Name: 固形腫瘍内の灌流、間質液圧とリポソーム蓄積の空間測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min
Description: 学ぶ腫瘍微小循環と間質液圧の空間マッピング法。ナノ医薬品の腫瘍内蓄積と微小環境特性の相関をマイクロCTとロボットシステムで可視化し、がん治療の薬物送達戦略改善に貢献する。

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著者は、MDA-MB-231細胞の培養とMDA-MB-231異種移植片の移植を支援してくれたJaved Mahmood博士、CT-リポソームを準備してくれたLinyu Fanに感謝したいと思います。Shawn Stapletonは、CIHRのNatural Sciences and Engineering Research Postgraduate Scholarships ProgramおよびTerry Fox Foundation Strategic Initiative for Excellence in Radiation Research for the 21st Century(EIRR21)からの資金提供に感謝しています。この研究は、テリー・フォックス・ニュー・フロンティア・プログラム(020005)とカナダ衛生研究所(102569)からの助成金によって支援されました。

すべてのin vivo実験は、大学健康ネットワーク施設内動物管理使用委員会によって承認されたプロトコルの下で行われました。 1.動物モデル<ol><li>一緒に10％ウシ胎児血清（FBS）およびペニシリン-ストレプトマイシンの100倍希釈液を含むDMEM中で5×10 6個 の MDA-MB-231 7乳腺癌腫瘍細胞との間の培養物。 </li><li>収穫細胞、それらを0.05％トリプシン-EDTA溶液を用いて80％コンフルエントである場合。 3-5分後、DMEMの3倍容量のトリプシン-EDTAを中和します。細胞の15μlのアリコートを取り、血球計数器を使用してカウントされます。 200×gで5分間ペレット内に遠心分離細胞、および1mlあたり10×10 6細胞の濃度でHBSに再懸濁します。 </li><li>インプラントの皮下（SC）各8〜12週齢の雌SCIDマウスの後肢に1×10 6 2個の細胞を注入した腫瘍（n = 5）でした。注射のための標準的な25 Gの針を使用してください。 </li><li>モニタートンumor成長キャリパー（幅2×体積= 0.5×長さ）を使用し、SC腫瘍がボリューム&gt; 200ミリメートル3（約7〜9日）に達した後、測定を開始します。 </li></ol> 2. CT-リポソームの調製とキャラクタリゼーション<ol><li>リポソームの調製<ol><li> 1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン（DPPC）、コレステロール（CH）、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-含む、CTリポソームための脂質成分（200ミリモル/ L）を溶解40：5 DPPC：CH：DSPE-PEG2000 55のモル比で、70℃で無水エタノール中-phosphoethanolamine-N - ポリ（エチレングリコール）2000（DSPE-PEG2000）。 </li><li> 70℃で熱を維持することにより、エタノールを蒸発させ、その後、最終脂質濃度を100mMとなるような溶液へのCT造影剤イオヘキソール（ヨウ素300ミリグラム/ ml）を加えます。 </li><li>頻繁にボルテックスしながら4時間70℃で溶液を維持します。 </li><li>単層小胞を得るために、サンプル5ティムを押し出します2つの貫通ESは250 psiの圧力で200 nmの細孔サイズの膜を積層し、10mlの脂質押出機を用いて400 psiで積層された2つの80nmの細孔サイズ膜を通して5サイクルによって再び押し出し。各押出成形サイクルの開始時に押出機中にリポソームを10 mlの容量をピペット各押出サイクルの後、滅菌コニカルチューブまたはガラスバイアルに集めます。 </li><li> 100 kDaの分子量は0.02 mMのHEPES緩衝食塩水（HBS、pH7.4）中の250倍容量の過剰に対する（MWC）透析バッグをカット用いた透析の16時間までの未カプセル化イオヘキソールを削除します。例えば、ビーカー内袋の外側HBSの250ミリリットルの透析袋の中のリポソーム溶液1mlを配置します。 </li><li>製造業者の指示に従って75万nomical MWC商業接線流システムを用いて、CT-リポソームを濃縮します。約55mgのmlの最終ヨウ素濃度まで濃縮-1。 </li></ol></li><li>リポソームキャラクタリゼーション<ol><li> ioxeholを解放した後、脱イオン水の100倍容量過剰を使用して希釈するために、エタノールの10倍量の過剰を使用して、CT-リポソームを破裂させることにより、メジャー封入効率（ すなわち 、リポソームの10μlを100μlのエタノールを使用して破裂した後、希釈しました10mlを最終容量）。 </li><li> 245ナノメートルの波長で検出付きUV分光計を使用してイオヘキソール濃度を決定します。調製中に添加剤の量に放出イオヘキソール剤の割合量を取ることによってカプセル化効率を計算します。 </li><li>製造業者の指示に従って、動的光散乱粒径分析器システムを用いて流体力学的直径およびゼータ電位を測定します。