Name: IL-8トランジェントトランスジェニックマウスモデルインビボ炎症反応の長期モニタリング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-07T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 16 s
Description: 学ぶマウス肺炎症の非侵襲的バイオルミネセンスイメージング法。IL-8プロモーター活性を可視化し、同じ個体を2か月間繰り返しモニタリング可能。宿主病原体相互作用の動態解析に有用です。

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この研究は、イタリア嚢胞性線維症プロジェクトFFC＃18/2013、FFC＃29/2015、イタリア嚢胞性線維症連盟（Veneto Branch-Associazione Veneta Lotta contro la Fibrosi Cistica Onlus）の支援を受けました。

記載されたすべての動物実験は、ベローナ大学の実験研究サービス部門間動物実験のための動物実験のための教室内の動物福祉委員会によって承認され、欧州指令2010/63 UE、Italian D.Lgs 26/2014および改訂版「実験動物のケアおよび使用のためのガイド」ワシントンDC：National Academy Press、1996.このプロトコールおよび実験は、国立衛生研究所（National Institutes of Health）（n 273/15）によって承認された。動物は、標準的な齧歯類の飼料および軟化した水道水に自由にアクセスし、局所飼料条件（室温：20-24℃;相対湿度：40-70％;明暗サイクル：12時間）に少なくとも5日間順化させた）。 1. インビボ遺伝子送達<ol><li> インビボ送達試薬/核酸複合体を調製するために、層流フードを使用する。 </li><li>実験プロトコルを定義するメーカーのインビボでの指示に従って、 <ol><li>マウス1匹当たり複合体200μLの総注射量を使用する。 </li><li>エンドトキシンフリーの水に懸濁したDNA40μgで開始します。最適化範囲は60μgに達する可能性があります。 注記：注入量中の核酸の最終濃度は、製造業者の指示に従って0.5μg/μLを超えてはならない。 </li><li> 6〜8のN / P比（1μgの核酸あたり0.12〜0.16μLの送達試薬）を使用してください。送達試薬の対応する容量を計算する。 注：複合体は効果的な細胞侵入のためにカチオン性でなければならない。 N / P比は、核酸リン酸塩（P）当たりのインビボ送達試薬上の窒素残基（N）の数として定義され、錯体内のイオンバランスの尺度を表す。 </li></ol></li><li> 5％グルコース中の核酸の計算量（ステップ1.2.1参照）を希釈する（最終濃度10％グルコースストック溶液（提供された）および滅菌水を用いて調製した。希釈量が最終注入量の半分であることを確認してください。穏やかにボルテックスするか、ピペットで上下に混ぜる。 </li><li> 10％グルコースストック溶液（付属）と滅菌水を用いて、5％グルコース（最終濃度）の注入量の半分に、送達試薬の計算量（ステップ1.2.3参照）を希釈する。静かにボルテックスし、13,000 xgで15秒間回転させます。 </li><li>上記の希釈された送達試薬を希釈した核酸に一度に加える。穏やかにボルテックスして混合し、13,000 xgで15秒間回転させます。 </li><li>ステップ1.5の混合物を室温で15分間インキュベートする。 注：この時点から、複合体は室温で4時間安定であり、4℃で保存した場合には最大7日間安定です。 </li><li>室温で平衡化した複合体を用いて尾静脈注射を行う。マウスの尾を30秒間温水（50〜53℃）に入れ、静脈の拡張を可能にする。 <ol><li>マウスを拘束装置の中に置きます。尾静脈に27〜30ゲージの針を20〜30°の角度で挿入し、ゆっくり200μLを注入する。完了したら、針を取り外し、注射部位に圧力を加える。 注：注射中の尾のわずかな膨らみは、誤った位置決めを示します。このような場合は、ニードルを取り外して、前のサイトの近くでプロセスを繰り返します。 </li></ol></li><li>静脈注射の24および48時間後にin vivo BLI（工程2参照）を実施することによって遺伝子発現を視覚化する。 </li></ol> インビボ BLI 注：DPBS中の15 mg / mL D-ルシフェリンの新鮮な原液を調製し、0.22μmフィルターを使用してフィルターで滅菌し、-20°Cで保存します。 <ol><li>マウスを透明なプレキシガラス麻酔チャンバーに入れる。イソフルランチャンバーがいっぱいであることを確認してください。動物を麻酔する準備ができたら、ポンプ（left）とチャンバ（右）スイッチがオンになっています。 isofluraneダイヤルを誘導の場合は2.5％、メンテナンスの場合は2％にします。 IVISチャンバー内の動物は、画像取得中に2.5％イソフルラン麻酔下に保たれる。 </li><li>マウスを完全に麻酔した後、イメージングの15分前にD-ルシフェリン溶液10mL / kg体重を腹腔内経路で注射する。 注：D-ルシフェリンの投与後のシグナルピークの時間を決定するために、D-ルシフェリンの動態研究を実施すべきである。 </li><li> インビボイメージングシステムを開き、黒いカードストック（完成時に破棄）の部分をライニングしてイメージングチャンバを準備する。正しい麻酔のために必要に応じて鼻コーンを配置します（マウスあたり1つのコーンを使用します）。 注：器具に麻酔を供給するチューブは、同じ濃度の麻酔が画像システム内にある麻酔マニホールドにつながれるように分割されています。 </li><li> bからマウス（最大5個）を移すイメージングシステムのマニホールドに取り付けられたノーズコーンに牛を押し込み、ドアを閉じます。画像取得は5分持続する。 </li><li>次のように、製造元のソフトウェアを使用してBLIを取得します。 <ol><li>ソフトウェアを初期化します。 インビボイメージングシステム取得コントロールパネルでは、 Luminescentの隣にチェックマークを付けます。 