Name: 遅行本鎖DNA合成の動態インビトロバクテリオファージT7複製タンパク質によって (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 14 s
Description: 学ぶT7バクテリオファージ複製タンパク質を用いた遅行本鎖DNA合成の動態解析法。ゲルベースの不連続アッセイでプライマー形成とOkazaki断片合成のキステップを同定し、DNA複製の機構解明に貢献します。

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コメントをくださったC.C.R.研究室のメンバーと、図の作成にご協力いただいたS.モスコウィッツに感謝いたします。この研究は、国立衛生研究所の助成金F32GM101761(A.J.H.)およびGM54397(C.C.R.)の支援を受けました。

注：このような手袋、安全メガネ、白衣、および適切なアクリルの盾として、を含むがこれらに限定されない、個人用保護具の使用を放射性物質の安全な使用、廃棄に関するすべての機関の規制に従ってください。 注：標準緩衝液は、40mMのHEPES-KOH、pHは7.5、50 mMのグルタミン酸カリウム、5mMのDTT、0.1mMのEDTA（このバッファは5倍の濃度で予備製）との各dNTP 0.3 mMの構成されています。 8、9、10に記載されるようにT7複製タンパク質が精製されます。単一T7プライマーゼ認識部位（5&#39;-GGGTC-3 &#39;、5&#39;-GTGTC-3&#39;、5&#39;-TGGTC-3 &#39;）を含む一本鎖DNAは、DNA合成会社の様々な（長さから購入することができます一本鎖DNAは、T7プライマーゼのために、選択した酵素に依存し得る、ペンタマーは、全長プライマーを合成するための最小テンプレートの長さである1潜在Cが必須であるように、プライマーは、ポリメラーゼによって伸長される場合に1が、しかし、追加のヌクレオチドが鋳型の3 &#39;末端に存在しなければなりません。反応を10mMのMgCl 2の最終濃度の添加によって開始し、25℃でインキュベートします。マニュアルサンプルは、5秒以上の時間点に適しています。それよりも短い時間ポイントが必要な場合には、正確なデータを得るために、急速クエンチフロー機器を使用することが推奨されます。 マニュアルサンプリング1.マルチターンオーバープライマー合成反応<ol><li>実験を開始する前に、ホルムアミド色素緩衝液のアリコート2μL（93％（v / v）のホルムアミド、50mMのEDTA、0.01％キシレンシアノール、および0.01％ブロモフェノールブルー）8 1.5 mLのポリプロピレンチューブに。一般に、管の数は、分析時点の数に等しいです。 </li><li>バッファー（1x）からなる20μLの混合物、0.1 mMのATPとCTP、0.25 mCiの/ mLの[α-32 P] CTP、0.1μMSSDを準備（六量濃度として表現 - 0.6μMモノマー）NAテンプレート、および0.1μMGP4。 </li><li> 5分間、室温で混合物をインキュベートします。 </li><li>ピペットを用いて混合物の2μLを削除し、無反応制御（時間ゼロ）のためのステップ1.1で調製した1.5 mLチューブに2μLのホルムアミド色素バッファーと混合。 </li><li> （10mMの最終濃度）を反応混合物に0.1 MのMgCl 2の2μLを追加します。 </li><li>手動で10秒間隔でピペットを用いて反応混合物の2μLのサンプルを撤回し、ステップ1.1で調製した1.5 mLチューブに予め分配ホルムアミド染料と混合します。 </li><li>ヒートブロックで5分間95℃で熱サンプル。 </li><li>変性ゲル上にサンプルのアリコートをロードします。ビスアクリルアミド（19：1）、3 M尿素、1×TBE（100mMトリス - ホウ酸、1mMのEDTA）T7プライマーゼによって合成された小さなtetraribonucleotideプライマー製品は、0.4ミリメートルの厚さの25％アクリルアミドでうまく解決されます。 </li><li> chromatograにゲル全体を置きますプラスチック製のラップでPHY紙とカバー。ゲル乾燥機を使用して乾燥ゲル。 </li><li>サンプルの4μLをロードした場合、反応混合物の残りの希釈系列を準備し、クロマトグラフィー紙上にゲル上にロードされた同じボリュームを発見、 すなわち 、希釈のスポット4μL。 