測定を容易にするために、脱イオン水で200倍によるCT-リポソーム溶液（最終容積の1ミリリットル中のリポソームの、すなわち 5μl）を希釈します。 </li></ol></li></ol>腫瘍の微小循環とCT-リポソームの3 CTイメージング分布注：別のソフトウェアバージョンや装置が使用されている場合、容積走査を実行するための製造元の指示に従ってください。 <ol><li>医療空気または酸素と混合し、2％イソフルランを用いて、各マウスを麻酔し、つま先をつまんと全く反応を観察していないことで確認してください。麻酔下ながら乾燥を防ぐために、目に軟膏を適用します。薄いプラスチックボードに足をテーピングすることにより腹臥位で動物を固定します。 </li><li>外側尾静脈に、PE10チューブが20 cmの接続カスタム27 Gカテーテルを、置き、テープのいくつかの部分で所定の位置に固定します。 </li><li> CT-リポソームの少なくとも200μLを含むように1ミリリットル注射器を準備します。カテーテルをフラッシュするために使用するように生理食塩水で1ミリリットル注射器を準備します。 （体積比1比9）最後に、生理食塩水と混合した自由イオヘキソールの少なくとも150μlの1ミリリットル注射器を準備します。 </li><li>マイクロCTスキャナのベッドになりやすいマウスを置きます。 tumoを配置するために、レーザー測位システムを使用して各スキャンについてほぼ同じ方向でrを。 </li><li>シリンジポンプにCT-リポソーム注射器を置き、シリンジにカテーテルを接続します。秒あたり10μlにポンプ速度を設定します。 </li><li> CTスキャナコンソールソフトウェアを使用して、明暗較正スキャンを実行することによって、システムを初期化します。関心の各撮像プロトコルの明暗スキャンオプションを選択し、ドロップダウンメニューから、明暗を選択し、キャリブレーションを開始するために、スキャンボタンを押してください。 </li><li>任意の造影剤注入前の腫瘍の体積の解剖学的マイクロCTを実行します。インターロックがクリアされたCTスキャナの安全性を確保するために、CTスキャナコンソール・ソフトウェア・インジケータを見てください。 CTスキャナコンソールを選択し、スキャンで80 kVで、70ミリアンペアの管電流のX線エネルギーを選択して、時間を16秒かけて千画像投影をキャプチャします。スキャンを開始するためのスキャンボタンを押してください。 </li><li> 400mgのヨウ素kgの濃度でCT-リポソームのボーラスを注入するシリンジポンプを使用して-1。約150μlの（25グラムのマウスを想定）の容量を注入するポンプを設定します。注入するポンプの「開始」ボタンを押してください。手動で注入したエージェント全体量を確保するために（2回カテーテルの体積）の生理食塩水50μlのカテーテルをフラッシュし、カテーテルが明らかです。 </li><li> CT-リポソームの注入後10分待ってから、3.5で説明したのと同じ方法および設定を使用して第2の解剖学的スキャンを実行します。 </li><li> 3.3で説明したのと同じ注入速度の設定を使用して：（1体積比9）生理食塩水と混合した自由イオヘキソールの100μlの容量を注入するシリンジポンプを設定することにより、DCE-CTスキャンを実行します。 <ol><li> CTスキャナコンソールで取得ごとに10秒80 kVで、90ミリアンペアのチューブのエネルギーのX線エネルギーの設定を使用し、最初の30秒間416画像投影毎秒を取得し、続いて5分のダイナミックスキャンを選択。 DCE-CTデータの5秒をキャプチャした後、充血のスタートボタンを押してくださいn個のポンプ。 </li><li> DCE-CTスキャン後の体積解剖学的マイクロCTスキャンを実行します。 </li></ol></li><li>ステップ3.5で説明したのと同じ体積CTの設定を使用して、CT-リポソームの48および72時間後、注射の間の解剖学的CT画像をキャプチャします。 </li><li> GPU-再構築ソフトウェアを使用して、解剖学的CTおよびDCE-CTデータを再構成します。 <ol><li>再構築ソフトウェアにイメージをロードします。マウスを使って画像の上にROIを描くことによって再構成されるべき関心領域を選択します。再構成された撮像されたため、保存場所とファイル名を設定し、「.MAT」として出力ファイルの種類を選択します。 注：ソフトウェアが自動的に解剖学的スキャン用のX 0.153 X 0.153 0.153ミリメートル3に再構成されたボクセルサイズを設定し、 DCE-CTスキャンのための0.153 X 0.153 X 0.462ミリメートル3。 「再構成を開始」ボタンをクリックします。 </li></ol></li><li>計算するためにCT-リポソームの注入前及び10分後注射スキャンを使用以前3に記載のプラズマ体積分率。さらに、先に7に記載のように、間質体積分率を計算するためにプレ噴射とイオヘキソールの5分間注入後スキャンを使用します。 </li><li>腫瘍体積内の関心領域（ROI）を識別する能力を提供するソフトウェアにDCE-CTデータをインポートすることで、時間強度曲線（のTIC）を取得します。その後、時間の関数としてのROIの平均CT強化を計算します。この実験では、カスタム・ソフトウェアは、ROIを特定し、TICを算出するために開発されました。 </li><li>二区画トレーサー動態モデルを用いて測定のTICを当てはめることによって灌流および血管透過性の定量的な推定値を得ます。