Excitation Filter設定がBlockで、Emission Filter設定がOpenであることを確認します。 </li><li>矢印をクリックします：発光イメージングモードの場合、5分の露光時間、Binning 8、F / Stop 1を選択します。写真撮影モードでは、Binning 4とF / stop 8を選択します。 </li><li> Field of Viewドロップダウンリストから、D、19 cm、およびSubjectの高さを1.5 cmに設定します。イメージを取得する準備ができたら、「取得」をクリックします。 </li></ol></li><li>画像の取得が完了したら、マウスをケージに戻します。 </li><li>製造元のソフトウェアを使用して、特定の地域から放出された光子を定量化します。 <ol><li>クリック<strong&gt; ROIツールパレットのツール。 [ ROIツール ]の[タイプ]ドロップダウンリストから[ 測定ROI ]を選択します。 </li><li> Squareアイコンをクリックし、1匹の動物の胸郭を覆う適切な寸法の二乗ROIを描きます。各動物のROIをコピー＆ペーストして、同じ次元のROIを取得します。 [ROIツール]パネルで、[ ROIの測定 ]をクリックして、ROIの合計強度の測定値を取得します。 </li><li>セッション中に画像またはシーケンスで作成されたすべてのROI（ROIごとに1つのROI）についてROI測定データを観察します。 [エクスポート]をクリックし、ファイルを保存するフォルダを選択します。 </li></ol></li></ol> 3.炎症誘発性刺激によるマウスチャレンジ注：炎症誘発性刺激によるマウスチャレンジの前に、 インビボ BLIによるベースライン活性化をチェックする（ステップ2参照）。 インビボ遺伝子送達とマウスの間で少なくとも7日間は経過しなければならない軽度で一過性の炎症を消失させるための挑戦。 <ol><li>気管内注入用に装置を準備する（ 図1および図2を参照）。 <ol><li>スプリング（C、E）、100μLシリンジ（B）、使い捨てゲージ（D）を3方向ストップコック（A）に接続して使い捨てシリンジを接続します。システムをサポート（H）の上に置きます。システムをサポート（H）の上に置きます。 </li><li> PE190マイクロ医療チューブ（F）を使い捨てゲージ（D）とペンの世紀（G）に接続します。 </li><li> 5 mLシリンジに空気800μLを満たし、3方向停止コックを回します。 注：100μlのシリンジで50μlを吸引することにより、 Pseudomonas aeruginosa培養上清でチューブを満たします。 </li></ol></li></ol><img alt="図1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55499/55499fig1.jpg" /> 図1：回路図のReprese気管内装置の単一構成要素の構成。 （A）三方活栓、 （B） 100μLハミルトンシリンジ、 （C）使い捨て5mLシリンジ、 （D）使い捨てゲージ、 （E）使い捨て5mLシリンジ（バネ付き） 、 （F） PE190マイクロ医療チューブ、 （G）ペンの世紀、 （H）のサポート。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55499/55499fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を見るには、ここをクリックしてください。</a> <img alt="図2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55499/55499fig2.jpg" /> 図2：組み立てられた気管内装置の表示。 識別は図1と同じです。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55499/55499fig2large.jpg" target="_blank">クリックしてください</a>ここではこの図のより大きなバージョンを表示します。 <ol start="2"><li>酸素と混合したイソフルラン2.5％にセットしたイソフルラン気化器チャンバーを用いてマウスを麻酔する。 </li><li> 3〜5分後に麻酔薬の効果を評価するために動物を監視する。 注：マウスが完全に麻酔されていることを確認するには、次の徴候を注意深く監視してください：呼吸速度が遅くなる、頸部が拾ったときに腕が伸びない、後肢が刺激されたときに反応がない、これらの基準が満たされない場合、次のステップに進む前に、さらに数分間待ってから再度確認してください。 </li><li>麻酔したマウスをプレキシガラスの挿管台に置き、前歯で吊り下げ、ワイヤー上に置く。 </li><li>左手で喉頭鏡をオンにして（右利きの研究者のために）、鈍端の鉗子を掴む。喉頭鏡と鉗子の先端を静かに口を開けるために使用します。 </li><li>舌を引き出してh古いそれは鉗子を使用して側面に。喉頭鏡の刃を口の後ろに向けてガイドします。気管開口部が見えるまで喉頭鏡を90°の角度で非常に静かに押し下げてください。喉頭鏡を所定の位置に保持する。 </li><li>他方の手でPEチューブの端に接続された送達チューブを取り出し、それを気管に挿入する。 3方向バルブを回して接種材料を送達します。チューブをできるだけ早く気管から引き抜く。肺に吸入するためにマウスを数秒間垂直に保持する。 注：気管が長時間閉塞された場合、マウスは窒息して死ぬでしょう。 </li><li>プラットフォームからマウスを取り外します。回復時間は、系統によって異なる場合があります。処置後30分以内に動物が完全に起きていることを確認して、マウスを徹底的にモニターする。 </li><li> 150mg / kgのD-ルシフェリンを腹腔内に注射し、気管内投与の4,24、および48時間後のインビボイメージングシステムを用いて肺をイメージングする。刺激の滴下。製造元のソフトウェアを使用して、特定の地域から放出された光子を定量化します。 </li></ol>

