Name: に神経変性を定量化するために、マス組織学ショウジョウバエ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-15T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 34 s
Description: 学ぶショウジョウバエの脳における神経変性の定量化法。対照群と実験群を同一サンプルとして処理し系統誤差を最小化する。空胞形成を指標に年齢や遺伝的要因による変性を解析し、神経変性疾患研究に有用な手法を提供する。

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この作業は、オレゴン医学研究財団およびNIH/NINDS(NS047663)からのD.K.への助成金によって支援されました。E.S.は、NIH(T32AG023477)からの研修助成金によって支援されました。

1.首輪にヘッドを固定し、パラフィンに埋め込み注：固定プロセスの手順はすべて、ドラフト内で行う必要があります。安息香酸メチルは、健康上のリスクをもたらすものではないが、ドラフト内で処理されない場合は圧倒的なことができ非常に明確な臭気を持っています。 <ol><li>ハエを麻酔する前に、（クロロホルム及び酢酸を混在させないでください）99％エタノール30 mLに氷酢酸のクロロホルム5mLを15mLのを追加することにより、カルノア液の50ミリリットルを構成しています。カラーは平らでき、完全に解決策で覆われていることを確実にするために、このようなcrystalizing皿のように、平らな底部を有するガラス容器にそれを注ぎます。 </li><li> CO 2またはエーテルでハエを麻酔。 </li><li>スレッドは、ピンセットを用いてカラーに首によって（ほとんどの襟付き20まで）飛びます。 図1Aに見られるように、同じ方向に頭の全てを合わせ、損傷が頭や目に発生しないことを確実にするために穏やかであることを忘れないでください。 </li><li>ハエの順序を容易セクションで識別できるように、ランダムな位置での正弦oculisハエ （矢印、 図1A）を含みます。また、場合実験ハエが十分な顔料は、スライドを染色するために存在することを確認するために、それらの間のような野生型のようないくつかの赤い目ハエを、スレッド、光や白の目の色を持っています。複数のカラーを使用した場合はカラー番号とともにプロトコルシートにハエの順序を記録します。 </li><li> 4時間 - 襟が終了した後、3.5用に準備カルノア液に入れてください。 </li><li>適切な処分キャニスターにカルノア液をダンプし、エタノール洗浄を開始します。コンテナ内のカラーの配置を乱さないようにゆっくりと注ぐようにしてください。 </li><li>二度99％のエタノール中で30分間のカラーを洗ってください。 </li><li> 1時間100％エタノール中でカラーを洗ってください。 overdehydrationを防ぐために、時間に洗浄液を必ず変更してください。 </li><li>安息香酸メチルにカラーを入れてO / RTでN。安息香酸メチルの蒸発を防ぐためにパラフィルムで容器を密閉します。 </li><li>ヒュームフード内で適切な使い捨て容器にmethylbenozateを注ぎます。 （ - 57°C 56）パラフィンワックス、メチルベンゾ1低融点：1の以前に調製された混合物を追加します。この時点から、カラーはパラフィンが硬化しないことを確認するために、65℃のインキュベーター内に保持する必要があります。 </li><li>適切な使い捨て容器にmethylbenozateとパラフィンの混合物を注ぐ、溶融純粋パラフィンワックスを注ぐ、カラーの上に、65℃に保ちました。 </li><li> 30分後にパラフィンを変更し、この少なくとも5回繰り返します。少なくとも6から8回の洗浄を実施すべきです。 </li><li>洗浄が完了すると、約スロット襟の大きさのゴムアイスキューブトレイにカラーを配置します。完全に覆われるまで、それらの上に溶融パラフィンを注ぎ、それがO / N（気泡を回避しよう）を硬化することを可能にします。 </li><li>パラフィンブロックcontaiを削除します寧アイスキューブトレイからカラー。そっと襟を折っ、カミソリの刃を使用して、襟からパラフィンブロックを区切ります。体が襟にとどまる一方でヘッドがパラフィンブロックになります。ブロックを室温で維持することができます。 </li><li>首輪をきれいにするには、光洗浄できれいにパラフィンを、削除し、再利用する前にエタノールで洗浄するために65℃でdeparafinization剤でそれらを浸します。 </li></ol> 2.セクショニングと取り付け<ol><li> 50℃に加熱プレートを温めます。プレート上のオブジェクトの所有者（または金属マウントブロック）とかみそりの刃を配置し、それらをウォームアップしましょう。 </li><li> （簡潔に接触側のブロックを溶融）加熱された取り付けブロックに（正面セクションに対して）切片のための所望の向きに応じて、（水平部のため）のいずれかの側に向かってヘッドをパラフィンブロックを添付したり、上向きに。加熱プレートからブロックを削除し、それは少なくとも10マイルのために冷却することができますパラフィンは、取り付けブロックの上に適切なシールのために十分に硬化されることを保証するn個。不均一なセクションを防ぐために、できるだけ多くのブロックの表面に平行に整列ヘッドの行を保管してください。 </li><li>カミソリの刃を取り、埋め込まれた頭を持つ唯一の小さな行が残るように離れてハエの頭から余分なパラフィンをトリム（かみそりの刃は簡単にトリミングのためにウォームアップすることができます）。パラフィンは、（切片中に行うことができ、よりトリミング）を切片中に破損しないようにあまりにも多くをトリミングすることがないことを確認してください。 </li><li>ミクロトームのオブジェクトホルダーに取り付けブロックを配置し、ヘッドの列の整列は、ブレードのエッジにできるだけ平行であることを確認してください。 </li><li>ポリ-L-リジン（PLL）溶液の薄い層で覆うことにより、顕微鏡スライドを調製し、5分間、それらを乾燥させます。使用直前に水でそれらをカバーしています。 </li><li> 7μmのセクションをカットし、水に浮かぶスライドにセクションのリボンを転送します。&lt;BR /&gt;注：水平方向のセクションの脳全体を得るために、我々は、（脳に口吻から切断）ヘッドが完全に切断されるまで目にカットし始めたときから、リボンを集めます。複数のスライドは、ヘッド全体のために必要とされてもよいです。 </li><li> 37℃の熱板上でスライドを置き、リボンが約1分間拡大することができます。 </li><li> （それを注ぐまたは組織を使用して）過剰の水を除去し、スライドO / Nを乾燥させます。 </li><li> （完全にセクションをカバーする）deparafinization剤が充填された背の高い、縦スライド染色ジャーにスライドを配置することによって、スライドからパラフィンワックスを除去します。 60分ごと - 30分の3回の洗浄を行います。 </li><li>最終洗浄からスライドを削除してください。スライドに埋め込むメディアの2滴を置き、大きなカバースリップでそれをカバーしています。 </li></ol> 3.セクションを撮影し、分析<ol><li> 2 D - 準備されたスライドが1のために乾燥することができます。その後、蛍光microscでそれらを調べます青色光下でのOPE。 </li><li>ハエの向きを決定するために、特定の地域に焦点を当てた場合に関心領域を見つけるために、低倍率を使用してください。 注：SWSのハエ（ 図2を参照）のために、我々は偉大な交連を含むセクションを見つけて、（通常は40倍の倍率で）画像を取ります。 （ 図3のように）脳全体を分析するとき、私たちは頭からすべてのセクションをスクロールし、いずれかの最も深刻な表現型または液胞を示すすべてのセクションとセクションを撮影します。 </li><li>二重盲検分析のために、取ると数の画像遺伝子型を知らなくても、後でそれらを識別するための行のカラー番号とヘッドの位置を記録します。 </li><li>画像が撮影されると、画像処理ソフトウェアを使用して分析します。 </li><li>セクションごとや頭あたりの空胞の数をカウントします。 、液胞のサイズを測定するソフトウェアプログラムで画像を開いて、あまりにも選択で空胞を選択するにはリットル。選択された空胞内のピクセルの量を決定します。 </li><li> μmの2への変換のために、写真を取得するために使用される倍率でステージマイクロメータ用較正スライドの写真を撮ります。変換係数を計算するためには100μm2のピクセルの量を決定します。 </li><li>上記のステップで算出された変換係数によって画素数を割ることによってミクロン2に総画素数を変換します。 </li></ol>