フィッティングは、DCE-CT解析ソフトウェアを使用して実施し、二コンパートメントトレーサー動態モデルにおける固定パラメータとしてアプリオリプラズマ体積分率の推定値との間質体積分率を使用することができます。プラズマのアプリオリ推定値を得るために、以前に報告された方法を使用しますa及び間質体積分率14。 </li></ol>腫瘍間質液圧の4空間測定<ol><li> IFPを測定するには、PE20ポリエチレンチューブの50センチメートルを通じて圧力変換器にし、IFP取得システムに25 G脊髄針を接続します。ヘパリン硫酸/食塩水（1:10）でシステム全体を洗浄します。使用前に70％のイソプロピルで針を滅菌します。 </li><li>収集システムの電源をオンにし、IFP取得ソフトウェアを起動し、mmHgのでIFP測定値を取得するためのシステムを較正するための設定ファイルをロードします。連続IFPデータを収集するために取得]ボタンをクリックします。 </li><li> 4.8に記載の方法を使用して、CT-リポソームの48および72時間後噴射との間のIFP測定値（これは、腫瘍におけるCT-リポソームのピーク蓄積のおおよその時間に相当する）を行います。 CT-IFPロボットにIFP針を取り付けます。 </li><li>以下のための座標系を整列させるために校正スキャンを実行CT-IFPロボットとCTスキャナ。 CT-IFPロボットに基準マーカーの添付ファイルを追加し、4異なる位置に基準マーカと4容積CTスキャンを実行します。 <ol><li> 、CT-IFPロボットコントローラソフトウェアを起動し、ロボットを初期化し、X、Y、Zのターゲット位置を入力し、「GO」ボタンをクリックすることで、3の位置にロボットを移動させます。 </li><li>次のxにおけるCTスキャンを取り、Y、Z座標：（1）0,0,0。 （2）-10,0,0と、 （3）0,7,0と、及び（4）0,0,10。 90 kVの、10ミリアンペア、スキャンを開始するために、「スタート」CTスキャナのソフトウェアとプレスを用いて16秒のスキャンを選択します。 3.10に記載されているように、スキャンを再構築します。 </li></ol></li><li> CT-IFPロボットアラインメントソフトウェアを起動します。その後、「開く」をクリックし、「登録データ &#39;領域にロードされて「追加」ボタンをクリックし、4.3で得られた4再構成された登録スキャンを選択します。 注：基準マーカのピクセル位置が自動的にsoftwaに入力されます再。 <ol><li> 「計算変換」ボタンをクリックし、「変換を適用」ボタンをクリックします。これは、CT-IFPロボット座標系をCTスキャナに座標系を変換するために使用されるアライメント・データを生成します。キャリブレーションが完了した後、CT-IFPロボットに動物プラットフォームを取り付けます。 </li></ol></li><li>医療空気または酸素と混合し、2％イソフルランを用いて、各マウスを麻酔し、つま先をつまんと全く反応を観察していないことで確認してください。 CT-IFPロボットプラットフォーム上で動物を固定化し、腫瘍はCT-IFPロボットシステムにアクセス可能であるようにマウスを置きます。それはIFP針挿入中に移動しないようにテープを用いて腫瘍を固定化します。 </li><li> IFPの針を挿入する前に、解剖学的マイクロCTスキャンを実行します。 3.10に記載されている手順を使用して、CTデータを再構成します。 </li><li> CT-IFPロボットアラインメントソフトウェアに予め針挿入CTデータをロードします。腫瘍を可視化するためのウィンドウとレベルを調整します。目をクリックします。任意の画像における腫瘍の電子リム、第2リムの場所をクリックしてください。 注：このソフトウェアは、2つの位置の間で直線に沿って一連の位置を計算します。 x、yの注意およびzは、リストから5~8等間隔の一連の位置の座標。 </li><li>挿入前にヘパリン生理食塩水で針をフラッシュすることによりIFPシステムを準備します。 </li><li> CT-IFPロボット制御ソフトウェアに、X、Y、Zに第1の予め決定された針の位置を入力し、Enterキーを押しムーブ「GO」ボタンをを希望する位置にロボットを移動します。組織に針を挿入するために「挿入針」ボタンをクリックします。 <ol><li>針を挿入した後IFP針とIFP測定が増加し、IFP収集ソフトウェアにあらかじめつまん値に戻すことを指摘し、PE20チューブをつまんおよび放出することによって、組織間の良好な流体連通を確保します。ベースラインに戻らないの測定を拒否します。 </li></ol></li><li>取得します挿入された針で解剖学的CTスキャンは、その後、組織から針を後退させるためにCT-IFPロボット制御ソフトウェア上で「撤回針」ボタンをクリックします。 IFP値が針の撤退後に前針挿入値には戻りません任意のIFP測定を拒否します。これは、針が測定中に詰まっされた可能性がありますを意味します。繰り返しは、各針位置のために4.10に4.8を繰り返します。 </li><li>針の挿入後の体積のCTスキャンで識別される腫瘍体積の質量の中心に針ポートの相対x、y及びz位置を計算することによって、腫瘍容積内の針の位置を決定します。 </li><li>すべての測定が完了した後にケージに動物を返します。無人の動物を残して、意識が回復してきた、彼らは胸骨横臥位を維持できるようになるまで、それらを観察するために世話をしないでください。 </li></ol>

