Name: マウス単離された灌流腎臓テクニック (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 19 s
Description: 学ぶマウス単離灌流腎臓法で、血圧やホルモンの影響を排除し、急性腎障害のメカニズムを体外で解析する手法。腎機能の独立した研究に有用です。

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著者は、貴重な科学的アドバイスを提供してくださったHans-Joachim Schurekに感謝します。著者は、優れた技術支援を提供してくださったMonique Carrel氏とMichèle Heidemeyer氏、原稿の批判的な読み方をいただいたDavid Penton Ribas氏とNourdine Faresse 氏、NaPi-2a抗体を提供してくださったCarsten Wagner氏とJürg Biber氏に感謝します。この研究は、スイス国立研究能力センター「Kidney.CH」とスイス国立科学財団からのプロジェクト助成金(310030_143929/1)によって支援されました。

この原稿に記載された動物に関わるすべての手順は、スイスの法律に基づいて行われ、チューリッヒ、スイスのカントンの動物への投与によって承認されました。 1.バッファの準備<ol><li> 4および抗利尿ホルモン（ADH）溶液（ 表1） -ソリューション1を準備します。 </li><li>透析緩衝液（ 表1）を準備します。 注：これは、灌流中に透析緩衝液として使用されるバッファです。その後、赤血球は、最終的な灌流液を形成するために、この緩衝液で希釈されます。 </li><li>赤血球製剤。 <ol><li>透析緩衝液で500ミリリットルにヒト赤血球濃厚液（ローカル血液バンクから得られた試​​験した材料）の250ミリリットルを希釈します。 8分間、2000×gで遠心分離します。任意の赤血球を除去しないように注意して、バッファを削除してください。 3回繰り返します。 </li></ol></li><li>バッファ;アルブミン（BSAウシ血清アルブミン）を準備します。 <ol><li> dialysiの200ミリリットルでバッファ、攪拌棒を用いてBSA 44gのを溶かします。ろ紙を用いて溶液をフィルタリングします。 </li></ol></li><li>灌流液を準備します。 <ol><li> BSA緩衝液に濾紙ステップ1.3.1から赤血球をフィルタリングします。透析緩衝液で800ミリリットルの全容量まで記入してください。 注：これは、最終的な灌流液です。ヘマトクリットは現在8と12％の間であるべきです。灌流液は4℃で最大12時間保存することができます。 </li></ol></li></ol> 2.開始透析と酸素化<ol><li>より大きなバッファ容器、小さいバッファ容器、及び湿室を37℃に（小、二重壁チャンバは後で腎臓を保持するために37℃、湿度100％にした）周囲の水浴をオンにします（ 図2） 。 </li><li>透析緩衝液と灌流液と小さい容器と、より大きなバッファ容器を埋めます。 </li><li>透析緩衝液に5％CO 2/95％O 2ガス流入をオンにします。 </li><li>透析緩衝液に対して灌流液の連続透析に切り替えます。低フラックス透析チューブを使用するように注意してください。ステップ3に進みます。 </li></ol><img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54712/54712fig2.jpg" /> 図2：灌流回路の模式図。スキームは、灌流回路の主要な構成要素とバッファフローの方向を示しています。濃い青で囲まれたすべてのコンポーネントは、水浴/サーモスタットで37℃に維持されています。 1：灌流バッファーの少なくとも3倍容量の透析バッファーを連続的に95％O 2/5％CO 2でバブリングします。 2：透析緩衝液および灌流緩衝液を連続的にローラーポンプにより透析チューブに互いに対して透析します。 3：これにより透析に、灌流バッファはO 2/5％CO 2および電解質のレベルを一定にthroughoを維持している9％に濃縮されていますutの灌流。 4：ローラーポンプは、腎臓に向かって灌流バッファを推進します。 5：ウインドケッセルは蠕動波を除去し、気泡トラップとして機能します。 6：（自由に交互の流れを可能にしながら、連続的な圧力を維持するために4（ローラーポンプ）に接続された）圧力トランスデューサ。 7：灌流を通して、腎臓は100％の空気湿度および37℃の腎臓温度のために湿ったチャンバ内に残っています。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54712/54712fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 3.外科的手順パート1（すべての合字の図については、図3を参照してください） 注：5-0手術用糸を使用して、すべての合字を実行します。 <ol><li>腹腔内注射によってマウス（0.9％のNaClに溶解した体重の20mg / mlのケタミンおよび1mg / mlのキシラジンの10μL/ g）を麻酔。 anesthの十分な深さを確認リア足の反射の欠如のためにテストすることによりESIA。 </li><li>湿室中仰臥位でマウスを修正しました。獣医軟膏で目を保護します。腰椎血管を上昇させるために背骨の下に1ミリリットル注射器を置きます。 </li><li>はさみで、その後、腹部の筋肉、胸骨開口最初の皮膚に恥骨稜から正中開腹術を行います。 </li><li>腸を削除し、腹部からのマウスの横方向の左側に配置します。 </li><li>結合組織から膀胱を解放し、尿管及び尿道の両方を探ります。 </li><li>左尿管（リガチャーI）の周りの合字を置きます。それを閉じます。 </li><li>尿道（リガチャーII）の周りの合字を置きます。それを閉じます。 </li><li>全膀胱（リガチャーIII）の周りに「投げ縄」リガチャーを置きます。 </li><li>膀胱に1ミリメートルを切開。 </li><li> 2cmのPE 50チューブを開口部にカニューレを挿入。 </li><li>チューブの周りに閉じるリガチャーIII。 </li><li>合字から左尿管及び尿道の先端をカットします。宣伝ちらしデルは、今だけ、自由に移動し、右尿管に取り付けられています。 </li><li>結合組織および脂肪の腹部大動脈をクリアします。 </li><li>腹半ば大動脈結紮（リガチャーIV）を配置します。 </li><li>上腸間膜動脈および腹腔動脈（リガチャーV）との間に横隔膜下の大動脈の周りに結紮糸を配置します。 </li><li>上腸間膜動脈（リガチャーVI）の周りの合字を置きます。 </li><li>直接右下のと左腎動脈（リガチャーVII）上記の大動脈結紮糸を配置します。 </li><li>尾静脈パッケージ（カヴァ）（リガチャーVIII）の周りの合字を置きます。ステップ4に進みます。 </li></ol><img alt="図3" src="/files/ftp_upload/54712/54712fig3.jpg" /> 図3：手術中に配置された合字の模式図。開腹手術後の開いた腹部のビュー。腸を左に出て移動されます。 L及びRは 、左右の腎臓を示します。ザ黒い線は、それぞれの合字の区域を示します。合字は、最初に配置し、テキストに与えられた順序で、閉じています。 Xは、大動脈カニューレ挿入のための切開の位置をマークします。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54712/54712fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 灌流回路の4プライミング<ol><li>ロータリーポンプを起動し、灌流液でチューブを埋めます。それから、すべての気泡を空にするように注意してください。 </li><li>灌流液とのほぼ中間のレベルにウインドケッセルデバイスを記入してください。 </li><li>すべてのチューブは充填され、フローがこの時間の間に腎臓レベルで灌流針を保管してください0であるときに0ミリメートルHgまで圧力変換器を校正。 </li><li>一定の最低レベル（0.6ミリリットル/分）で流れを維持し、ステップ5に進んでください。 </li></ol> 5.外科的手順パート2 <ol><li>リガチャーIVおよび左レナの分岐の間にクランプを置きリットル動脈。 </li><li>背壁を切らないように注意しながら、リガチャーIVの大動脈尾側に小さな切開を行います。 </li><li>血管拡張器と大動脈の開口部を拡張。 </li><li>針で大動脈にカニューレを挿入（長さ2cm、PE 50を引っ張って）、ちょうどクランプに先端をプッシュ。 </li><li>クランプを開きます。 </li><li>それは右腎動脈と大動脈の接合部に到達するまで頭側針の先端を押してください。 </li><li>閉じる結紮VII。 </li><li>合字IVを閉じます。 </li><li>ダイアフラムを解剖することによりハサミで胸を開きます。シングルカットでは、大動脈、大静脈、心臓や栄養神経を分離します。このステップでは、動物は、連続深麻酔下での急速な失血を経て犠牲になります。 </li><li>灌流ポンプの圧力制御を開始します。 80と100 mmHgの間の平均圧力を維持します。 </li><li>閉じるリガチャーV. </li><li>閉じるリガチャーVI。 </li><li>閉じるリガチャーVIII。 </li><li>結合TISSUから無料右の腎臓eとはさみで脂肪カプセル内への埋め込み。 </li><li>リガチャーVに近位大動脈をカット</li><li> VIを結紮糸遠位に上腸間膜動脈をカット。 </li><li>容器に身を切らないように注意しながら、腎臓支持維管束を切り出します。 </li><li>腎臓への接続時に肝臓をカットします。腎臓を解放するように注意してください、しかし、大静脈は、それによって開いたままにされるように、それに肝付着の小さな部分を残します。 </li><li>マウスのうち、腎臓バンドルしてください。湿ったチャンバーからマウスを外します。 </li><li>肝臓と腎臓（リガチャーIX）の接続の周りに「投げ縄」リガチャーを置きます。 </li><li>静脈ライン（2cmのPE 50）との大静脈にカニューレを挿入。 </li><li>閉じるリガチャーのIX。静脈ラインを通る静脈流出はすぐに開始する必要があります。 </li><li>モイストチャンバーを閉じます。 </li></ol> 6.ダウンストリーム分析<ol><li>以下の時間の間、継続的に血流とintravasculを監視Ar圧力15。分析のために使用することができる静脈流出、例えば、腎臓のレニン放出7を集めます。電解質濃度と糸球体濾過率14の分析のための尿を収集します。灌流の1時間後、腎臓をウェスタンブロッティングのためにスナップ凍結させることができるか、イメージングのために固定することが16に近づきます。 </li></ol>

