Name: スリーブ胃切除およびマウスにおける変更されたルーワイ胃バイパスのテクニック (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-20T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: 学ぶマウスモデルを用いたスリーブ胃切除およびルーワイ胃バイパス手術の代謝効果測定法。肥満と代謝の分野における分子メカニズムの解明に貢献し、臨床的意義のある研究成果を提供します。

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私たちは、ジル・ミチューとオード・バラトー(INSERM U1213、リヨン、フランス)、そしてマリー・リアブフとステファニー・ルマルシャン・ミンド(動物施設、l'Institut du Thorax、ナント、フランス)の動物管理プロトコルへの協力に感謝します。この活動は、La région des Pays de la Loire、Fondation d'Avenir、Casden Bankからの助成金によって支援されました。コーチン研究所のキャサリン・ポスティッチ、ファディラ・ベンハメド、ミシェル・カウザックのホスピタリティと撮影過程での協力に感謝します。

動物とハウジング：8週齢のC57BL / 6雄マウスを入手します。脂肪から35％キロカロリー、25.8パーセントのカゼイン、1.30パーセントのミネラルAIN、1.30パーセントのビタミン、1.70パーセントのリン酸二カルシウム、0.7：10週齢では、水をC57BL / 6マウスの自由なアクセスと高脂肪食（DIOダイエットを与えます8（SG）または14（RYGB）の％炭酸カルシウム2.10％、クエン酸カリウム、0.026％の酒石酸水素コリン、8.9％スクロース、0.384％シスチン、6.5％メチルセルロース、31.7％のラード、3.3％の大豆油、及び16.29％のマルトデキストリン）週肥満手術の前に。体重増加を促進するために、高脂肪食に加えて（w / vの）20％のフルクトースを含むRYGB手術（シャム＆RYGB）水に専用のマウスを与えます。 倫理に関する声明：以下で説明するすべてのプロトコルステップは、動物実験のための倫理委員会のガイドラインに従うの承認番号01953.01下・ド・ラ・ロワールを支払います。 1.一般的な術前の準備<ol><li>手術前に6時間マウスを絶食。ジェルディらの食品は3日、手術の前に手術し、排他的に1日前に与えられました。 5％イソフルラン（0.4 L /分）でチャンバー内で麻酔を誘導し、O 2（二原子酸素、0.4 L /分）。麻酔が有効であることを確認するために、つま先ピンチテストを実行します。皮下注射を介して、鎮痛剤（0.1ミリグラム/キログラムブプレノルフィン）、抗生物質（10mg / kgのmarbofloxacine）、およびプロ動態（1ミリグラム/キログラムメトクロプラミド）を管理します。 </li><li> （実験室でのトラフィックや換気ファンから遠い）の外科的処置のための具体的な作業領域を割り当てます。専用のハード面の消毒剤と手術領域をきれいにしてください。手術中にマウスhomeothermyを維持するために、作業スペース領域に加熱パッドを配置します。加熱パッドの上にきれいな、吸収性アンダーパッドを適用します。 </li><li>電気かみそりを使用して、骨盤に胸骨から腹部を剃ります。滅菌ラップ（ 図1Aおよび2A）でのマウスの腹部をラップし、加熱pに仰臥位でマウスを置きます広告。 </li><li>麻酔下ながら乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を適用します。ノーズコーンにマウスを置き、2％イソフルラン（0.4 L /分）とO 2（0.4 L /分）で麻酔を維持します。 </li><li>手術を開始する前に、無菌試験のガウン、使い捨てスクラブキャップ、フェイスマスク、および滅菌手袋を着用。手術のすべてのステップのために必要とされる滅菌手術器具セットを含むオートクレーブしたパッケージを開きます。