注：これは、反応の間に形成された生成物の濃度を決定するための標準曲線となります。 （5 2 -5 6）15,625が、希釈物べきたとえば、TE緩衝液（10mMトリス-HCl、pH8.0の、1mMのEDTA）を用いて5倍希釈を1に1:25の範囲にわたる、うまく機能します活動のレベルに応じて調整します。 </li><li>ホスホイメージャ画面を使用して乾燥ゲルと標準を公開します。希釈系列で放射能を定量化し、8が記載されているように、標準曲線を作成、12 注：反応混合物のT7 DNAポリメラーゼを含めることは、一つのEXAすることができこの酵素による鉱山tetraribonucleotideプライマーの使用を。最適には、ポリメラーゼ濃度は、データの解釈を簡素化するために飽和されるべきです。 0.4μM以上のポリメラーゼ濃度は、良好な結果を与えます。さらに、そのような一本鎖DNA結合タンパク質などの他のタンパク質の効果は、プライマー合成またはラギング鎖開始のいずれかで、このようにして調べることができます。 </li></ol>ラピッドクエンチ機器の使用2.マルチターンオーバープライマー合成反応<ol><li> 反応混合物の調製 <ol><li> 0.5 mCiの/ mLの[α-32 P] CTPを含むバッファー（1x）、0.2μMGP4六、0.2μMssDNA鋳型、0.6 mMのdNTPを、0.2 mMのATPとCTPを（含む、A液の400μLを準備します。 </li><li>バッファー（1x）および20mMのMgCl 2を含む、溶液Bの400μLを準備します。 </li></ol></li><li> 急速クエンチフロー機器の操作 <ol><li>ラップをオンにしますID-クエンチフロー機器;メインメニューが表示された後、楽器キーボードのタイプ7はホームポジションにシリンジポンプを移動します。 </li><li> 「LOAD」にオープンバッファシリンジ位置。 </li></ol></li><li> ローディングバッファーシリンジ <ol><li>ドライブシリンジポートにバッファを含む10 mLシリンジを取り付けます。 「LOAD」にシリンジノブの位置を変更します。 </li><li> 10 mLのシリンジを用いて、10 mMトリス、pHは7.5、1 mMのEDTAを用いて器具バッファリザーバA及びBを充填し、クエンチ液（250mMのEDTA、および0.2％SDS）を用いて注射器Cを満たします。 inとoutプランジャーを押すことにより気泡を除去。 </li><li> 「FIRE」にノブの位置を変更します。シリンジポンプバーの位置を調整するタイプ2。プレスバッファが出口ループから出てくるまで、注射器を下げるためにボタンを「DOWN ADJUST」：（継続的にダウン7は-進み、8-大きなステップダウン; 9-小さなステップダウン）。メインメニューに戻るには「ESC」と入力します。 </li></ol></li><li> ウォッシュチューブ <ol><li> ATT真空へのACHの出口ライン。サンプルのノブに「FLUSH」に変更します。水平位置にノブを設定して閉じるバッファ用シリンジ。真空をオンにして、10秒間のH 2 Oで2フラッシュループを浸し、その後10秒間MeOHに浸し。 〜15秒間、または乾燥するまで空気を吸引することにより、ドライループ。 </li></ol></li><li> 読み込んサンプル <ol><li>サンプルノブの位置は、「LOAD」に変更します。 1 mLのシリンジに溶液Aを配置します。サンプルロードポートのいずれかに注射器を差し込みます。溶液Bのために繰り返し、反対側のサンプルのロードポートに配置します。 </li></ol></li><li> 時点のコレクション <ol><li>メインメニューで、クエンチフロー実行のタイプ1。反応時間（秒）を入力し、Enterキーを押し、「ENTER」。使用する反応ループ回数が表示されます。必要な反応ループに切り替えます。ステップ2.2.4で洗浄手順を繰り返します。 </li><li> 「LOAD」にサンプルのノブを回します。負荷反応は、ちょうど中央混合室の外側まで、サンプルループをミックス。 FIR」にすべてのノブを回してE &quot;は。すべてのツマミが正しい位置にあることを確認します。 </li><li>出口ループの最後に1.5 mLのチューブを置きます。押して反応を実行するために「GO」。ステップ2.2.4で洗浄手順を繰り返します。彼らはドライバーを打つまで、バッファの注射器のAとBをリロードします。 </li><li>所望の各時点での手順を繰り返し2.2.6.2-2.2.6.3。