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</ol>

著者は何も開示することはない。

以前の研究11では、bIL-8-Luc依存性BLIマーカーとBALマーカーとの間のコントラストが示された。それはマウス系統12内の感度の差異に依存していた12 。この理由から、異なるマウス株へのbIL-8-Lucモデルの最初の適用は、BLIおよびより標準化された炎症マーカーの両方の炎症反応の初期研究を必要とする。 マウスのトランスフェクションは軽度の肺の炎症およびBIL-8-Lucの活性化を引き起こし、これはBLIによりDNA注射後3〜4日まで検出可能である（ 図4 ）。その後、1週間後に完全に消滅する。遺伝子送達後のbIL-8-Lucの発現は、以下の実験ステップの成功のための必要条件であるため、 インビボ BLIによって常に検証されるべきである。 7日後およびマウスチャレンジの前に、ベースライン活性化をconfに記録するトランスフェクションによって引き起こされる炎症の消滅を確認する。 <...

喘息、慢性閉塞性肺疾患（COPD）、嚢胞性線維症（CF）および気管支拡張症などの慢性肺疾患は、気道炎症によって特徴付けられる。気道炎症は、浮腫、細胞浸潤、Tリンパ球および肥満細胞活性化、気道分泌の増加、および過剰なコラーゲン沈着を特徴とする。 CFは多系統障害であり、その死亡率および罹患率の主な原因は肺悪化の増大に伴う肺細菌感染である。肺機能の低下は、有意に不良な転帰1,2,3,4を予測する。 気道の炎症状態は、通常、喀痰のような下気道および上気道から誘導された物質における炎症過程中に動員された免疫学的マーカーの評価によって観察され、可変のresウルトラ。気管支鏡検査も行われる5 。マウスモデルは、気道炎症を特徴とする疾患の病因および進化を調査するための有効な治療または治癒がまだ同定されていない貴重なツールである。ヒトの状態（ 例えば、タバコの煙の曝露、LPS、エラスターゼ、オボアルブミン、ポリI：C など ）をシミュレートする化学物質の役割を含む、喘息および宿主 - 病原体の相互作用を研究するために、肺感染および炎症の動物モデルが使用されている上記の組み合わせと同様に） 6 。細菌負荷、肺のサイトカイン、および気管支肺胞洗浄液（BAL）を収集するために侵襲的アプローチが必要とされるため、炎症関連パラメータの測定には動物の犠牲が必要です。また、組織学的検査がしばしば必要とされる。炎症反応動態に関する情報を得る可能性は、numうっ血性のマウス。したがって、動物を犠牲にする必要なしにそのような情報を得ることを可能にする技術は、技術的、倫理的、経済的、および運用上の基礎上価値がある。 IL-8は、炎症過程に必須のプレーヤーであり、白血球を炎症組織に補充する。これは、炎症経路活性化の研究のための分子読み出しを表す。 MIP-2およびKCは、マウスにおけるヒトIL-8の機能相同体であり得る。マウスは、潜在的なIL-8受容体（ヒトCXCR2の相同体7,8）のみを発現するが、レポーター遺伝子を駆動する異種IL-8遺伝子プロモーターを調節することができる。ウシIL-8プロモーター/ルシフェラーゼレポーター構築物がマウスにおいてトランス活性化され得るという観察の後に、最近、肺炎症マウスモデルが開発された。この特徴は、生物発光イメージング（BLI）を利用して、ニールズ9 。 このモデルは、細菌エキソプロダクト（ 例えば、細菌株によって放出されるLPSまたは産物）またはTNFα10,11によって引き起こされる炎症を研究するために適応されている。創薬プロセスは、CF、喘息、COPDなどの肺疾患を治療することができる新旧の抗炎症分子の開発と最適化に焦点を当てています。これらの新しい化学物質は、スマートな臨床試験の設計を容易にするために、特定の臨床表現型に関連付けることができる動物モデルで迅速かつ簡便に試験されなければならない。