滅菌ラップの窓をカットし、2つの連続ポビドンヨードソリューションで皮膚を消毒します。 </li></ol> 2.スリーブ胃切除：手術の手順<ol><li> 中央値開腹（図1B） <ol><li>双眼顕微鏡下とメスで、（腹部の筋肉に損傷を与えない）腹腔を開くには、腹部の中央に胸骨から正中切開を行います。 37℃の生理食塩水に浸した滅菌圧縮で皮膚を保護します。 </li></ol></li><li> 胃の暴露（図1C） <ol><li>静かに湿らせ、綿棒を用いて、胃を動員。湿らせた綿棒やマイクロはさみを使用して、その横に近い結合組織の添付ファイルから胃を解放します。 </li><li>静かに、完全に胃を外部化し、止血コラーゲンは胃の後ろに圧縮配置します。 （ 図1D及びE）を出血未来を避けるために8.0非吸収性縫合糸で胃大弯に沿って、幽門と食道の血管を縫合。注：止血剤の使用は、組織の損傷を引き起こすだけ切除することを目指した組織でそれを使用することを確認することができます。 </li></ol></li><li> 胃の心臓領域の切除（眼底） <ol><li>幽門領域との間の解剖学的ライン存在（コーパス）と胃の心臓領域（眼底）（ 図1F）に胃切開を行います。 </li><li>それぞれの方の2湿らせた綿棒で残留食べ物を削除します胃の側面。マイクロはさみを使用して、眼底および胃（ 図1G）のコーパスとの間の境界に沿って胃を切りました。 </li><li>大出血の場合には2分間圧縮止血コラーゲンを押します。切開（ 図1H）の最後に胃食道接合部から8.0非吸収性縫合糸と胃の開口部を閉じます。 </li></ol></li><li> 胃の幽門部の切除（コーパス） <ol><li>胃（ 図1I）の約80％を除去するように大きな曲率に沿って胃の切除を完了します。 3ミリメートルにSGの幅を標準化。大出血の場合には2分間圧縮止血コラーゲンを押します。 </li><li> 8.0非吸収性縫合糸（ 図1J）と胃の幽門部の開口部を閉じます。静かに縫合糸が漏れ防止であることを保証するために、胃の各側に2湿らせた綿棒を転がし。 </li><li>漏れの場合8.0非吸収性縫合糸で完了します。止血コラーゲン圧縮を削除し、腹腔に胃を返します。縫合糸に対して圧縮止血コラーゲンを残します。 </li></ol></li><li> 腹部閉鎖 <ol><li> 5.0非吸収性縫合糸（ 図1K）と腹壁の筋層を閉じます。 1パーセントにイソフルラン濃度を低減することにより、麻酔を減らします。 5.0非吸収性縫合糸（ 図1L）を用いて皮膚を閉じます。 </li></ol></li></ol> 3.ルーワイ胃バイパス：手術の手順<ol><li> 中央値開腹 <ol><li>双眼顕微鏡下とメスで、（腹部の筋肉に損傷を与えない）腹腔を開くには、腹部の中央に胸骨から正中切開を行います。 37℃の生理食塩水（ 図2B）に浸した滅菌湿布で皮膚を保護します。 </li></ol> &lt;/李&gt; <li> Biliopancreatic手足と消化四肢 <ol><li>腸（ 図2C）を外部化。メジャー8幽門からセンチと5.0非吸収性縫合糸（図2D）と腸の2合字を行います。 </li><li> 2合字（ 図2E）との間の腸をカット。腹部の左上の象限内の2つの端部の近位四肢を置きます。注：これは、消化肢（ 図2F）として使用されます。 </li><li> 6センチメートル四肢近位（ 図2F）以下の消化四肢が直面している両端の遠位四肢を置きます。 注：これは胆汁手足として使用されます。 </li></ol></li><li> Jejuno-空腸造瘻術 <ol><li>マイクロはさみを使用して、四肢近位および腸のループの両方をカットし、同じ長さ（ 図2Gおよび2H）の2 antimesenteric切開を行います。 </li><li> 2 8.0側側吻合を行います非吸収性縫合糸。腹側吻合（ 図2J）に続く背側吻合最初（ 図2I）を実行します。 </li><li>静かに縫合糸が漏れ防止であることを保証するために吻合部の各側に2湿らせた綿棒を転がし。