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<li>Poosti, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precision-cut+kidney+slices+%28PCKS%29+to+study+development+of+renal+fibrosis+and+efficacy+of+drug+targeting+ex+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Precision-cut kidney slices (PCKS) to study development of renal fibrosis and efficacy of drug targeting ex vivo.</a> Dis Model Mech. 8 (10), 1227-1236 (2015).</li>
<li>Rahgozar, M., Guan, Z., Matthias, A., Gobé, G. C., Endre, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiotensin+II+facilitates+autoregulation+in+the+perfused+mouse+kidney%3A+An+optimized+in+vitro+model+for+assessment+of+renal+vascular+and+tubular+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nephrology%22%5BJournal%5D)">Angiotensin II facilitates autoregulation in the perfused mouse kidney: An optimized in vitro model for assessment of renal vascular and tubular function.</a> Nephrology. 9 (5), 288-296 (2004).</li>
</ol>

著者には競合する金銭的利益はなく、他に開示するものは何もありません。

灌流腎臓単離されたマウスは、多数の全身要因の影響により欠陥があることがあり、無傷の動物におけるin vivo実験、の間のギャップを埋める、1時間にわたって制御された環境のex vivoで腎機能を研究するためのツールであり、in vitroの実験で必ずしも機能上の無傷の臓器構造の影響を無視孤立ネフロンセグメントまたは培養細胞、。この特定のタスクを実行するとは別の技術は、筆者の知る限り、ありません。腎組織の生化学的研究は、しかし、腎臓スライス17を用いて、はるかに簡単な方法で行うことができます。提示された技術は、現在、腎臓生理学を研究するために主に使用されているが、多くの新しいアプリケーションが議論されています。例えば、灌流脱細胞化および再細胞化12中の腎臓生体工学のために使用することができます。前のtrに腎臓のほか、長時間の正常体温灌流灌流液に抗拒絶またはゲノム編集薬の高用量の投与とansplantationは、検討されています。臨床8、図9、図10、図11における。灌流腎臓単離さ...