例外：開始試薬ゼロ時点のコントロールを急冷（ すなわち 、この場合のMgCl 2）を含む溶液をロードしないでください。 </li><li>サンプルを収集が終了したら、メインメニューに戻るには「ESC」を入力します。押して「7」は、そのホームポジションにバッファシリンジポンプを返します。 </li></ol></li><li> インストゥルメントのクリーンアップ <ol><li>反応混合物の注射器を取り外します。 「LOAD」の位置にサンプルローディングノブを回します。真空下、10 mLの0.3 NH 3 PO 4および10mLのMeOH、続いて10 mLの0.2 N NaOHで各サンプルループを、洗います。 </li><li> 「LOAD」の位置に注射器のつまみを回します。すべての3 SYRを押し下げますインゲプランジャは、反応やクエンチバッファーを取得します。ウォッシュは、少なくとも2倍の5mLのH 2 Oで注射器。 </li><li> 5mLのH 2 Oで再びシリンジを記入し、「FIRE」の位置にノブを回します。ノブの位置を変更し、ステップ2.2.4のようにフラッシュのH 2 Oを除去するために、真空をオンにします。楽器の電源をオフにします。 注：手順1.7から1.12に記載されているように製品を分析しています。また、T7 DNAポリメラーゼおよび他の複製タンパク質は、プライマー合成または伸長に対する効果を分析するために反応混合物に添加することができます。 </li></ol></li></ol> 3.シングルターンオーバープライマー合成反応 注：シングルターンオーバープライマー合成/伸長アッセイは、いくつかの主要な違いは、複数のターンオーバー反応と同様に実施されています。これらのアッセイは、プライマーまたは拡張製品に放射性標識されたATPの変換に従う、しかし基質の濃度およびタンパク質はconsideraありますBLY高いです。また、プライマー合成反応の分析を可能にするために、ミリ秒の分解能を達成するために、一方が急速クエンチフロー・マシンを利用しなければなりません。 <ol><li> 反応混合物を調製します。 <ol><li> 1×緩衝液を含む、A液の400μLを準備し、3μMGP4量体、6μMssDNA鋳型、0.6 mMのdNTPを、1 mMのCTP、および2 nMの[γ-32 P] ATP。バッファー（1x）および20mMのMgCl 2を含む、溶液Bの400μLを準備します。 </li></ol></li><li> 急速クエンチフロー操作 <ol><li>ステップ2.2で説明したように反応を行います。必要であれば、それぞれ、15μMおよび20μMの濃度で、T7 DNAポリメラーゼまたはT7一本鎖DNA結合タンパク質を追加します。この場合には、伸長生成物は、反応の手動サンプリングを可能にする時間体制で蓄積します。 </li></ol></li></ol> 4.データ解析<ol><li>非線形least-にフィット製品プログレス曲線最小二乗フィットおよび/または数値積分することのできる市販のソフトウェアを使用して正方形モデル。動作の詳細は、使用するソフトウェアによって変化しますが、以下のデータをフィッティングするために使用される方程式の一般形であるだろう。 </li><li>線形方程式にカーブを進行するために適合させることによって、複数の代謝回転プライマー合成反応の生成物形​​成の速度を決定します。かなりの曲率がある場合、単一指数関数にデータを当てはめることにより初速度法13、14を使用する ：Y = A（E - Tを K）yは、生成物濃度であり、Aは、反応の振幅であり、kは観察された速度定数、tは時間（秒）です。時間= 0における接線の傾きは、初速度です。 注： - k個 府線形方程式にまたは前定常状態バースト方程式y = A（Eへ前定常状態のプライマー合成反応をフィットAは反応振幅で第1のT）+レートSS tは、k個の バーストは、前定常状態のバーストのために観察された速度定数であり、レートssは定常状態速度SS = の k cat [酵素]）であり、tは時間であります、 すぐに。シングルターンオーバープライマーの合成反応は、シングル指数関数y = A（ - トンを K E）に進行曲線フィット。 GP4の場合には、市販のソフトウェアを使用して、各中間体は、酵素と平衡状態に。3つのNTP縮合段階でモデルに、数値積分15によってデータをフィット。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