漏れの場合8.0非吸収性縫合糸で完了します。 </li></ol></li><li> 胃空腸造瘻術 <ol><li>静かに湿らせた綿棒を使って胃を動員。湿らせた綿棒やマイクロはさみを使用して、その横に近い結合組織の添付ファイルから胃を解放します。 </li><li>優しく、胃の後ろに再吸収性の止血コラーゲン湿布を配置し、完全に胃を外部化。湾曲したマイクロ鉗子（ 図2Kおよび2L）を使用して、網を通過した5.0非吸収性縫合糸を使用して、幽門結紮を行います。 </li><li>胃、幽門〜1.5 cmであり、遠位四肢の腹側の両方をカット同じ長さ（ 図2M）の2切開部を作成し、マイクロはさみを使用して。 </li><li> 2 8.0非吸収性縫合糸で側側吻合を実行します。背側吻合（ 図2N）で起動し、腹側吻合（ 図2O）を行います。静かに縫合糸が漏れ防止であることを保証するために吻合部の各側に2湿らせ、綿棒を転がし。漏れの場合8.0非吸収性縫合糸で完了します。 </li></ol></li><li> 腹部閉鎖 <ol><li> 5.0非吸収性縫合糸（ 図2P）を使用して腹壁の筋層を閉じます。 1パーセントにイソフルラン濃度を低減することにより、麻酔を減らします。 5.0非吸収性縫合糸を用いて皮膚を閉じます（ 図2Q）.Administer皮下注射を介して、温かい生理食塩水を25mL / kgです。 </li></ol></li></ol> 4.一般的な術後ケア<ol><li>イソフルランを停止マウスが完全に目を覚ましになるまで0.8 L / minのO 2流量を続行します。それは動物によって示されるモータ制御、ケージの周りを移動するために開始し、落下せずに立って歩くことができることを取り戻すまで、無人、マウスを放置しないでください。 </li><li> 5日間30℃の温度条件下でインキュベーターにマウス（ケージごとに1つだけのマウス）を配置します。 </li><li>プロトコルの最後までRYGBマウスにおけるビタミン（800ミリグラム/ 180 mLの水中）の補充;鉄（皮下注射は0.5mg / kg /日）を維持。 </li><li>手術後5日間：ゲルダイエット食品（10％ラード、10％液糖、57％の水高脂肪ゲル食）への無料アクセスを返します。 3日手術後の固形食を再導入。 </li><li>皮下には、メロキシカム（手術後3日目に0日目から1日2回0.1ミリグラム/キログラム、）（1ミリグラム/キログラム、0日目から手術後3日目に）、メトクロプラミド（1ミリグラム/キログラム、0日目からにブプレノルフィンを注入します手術後5日目）、および0日目から3日目AFTEにmarbofloxacine（10mg / kgの、<html> rの手術）。 </li></ol> 5.術後の代謝パラメータの評価<ol><li> 食物摂取量測定 <ol><li>マウスは、手術後1週間回復できるようにします。ハウスマウスケージあたり1。ケージに入れ固体食事の量を測定します。重量24時間後に残っている食べ物。限り、必要に応じてこの手順を繰り返します。 </li></ol></li><li> 経口的ブドウ糖負荷試験 <ol><li>経口ボーラスの前に6時間マウスを絶食。尾の先端から血液滴を収穫し、時間0血糖値を決定するために、グルコメーターに挿入グルコースストリップにそれを適用します。 </li><li> 20％D-グルコース溶液（2グラム/ kg）を経口ボーラスを投与します。 、15、30、60、及び120分後に胃管栄養法の血糖値を測定します。 </li></ol></li><li> ヘモグロビンレベルの分析 <ol><li>血液学システムを使用して、ヘモグロビンレベルをサンプリングするために新鮮な血液の20μLを測定します。 </li></ol></li></ol>&quot;&gt; 6。安楽死<ol><li>腹腔内キシラジン/ケタミン溶液（10/80ミリグラム/キログラム）を注入することにより、マウスを麻酔。頸椎脱臼を行います。心臓が鼓動していないと眼球瞬目反射が失われることを保証することにより、完全な安楽死を確認します。 </li></ol>