臓器の孤立した灌流は、何十年もの間1のための生理学者の間で継続的な努力の対象となっています。技術は、血圧、ホルモン、又は神経のような全身的影響を受けず、臓器の機能を可能にし、検討することができます。カール・エドゥアルドLoebellは、1849年2に、孤立した腎臓の正常灌流を記載した最初であると考えられています。それ以来、灌流装置は、かなりの洗練を受けました。フレイとグルーバーは、連続灌流2のために酸素や拍動ポンプの人工肺を導入しました。初期の研究者は、主に大型哺乳動物、すなわち、豚2と犬3ワイスらによるラット腎臓の使用の-the最初の報告、の腎臓を研究している間。小哺乳類臓器灌流4の研究において画期的な出来事でした。 Schurek ら。十分な尿細管場合は灌流液に、哺乳動物の赤血球を追加することの必要性を報告酸素は5を達成されることになっていました。長期的な実験のためのクリティカルは、同じ研究グループ6によるバッファの連続透析を導入しました。 2003年には、Schweda ら。後でRahgozar らによって洗練機能マウス単離された灌流腎臓（MIPK）7を 、初めて報告しました。 18とリンデルら。 14。 ラット単離された灌流腎臓よりも技術的にはより困難ながら、MIPKの使用は、遺伝的に改変したマウスの広い配列の使用を可能にするという利点を有します。本論文では、1時間単離したマウスの腎臓を灌流するための本手法の詳細を提示しています。この方法は、腎臓の流量、血管抵抗、ホルモン放出、血液ガス分析、尿分析、および薬物の適用の継続的な評価を可能にします。手順の後、腎臓は、分子および生化学的解析のために処理することができる顕微鏡用に固定され、またはレシピエントマウスに移植した （ 図1）。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54712/54712fig1.jpg" /> 図1：単離された灌流腎臓に対する可能な入力/出力の概要。 BGA：血液ガス分析。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54712/54712fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> この技術は、おそらく多くの革新的なアプリケーションは、移植前に長期の正常体温腎臓灌流の夜明けで議論されているように10、9、8（抗拒絶またはゲノム編集薬の適用の有無にかかわらず）、今後数年間で関心が高まっ受け取ります、11、脱細胞化スカフォールド12から全体腎臓の生体工学、および多光子イメージング13のための蛍光色素の高用量の適用</sup&gt;。また、急性腎障害14中に特定の遺伝子の役割を研究するための理想的なモデルです。 ステップバイステップのプロトコルは、他の研究室が正常に単離したマウス腎臓灌流を行うことができるように与えられています。まず、緩衝液の組成および調製は、指定されています。そして、手術は、詳細に記載されており、重要なステップが示されています。第三に、データが成功した準備を代表するものであり、その提示されている：腎臓の血流量、血管抵抗、糸球体濾過率、およびフラクショナル電解質排泄-すべて灌流腎臓の異なるネフロンセグメントの形態の生存能および透過型電子顕微鏡写真のような官能測定灌流の1時間後に固定。

<table><tbody><tr><td>灌流回路:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Moistチャンバー834/8</td><td>ハーバード装置/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-2901</td><td></td></tr><tr><td>バスケットとサイドポート付きカニューレ</td>ハーバー<td>ド装置/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-2947</td><td></td></tr>サー<tr><td>モスタットTC120-ST5&nbsp;</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-4544</td><td></td></tr><tr><td>ISM 827/230V ローラーポンプ Reglo Analogue</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-0114</td><td></td></tr><tr><td>緩衝液用リザーバー 1 L</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-3438</td><td></td></tr><tr><td>緩衝液用リザーバー 0.5 L</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-3436</td><td></td></tr><tr><td>圧力トランスデューサ APT300&nbsp;</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-3862</td><td></td></tr><tr><td>TAM-D Plugsys Transducer</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-1793</td><td></td></tr><tr><td>SCP Plugsys servo controller</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-2806</td><td></td></tr><tr><td>Windkessel&nbsp;</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-3717</td><td></td></tr><tr><td>HSE-USBデータ収集</td><td>Harvard Apparatus/Hugo Sachs Elektronik GmbH</td><td>73-3330</td><td></td></tr><tr><td>低フラックス透析器 Diacap ポリスルホン</td><td>B.Braun</td><td>7203525</td><td></td></tr> 大<tr><td>動脈カニューレ挿入用PEチューブ 内径1.19mm×外径1.70mm</td><td>サイエンティフィック・コモディティーズ・インク</td><td>BB31695-PE/8</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>会社</td><td>カタログ番号</td><td>コメント</td></tr><tr><td>Buffer 試薬:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aminoplasmal 10%</td><td>B.Braun</td><td>134518064</td><td></td></tr><tr><td>Sodium pyruvate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2256-25G</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン酸ナトリウム塩水和物</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G1626-100G</td><td></td></tr><tr><td>L-(-)-リンゴ酸ナトリウム塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1125-25G</td><td></td></tr><tr><td>ナトリウム-L-乳酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L7022-10G</td><td></td></tr><tr><td>α-ケトグルタル酸ナトリウム塩</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>K1875-25G</td><td></td></tr><tr><td>NaCl-Aldrich</td><td></td><td>31434-1KG-R</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761-5KG</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>60130-1KG</td><td></td></tr><tr><td>尿素</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>U5378-500G</td><td></td></tr><tr><td>クレアチニン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4255-10G</td><td></td></tr><tr><td>アンピシリン</td><td>ロシュ</td><td>10835242001</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2 * 6H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2393-500G</td><td></td></tr><tr><td>D-Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8270-1KG</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2 * 6H2O&nbsp;</td><td>リーデル・ド・ハエウムル;n</td><td>12074</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9638-500G</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S0876-500G</td><td></td></tr><tr><td>抗利尿ホルモン dDAVP</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>V2013-1MG</td><td></td></tr><tr><td>FITC-イヌリン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>フィルター赤血球のろ過に使用</td><td>Macherey-Nagel</td><td>MN 615</td><td></td></tr><tr><td>BGA 分析:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ABL 80 フレックス</td><td>放射計 医療用ApS</td><td></td><td></td></tr><tr><td>電子顕微鏡:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Philips CM100 TEM</td><td>FEI</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マウス単離された灌流腎臓テクニック