<ol><li>Seo, J. W., Zhang, H., Kukis, D. L., Meares, C. F., Ferrara, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+to+label+preformed+liposomes+with+64Cu+for+positron+emission+tomography+%28PET%29+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+chemistry%22%5BJournal%5D)">A novel method to label preformed liposomes with 64Cu for positron emission tomography (PET) imaging.</a> Bioconjugate chemistry. 19 (12), 2577-2584 (2008).</li>
<li>Huang, H., Dunne, M., Lo, J., Jaffray, D., Allen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+Computed+Tomography-+and+Optical+Image-Based+Assessment+of+Liposome+Distribution%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Comparison of Computed Tomography- and Optical Image-Based Assessment of Liposome Distribution.</a> Molecular Imaging. 12 (3), 148-160 (2013).</li>
<li>Stapleton, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mathematical+model+of+the+enhanced+permeability+and+retention+effect+for+liposome+transport+in+solid+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">A mathematical model of the enhanced permeability and retention effect for liposome transport in solid tumors.</a> PloS one. 8 (12), e81157(2013).</li>
<li>Zheng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multimodal+nano+agent+for+image-guided+cancer+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A multimodal nano agent for image-guided cancer surgery.</a> Biomaterials. 67, 160-168 (2015).</li>
<li>Zheng, J., Liu, J., Dunne, M., Jaffray, D. A., Allen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+performance+of+a+liposomal+vascular+contrast+agent+for+CT+and+MR-based+image+guidance+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmaceutical+research%22%5BJournal%5D)">In vivo performance of a liposomal vascular contrast agent for CT and MR-based image guidance applications.</a> Pharmaceutical research. 24 (6), 1193-1201 (2007).</li>
<li>Harrington, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+targeting+of+solid+tumors+in+patients+with+locally+advanced+cancers+by+radiolabeled+pegylated+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Effective targeting of solid tumors in patients with locally advanced cancers by radiolabeled pegylated liposomes.</a> Clinical Cancer Research. 7 (2), 243-254 (2001).</li>
<li>Stapleton, S., Allen, C., Pintilie, M., Jaffray, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+perfusion+imaging+predicts+the+intra-tumoral+accumulation+of+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Tumor perfusion imaging predicts the intra-tumoral accumulation of liposomes.</a> J Control Release. 172 (1), 351-357 (2013).</li>
<li>Lammers, T., Kiessling, F., Hennink, W. E., Storm, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanotheranostics+and+image-guided+drug+delivery%3A+current+concepts+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Pharm%22%5BJournal%5D)">Nanotheranostics and image-guided drug delivery: current concepts and future directions.</a> Mol. Pharm. 7, 1899-1912 (2010).</li>
<li>Stapleton, S., Milosevic, M. F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStapleton%2C+S+%22Cancer+Targeted+Drug+Delivery%22">Cancer Targeted Drug Delivery</a>. , Springer. 241-272 (2013).</li>
<li>Blanco, E., Shen, H., Ferrari, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+nanoparticle+design+for+overcoming+biological+barriers+to+drug+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+biotechnology%22%5BJournal%5D)">Principles of nanoparticle design for overcoming biological barriers to drug delivery.</a> Nature biotechnology. 33 (9), 941-951 (2015).</li>
<li>Heldin, C. H., Rubin, K., Pietras, K., Ostman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+interstitial+fluid+pressure+-+an+obstacle+in+cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">High interstitial fluid pressure - an obstacle in cancer therapy.</a> Nat Rev Cancer. 4 (10), 806-813 (2004).</li>
<li>Chauhan, V. P., Stylianopoulos, T., Boucher, Y., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delivery+of+molecular+and+nanoscale+medicine+to+tumors%3A+transport+barriers+and+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+review+of+chemical+and+biomolecular+engineering%22%5BJournal%5D)">Delivery of molecular and nanoscale medicine to tumors: transport barriers and strategies.</a> Annual review of chemical and biomolecular engineering. 2, 281-298 (2011).</li>
<li>Bax, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+image-guided+robotic+needle+positioning+system+for+small+animal+interventions%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+physics%22%5BJournal%5D)">3D image-guided robotic needle positioning system for small animal interventions.</a> Medical physics. 40 (1), 011909(2013).</li>
<li>Stapleton, S., Milosevic, M., Tannock, I. F., Allen, C., Jaffray, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+intra-tumoral+relationship+between+microcirculation%2C+interstitial+fluid+pressure+and+liposome+accumulation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Controlled+Release%22%5BJournal%5D)">The intra-tumoral relationship between microcirculation, interstitial fluid pressure and liposome accumulation.</a> Journal of Controlled Release. 211, 163-170 (2015).</li>
<li>Stapleton, S., Allen, C., Pintilie, M., Jaffray, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+perfusion+imaging+predicts+the+intra-tumoral+accumulation+of+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Tumor perfusion imaging predicts the intra-tumoral accumulation of liposomes.</a> J Control Release. 172 (1), 351-357 (2013).</li>
<li>Brix, G., Zwick, S., Kiessling, F., Griebel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacokinetic+analysis+of+tissue+microcirculation+using+nested+models%3A+multimodel+inference+and+parameter+identifiability%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+physics%22%5BJournal%5D)">Pharmacokinetic analysis of tissue microcirculation using nested models: multimodel inference and parameter identifiability.</a> Medical physics. 36 (7), 2923-2933 (2009).</li>
<li>Brix, G., Griebel, J., Kiessling, F., Wenz, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracer+kinetic+modelling+of+tumour+angiogenesis+based+on+dynamic+contrast-enhanced+CT+and+MRI+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22European+journal+of+nuclear+medicine+and+molecular+imaging%22%5BJournal%5D)">Tracer kinetic modelling of tumour angiogenesis based on dynamic contrast-enhanced CT and MRI measurements.</a> European journal of nuclear medicine and molecular imaging. 37 (1), 30-51 (2010).</li>
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著者は開示するものは何もありません