<ol><li>Ng, M., Fleming, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global%2C+regional%2C+and+national+prevalence+of+overweight+and+obesity+in+children+and+adults+during+1980-2013%3A+a+systematic+analysis+for+the+Global+Burden+of+Disease+Study+2013%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet%22%5BJournal%5D)">Global, regional, and national prevalence of overweight and obesity in children and adults during 1980-2013: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2013.</a> The Lancet. 384 (9945), 766-781 (2014).</li>
<li>Calle, E. E., Thun, M. J., Petrelli, J. M., Rodriguez, C., Heath, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Body-mass+index+and+mortality+in+a+prospective+cohort+of+U.S.+adults%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Body-mass index and mortality in a prospective cohort of U.S. adults.</a> The New England Journal of Medicine. 341 (15), 1097-1105 (1999).</li>
<li>Sjöström, L., Lindroos, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lifestyle%2C+diabetes%2C+and+cardiovascular+risk+factors+10+years+after+bariatric+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Lifestyle, diabetes, and cardiovascular risk factors 10 years after bariatric surgery.</a> The New England Journal of Medicine. 351 (26), 2683-2693 (2004).</li>
<li>Buchwald, H., Avidor, Y., et al. <a target="_blank" href="http://jamanetwork.com/journals/jama/article-abstract/199587">Bariatric surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> JAMA. 292 (14), 1724-1737 (2004).</li>
<li>Yin, D. P., Gao, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+different+bariatric+surgeries+in+the+treatment+of+obesity+and+insulin+resistance+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+surgery%22%5BJournal%5D)">Assessment of different bariatric surgeries in the treatment of obesity and insulin resistance in mice.</a> Annals of surgery. 254 (1), 73-82 (2011).</li>
<li>Buchwald, H., Oien, D. M. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19885707">Metabolic/Bariatric Surgery Worldwide 2008.</a> Obesity Surgery. 19 (12), 1605-1611 (2009).</li>
<li>Liu, W., Zassoko, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+duodenojejunal+bypass+surgery+in+mice%3A+A+model+designed+for+diabetic+research%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Establishment of duodenojejunal bypass surgery in mice: A model designed for diabetic research.</a> Microsurgery. 28 (3), 197-202 (2008).</li>
<li>Lan, Z., Zassoko, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+techniques+for+gastrojejunal+bypass+surgery+in+obese+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Development of techniques for gastrojejunal bypass surgery in obese mice.</a> Microsurgery. , (2010).</li>
<li>Schlager, A., Khalaileh, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mouse+model+for+sleeve+gastrectomy%3A+Applications+for+diabetes+research%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">A mouse model for sleeve gastrectomy: Applications for diabetes research.</a> Microsurgery. 31 (1), 66-71 (2011).</li>
<li>Troy, S., Soty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+Gluconeogenesis+Is+a+Key+Factor+for+Early+Metabolic+Changes+after+Gastric+Bypass+but+Not+after+Gastric+Lap-Band+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Intestinal Gluconeogenesis Is a Key Factor for Early Metabolic Changes after Gastric Bypass but Not after Gastric Lap-Band in Mice.</a> Cell Metabolism. 8 (3), 201-211 (2008).</li>
<li>Seyfried, F., Lannoo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roux-en-Y+gastric+bypass+in+mice--surgical+technique+and+characterisation%5BTitle%5D)+AND+%22Obesity+surgery%22%5BJournal%5D)">Roux-en-Y gastric bypass in mice--surgical technique and characterisation.</a> Obesity surgery. 22 (7), 1117-1125 (2012).</li>
</ol>

