への移行を直接決定します。これらの研究を成功させるには、大動脈狭窄部を横切る圧力勾配の非侵襲的で信頼性の高い測定が不可欠です。ドップラーイメージングは、カテーテルベースの圧力測定の非侵襲的な代替手段であるTAC5によって生成される圧力勾配を評価するために使用されています。
心エコー検査は、マウス6-8の心臓の形態や収縮期および拡張期機能を非侵襲的に測定するために広く使用されています。2次元Bモードイメージングは、心臓の異常な動きや構造変化を検出するために使用されます。1次元Mモードイメージングは、心臓の寸法と収縮性の定量化に使用されます。カラーおよびPWドップラーイメージングは、最近、げっ歯類の超音波に使用されており、流れの方向性と速度の測定、収縮期および拡張期のパフォーマンス9の測定など、心エコー検査に幅広い用途があります。
Bモード、Mモード、カラー、PWドップラーモードでの心エコー検査を用いた心機能の縦断的リアルタイムモニタリングは、生理学的および病理学的条件下でのマウスの心臓の構造と機能の包括的な評価を提供します。ここでは、TACまたは偽手術後のマウスの動的な心臓の形態学的および機能的変化を監視するための心エコーイメージングの使用について詳しく説明します。

<table><tbody><tr><td>麻酔機器</td><td>ハーバード・ユースメント, 84 October Hill Road Holliston, MA</td><td>723015</td><td></td></tr><tr><td>Vevo 2100 Imaging System</td><td>VisualSonics Inc., 3080 Yonge Street Suite 6100, Box 66, Toronto, Ontario, Canada</td><td>Vevo 2100</td><td></td></tr><tr><td>Aquasonic 超音波ジェル</td><td>Parker Laboratories, 286 Eldridge Rd, Fairfield, NJ&nbsp;</td><td>03-50</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Piramal Healthcare, Inc, 3950 Schelden Circle ベツレヘム, PA&nbsp;</td><td>NDC 66794-017-25</td><td></td></tr><tr><td>F /空気麻酔ガスフィルターユニット</td><td>AMビックフォード株式会社、12318ビッグツリーロード、ウェールズセンター、ニューヨーク&nbsp;</td><td>80120</td><td></td></tr></tbody></table>

心臓形態学的および心エコーイメージングによって横大動脈狭窄のマウスモデルにおける機能の変更の評価

Assessment of Cardiac Morphological and Functional Changes in Mouse Model of Transverse Aortic Constriction by Echocardiographic Imaging

マウスのは、心肥大と心不全のメカニズムを研究するための貴重なモデルとして使用されてきました1。心臓病の動物モデルにおける心臓の形態学的および機能的変化をリアルタイムで評価するには、信頼性の高い非侵襲的方法が不可欠です。経胸壁心エコー検査は、心臓の構造と機能の非侵襲的評価のための重要なツールです2。ここでは、高解像度超音波画像診断システムを使用して、TACのマウスモデルで心筋のリモデリングと心不全の進行を経時的に監視しました。Bモード、Mモード、およびドップラーイメージングを使用して、TAC後のマウスの心肥大、心室拡張、および機能低下を正確に評価しました。カラーおよび脈波(PW)ドップラーイメージングを使用して、TACによって作成された大動脈狭窄部全体の圧力勾配を非侵襲的に測定し、マウスの伝達血流を評価しました。したがって、経胸壁心エコーイメージングは、心臓病のマウスモデルにおける心臓の寸法と機能の包括的な非侵襲的測定を提供します。

図1は、偽（ 図1A）に供したマウスの心臓またはTAC手術（ 図1B）の大動脈弓図のBモード画像を示しています。大動脈弓、腕頭動脈は、総頸動脈を左、および左鎖骨下動脈が示されています。大動脈狭窄は、TACにはっきりと見えることに注意してくださいが、心を偽ません。大動脈のビューからのカラードップラー画像は、 図2Aに示されています。くびれサイト全体の大動脈流の波形は、PWドップラー画像（ 図2B）によって捕獲されました。成功したTACは、下流の狭窄部位（TACマウスでは一般的に〜4メートル/秒）が有意に増加した流速につながります。狭窄を横切る圧力勾配を変更ベルヌーイの方程式（ 図2C）によれば、最大流速に基づいて計算しました。 図3<...

このプロトコルの目的は、非侵襲的B-およびMモード心エコー法およびカラー/脈波ドップラーイメージングを用いて、横方向の大動脈狭窄によって作成された心臓病のマウスモデルにおいて心臓の構造的および機能的変化を評価することです。

Transverse aortic constriction (TAC) in mice has been used as a valuable model to study mechanisms of cardiac hypertrophy and heart failure1. A reliable ...