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<li>Li, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Drosophila+model+for+TDP-43+proteinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">A Drosophila model for TDP-43 proteinopathy.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 3169-3174 (2010).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

記載された方法は、 ショウジョウバエの脳における神経変性を定量化する手段を提供します。他の方法は、特定の細胞型を計数するように、神経変性を同定するために使用することができるが、この方法の利点は、より一般的に適用できることです。細胞を計数することは、これらの細胞が確実に特異的な抗体や、常に利用可能でない細胞特異的マーカーの発現、のいずれかを用いて同定することができることが必要です。さらに、劇的に異なる結果がおそらく標識および検出のために使用される条件に、その方法24を用いて得られることが示されています。変性細胞を検出するための別の方法は、抗活性化カスパーゼ3のような細胞死マーカーの使用は、しかし、これは、積極的に細胞死を受けている細胞を特定していない細胞が死亡していると、それらはもはや検出可能です。ここで提案した方法の別の利点は、染色が原因でautofluに必要とされないことです時間を節約し、染色条件の変化に起因するアーチファクトを最小限に目顔料によって引き起こさorescence。この方法を使用する場合に、ハエの目のスライドを染色するのに十分な顔料を有することに留意することが重要です。目の色が薄す...

平均余命の増加に伴い、アルツハイマー病やパーキンソンなどの神経変性疾患は、一般人口の増大する健康への脅威となっています。国立衛生研究所によると、115万人が世界中で、基礎となる重要な進歩は、それらの多くは、これらの疾患のうちの少なくともいくつかに関与する遺伝子および危険因子を同定することにしたが2050年に認知症により影響を受けると予測されます分子メカニズムはまだ不明かよく理解しています。 線虫（Caenorhabditis elegans）およびキイロショウジョウバエのような単純な無脊椎動物のモデル生物は、短いライフサイクル、子孫の数が多いと、十分に確立し、時にはユニークな遺伝的および分子的方法1の可用性を含む神経変性疾患のメカニズムを研究するための実験種々の利点を提供しています-12。さらに、これらの生物は、公平に適しています神経変性の表現型に対するそれらの悪化または改善効果によって、これらの疾患の要因を特定することができる相互作用の画面。 そのような遺伝的相互作用を分析し、高齢化の影響を評価することは神経変性を検出するために、その重症度を測定するための定量的なプロトコルが必要です。数値性能値13から21を提供するような嗅覚学習、負の走地性、または高速走光性ショウジョウバエにおける行動の側面を、測定するときにこの評価は、比較的容易に行うことができます。ニューロンを計数することによりニューロンの生存に対する効果を決定することも可能です。 PDに影響されるドーパミン作動性ニューロンのように、明確に識別可能である特定の集団に着目した場合ただし、これは可能であり、その後も、結果は22-24議論されています。 ここで説明するプロトコルは、パラフィン連続切片を実行するために、カラー方式を使用して、方法それは、もともとショウジョウバエ 25に解剖学的脳の突然変異体を単離するためにそれを使用しハイゼンベルクとBöhl、によって開発されました。カラー方法の使用は、その後凍結切片、ビブラトーム切片及びプラスチックセクション26-28に含むように適合されています。ここでは、この方法は、次に、神経変性表現型16,21,29-32とハエに開発空胞を測定することができる全体フライヘッドの連続切片を得るために使用されます。これらの測定は、特定の脳領域で行うことができ、または脳全体を覆うことができます。後者のアプローチは、老化中に観察されたように、1つは、弱い変性表現型を識別することができます。最後に、20ハエまで、カラーを使用している場合だけでなく、より少ない時間がかかるだけでなく、原因のわずかな変化にアーティファクトを最小化する、同じ製剤中に対照および実験ハエの分析を可能にする1つの製剤として処理することができます準備。