これらの実験を行う際に最も重要な要因は、高活性精製された酵素の利用です。 GP4との作業中に、例えば、我々は、-20℃で50％グリセロールを含むそのバッファ中の精製酵素の貯蔵（20 mMリン酸カリウム、pH7.4中、0.1mMのEDTA、1mMのDTT）に見出さはの減少をもたらします数ヶ月にわたる準備の具体的な活動。したがって、我々は今、精製25mMトリス - 塩酸、pH7.5の、50mMのNaCl、0.1mMのEDTA、1mMのTCEPでGP4、および10％グリセロールのフラッシュ凍結小分けし、液体窒素を使用して、-80℃で保管してください。特に、最初のいくつかのサンプルの取得中に、急速クエンチフロー機器を使用しながら、その反応物は、反応前に開始し、反応温度（室温）に到達させることが重要です。また、細心の注意を十分に残っている消光試薬として、各時点の後、チューブ（プロトコールのステップ2.2.4）をきれいにするために取られるべきですラインが大幅に誤った結果をもたらす、酵素活性を阻害します。別の考慮事項は、ポリアクリルアミドゲルとその取り扱いの組成物を含みます。 GP4によって触媒プライマー合成反応中の...

DNAの複製は、すべての細胞の生命の保存機能です。アイデンティティおよびレプリケーション・コンポーネントの数は広く変化するが、一般的なメカニズムが進化1間で共有されています。ここで、我々は、T7レプリソームのコンポーネントによってインビトロでラギング鎖DNA合成の動態を理解することを目的とした放射性基質を使用して、ゲルに基づく、不連続動態実験を記載します。バクテリオファージT7の複製機構は、4つのタンパク質（DNAポリメラーゼ、GP5、そのプロセッシング因子、 大腸菌チオレドキシン、二官能性プライマーゼ、ヘリカーゼGP4、及び一本鎖DNA結合タンパク質、GP2からなる非常に簡単です。 5）2。この機能は、DNA複製に関与する保存された生化学的機構を研究するための魅力的なモデルシステムになります。 特別重点は、プライマーゼT7 DNA、criticaによりリボヌクレオチドプライマーの形成に配置されていますDNA合成の開始におけるL段階。また、一つは、反応混合物に含めることにより、T7 DNAポリメラーゼ、または他の複製タンパク質によって、これらのプライマーの使用を調べることができます。 T7プライマーゼ、ヘリカーゼ、GP4は、プライマーゼ認識部位、またはPRS（5&#39;-GTC-3 &#39;）と呼ばれる特定のDNA配列においてDNA合成のためのプライマーの形成を触媒します。 PRS中のシトシンは、サイトの認識のために不可欠であり、不可解ですが、それが製品3にコピーされていません。 GP4によるプライマー合成の最初のステップは、その後トリマーに、そして最終的にpppACCC、pppACCA、またはpppACACは、テンプレート4の配列に依存し、機能テトラヌクレオチドプライマーに拡張されたジヌクレオチドpppAC、の形成を含みます。これらのプライマーは、その後もGP4支援プロセス5,6でDNA合成を開始するために、T7 DNAポリメラーゼによって使用することができます。この点において、プライマーゼドメインは、それらの解離を防止する、テンプレートを使用して非常に短いtetraribonucleotidesを安定させるポリメラーゼ活性部位7にプライマー/鋳型の確保に資する方法でDNAポリメラーゼに係合します。これらの手順（RNAプライマー合成、ポリメラーゼへのプライマーのハンドオフ、および拡張子）はラギング鎖を複製するために複数のサイクルで繰り返され、リーディング鎖の複製と調整する必要があります。 ここに記載のアッセイは、高感度であり、適度な時間内に行うことができます。しかし、それらは比較的低いスループットと細心の注意が放射性物質の使用・廃棄に注意が必要です。で反応が進行する速度に応じて、1は、定常または前定常状態のいずれかで反応時間のコースの意味の分析のために適した時間スケールでサンプルを達成するために迅速な急冷装置を採用することがあります。最近、我々はevidencを提供するために、ここに記載のアッセイを使用しました岡崎フラグメントの開始におけるGP4のプライマーゼドメインからのプライマーのリリースの重要性の電子。さらに、当社は、効率的なプライマーの形成と利用8を促進する上で、タンパク質、gp2.5を結合T7一本鎖DNAのための調節的役割の証拠を発見しました。