著者は利益相反を宣言しません。

肥満の成長の流行を克服するために、最初の肥満手術の手順は、米国で1960年代に出現しました。それ以来、世界中で毎年行われる手順の数は依然として増加し、今日、これらの技術は、病的肥満6の管理のための最善の治療オプションを表します。開発手順の中では、SGとRYGBは、臨床実習4で使用される2つの最も一般的な方法です。動物モデル、特に齧歯動物は、肥満手術後に観察された一般的な健康の改善の背後にあるメカニズムを解読するために使用されています。 肥満手術の有益な代謝効果を維持する分子メカニズムを解読するために、我々は、肥満手術の2つのマウスモデルの開発：しばしば制限技術として定義されているSGを、そして制限および吸収不良手術として記載されているRYGB、。これらのマウスの肥満の実現手順顕微での経験が必要です。これらのモデルは、動物の手術と人間の内臓外科医の専門技術者を使って開発されました。経験から、外科的なトレーニングがRYGB後に超える75％の生存率に到達することが必要でした。 SGをマスターす...

肥満や糖尿病の世界的大流行は、重症度の壊滅的です。世界中で20億以上の成人（人口の30％）が、過体重（BMI&gt; 25キロ/ m 2）で、または肥満（BMI&gt; 30キロ/ m 2）でのいずれかである1。これは、罹患率及び死亡率の増加につながる、このような2型糖尿病、高血圧、脂質異常症などの代謝性合併症と一緒に来ることができます。肥満は全死亡率および癌2の有病率が増加します。何らかの効果的な非侵襲的な治療法がないために、肥満手術は、長期的、持続的な体重減少3、4につながることができます唯一のオプションを表します。異なる外科多くの方法が開発されてきたが、スリーブ胃切除（SG）とルーワイ胃バイパス（RYGB）は、最も一般的に臨床で使用される2つの手順です。 SG手順の間、胃の初期体積の80％です削除;従って、この技術は、満腹感を改善制限手術の一つです。 RYGBは限定的-吸収不良技術の一つです。 RYGBの間に、小さな胃嚢（総胃の容積の1から2パーセント）が作成され、腸は消化と栄養素の吸収を遅延させるY字型、に再配置されます。これら2つの技術がRYGBに見られる高い効率で、大幅な体重の減少と頻繁に関連併存疾患（ 例えば、高血圧症、2型糖尿病、脂質異常症）3の一般的な改善につながります。しかし、肥満手術の多面的な有益な効果の背後にある分子メカニズムは、多くの場合、完全には解明されていません。 、利用可能な多数の遺伝的に改変された株に、マウスモデルは、これらの分子メカニズムを探求するための最も便利な動物モデルです。 しかし、肥満の手順は、小動物モデルとrequirに直接適応することが困難です高い外科手術器用さを電子。 SGが簡単に非常に良好な生存率とげっ歯類で行うことができますが、RYGBは厳しい腸閉塞5匹のマウスで致死的です。異なる修飾RYGB法は、この問題、特にoesojejunostomy 5に対抗するために提案されています。胃切除せずに胃空腸吻合術：ここでは、別の代替案を提示します。この修正されたRYGBは再現ヒトで観察された有益な効果のほとんど（ すなわち、有意な体重減少とグルコースと脂質の恒常性の向上）。 この原稿は、要約したマウスでSGとRYGBの技術的および実験の詳細を議論し、動画の助けを借りて、これらの手順を容易にするためにすることを目指しています。特定のハイライトは、ビタミン、鉄欠乏の低減を可能に術前と術後の医療プロトコルの最適化について説明します。

<table><tbody><tr><td><強い>薬</強い></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>高脂肪ダイエット</td><td>DIOダイエット</td><td>安全な</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン、</td><td>フォラン</td><td>バクスター</td><td></td></tr><tr><td>、ブプレノルフィン</td><td>、ブプレケア</td><td>、アニマルケア</td><td></td></tr><tr><td>、マルボフロキサシン</td><td>、マーボシル</td><td>、ベトキノール</td><td></td></tr><tr><td>、クエン酸鉄アンモニウム、ビタミン、PP-B12</td>、<td>フェルコブサン</td><td>ベトキノール</td><td></td></tr><tr><td>ビタミン A-D3-E-K-B</td><td>Vita Rongeur</td><td>Virbac</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0.9%</td><td>NaCl 0,9%</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ポビドン溶液</td><td>ベタジンスクラブ</td><td>ベ</td><td></td></tr>タジン <tr><td>ポビドン溶液</td><td>ベタジン溶液</td><td>ベタジン</td><td></td></tr><tr><td>カルボトール 980 NF</td><td>Ocrygel</td><td>TVM</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>References</td><td>Company</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Sutures</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Prolene&reg;</td><td>8.0、6,5 mm</td><td>Ethicon</td><td></td></tr><tr><td>Prolene&reg;</td><td>5.0、13 mm</td><td>Ethicon</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>参照</td><td>Company</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Surgical equipments</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>はさみ</td><td></td><td>FST</td><td></td></tr><tr><td>ニードル</td><td>ホルダーOlsen-Hegar</td><td>FST</td><td></td></tr><tr><td>マイクロハサミ</td><td>Vannas</td><td>FST</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ鉗子&nbsp;</td><td>Graefe</td><td>FST</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ鉗子 湾曲</td><td>Graefe</td><td>FST</td><td></td></tr><tr><td>湾曲マイクロニードルホルダー</td><td>Castroviejo</td><td>FST</td><td></td></tr><tr><td>止血コラーゲン湿布</td><td>Pangen</td><td>Urgo</td><td></td></tr><tr><td>吸収性アンダーパッド</td><td></td><td>VWR</td><td></td></tr><tr><td>名前</td><td>参照</td><td>会社</td><td>コメント</strong</td></tr><tr><td>>特定の機器</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>血液内科システム&nbsp;</td><td>Hemavet 950FS</td><td>Hemavet</td><td></td></tr><tr><td>グルコースストリップとグルコメーター</td><td>ワンタッチ Verio</td><td>Life scan</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>MZ6</td><td>ライカ&nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