<table><tbody><tr><td>FMT 2500 蛍光断層撮影システム</td><td>パーキン・エルマー社</td><td>エクスペリメンタルビルダー</td><td></td></tr><tr><td>IVIS Lumina serie II 前臨床 In Vivo;イメージングシステム:</td><td>パーキン・エルマー(株)</td><td>エクスペリメンタルビルダー</td><td></td></tr><tr><td>MMPsense 750 FAST</td><td>Perkin Elmer Inc.</td><td>NEV10001EX</td><td>光から保護し、プローブを4°Cで保管します。C</td></tr><tr><td>雌の近交系 BalbC Harlan</td><td>Laboratories イタリア</td><td></td><td>使用前に、動物は少なくとも5日間、地元のビバリウム条件に順応させました</td></tr><tr><td>bIL-8-Lucプラスミド</td><td>イタリア、パルマ</td><td></td>大学医学獣医学部 プラス<td>ミドを-20°Cで保存します。C</td></tr><tr><td>pGL3basic ベクトル</td><td>Promega</td><td>E1751</td><td>ベクトルを -20 &deg;C</td></tr><tr><td>JetPEI DNAトランスフェクション試薬</td><td>Polyplusトランスフェクション</td><td>201B-001G</td><td>DNAとJetPEIの混合物は、7</td></tr><tr><td>D-ルシフェリンカリウム塩1 g</td>の最終的なN / P比で配合されました<td>。</td><td>122796</td><td>光から保護し、-20°Cで保管してください。C</td></tr><tr><td>リビングイメージソフトウェア</td><td>キャリパーライフサイエンス、</td><td>エクスペリメンタルビルダー</td><td></td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>ESTEVE spa</td><td>571329.8</td> バイオプレックスサイトカインアッセイキットを<td>吸い込まないでください</td></tr><tr><td></td><td>バイオ・ラッド・ラボラトリーズ</td><td>M60-009RDPD</td><td>未開封のキットは4°Cで保管してください。C</td></tr><tr><td>自動セルカウンター</td><td>Dasit XT 1800J</td><td>エクスペリメンタルビルダー</td><td></td></tr><tr><td>ペンセンチュリーモデル DP-4M ドライパワーインファフレーター</td><td>ペンセンチュリー</td><td>DPM-EXT</td><td></td></tr><tr><td>ガス麻酔システム XGI-8</td><td>パーキン・エルマー</td><td>実験ビルダー</td><td></td></tr><tr><td>PE190 マイクロ医療チューブ</td><td>2生物学的機器 snc</td><td>BB31695-PE/8</td><td></td></tr><tr><td>注射器 針なし 5 mL</td><td>テルモ</td><td>SS*05SE1</td> ピストン<td>の板をハサミで切断</td></tr><tr><td>ハミルトン 0,10 mL (モデル 1710)</td> <td>ガスタイト</td><td>81022</td><td></td></tr><tr><td>ディスコフィックス 3 ウェイ ストップコック</td><td>ブラウン</td><td>4095111</td><td></td></tr><tr><td>注射器 針付き 1mL</td><td>Pic溶液</td><td>3,071,260,300,320</td><td>針なしで使用</td></tr><tr><td>プラスチック供給チューブ 18ga x 50 mm</td><td>2生物学的器具 snc</td><td>FTP-18-50</td><td>先端を斜めにカット&nbsp;</td></tr></tbody></table>

