2016年11月17日
次の記事では効果的に輪部幹細胞欠損(LSCD)の持続可能なマウスモデルを作成する簡単な、再現可能な技術を提供します。この動物モデルで試験し、輪部幹細胞疾患の治療の有効性を比較するのに有用です。
この手順の全体的な目標は、辺縁系幹細胞欠損症の再現性、持続性、および持続性のあるマウスモデルを作成することです。このシンプルな手法は、標準的な化学的損傷モデルでは達成が難しい眼への望ましくない損傷を誘発することなく、辺縁系幹細胞欠損症の一貫した動物モデルを提供します。このモデルは、細胞および分子レベルでの疾患のプロセスを長期的に研究するのに役立ちます。
また、新しい治療法の有効性をテストまたは比較するため。マウスに麻酔をかけた後、つま先をつまんで十分な麻酔の深さを確保します。スリットランプの下で目を検査し、以前に角膜損傷がないことを確認します。.
1%の塩酸テトラカインを一滴目に入れ、60秒間待ちます。次に、5%ポビドンヨウ素を目とその周りの髪にやさしく塗ります。1分後、滴を拭き取るか、目の周りの髪に広げて、髪の毛がツールの先端に干渉しないようにします。
滅菌回転バリと滅菌曲げピンセットを準備し、処置中は滅菌シートの上に置いておきます。次に、曲がったピンセットを使用して鼻側からまぶたをつかみ、目をそっとプロクトして目を安定させます。力を入れすぎないように注意してください。
手術用顕微鏡で、滅菌済みの回転バリを使用して辺縁部の周りを2回剃ります。回転するバリで角膜上皮全体を輪部から輪部まで円形に取り外し、その先端の外側で作業します。間質の損傷を避けるために、上皮が除去された角膜部分を再度ブラシをかけないでください。.
目に圧力をかけないでください。必要に応じてブラシの先端を清掃します。角膜に滅菌PBSを一滴垂らし、剥がれた上皮シートを柔らかいクリーニングティッシュで拭き取ります。
次に、残りの上皮がある場合は剃ります。手術中は、マウスの尻尾に注意して、適切な麻酔の深さを確保してください。角膜にフルオレセインナトリウムを一滴垂らします。
30秒後に角膜を洗浄し、コバルトブルーフィルター付きの顕微鏡で検査して、上皮が完全に除去されたことを確認します。処置後、動物をケージに入れ、加熱ブランケットの上に置き、麻酔から完全に回復するまで30〜45分間観察します。その間、1%エリスロマイシン眼科用軟膏を目に塗布し、抗生物質の塗布を1週間毎日続けてください。.
また、0.1mg/kgのブプレノルフィンを直ちに皮下注射し、施術後12時間後に注射し、1日2回2日間続けて2日間投与します。これは、施術から1ヶ月後の角膜表現型です。辺縁系幹細胞欠損症の特徴である広範な血管新生が見られます。
正常な角膜はサイトケラチン12を発現しますが、サイトケラチン8または杯細胞は存在しません。辺縁系幹細胞欠損症では、サイトケラチン8と杯細胞が角膜に現れますが、サイトケラチン12は失われます。この技術を習得すると、1か月でマウスの角膜表面のほぼ全体を覆う角膜血管新生術が実現し、最大3か月まで安定します。
すでに上皮が切除されている角膜部分を再度ブラッシングすることは避けることが重要です。これにより、望ましくない間質の炎症や混濁を引き起こす可能性があります。辺縁系幹細胞欠損症の発症後、実験的治療法を試験し、比較することができます。
あるいは、怪我の直後に治療を開始することもできます。このビデオでは、マウスの辺縁系幹細胞欠損症を誘発するために、辺縁系上皮と角膜上皮を効果的に除去する方法を紹介しました。いくつかの変更を加えれば、他の動物にも実行できます。
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本記事では、持続可能なマウス辺縁幹細胞欠損(LSCD)モデルを作製するための再現可能な手法を提示します。このモデルは、疾患プロセスの研究および新規治療法の検証において不可欠です。
再現性のあるマウス角膜輪部幹細胞欠損(LSCD)モデルを構築することは、眼科領域の創薬における疾患関連システムの重要なニーズに応えるものです。このモデルにより、角膜疾患を標的とした再生医療および抗炎症療法の前臨床評価において、メカニズムに基づくリスク低減と予測精度の向上が可能になります。また、持続的な表現型とトランスレーショナルな整合性は、堅牢なパイプラインの推進とプログラム間の比較可能性を裏付けるものです。
このLSCDモデルは、発見から前臨床までの連続的なプロセスに組み込まれており、眼表面治療における仮説検証、リード化合物の同定、およびトランスレーショナルな妥当性確認を可能にします。