<table><tbody><tr><td>試薬/機器の名前</td><td></td><td>会社カタログ番号</td><td></td></tr><tr><td>カラー</td><td>Genesee Scientific</td><td>TS 48-100</td><td>私たちは、ジェネシーのもののように層ではなく、1つの金属片から作られたカスタムメイドのカラーを使用しています。首輪の作り方の説明は http://flybrain.neurobio.arizona.edu/Flybrain/html/atlas/fluorescent/index.html&nbsp にあります。</td></tr><tr><td>埋め込み用ゴム製角氷トレイ</td><td>家庭用店</td><td></td><td>サイズは、追加の壁に接着することでフィットさせることができます&nbsp;</td></tr><tr><td>結晶化皿</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック社</td><td>08-762-3</td><td></td></tr><tr><td>エーテル</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック社</td><td>E138-1</td><td></td></tr><tr><td>エタノール</td><td>デコンラボラトリーズ社</td><td>2701</td><td></td></tr><tr><td>Choloroform</td><td>Fisher Scientific Company</td><td>C298-500</td><td></td></tr><tr><td>氷酢酸</td><td>Fisher Scientific Company</td><td>A38-212</td><td></td></tr><tr><td>Methylbenzoate</td><td>Fisher Scientific Company</td><td>M205-500</td><td>独特の臭い - ヒュームフードに使用!</td></tr><tr><td>低融点パラフィンワックス</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>カンパニーT565</td><td>65°Cで余分な溶融を保つようにしてください。C ウォーターバス</td></tr><tr><td>ミクロトーム</td><td>ライカ バイオシステムズ</td><td>ライヒェルト ユング 2040 オートカット</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡 スライド</td><td>フィッシャー サイエンティフィック カンパニー</td><td>12-550D</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡カバー ガラス</td><td>フィッシャー サイエンティフィック カンパニー</td><td>12-545-M</td><td></td></tr><tr><td>セーフクリア</td><td>フィッシャー サイエンティフィック カンパニー</td><td>314-629</td><td>3 つの異なる容器 ウォッシュ用</td></tr><tr><td>垂直染色ジャーTed</td><td>Pella Inc.の表紙&nbsp;</td><td>432-1</td><td></td></tr><tr><td>パーマウント</td><td>フィッシャー サイエンティフィック</td><td>SP15-500</td><td></td></tr><tr><td>ポリ-L-リジン溶液 (PLL)</td><td>シグマ ライフサイエンス</td><td>P8290-500</td><td></td></tr></tbody></table>

に神経変性を定量化するために、マス組織学<em&gt;ショウジョウバエ</em

Mass Histology to Quantify Neurodegeneration in Drosophila

アルツハイマー病（AD）またはパーキンソン病（PD）などの進行性神経変性疾患は、世界中のヒトの健康に増加脅威です。哺乳動物のモデルは病原性の基礎となるメカニズムに重要な洞察を提供してきたが、一緒に高コストの哺乳動物系の複雑さは、その使用を制限しています。したがって、シンプルだが十分に確立されたショウジョウバエモデル・システムは、これらの疾患に影響される分子経路を調査するための代替手段を提供します。行動障害のほか、神経変性疾患は、神経細胞死と軸索障害などの組織学的表現型によって特徴付けられます。神経変性を定量化するために、それが遺伝的要因と環境要因によって影響される方法を決定するために、我々は大人のハエの脳内の空胞を測定することに基づいている組織学的アプローチを使用しています。系統誤差の影響を最小限に抑えるために、直接制御とEXPからの切片を比較します1つの製剤でerimentalハエは、我々はパラフィン切片のための「カラー」メソッドを使用します。神経変性は、その後、ハエの脳に開発した空胞のサイズ及び/又は数を測定することによって評価されます。これは、いずれかの特定の関心領域に焦点を合わせることによって、または完全長に及ぶ連続切片を得ることにより脳全体を分析することによって行うことができます。通常の老化時に起こるようなので、この方法は、1が厳しい変性だけでなく、いくつかのセクションにのみ検出され、比較的穏やかな表現型だけでなく、を測定することができます。