il-8トランジェントトランスジェニックマウスモデル<em&gt;インビボ</em&gt;炎症反応の長期モニタリング

An IL-8 Transiently Transgenized Mouse Model for the In Vivo Long-term Monitoring of Inflammatory Responses

気道炎症はしばしば細菌感染に関連し、肺疾患の主要な決定要因である。 インビトロでの種々の因子の炎症誘発能力の決定は困難であり、気管支肺胞洗浄およびその場での分析のための肺の除去などの終末処置を必要とし、同じマウスにおける縦視覚化を排除する。ここで、肺炎症は、異種IL-8ウシプロモーターの制御下でルシフェラーゼレポーター遺伝子を発現する一過性にトランスジェニックされたマウスにおける緑膿菌培養上清（SN）の気管内注入により誘導される。肺におけるルシフェラーゼ発現は、点滴後の2.5~48時間の時間フレームにわたるインビボ生物発光画像（BLI）分析によってモニターされる。この手順は2〜3ヶ月以内に複数回繰り返すことができ、同じマウスの炎症反応の評価を可能にする動物を終わらせる必要があります。このアプローチは、リアルタイムで肺に作用する前炎症性因子および抗炎症因子のモニタリングを可能にし、機能的および薬理学的研究に適していると思われる。

BIL-8-Luc一過性トランスジェニックマウスモデルを、分泌されたビルレンス因子を含む濃縮細菌上清（30x）でチャレンジしたマウスの肺炎症のin vivoモニタリングに使用した。誘導された炎症応答は、BLIシグナルの増加としてインビボイメージングによって検出可能であった。前炎症活性は、点眼後2.5時間ではっきりと検出可能であったが、BLIシグナルは5時間から24時間の間に最高ピークに達し、48時間でなお検出可能であった（ 図3 ）。 <img alt="図3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55499/55499fig3.jpg" /> 図3：IL-8一過性トランスジェニックマウスにおけるP.aeruginosa SNによって誘発された肺炎症の代表的なイ...

本明細書に記載の方法は、非侵襲性生物発光イメージング（BLI）を介したマウスの肺におけるIL-8プロモーター依存性炎症活性化の視覚化を可能にする。同じ動物を、ルシフェラーゼレポーター構築物の送達の時点から2ヶ月まで、複数回BLIに供することができる。

IL-8トランジェントトランスジェニックマウスモデル<em&gt;インビボ</em&gt;炎症反応の長期モニタリング

Airway inflammation is often associated with bacterial infections and represents a major determinant of lung disease. The in vivo determination of the ...