The Mouse Isolated Perfused Kidney Technique

マウス単離された灌流腎臓（MIPK）が1時間灌流し、機能的なex vivoでの条件の下でのマウスの腎臓を維持するための技術です。これは、摘出された臓器の灌流腎生物工学のための脱細胞化または抗拒絶またはプライム腎臓に高用量におけるゲノム編集する薬剤の投与を含む、将来的には可能かもしれない多くの革新的なアプリケーションのための生理学を研究するための前提条件であります移植のため。灌流の時間の間、腎臓の腎機能を評価することができる、操作、および種々の医薬品を投与することができます。処置後、腎臓を移植することができ、または分子生物学、生化学分析、または顕微鏡検査のために処理しました。 本論文では、灌流液およびマウスの腎臓のex vivo灌流のために必要な外科的技術が記載されています。灌流装置の詳細が与えられ、データは、Vを示して提示されています形態学的読み出しとして異なるネフロンセグメントの機能、透過型電子顕微鏡写真、及び分子の読み出しなどの異なるネフロンセグメントの輸送タンパク質のウェスタンブロットのような腎臓の血流、血管抵抗、及び尿データ：腎臓の調製のiability。

方法について説明すると、単離したマウスの腎臓は、少なくとも1時間生存したまますることができます。我々は、機能（腎血流及び血管抵抗、静脈流出の血液ガス分析、糸球体濾過率、尿中分別のNa +及びK +排泄、および尿浸透圧）で連続灌流の1時間後の組織の生存率をテストし、形態学（透過電子野生型C57BL / 6マウスの4腎臓における顕微鏡、TEM）の方法。さらに、異なる細管セグメントの頂端マーカータンパク質のウェスタンブロットは、同じ動物のunperfused腎臓への単離された灌流腎臓を比較を行いました。全ての実験において、定圧潅流は、約100 mmHgで（ 図4）で灌流圧を維持しながら、使用されました。これらの腎臓では、灌流液の流れや血管抵抗は、腎臓重量および3の15.6±0.4ミリリットル/分* gで55分間の時間をかけて安定的に推移しました5±1.0 mmHgの*分/ mlで、それぞれ（ 図4 A）。灌流液の流れや血管抵抗の増加の...

マウス単離された灌流腎臓（MIPK）が1時間灌流し、機能的なex vivoでの条件の下でのマウスの腎臓を維持するための技術です。緩衝液および外科技術を詳細に説明します。

The mouse isolated perfused kidney (MIPK) is a technique for keeping a mouse kidney under ex vivo conditions perfused and functional for 1 hr. This is a ...