全体フライヘッドを包含する眼の色素33によって染色された連続切片で説明した方法の結果を使用。この部分は、個々のヘッドのセクションが上から下に表示され、図1Bに示されています。別のハエのセクションは、この例では左から右に見られます。配向およびハエの識別を容易にする、アイレスフライ（正弦oculis）が 3位（矢印、 図1B）におけるマーカーとして挿入されています。 神経変性を定量するために、我々は、これらのセクションで検出することができる小胞の形成を測定します。液胞は、ラウンドのように定義され、緑色蛍光神経網内（ 図2の矢頭および3）であるか、または皮質とダークスポットは、ハエの脳の少なくとも2個の連続セクションに表示されます。によって神経変性を定量化測定液胞は、いずれの特定の脳領...

ショウジョウバエは広く神経変性を研究するためのモデル系として使用されます。このプロトコルは、脳内の空胞の形成によって決定されるように、定量化可能な変性方法を記載しています。それはまた、一つのサンプルとして処理し、切片化対照および実験ハエによる実験手順に影響を最小限に抑えることができます。

Progressive neurodegenerative diseases like Alzheimer&#39;s disease (AD) or Parkinson&#39;s disease (PD) are an increasing threat to human health ...

この手順の目的は、特定の染色を行うことなく、加齢、遺伝子改変、環境要因などのさまざまな要因によって引き起こされるショウジョウバエ脳における神経変性を定量化することです。この手法は、どのような遺伝子や環境要因がこれらの疾患を引き起こすか、あるいは寄与しているかといった、神経変性疾患分野における重要な課題を分析する際に非常に有用です。この手法の主な利点は、対照群のハエと実験群のハエを一つのサンプルとして扱うため、系統誤差を回避または最小限に抑えられることです。一般的に、この手法に不慣れな方は、脳の正しい領域をスライド上に配置し、切断時に発生しうる損傷を防ぐために習熟が必要であるため、苦労する可能性があります。まず、ピンセットを使用して、対象のハエの首をカラーに通します。すべての頭部を同じ向きに揃え、頭部や眼に損傷を与えないようにしてください。切片において個体の順序を容易に識別できるよう、眼のないSenoculusショウジョウバエをランダムに既知の位置に混ぜ込んでください。さらに、目的のショウジョウバエ系統の眼が淡色または白色である場合は、スライドの染色に十分な色素が存在するように、赤色の眼を持つ個体をストリップ上に一定の間隔で配置してください。ショウジョウバエの個体順を記録し、複数のカラー（襟状の固定具）を使用した場合はその番号も併せて記録してください。各カラーの処理が完了したら、Carnoy液に3.5〜4時間浸漬させます。その後、エタノール、安息香酸メチル、パラフィンの順に洗浄を行い、ハエの組織を包埋するための準備を整えます。次に、カラーをゴム製アイスキューブトレイの各セクションに1つずつ配置します。気泡が入らないように注意しながら、溶けたパラフィンをカラーの上にゆっくりと注ぎ、一晩かけて凝固させます。カラーを含むパラフィンブロックをトレイから取り出します。カミソリを使用して、パラフィンブロックをカラーから切り離します。カラーを慎重に折り取り、取り除いてください。体はカラー内に残り、頭部はパラフィンブロック内に保持されます。組織を切片にするには、まずホットプレートを50 °Cに加熱します。カミソリの刃や金属製マウンティングブロックなど、ワックスに接触する工具をプレートの上に置いて温めます。切片作成に適した方向を確認し、パラフィンブロックの接触面を軽く溶かしてマウンティングブロックに固定します。カミソリの刃を用いて、ハエの頭部が埋め込まれた小さな列だけが残るように、周囲の余分なパラフィンを除去します。マウントブロックをミクロトームの物体ホルダーにセットし、頭部が刃の端と平行になるように調整します。7 µm の厚さで薄切し、得られたリボン状の切片を顕微鏡スライドに転写します。リボンの伸展を促すため、スライドを37°Cの加温プレート上に約1分間置きます。余分な水分を