本手順の全体的な目的は、細菌培養上清などの前炎症性刺激による非侵襲的なチャレンジ後におけるマウスの肺炎症をリアルタイムでモニタリングすることです。この手法は、どの細菌産物が呼吸器感染症の原因となるかなど、宿主と病原体の相互作用に関する具体的な疑問を解決するのに役立ちます。本手法の主な利点は、非侵襲的であること、および同一の動物を時間をかけて繰り返しモニタリングできることです。設置手順をテキストだけで習得することは困難であるため、本手法を視覚的に提示することが重要です。手順のデモンストレーションは、私の研究グループの外部共同研究者であるFrancesca Ruscitti、Angela Sandri、Federico Boschiが担当します。in vivo 遺伝子導入を行うには、まず核酸複合体を室温まで温めてください。次に、実験動物の尾を50から53 °Cのお湯で30秒間温めます。尾静脈が拡張したら、マウスを適切な保定器具に固定し、拡張した尾静脈に27から30ゲージの針を20から30度の角度で挿入し、複合体200 µLを注入します。全量を投与した後、針を抜き、注入部位を圧迫します。24〜48時間後、生物発光イメージングの15分前に、完全に麻酔をかけた複合体注入動物（最大5匹）に対し、調製直後のD-Luciferinを10 milliliters per kilogramの用量で腹腔内注射します。in vivoイメージングシステムを開き、イメージングチャンバーに黒いカードストックを敷いた後、マウスをイメージングチャンバー内に配置します。in vivoイメージングシステムのソフトウェアを起動し、システムを初期化します。「luminescent」の横にあるチェックボックスにチェックを入れ、励起フィルターが「block」に、蛍光フィルターが「open」に設定されていることを確認します。ルミネッセンス撮影モードでは、露光時間を5分、ビニングを8、F値を1に設定します。写真撮影モードでは、ビニングを4、F値を8に設定します。視野メニューで、19 by 19 cmの領域と被写体高さ1.5 cmの視野Dを選択します。すべてのパラメータを設定したら、[Acquire]をクリックして動物を撮影します。画像取得後、動物をケージに戻し、完全に回復するまでモニタリングを行います。特定の関心領域から放出される光子を定量化するには、イメージングシステムのソフトウェアを開き、関心領域ツールを選択します。「タイプ」メニューで「測定関心領域（Measurement Region of Interest）」を選択し、正方形ツールを使用して、1匹の動物の胸部周辺に正方形の関心領域を描画します。この関心領域を他のすべての動物にコピーして貼り付け、同一サイズの関心領域を作成し、「関心領域を測定（Measure Region of Interest）」をクリックして、すべての関心領域の総強度を測定します。次に「Export」をクリックし、関心領域（ROI）の測定データを保存するフォルダを選択します。in vivo 遺伝子導入から少なくとも7日後に、5 mLシリンジとスプリング、100 µL Hamiltonシリンジ、および使い捨てゲージを3方活栓に接続します。PE 190マイクロメディカルチューブを使い捨てゲージとペンセントリー針に接続します。5 mLシリンジに800 µLの空気を充填します。ストップコックを回し、100 µLシリンジに吸い上げてチューブ内の上清を回収した後、麻酔をかけた実験用マウスをプレキシガラス製挿管プラットフォームに置き、切歯で動物を固定します。非利き手でラリンゴスコープの電源を入れ、もう一方の手で鈍端鑷子とラリンゴスコープの先端を使用して、口をゆっくりと開かせます。ピンセットを使用して舌を横に寄せ、喉頭鏡のブレードを口の奥へと導きます。気管の開口部が見えるまで、喉頭鏡を下方へ90度の角度で非常に緩やかに押し下げます。もう一方の手で、PEチューブの末端に接続されたデリバリーチューブを気管に挿入し、3方活栓を回してPseudomonas aeruginosa接種液を注入し、すべての接種液が注入されたら直ちにチューブを速やかに抜去します。マウスを数秒間直立に保持し、接種物を肺に吸入させます。最後に、接種した動物にD-Luciferinを150 milligrams per kilogramで腹腔内投与し、気管内刺激設置から4、24、および48時間後にin vivoイメージングシステムで肺をイメージングし、続いて前述の通りに光子定量を行います。ここでは、前述の通りに分泌病原性因子を含む濃縮細菌上清で刺激したbovine interleukin-8 luciferase一過性トランスジェニックBALB/cマウスを用い、肺炎症のリアルタイムin vivoモニタリングに生物発光イメージングを利用しました。誘導された炎症反応は、設置後わずか2.5時間でバイオルミネッセンス信号の増加として検出され、光子放出は5時間から24時間の間でピークに達し、刺激後少なくとも48時間まで検出可能な状態で維持されました。この手順に続き、気管支肺胞洗浄などの他の手法を行うことで、処置によって生成された免疫細胞の数や種類に関するさらなる疑問を解決することができます。このビデオを視聴することで、マウスにおける肺炎症の誘導方法と、バイオルミネッセンスイメージングを用いたin vivoでのモニタリング方法について十分に理解できるはずです。

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

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IL-8トランジェントトランスジェニックマウスモデル

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