本プロトコルの全体的な目的は、ex vivo灌流マウス腎臓を用いて、単離された腎機能を解析することです。これにより、血圧、ホルモン、または自律神経系の影響を排除して解析することが可能になります。この手法は、腎臓学における重要な疑問の解決に寄与します。単離臓器機能に関する知見を提供し、急性腎不全を研究するための洗練されたツールとして機能します。IPKの主な利点は、全身性の影響がない状態で臓器機能を研究できることです。マウスの手術準備が整ったら、はさみを用いて、恥骨稜から胸骨まで正中開腹を行います。まず皮膚を切開し、次に腹筋を切開します。続いて、腸管を取り出し、腹部の外側であるマウスの左側に置きます。次に、結締組織から膀胱を遊離させ、両側の尿管と尿道を露出させます。これらの手順では、すべて5-0縫合糸を用いて結紮を行います。まず、左尿管を結紮します。これを二重外科結節でしっかりと結紮してください。次に、同様の手法を用いて尿道に結紮を施します。続いて、膀胱全体に投げ縄状の結紮をかけますが、結ばずにそのままにしておきます。最初の3つの縫合が完了したら、眼科用剪刀を用いて膀胱に1 mmの切開を加えます。この切開口に、2 cmのPE-50チューブで作製したカニューレを挿入します。次に、膀胱を縛っている結紮糸を締めて、カニューレを固定します。膀胱にカニューレが留置された状態で、結紮部位より遠位側の左尿管と尿道を切断します。膀胱は、右尿管のみに接続されており、自由に動かせる状態になっているはずです。次に、腹部大動脈周囲の結合組織と脂肪を除去します。その後、露出した大動脈の中点と、横隔膜の直下の上腸間膜動脈と腹腔動脈の間に結紮線を配置します。これらについても同様に、緩い状態で保持します。次に、上腸間膜動脈に結紮線をかけます。続いて、右腎動脈の直下かつ左腎動脈の上方の大動脈に、3本目の結紮線をかけます。これが7番目の結紮です。最後に、尾静脈束を結紮します。次に、7番目の結紮部位と左腎動脈の分岐部の間にクランプを設置します。次に、結紮7点より尾側の主動脈に小さな切開を加え、背側壁を切らないように注意しながら、血管拡張器で開口部を広げます。開口部に2 cmのPE-50カニューレを挿入し、先端をクランプの直下まで押し込みます。その後、クランプを開放します。次に、針先を頭側へ押し進め、右腎動脈と大動脈の分岐点まで到達させます。ここで結紮糸7を締め、続いて腹部大動脈の中点で結紮を行います。その後、横隔膜を切開し、鋏を用いて胸腔を開きます。次に、一度に切断して、大動脈、大静脈、心臓、および自律神経を分離します。続いて、灌流ポンプの圧力制御を開始し、平均圧を80から100 mmHgの間に維持します。ここで、大動脈および尾静脈束の周囲にある、結紮していない残りの3本の結紮糸を締め直します。ハサ

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Research

JoVE Journal

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生物学

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隔離された腎動脈閉塞のためのハンギングウェイトシステムの利用

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このビデオでは、マウスの腎臓から無傷の糸球体を分離する方法について説明しています。このようにして得られたカプセル化され、カプセル化解除された糸球体は、さらに、マウス腎臓から頭頂上皮細胞増殖を培養するために使用することができる。...

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腎、免疫細胞の信頼性と高効率抽出

このプロトコルは、分離し腎作用前のヴィヴォ、ミトコンドリアの生体エネルギーを含む評価するためにその後サブ培養することができますマウス主要な腎尿細管細胞を特徴付けるコスト効率の高いアプローチを提供します。...

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腎糸球体と腎糸球体細胞表面タンパク質の標識体内の分離

抗体標識、光学クリアリング、および高度光顕微鏡検査の組み合わせにより、完全な構造または器官の3次元解析が可能になります。ここでは、厚い腎臓スライスの免疫標識、エチルシナメートによる光学クリアリング、および3次元腎臓構造の可視化と定量を可能にする共焦点イメージングを組み合わせる簡単な方法です。...

免疫標識腎組織の光学クリアリングとイメージング

この論文では、研究者がマウスで可逆的な片側性尿管閉塞を実施できるようにするための詳細な手順を提供します 標準化されたモデルを使用して、...

長期にわたる片側性尿管閉塞の回復後の長期的な構造的および機能的転帰を評価するためのマウスモデル

本論文では、片側腎IRIを用いた虚血性CKDモデルと、サンプル採取の前日に行われた対側腎摘出術を提示します。このプロトコルにより、血清ベースの機能評価、高い生存率、28日および42日のCKD病理の再現性が可能となり、機序的および介入的研究のための多用途なプラットフォームを提供します。...

腎虚血/再灌流障害による急性から慢性腎臓への移行のマウスモデル

マウスの右腎切除後の片側性腎虚血再灌流時の腎微小血管血流の変化を監視するために、レーザースペックルコントラストイメージングシステムを用いました。...

マウスの腎虚血再灌流損傷におけるレーザースペックルコントラストイメージングによる微小血管灌流

学ぶマウス単離灌流腎臓法で、血圧やホルモンの影響を排除し、急性腎障害のメカニズムを体外で解析する手法。腎機能の独立した研究に有用です。

マウス単離された灌流腎臓テクニック

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