<table><tbody><tr><td>トリスプリセットクリスタル pH 7.5</td><td>SIGMA</td><td>T4128</td><td></td></tr><tr><td>トリスベース</td><td>SIGMA</td><td>93362</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン酸カリウム塩一水和物</td><td>SIGMA</td><td>G1501&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>塩化マグネシウム六水和物</td><td>マリンクロット・ケミカルズ</td><td>5958-04</td><td></td></tr><tr><td>1,4-ジチオスレイトール</td><td>J.T.ベイカー</td><td>F780-02</td><td></td></tr><tr><td>ドデシル硫酸ナトリウム</td><td>MP バイオメディカルス</td><td>811030</td><td></td></tr><tr><td>(エチレンジニトリロ) 四酢酸、二ナトリウム塩、二水和物</td><td>マリンクロット・ケミカルズ</td><td>4931-04</td><td></td></tr><tr><td>[&α;-32P] CTP</td><td>PerkinElmer</td><td>BLU508H</td><td>放射性、保護対策を講じる</td></tr><tr><td>[&gamma;-32P] ATP</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>BLU502A放射性、保護対策を講じる</td></tr><tr><td>100 mM dATP, dCTP, dGTP, dTTP&nbsp;</td><td>Affymetrix</td><td>77100</td><td>4 dNTPs set</td></tr><tr><td>100 mM ATPおよびCTP</td><td>Epicentre</td>の一部 <td></td><td>RN02825 NTPセットの一部</td></tr><tr><td>ssDNAコンストラクト</td><td>Integrated DNA Technologies</td><td>N/A</td><td>custom sequences&nbsp;</td></tr><tr><td>メタノール&nbsp;</td><td>マクロンファインケミカルズ</td><td>3017-08</td><td></td></tr><tr><td>ホルムアミド</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td>17899</td><td></td></tr><tr><td>ブロモフェノール</td><td>ブルーSIGMA</td><td>B8026&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>シリーン・キシアノール&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>X4126&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>アクリルアミド</td><td>SIGMA</td><td>A9099</td><td>Toxic</td></tr><tr><td>N,N&prime;-メチレンビスアクリルアミド</td><td>SIGMA</td><td>M7279&nbsp;</td><td>毒性</td></tr><tr><td>尿素</td><td>ボストンバイオプロダクツ</td><td>P-940</td><td></td></tr><tr><td>ホウ酸</td><td>マリンクロットケミカルズ</td><td>2549</td><td></td></tr><tr><td>急速急冷流装置&nbsp;</td><td>キンテック(株)</td><td>RQF-3&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Kintekエクスプローラー</td><td>Kintek(株)</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>カレイダグラフ&nbsp;</td><td>シナジーソフトウェア</td><td>N/A</td><td></td></tr></tbody></table>

遅行本鎖dna合成の動態<em&gt;インビトロ</em&gt;バクテリオファージt7複製タンパク質によって

Kinetics of Lagging-strand DNA Synthesis In Vitro by the Bacteriophage T7 Replication Proteins

ここでは、バクテリオファージT7の複製タンパク質によるin vitroでの遅延鎖DNA合成の速度論的検査のためのプロトコルを提供します。T7レプリソームは、知られている最も単純な複製システムの1つであり、わずか4つのタンパク質で構成されており、これは生化学実験にとって魅力的な特徴です。特に、DNAポリメラーゼがDNA合成を開始するために使用するT7プリマーゼ-ヘリカーゼによるリボヌクレオチドプライマーの合成に重点が置かれています。DNA複製のメカニズムは進化を通じて保存されるため、これらのプロトコルは、他のモデルシステムを使用する研究者に適用可能または概念的な出発点として有用であるはずです。ここで説明するプロトコルは非常に感度が高く、経験豊富な研究者であれば、これらの実験を行い、分析用のデータを約1日で取得できます。必要な特殊な機器は急速急冷流装置だけですが、この機器は比較的一般的で、さまざまな商用ソースから入手できます。ただし、これらのアッセイの主な欠点には、放射能の使用と比較的低いスループットが含まれます。

手動多代謝回転条件下GP4によって触媒されるプライマーの合成反応をサンプリングすることによって、 すなわち 、プロトコルのステップ1に記載したように、図1Aに示した結果が得られました。ここで、ゲル電気泳動後の製品の範囲は、プライマー合成反応（ 図1A）内のα位の32 Pで標識されたCTPを用いて観察することができます。標識前駆体、CTPは、最も高い移動度を示し、GP4によって合成遅い移行ジ、トリに対応する種、およびtetraribonucleotidesに続くゲルの底部に向かって移動します。インキュベーションの長さ、および鋳型配列の文脈に応じて、より高いオリゴマー（pentaribonucleotides、 等 ）に対応する付加的な標識された製品を観察することができます。反応進行曲線は、最初の完全長のプライマーの濃度（即ち、テトラを決定することによって、プロットされそして、pentaribonucleotides）...