本明細書に提示される画像ベースの測定のための方法は、腫瘍の微小循環特性、IFP、およびCT-リポソーム蓄積の空間分布の決意を可能にします。これらのプロパティを関連付けるための以前の試みは、複数の腫瘍を有する動物全体で一括測定を行うに依存していましたので、一般的にナノサイズの薬物送達システム15のために観察された腫瘍内蓄積の不均一性に責任のメカニズムを解明するため、感度を欠いています。 DCE-CTは、腫瘍微小循環の特性における腫瘍内の変化を測定するためのツールを提供し、容積CTは、CT-リポソーム堆積速度の正確な描写を提供し、CT-IFPロボットシステムにIFPの空間マッピングを実行するためのツールを提供します同じ動物。また、DCE-CTイメージングは​​、潜在的に、本研究の知見を作り、臨床設定において臨床的に訳を、腫瘍の血行動態を測定するための臨床的に承認された方法であり、テーブル。 測定の複雑さを考えると、堅牢なデータ・セットの収集を確実にするためにいくつかの重要な要因があります。腫瘍微小循環のDCE-CTベースの定量化は間違いなく、腫瘍の血行動態の正確な...

ナノ粒子薬物送達系の腫瘍内蓄積を測定することは、細胞傷害性薬物の適切な濃度は、腫瘍内で達成されたかどうかを決定するための重要なツールを提供することができます。 「イメージ可能な」リポソーム系の開発は、陽電子放射断層撮影（PET）1、光学蛍光2、及びコンピュータ断層撮影（CT）3などのイメージングモダリティを使用して、薬物送達ビヒクルの検出の非侵襲的かつ定量的なin vivoでのを可能にします4及び磁気共鳴イメージング（MRI）5。イメージングは、リポソーム送達システムの薬物動態及び生体内分布を決定し、ナノ粒子の蓄積6,7に被験者間の程度と腫瘍内の不均一性を明らかにするために使用されています。しかし、ナノ粒子のイメージングは​​、単独で彼らの貧しい人々の蓄積と流通に貢献した生物学的障壁を特定するものではありません。この知識はrに最も重要ですationalより有効な製剤の開発、および戦略は、腫瘍内蓄積8を向上させます。治療戦略は、改善されたナノ粒子の輸送9で得られた特定の生物学的障壁を調節するために適用され得ることが実証されています。さらに、ナノ粒子製剤は、具体的には、特定の生物学的輸送障壁10を克服するために開発されてきました。両方のシナリオでは、生物学的障壁の測定は、適切なナノ粒子薬物送達戦略の使用を導くために使用することができます。 腫瘍の微小循環およびIFPの上昇は、固形腫瘍9,11におけるリポソームのようなナノ粒子の腫瘍内蓄積の二つの重要な決定因子であると考えられています。しかし、貧しい人々のリポソームの蓄積に貢献する他の障壁が密な細胞外マトリックス、不浸透性血管系、および固体組織圧12が含まれます。これらの障壁は、時空間に関連しています方法、異常な血液の流れと上昇間質液圧は、ナノ粒子の初期の配信と溢出を駆動する二つの重要な要因であると。前述のように、腫瘍の微小循環との間の関係を確立し、IFPは上昇し、リポソームの腫瘍内蓄積は、リポソームの撮像データの適切な解釈のために不可欠です。腫瘍微小循環、高架IFP、および固形腫瘍におけるナノ粒子の蓄積との関係を測定するための、本明細書に定量的方法が提示されています。これは呼ばれる、容積CTイメージングを用いCTリポソーム造影剤、画像誘導ロボット針位置決めシステムを使用して、コンピュータ断層撮影、及び腫瘍IFPを拡張ダイナミックコントラストを用いて腫瘍微小循環の腫瘍内分布の共局在の測定を行うことによって達成されます。 CT-IFPロボット13。