mass-histology-to-quantify-neurodegeneration-in-drosophila

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

測定運動機能、学習、およびメモリ能力のための行動アッセイ...

でアッセイする運動、学習、記憶障害ショウジョウバエ</em神経変性の>モデル

シングルショウジョウバエ個眼の解剖とイメージング

ここでは、ドーパミン作動性に（DA）ニューロンの年齢依存性神経変性を研究するために設立されている2つのアッセイを記述する...

神経変性表現型を評価する<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;クライミングアッセイによりドーパミン作動性ニューロンと脳全体の免疫染色

ここでは、3齢幼虫の神経筋接合部（NMJ）における運動ニューロンの神経変性を視覚化および定量化するために、 ショウジョウバエ幼虫における分節神経を傷つける簡単かつ広くアクセス可能な方法について説明する。...

研究のための単純な神経細胞学的損傷法<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;運動ニューロン変性

このプロトコルは、郭清と大人のショウジョウバエの染色について説明します脳の組織。具体的には、このプロトコルでは、神経の開発の多くの側面の基礎となる原則を明らかに正確に使用することができます例の神経細胞サブセットとしてショウジョウバエのきのこ体と光受容ニューロンの使用を強調表示します。...

郭清ときのこ体の免疫蛍光染色と大人のショウジョウバエ脳光受容器ニューロン

蛋白質の集合とのショウジョウバエモデルの中枢神経系におけるオートファジーのフラックスの蛍光イメージングによる細胞生物学的研究から定量的なデータを抽出する単純なと適応のワークフローを開発しました。神経変性疾患。...

ImageJ を用いた蛍光タグ付きタンパク質の公平な分析によるショウジョウバエの神経変性の定量細胞生物学

我々は、ショウジョウバエメラノガスターで神経変性を示す変異体のスクリーニングに前方遺伝的アプローチを用いてプロトコルを提示する。登山アッセイ、血管解析、遺伝子マッピング、DNAシーケンシングを組み込み、最終的に神経保護のプロセスに関連する新しい遺伝子を同定します。...

ショウジョウバエメラノガスターの新しい神経保護遺伝子を同定する生体内前方遺伝スクリーン

ここでは、ショウジョウバエメラノガスターで3つの単純な傷害誘発軸索変性(軸索死)アッセイを行い、切断された軸索とそのシナプスの形態学的および機能的保存を評価するプロトコルを提供する。...

ショウジョウバエメラノガスターにおける軸索死における軸索とそのシナプスの形態学的および機能的評価

神経変性と関連した成人 ショウジョウバエ におけるシナプス変性の可視化

この研究では、斬首、固定、凍結切片、蛍光染色、免疫染色、およびイメージングを含む組織処理の簡略化されたプロトコルを提示します。これらは共焦点および多光子イメージングに拡張できます。この方法は、複雑な解剖に匹敵する有効性を維持し、高度な運動能力の必要性を回避します。定量的な画像分析は、広範な調査の可能性を提供します。...

脳蛍光染色および免疫染色を強化するための ショウジョウバエ 頭部の直接凍結切片

学ぶショウジョウバエの脳における神経変性の定量化法。対照群と実験群を同一サンプルとして処理し系統誤差を最小化する。空胞形成を指標に年齢や遺伝的要因による変性を解析し、神経変性疾患研究に有用な手法を提供する。

に神経変性を定量化するために、マス組織学

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