私たちは、バクテリオファージT7の複製タンパク質を使用して遅延鎖開始の動態を調べるための高感度のゲルベースの不連続アッセイについて説明します。

遅行本鎖DNA合成の動態<em&gt;インビトロ</em&gt;バクテリオファージT7複製タンパク質によって

Here we provide protocols for the kinetic examination of lagging-strand DNA synthesis in vitro by the replication proteins of bacteriophage T7. The T7 ...

この手順の全体的な目的は、プライマーおよびラギングストランドのDNA合成のキネティクスを調べることです。この手法は、DNAプライマーゼによるプライマーの形成、およびDNAポリメラーゼへの受け渡しと利用方法など、DNA複製分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。本手法の主な利点は、岡崎フラグメント合成における重要なステップを特定できることです。本実験では放射性物質を使用するため、放射性物質の安全な使用および廃棄に関するすべての機関規定に従わなければなりません。まず、分析するタイムポイントの数に合わせた8本の1.5 milliliterポリプロピレンチューブに、ホルムアミド染色バッファーを2 µLずつ分注します。次に、バッファー、ATP、α-リン酸基にP32で標識したCTP、一本鎖DNAテンプレート、およびgene fourタンパク質（GP fourプライマーゼヘリカーゼ）を含む20 µLの混合液を調製します。混合液を室温で5分間インキュベートします。5分後、ピペッターを用いて混合液を2 µL分取し、あらかじめ準備しておいた1.5 mLチューブの1本の中で、2 µLのホルムアミド染料バッファーと混合します。これが無反応コントロールとなります。0.1 M 塩化マグネシウムを2 µL反応混合液に加え、直ちにタイマーを開始します。10秒間隔で反応混合液から2 µLのサンプルを手動で分取し、1.5 mLチューブ内のホルムアミド染料と混合します。すべてのタイムポイントのサンプルを回収した後、ヒートブロックを用いてサンプルを95 °Cで5分間加熱します。サンプルの分注量を変性ゲルにロードし、電気泳動を行います。まず、反応混合液を調製することから始めてください。緩衝液、GP four hexamer、単鎖DNAテンプレート、dNTPs、ATP、CTP、およびα-リン酸基にP32で標識されたCTPを含む溶液Aを400 microliters調製します。1Xバッファーと20 millimolarの塩化マグネシウムを含む溶液Bを400 microliters調製します。次に、ラピッドクエンチフロー装置をセットアップします。装置の電源を入れ、メインメニューが表示された後、装置のキーボードで7を入力し、シリンジドライバーをホームポジションに移動させます。バッファーシリンジの位置を開いてロードします。シリンジCにクエンチ溶液を満たし、次に10 mLシリンジを使用して、装置のバッファーリザーバーAおよびBにバッファーを満たします。プランジャーを押し引きして気泡を除去してください。ノブの位置を「fire」に変更します。タイプ2を使用してシリンジドライバーバーの位置を調整します。「adjust down」ボタンを押し、バッファーが出口ループから出てくるまでシリンジを下げます。Escapeキーを押してメインメニューに戻ります。チューブを洗浄するには、出口ラインを真空ポンプに接続してください。サンプルノブをフラッシュ（洗浄）に切り替えます。ノブを水平位置に設定してバッファーシリンジを閉じます。真空ポンプをオンにし、2つのフラッシュループを水に10秒間浸し、続いてメタノールに10秒間浸します。空気を吸い込むことで、約15秒間、または乾くまでループを乾燥させます。サンプルをロードするには、サンプルノブの位置を「load」に変更します。溶液Aを1 mLシリンジに入れ、そのシリンジをサンプルロードポートのいずれかに接続します。同様に、溶液Bを反対側のサンプルロードポートに接続します。メインメニューでクエンチフローランの「1」を入力し、タイムポイントの収集を開始します。反応時間を入力し、Enterキーを押してください。使用する反応ループ番号が表示されます。指定の反応ループに切り替えてください。先に示した手順でチューブを洗浄した後、サンプルノブをロード位置に回します。反応混合液をサンプルループに注入し、中央の混合室の直前まで満たします。すべてのノブをファイア位置に回し、すべてのノブが正しい位置にあることを確認してください。出口ループの端に1.5 milliliterチューブを配置します。「go」を押して反応を開始させます。チューブ洗浄手順を繰り返した後、バッファーシリンジAおよびBをバッファーシリンジドライバーに当たるまで再充填します。希望する各タイムポイントについて、反応実行の手順を繰り返します。ただし、1点だけ例外があり、タイムポイント0のコントロールをクエンチする際は溶液Bをロードしないでください。サンプルの回収が完了したら、Escapeキーを入力してメインメニューに戻ります。7を押して、バッファーシリンジドライバーをホームポジションに戻してください。反応混合物用シリンジを取り外して装置のクリーニングを開始し、サンプルロードノブをロード位置に回します。真空状態で、各サンプルループを水酸化ナトリウム、リン酸、およびメタノールでそれぞれ10 millilitersずつ洗浄します。3つのシリンジプランジャーをすべて押し下げ、反応バッファーおよびクエンチバッファーを回収します。シリンジを5 mLの水で少なくとも2回洗浄します。再びシリンジに5 mLの水を満たし、ノブをfireポジションに回して真空ポンプを起動し、キーボードコマンドでドライバーを下降させて水を取り除きます。先に示した手順に従ってチュービングを洗浄します。最後に、急速クエンチフロー装置の電源を切ります。その後、テキストプロトコルに従ってサンプルを分析します。これらの結果は、マルチターンオーバー条件下でGP fourによって触媒されたプライマー合成反応を、手動でサンプリングすることによって得られました。ラベル付きの前駆体CTPが最も高い移動度を示してゲルの底部に向かって移動し、次いで、染料およびGP fourによって合成されたテトラリボヌクレオチドに対応する移動度の遅い種が続きます。インキュベーションの時間やテンプレート配列のコンテキストによっては、より高次のオリゴマーに対応する追加のラベル付き産物が観察されることがあります。急速クエンチ装置を用いて、数秒から数ミリ秒（ms）のタイムスケールでGP fourが触媒する反応を調べると、プライマーの蓄積は線形ではなく、実線で示される二相性のプロファイルを示すことが明らかになります。このことは、定常状態において生成物の形成は迅速であり、放出が律速段階であることを示唆しています。点線は、GP fourによるプライマー形成において定常状態前のバーストが起こらなかった場合に得られるであろう仮想的な進行曲線を表しています。シングルターンオーバーのプライマー合成実験は、基質から生成物への変換過程における中間種の形成と分解に関する情報を提供します。テトラマー形成の時間経過をゲル画像で示します。グラフは中間体の形成と時間の関係を示しています。習得すれば、適切に実施することでこの手法は90分で完了できます。放射性試薬の取り扱いは極めて危険であるため、本手順の実施中は、適切な遮蔽などの予防措置を必ず講じてください。