<table><tbody><tr><td>MDA-MB-231 転移性乳房腺癌腫瘍細胞&nbsp;</td><td>ATCC</td><td>HTB-26</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ改良型イーグルミディアム (DMEM)&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1051</td><td></td></tr><tr><td>HyClone ペニシリン-ストレプトマイシン 100x Solution</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン (DPPC)</td><td>Avanti Lipids Inc., USA</td><td>850355P</td><td></td></tr><tr><td>コレステロール (CH)</td><td>Avanti Lipids Inc., USA</td><td>700000P</td><td></td></tr><tr><td>1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-ポリ(エチレングリコール) 2000 (DSPE-PEG2000)</td><td>Avanti Lipids Inc., USA</td><td>880128P</td><td></td></tr><tr><td>オムニパク (イオヘキソール) 300 mg of iodine/ml&nbsp;</td><td>GEヘルスケア、カリフォルニア州</td><td></td><td></td></tr><tr><td>80 nm 細孔径 Track-Etch ポリカーボネート膜</td><td>Whatman Inc.、米国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>200 nm 細孔径 Track-Etch ポリカーボネート膜</td><td>Whatman Inc.、米国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 m Lipex 押出機&nbsp;</td><td>Nothern Lipids Inc, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dialysis Bag Molecular Weight Cut Off (MWCO) of 8 kDa</td><td>Spectrum Labs, USA&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>750,000 ノミカル分子量カットオフ (NMWC) タンジェンシャル フロー カラム&nbsp;</td><td>MidGee限外ろ過カートリッジ、GE Healthcare、CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>蠕動ポンプ&nbsp;</td><td>Watson Marlow Inc., USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UV分光計</td><td>Helios &gamma;, Spectronic Unicam,&nbsp;米国</td><td></td><td></td></tr><tr><td>90Plus粒度分布分析装置&nbsp;</td>米国<td></td><td></td><td>ホルツビル市ブルックヘブン</td></tr><tr><td>eXplore Locus Ultra micro-CTシステム&nbsp;</td>カリフォルニア州<td></td><td>GEヘルスケア</td><td>CT-Consoleソフトウェア</td></tr><tr><td>AxRecon GPUベースの再構築</td>を使用して操作&<td>nbsp;Acceleware Corp. CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>27 G カテーテル SURFLO 翼付き輸液セット</td><td>テルモ メディカル プロダクツ、米国</td><td>SV*27EL</td><td></td></tr><tr><td>PE20 ポリエチレン チューブ</td><td>ベクトン ディキンソン、米国</td><td>427406</td><td></td></tr><tr><td>ペン先 25 G &times; 3.5&prime;&プライム;ホイテカー脊髄針&nbsp;</td><td>ベクトンディキンソン、米国</td><td>405140</td><td>IFP針</td></tr><tr><td>P23XL&nbsp;圧力トランスデューサ&nbsp;</td><td>ハーバード装置、CA</td><td>P23XL</td><td></td></tr><tr><td>PowerLab 4/35、ブリッジアンプ、LabChart Pro 7.0</td><td>ADInstruments Pty Ltd.、米国</td><td>PL3504、FE221</td><td>IFP取得システムおよび取得ソフトウェア</td></tr><tr><td>CT-Sabre Small Animall介入システム(CT-IFPロボット)</td><td>Parallax Innovations、CA</td><td></td><td>CT-IFPロボット制御ソフトウェア</td></tr><tr><td>CT-IFPロボットアライメントソフトウェア</td><td></td><td></td><td>を使用して操作 カスタムMatlabソフトウェア</td></tr><tr><td>DCE-CT解析ソフトウェア</td><td></td><td></td><td>カスタムMatlabソフトウェア</td></tr><tr><td>Matlab 2013b</td><td>Mathworks, USA</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

固形腫瘍内の灌流、間質液圧とリポソーム蓄積の空間測定

Spatial Measurements of Perfusion, Interstitial Fluid Pressure and Liposomes Accumulation in Solid Tumors