この手順の全体的な目的は、横大動脈狭窄（TAC）によって誘導された心疾患マウスモデルを用い、心エコー図検査によって心臓の構造と機能を評価することです。本手法は、動物モデルにおける心疾患のイメージングに関する心血管研究分野の重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、非侵襲的な方法で心疾患の進行を経時的に確実にモニタリングできることです。一般的に、心エコーによる画像診断と測定値の取得は、実際のデモンストレーションなしでは困難であるため、この手法を導入することは非常に苦労します。撮像を開始する前に、横行大動脈狭窄術を施したマウスの足に電極用ジェルを塗布し、足を電極パッドにテープで固定します。次に、処置中の体温をモニターするために直腸プローブを挿入します。動物の準備が整ったら、イメージング装置をBモードに設定し、プラットフォームの左側を可能な限り高く傾けて、マウスを左側臥位にします。超音波トランスデューサーをスタンドで垂直に保持したまま、ノッチを顎に向けて、動物の胸部の右胸骨縁に沿ってプローブを当てます。次に、トランスデューサーを肩甲骨方向へ傾け、大動脈弓が見えるまでプローブをわずかに時計回りに回転させます。無名動脈と左総頸動脈の分岐間に位置する横大動脈狭窄部位を観察します。狭窄部位が特定されたら、ワークステーションのカラードップラーボタンをクリックして、カラードップラーモードに切り替えます。そして、狭窄部位における血流の方向性と流速の画像を撮影します。cine storeをクリックして画像を保存します。次に、pulse wave dopplerボタンをクリックしてパルス波ドップラーモードに切り替えます。点線のカーソルサンプルボリュームボックスを狭窄部位の直遠位に配置し、最高速度の狭窄ジェットを特定します。再度pulse wave dopplerボタンをクリックして大動脈血流の波形を取得し、最高血流速度を測定します。その後、修正ベルヌーイ式を用いて狭窄部位の圧力勾配を算出します。心臓の寸法および収縮能を評価するため、TAC手術を施したマウスを仰向けにしてプラットフォーム上に配置し、ノッチをマウスの頭方向に向けてトランスデューサを垂直に設置します。トランスデューサを左傍胸骨線に平行に胸部へ下ろし、プローブを反時計回りに30度回転させます。イメージング装置をBモードに設定します。トランスデューサーの角度を調整し、深度のフォーカスを合わせて、左心室、室間中隔、および右心室壁の一部を視覚化します。Cine storeをクリックし、後で心壁厚と心腔サイズの測定を行うために画像を保存します。適切なイメージングソフトウェアの心臓パッケージを使用し、関心のあるパラメーターを選択し、目的のエコー画像内で各パラメーターに対応する線を引いて、心壁厚および心腔サイズの測定値

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医学

マウスの横大動脈狭窄（TAC）は、心肥大や心不全の開発の基礎となるメカニズムを研究するために一般的に使用される実験的なモデルです。ここで、我々は、マウスの心肥大の再現性の学位を作成するために大動脈を収縮する手順を説明します。...

マウスの横大動脈狭窄

経胸壁心エコー検査は、マウスの心機能の評価のための非侵襲的方法を提供しています。超音波検査とドップラーイメージングモダリティの組み合わせは、一緒に心臓の収縮期および拡張期のパフォーマンスの評価を提供する、心臓と心臓内の血流の寸法測定を、得るために使用することができます。...

マウスにおける経胸壁心エコー

このビデオでは、麻酔マウスの心エコー検査を実行するためにレールマウント高周波超音波プローブの使用方法を示します。方法は、カラードップラー、歪みの解析だけでなく、一般と標的コントラストイメージングなどの新しい、より強力なツールに加え、心機能の両方を従来の2次元およびMモードの測定値を説明します。...

マウス心エコー検査と超音波イメージング

このビデオでは、実験用マウスで心エコー検査を行うためのプロトコルについて説明しています。...

マウス心エコー検査:心臓の形態を評価するための非侵襲的技術

右心室（RV）機能障害は心血管疾患の病因に重要であり、まだ限られた方法論は、その評価のために用意されています。超音波画像診断の最近の進歩により、縦方向のRV研究のための非侵襲的かつ正確なオプションを提供しています。ここで、我々に詳細のRV圧負荷のマウスモデルを使用してステップバイステップの心エコー法。...

経胸壁心エコー検査による肺動脈狭窄のマウスモデルにおける右室の構造と機能の評価

このプロトコルは、マウスの心臓および心臓弁機能の包括的な表現型のための心エコー検査アプローチの詳細な説明を提供します。...

マウスの弁膜症の包括的表現型の特徴のための心エコーアプローチとプロトコル

気管挿管と人工呼吸器の使用を排除しながら、低侵襲性横大動脈狭窄（MTAC）は、通常の横方向の大動脈狭窄（TAC）の必需品を節約します。これは、特に翻訳研究における左心室過負荷のハイスループット研究のために非常に望ましい方法であることが分かります。...

マウスにおける低侵襲横大動脈狭窄

心エコー検査は、マウスで多用されます。高価な高分解能超音波デバイスは、この目的のために開発されています。このプロトコルでは、心臓形態を決定する組織学的形態計測学的解析と組み合わせて現実的な心エコー手順について説明します。...

マウスの心臓形態の心エコー検査・組織学的検討

本プロトコルは、自作リトラクターを用いた低侵襲横断大動脈狭窄(TAC)手順を伴う修正され単純化された技術を記述する。この手順は人工呼吸器や顕微鏡なしで行うことができ、圧力過負荷を引き起こし、最終的には心肥大または心不全につながります。...

マウスにおける横行大動脈狭窄の修正技術

この記事では、マウスの右心室の大きさや肺高血圧症の心エコー評価のためのプロトコルを提供します。アプリケーションでは、心筋症および肺血管疾患のトランスジェニックおよび毒素誘発マウスモデルにおける表現型の決定およびシリアル評価を含める。...

マウスの右心の心エコー評価

学ぶ心エコーイメージングによる横大動脈狭窄マウスモデルの心機能評価法。Bモード、Mモード、ドップラー技術を用いて非侵襲的に心疾患の進行を経時的にモニタリングし、心血管研究における心肥大と心不全の理解に貢献します。

心臓形態学的および心エコーイメージングによって横大動脈狭窄のマウスモデルにおける機能の変更の評価

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