January 15th, 2017
このビデオは、ラットの静脈介在手術後の筋内膜過形成の発症を研究するモデルを示しています。
この手順の全体的な目標は、ラット静脈介在モデルにおけるバイパス移植片の開存性を研究することです。この方法は、バイパス閉塞中の生物学的および生理学的プロセスの根底にある経路など、バイパス手術分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、外科的処置が簡単かつ迅速であり、in vivoでの新しい治療法やトラクトの研究に使用できることです。
この技術を実演するのは、当研究室のマイクロサージョンであるグリゴル・テディアシビリです。手術の前に、ラットの後足をつまんで反射神経がないことを確認して、麻酔の十分な深さを確認します。次に、麻酔下での乾燥を防ぐために、獣医用軟膏を目に塗ります。
次に、後ろ足を広げてテープで固定します。次に、ヘアトリマーで鼠径部の毛を剃り、続いてポビドンヨードと80%アルコールを使用してその部分を広く消毒します。これらの交互のスクラブを合計3回繰り返します。
次に、顕微鏡下で、鼠径線に沿って垂直切開を行います。次に、2つの鉗子を使用して皮下組織を穏やかに分離し、表在性上腹部静脈を大腿静脈の起点まで露出させます。静脈は壊れやすいため、これを非常に慎重に行ってください。
次に、2つのクランプを使用して表在性上腹部静脈を通る血流を止めます。次に、静脈の一部を採取します。孤立した静脈を慎重に持ち上げ、マイクロハサミを使用して血管を切断します。
次に、静脈セグメントを滅菌ガーゼの上に置きます。そこで、30ゲージの針を一端に慎重に滑り込ませ、静脈をヘパリンで洗い流します。次に、静脈を1%リドカインに移し、けいれんを防ぐために氷の上に保ちます。
次に、麻酔を5%イソフルランに増やして、ドナーラットを安楽死させます。次に、アナスタメーズの準備として、ドナーラットと同様にレシピエントラットをシェービングステップまで調製します。5%イソフルランを2〜3分投与した後、ドナーラットの腹部をalbaに沿って開き、横隔膜を切開し、心臓を摘出して循環を停止します。
レシピエントラットの手術の準備を続けます。ヘアトリマーで脚の内側を剃り、ポビドンヨードと80%エタノールを交互に3回スクラブして皮膚を消毒します。先に進む前に、麻酔を監視するために別のつま先つまみを実行してください。
次に、膝から鼠径部までの大腿骨中央切開を行います。顕微鏡下で、2つの鉗子を使用して大腿動脈を周囲から分離します。次に、2つのマイクロクランプを使用して血流を止め、近位クランプを最初に配置します。
次に、クランプされた大腿動脈の短い部分を切り取り、それを廃棄します。残りの動脈断端を短くして、静脈グラフトよりも1〜2ミリメートル大きい隙間を残します。次に、30ゲージの針からヘパリンで動脈の切り株を洗い流します。
外膜が血管の切り株をわずかに超えて突き出ている場合は、鉗子を使用して外膜を血管の端よりわずかに引っ張ってから、外膜の一部を取り除きます。次に、採取した静脈セグメントを動脈の切り株の間に正しい向きで配置し、ギャップサイズを調整して適切にフィットさせます。次に、最初に10-0プロレン縫合糸を使用して近位吻合を行います。
まず、各外側を縫合し、次に腹側にさらに3つの縫合糸を追加します。背側を3針縫って仕上げます。次に、同じ手法を使用して遠位血管を接続し、各外側の縫合糸から始まり、次に腹側に3つの縫合糸、次に背側で終了します。
吻合が完了したら、2つの1ミリリットル注射器にフィブリン接着剤成分をロードします。.次に、鉗子でグラフトを慎重に持ち上げ、グラフトの下に約100マイクロリットルのコンポーネント1を塗布し、続いて100マイクロリットルのコンポーネント2を塗布します。2 つのコンポーネントは、常に同じボリュームに追加する必要があります。
次に、グラフトを元の位置に戻し、グラフトの上に各コンポーネント100マイクロリットルを適用して、グラフトと吻合を完全に覆います。これにより、吻合部の機能不全や静脈グラフトの過剰膨張を防ぐことができます。次に、遠位クランプから始めてクランプを慎重に開きます。
次に、移植された静脈と移植片の遠位動脈に目に見える脈拍を確認して、手術が成功したことを確認します。皮膚を閉じる前に、閉鎖を妨げる可能性のある余分な接着剤をすべて取り除いてください。次に、5-0プロレン縫合糸を使用して皮膚層を閉じます。
ラットが目を覚ます前に、1キログラムあたり4〜5ミリグラムのカルプロフェンを皮下に注射します。動物が胸骨の横臥を維持するのに十分な意識を取り戻すまで、動物から目を離さないでください。次に、他の動物がいない家庭用ケージをラットに与えます。
次の3日間、飲料水にメタミゾールを提供し、ラットの回復を毎日チェックします。.完全に回復すると、ラットは他のラットと一緒に収容することができます。動物は手術からよく回復し、術後も良好な体調を示しました。
移植後の大腿動脈への静脈の統合と移植片の開存性が、デュプレックス超音波検査を使用して非侵襲的に確認されました。ルーク陽性ラットの静脈をルークネガティブラットに移植することにより、生物発光イメージングを使用して移植片の存在を監視しました。筋内膜過形成は、時間の経過とともに移植片で進行的に進行することがわかりました。
マッソントリクロームによる組織学的染色は、内部弾性薄板内での筋内膜形成を示しています。モデルが筋内膜過形成のダイナミクスを再現することを確認するために、管腔閉塞を測定しました。手術後7日から28日にかけて、移植片の開存性が徐々に失われることが認められ、これはモデルにうまく適合しています。
このテクニックを習得すると、適切に実行すれば20分で完了します。ご覧いただきありがとうございます、そしてあなたの実験に頑張ってください。
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このビデオは、ラットの静脈間挿入手術後の筋内膜増殖症の発達を研究するためのモデルを示しています。この手順は、バイパス移植片の通過性とバイパス閉塞中に関与する生物学的プロセスを調査することを目的としています。
This rat vein interposition model provides a cost-effective and scalable system to study bypass graft patency loss, a critical challenge in vascular therapeutics development. By enabling longitudinal assessment of myointimal hyperplasia—the primary cause of graft failure—it supports mechanistic de-risking of novel interventions targeting vascular remodeling pathways. The model’s compatibility with duplex sonography and histological analysis allows for quantitative, translatable readouts that inform go/no-go decisions in preclinical pipelines.
The model fits within the discovery-to-preclinical continuum, particularly for vascular biology programs focused on restenosis, graft failure, or anti-proliferative therapies.