リポソームの異種の腫瘍内蓄積は、それらの効力の重大な決定要因です。カオス腫瘍微小循環および高いIFP両方をリポソームなどのナノテクノロジーベースの薬物送達系の異種腫瘍内分布に連結されています。本研究では、腫瘍の微小循環との関係は、IFPは上昇し、ナノ粒子の蓄積は、インビボ実験により調査しました。これは、コンピュータ断層撮影法（DCE-CT）およびマイクロCTスキャナに接続された新規な画像誘導ロボット針配置システムを用いて腫瘍IFPを測定拡張ダイナミックコントラストを用いて腫瘍微小循環を評価することによって達成されました。リポソームの腫瘍内蓄積は安定造影剤イオヘキソール（CT-リポソーム）をカプセル化するナノ粒子、リポソーム製剤のCT画像に基づく評価によって決定しました。の空間分布の共局在のために許可されたCT画像腫瘍の血行動態、IFPおよび乳癌の個々の皮下異種移植マウスモデルにおけるCT-リポソームの蓄積。測定は、灌流および血漿体積分率は、リポソームの腫瘍内分布の強力なメディエーターであるという発見につながりました。さらに、結果は、IFPは、血流を調節を通してリポソーム分布を媒介する間接的な役割を果たしていることを示唆しています。

上記のプロトコルは、それぞれ91.8±0.3 nmおよび-45.5±2.5 mVのを、イオヘキソールのカプセル化された濃度とCT-リポソームを得るリポソーム直径、および55ミリグラムミリリットル-1のゼータ電位を意味するべきである。 図1aは、代表DCE-CTイメージングを含み、その結果、イオヘキソールの腫瘍内蓄積の経時変化を示すボリュームデータの時系列を得ました。腫瘍内のROIを選択すると、灌流、血管透過性、血漿体積分率、及び間質体積分率（ 図1b）の推定値を得るために、トレーサー動態モデリング法を用いて定量することができるTICをもたらします。この研究では、2コンパートメントトレーサー動態モデルを使用し、Matlabの14に実装さ非線形曲線フィッティングルーチンを用いて測定TICに収まります。同じサイズの複数の関心領域に腫瘍体積を分割することは、Tの定量化を可能にします彼は、腫瘍体積（ 図1c）内血行動態パラメータの分布を空...

リポソームの不均一な腫瘍内蓄積は、異常な腫瘍微小環境に関連しています。ここでは、画像誘導ロボットシステムを使用して、灌流イメージングおよび間質液圧(IFP)の上昇により腫瘍の微小循環を測定する方法が提示されます。測定値は、体積マイクロCTイメージングを使用して決定されるリポソームの腫瘍内蓄積と比較されます。

The heterogeneous intra-tumoral accumulation of liposomes is a critical determinant of their efficacy. Both the chaotic tumor microcirculation and ...

この実験の全体的な目的は、ナノ治療薬の腫瘍内蓄積を、腫瘍の微小循環や間質液圧（IFP）の上昇を含む腫瘍微小環境の特性と関連付けることです。この手法を用いることで、腫瘍内部におけるナノ粒子の不均一な取り込みを駆動する要因は何か、といったナノ医薬品に関する重要な疑問に答えることができます。この手法の主な利点は、腫瘍微小環境の特性とナノ粒子の腫瘍内分布の共局在的な空間マッピングが可能になることです。トペンゲにより適切な麻酔レベルにあることを確認した後、マウスの目に軟膏を塗り、動物を伏臥位にして薄いプラスチックボード上に四肢をテープで固定します。次に、20 cmのPE10チューブに接続したカスタム27ゲージカテーテルを尾側静脈に挿入し、チューブを数枚のテープで固定します。次に、1 mLシリンジ1本に200 µL以上のCTリポソームを充填し、もう1本の1 mLシリンジに、遊離iohexolと生理食塩水を体積比9:1で混合した溶液を150 µL以上充填します。CTリポソームのシリンジをシリンジポンプにセットしてカテーテルを接続し、ポンプの流量を600 µL/min（10 µL/secに相当）に設定します。その後、マウスをマイクロCTスキャナーのベッドに乗せ、レーザーポジショニングシステムを使用して、各スキャンで腫瘍がほぼ同じ方向になるように調整します。関心のある各イメージングプロトコルについて、CTスキャナーコンソールソフトウェアのドロップダウンメニューから「bright dark」を選択し、スキャンボタンをクリックしてキャリブレーションを開始し、システムを初期化します。造影剤を注入する前に腫瘍の体積解剖学的マイクロCTを取得するには、まずCTスキャナーコンソールソフトウェアのインジケーターを確認し、CTスキャナーの安全インターロックが解除されていることを確認してください。次に、X線エネルギー 80 kilovolts、管電流 70 milliamps を使用し、1,000 枚の投影画像をキャプチャするスキャンを選択します。次に、スキャンを開始します。スキャンが完了したら、ポンプを設定してリポソーム溶液を約150 microliters注入し、スタートボタンを押して、ヨウ素濃度 55 milligram/mL のCTリポソームをボーラス注入します。その後、リポソーム剤が全量注入され、カテーテル内が洗浄されたことを確認するため、50 microliters の生理食塩水でカテーテルを手動でフラッシュします。10分後、先ほど実演した通りに腫瘍の2回目の解剖学的スキャンを行います。DCE-CTを行うには、イオヘキソール溶液が入ったシリンジをシリンジポンプにセットし、同じ注入速度で100 µLのイオヘキソールを注入するようにポンプを設定します。これらの注入量は標準的な200 µ

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Research

JoVE Journal

Medicine

医学

間質液の流れが固形腫瘍で上昇し、腫瘍細胞の浸潤を調節することができる。ここでは、マトリックス中に埋め込まれた細胞に間質液の流れを適用し、細胞浸潤に及ぼす影響を測定する手法を説明します。このテクニックは簡単に他のシステムを研究するために適応させることができます。...