スリーブ胃切除およびマウスにおける変更されたルーワイ胃バイパスのテクニック

Techniques of Sleeve Gastrectomy and Modified Roux-en-Y Gastric Bypass in Mice

肥満は（2003年〜2008年）欧州における女性のための男性のための4〜28％と6.2 36.5％の有病率と、主要な公衆衛生問題です。病的肥満は、しばしば寿命と品質を低下させる、例えば、2型糖尿病、高血圧、及び脂質異常症などの代謝性合併症と関連しています。任意の効果的な非侵襲的治療の非存在下では、肥満手術は、病的肥満の患者（ボディ・マス・インデックス（BMI）&gt; 40 kg /日M 2）のための貴重な治療選択肢が長期につながるで、代謝合併症における体重減少および改善を持続。しかし、肥満手術の有益な効果を維持する基礎となる細胞および分子メカニズムはまだ完全には理解されていません。 、利用可能な多数の遺伝的に改変された株に、マウスモデルは、肥満手術の多面的な有益な効果の背後にある分子メカニズムを探求するための最も便利な動物モデルです。ここでは、最適化されたhealthcを詳述しましたスリーブ胃切除および修正ルーワイ胃バイパス：2、最も広く使用されている肥満症治療手術のためのマウスでの方法と外科的なプロトコルがあります。肥満手術の治療効果の根底にある分子メカニズムを解読すると、新しい治療薬の標的を同定するの約束を提供しています。

一般的な条件 SG手続きの平均手術時間は49.3±1.5分でした。私たちは、胃の約80％のパーセントを表し、胃の62.8±5.0 mgの、削除しました。いいえマウスは、手術中に、または次の7日の間に死亡しませんでした。 Oneマウス（7.1％）があるため胃石によって引き起こされる胃閉塞の11 番目の術後日目に死亡しました。 RYGB処置の平均手術時間は89.1±2.8分でした。死亡率はRYGB（; P = 0.038 66.6パーセント：RYGB 対 25％偽）後に有意に高かったです。術後死亡の主な原因は、吻合漏出（N = 8）、吻合部狭窄（n = 5）を、麻酔の合併症であった（N = 4）、および術後の出血（N = 2）。また、消化管吻合狭窄による2長...

肥満手術は、病的肥満にしばしば関連する致命的な代謝合併症(糖尿病、肥満、脂質異常症)を減らすための最も効率的な方法です。肥満手術のマウスモデルは、これらの手術が糖尿病、高血圧、脂質異常症に及ぼす有益な効果の背後にある分子メカニズムを解読するためのユニークな資産です。

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is ...