kinetics-lagging-strand-dna-synthesis-vitro-bacteriophage-t7

Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

このプロトコルは、リアルタイムで個々のreplisomesによってDNA複製を視覚化するためのシンプルな単一分子蛍光顕微鏡の技法を示しています。...

蛍光顕微鏡による可視化単分子のDNAの複製

我々は、バクテリオファージの複製システムのタンパク質によって媒介個々のDNA分子のリアルタイムレプリケーションを観察するための方法を説明します。...

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ヘッドオンRNAポリメラーゼによって停止した複製フォークの再起動を指示する

Source: Rustad, M., et al. Synthesis of Infectious Bacteriophages in an E. coli-based Cell-free Expression System. J. Vis. Exp. (2017).This video demonstrates the synthesis of bacteriophages using a cell-free transcription–translation (TXTL) system. A master mix is prepared using a bacterial crude extract, an energy mix, an amino acid mix, an inhibitor for a DNA-degrading enzyme, and bacteriophage DNA, then incubated. The in vitro molecular machinery enables viral protein expression and DNA...

Bacteriophage Synthesis Using a Cell-Free Transcription-Translation System

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DNA含有量測定法による哺乳類の複製タイミングのゲノムワイドな決意

学ぶT7バクテリオファージ複製タンパク質を用いた遅行本鎖DNA合成の動態解析法。ゲルベースの不連続アッセイでプライマー形成とOkazaki断片合成のキステップを同定し、DNA複製の機構解明に貢献します。

遅行本鎖DNA合成の動態

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