腫瘍細胞の浸潤を間質液流れに及ぼす影響を測定するための三次元細胞培養モデル

本研究で報告された新たなプロトコルが組み合わせによるマウスの単一細胞の解像度で肺転移の選択的検出を可能に...

組み合わせによるマウスのシングルセル解像度で肺転移の可視化の向上<em&gt;のin-situ</em肺組織とのX-gal染色の&gt;灌流<em&gt; lacZを</em&gt;タグ付き腫瘍細胞

このビデオでは、画像誘導ロボットシステムを使用した灌流イメージングにより、腫瘍内の間質液圧を測定する技術について説明しています。測定値は、固形腫瘍内のリポソームの腫瘍内蓄積と比較されます。...

腫瘍間質液圧の空間計測:間質液圧測定法

本論文では、ダイナミック造影蛍光ビデオ顕微鏡を用いてインビボで腫瘍の微小血管を分析する手法を提案する。二つの定量的なパラメータを取得した：機能性腫瘍の血管分布を反映した毛細血管密度、および内皮の壁の漏出インデクス反映漏れ。...

蛍光共焦点ビデオ顕微鏡を使用して腫瘍血管新生のin vivoイメージング

ラットの胸膜表面の肺癌転移における微小循環血流速度を、閉鎖胸部肺生体内顕微鏡法を用いて自動的に測定する方法が提示されています。このモデルは、げっ歯類の肺転移に関する生理学的研究を実施するための広範なツールとして使用される可能性を秘めています。...

ラットの肺転移における微小循環血流速度の自動測定

in vivoイメージングのための蛍光色素の使用は、オプソニン化、迅速なクリアランス、低い検出感度、および宿主に対する細胞毒性の影響によって大幅に制限される可能性があります。フィルムの水和と押出しによって蛍光色素をリポソームにカプセル化すると、蛍光の消光と保護が可能になり、高い検出感度でin...

のためのツールと​​してのリポソームカプセル化された近赤外蛍光体の蛍光消光インビボ光学イメージング

このプロトコルは細胞特異的蛍光マーカーを発現するトランスジェニック マウスの生体イメージングを説明します。生体イメージングは、プロセスの顕微可視化が可能な埋込型の windows...

腫瘍関連血管系を使用しての生体顕微鏡が背高度な蛍光トランスジェニック マウスの皮下脂肪のウィンドウの部屋

マウスにおける高分子量(155kDa)デキストランの静脈注射を用いて、転移(TMEM)戸口機能および癌細胞イントラバシスの腫瘍微小環境に関連する一過性血管透過性を評価する2つの方法について述べた。この方法には、生きた動物におけるインビタルイメージングと免疫蛍光を用いた固定組織分析が含まれる。...

インビタルイメージングと固定組織解析を用いた癌細胞播種に伴う転移戸管媒介血管透過性の腫瘍微小環境の評価

このプロトコルの目的は、蛍光標識されたリポソームを合成し、フローサイトメトリーを使用して細胞レベルでリポソームのin...

蛍光色素標識リポソームのin vivo組織特異的細胞取り込みの調製、投与、および評価

このプロトコルは、ハイスループットの基礎およびトランスレーショナルヒトがん研究を実行し、薬物スクリーニング、疾患モデリング、および個別化医療アプローチを進歩させるための生理学的に関連性のある腫瘍オンチップモデルを提示し、ローディング、メンテナンス、および評価手順を説明します。...

がん研究のための生理学的ヒト血管新生微小腫瘍モデルの確立

生体内顕微鏡所見の翻訳は、組織への深さの浸透が浅いという課題があります。ここでは、生体内顕微鏡と臨床的に適用可能な画像モダリティ(CT、MRIなど)の同時登録を可能にし、直接的な空間相関を実現し、生体内顕微鏡所見の臨床翻訳を効率化する可能性のある背側窓室マウスモデルについて説明します。...

トランスレーショナルがん研究における生体内顕微鏡検査と磁気共鳴画像法の併用のための背側Skinfold Window Chamber腫瘍マウスモデル

学ぶ腫瘍微小循環と間質液圧の空間マッピング法。ナノ医薬品の腫瘍内蓄積と微小環境特性の相関をマイクロCTとロボットシステムで可視化し、がん治療の薬物送達戦略改善に貢献する。

固形腫瘍内の灌流、間質液圧とリポソーム蓄積の空間測定

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