これらの外科的介入の全体的な目標は、マウスモデルにおけるスリーブ状胃切除術とRoux-en-Yバイパス術の代謝効果を測定することです。この方法は、肥満および代謝分野の重要な質問に答えるのに役立ちます 肥満手術後に観察される代謝増加に関与する分子メカニズムの経路について。これらの技術の主な利点は、マウスモデルのヒト患者で観察されるように、肥満手術の臨床的結果を刺激することです。スリーブ状胃切除術は、つま先をつまんで適切な麻酔レベルを確認した後、マウスの目に軟膏を塗り、電気カミソリで腹部の胸骨から骨盤まで剃毛します。腹部をラップで覆い、動物を加熱パッドの仰臥位に置きます。ラップで窓を切り、ポビドンヨウ素溶液で皮膚を消毒します。次に、動物を双眼顕微鏡の下に置き、メスを使用して胸骨から腹部の中央まで正中線の皮膚切開を行います。次に、摂氏37度の生理食塩水に浸した滅菌湿布で皮膚を保護し、綿棒を使用して胃を穏やかに動かし、臓器を横方向の密接な結合組織の付着から解放して、完全な外部化を可能にします。反射した臓器の後ろに止血コラーゲン湿布を置きます。次に、8.0非吸収性縫合糸を使用して、胃のより大きな湾曲に沿って幽門血管と食道血管を結紮し、続いて胃の幽門領域と心臓領域の間の解剖学的線に胃切開術を行います。湿らせた綿棒を2本使用して、胃の両側に残っている食べ物を取り除きます。次に、マイクロハサミを使用して眼底と体の境界に沿って胃を切断し、胃食道接合部から切開端までの8.0非吸収性縫合糸で胃の開口部を閉じます。より大きな湾曲に沿って胃の切除を完了し、胃の約80%を取り除き、必要に応じて止血コラーゲン湿布を適用します。胃の幽門部の開口部を別の8.0非吸収性縫合糸で閉じ、湿らせた2本の綿棒を胃の両側に向かってそっと転がして、縫合糸が漏れないことを確認します。止血性コラーゲンの湿布を腹腔から取り除き、胃を自然な位置に戻して、止血性コラーゲンの湿布を縫合糸に対して1つ残します。次に、5.0非吸収性縫合糸を使用して、腹壁と皮膚の筋肉層を閉じます。Roux-en-Y胃バイパス術では、胸骨から腹部の中央まで正中線の皮膚を切開し、摂氏37度の生理食塩水に浸した滅菌湿布で皮膚を保護します。腸を外部化し、幽門から8センチメートルを測定します。5.0非吸収性縫合糸を使用して、8センチメートルマークの両側の腸に2つの結紮糸を配置し、縫合糸の間の組織を切断します。次に、組織の近位肢を腹部の左上象限に配置し、遠位肢を消化肢に面して近位肢の6センチメートル下に配置します。マイクロハサミを使用して、近位肢と腸ループの両方を切断し、同じ長さの2つの腸内切開を行います。次に、2つの8.0非吸収性縫合糸を使用して、背側吻合を最初に配置し、次に腹側吻合を配置して、左右の吻合を行います。湿らせた2本の綿棒を吻合部の両側に向かって静かに転がして、縫合糸が漏れないことを確認し、先ほど示したように胃を慎重に外部化します。再吸収性の止血性コラーゲン湿布を臓器の後ろに置き、湾曲したマイクロ鉗子を使用して5.0非吸収性の縫合糸を大網に通し、幽門を結紮します。胃の腹側を幽門と遠位肢から1.5センチメートルのところに切り込み、同じ長さの切開を2つ作成し、続いて背側から腹側への左右の吻合を2つの8.0非吸収性縫合糸で行います。縫合糸が漏れていないか確認してください。次に、5.0の非吸収性縫合糸で腹壁と皮膚の筋肉層を閉じ、皮下注射で温かい生理食塩水1キログラムあたり25ミリリットルを投与します。マウスが麻酔から完全に回復したら、動物を摂氏30度のインキュベーターのケージに5日間一人で入れ、毎日鉄とビタミンの補給と鎮痛剤を投与し、最初の2日間はジェルダイエット食品を無料で摂取します。手術後3日目に、動物の食事に固形食を再導入します。術後生存率の漸進的な改善は、プロトコル全体で観察され、集中的な外科的トレーニングが必要であることを示しています 制限的な吸収不良の肥満またはRYGB手術技術を習得するには。スリーブ状胃切除術とRYGBマウスは、偽対照動物と比較して、手術後14日で有意な体重減少を示しています。スリーブ状胃切除術後の14日間で、動物の毎日の食物摂取量は3分の1以上減少しますが、この食欲不振の影響は偽マウスとRYGBマウスの間では観察されません。また、この動物は、両方のタイプの手術後に改善された耐糖能を示します。さらに、RYGBマウスで観察される重度の貧血は、手術後28日までの鉄補給によって改善されます。これらの技術を習得すれば、スリーブ状胃切除術は50分未満、Roux-en-Y胃バイパス術は90分で完了することができます。これらの手順を試みる際には、術前および術後のケア手順が外科的技術とほぼ同じくらい重要であることを覚えておくことが重要です。これらの手順に続いて、胆道転換手術などの他の方法を実行して、肥満手術の影響に対する胆汁酸の予測的役割に関する追加の質問に答えることができます。開発後、これらの技術は、肥満、糖尿病、高血圧、脂質異常症の分野の研究者が、野生型マウスや遺伝子改変マウスの有益な代謝物機能のメカニズムを明らかにする道を開きました。このビデオを見れば、マウスモデルで肥満手術を行う方法についてよく理解できるはずです。

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Medicine

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大動脈弁移植 - 教則ビデオのマウスモデルでスリーブを用いた

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スリーブ胃切除およびマウスにおける変更されたルーワイ胃バイパスのテクニック

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