Name: ペアになっているビーズと磁石配列変数の凹面形状とマイクロウェルを成形 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 42 s
Description: 学ぶ 磁力を用いた鋼球自己固定法による凹型マイクロウェル作製技術。PDMS基板上に数百個の球状凹面構造を簡便に形成し、三次元細胞培養環境の構築を可能にする低コストなマイクロ加工手法です。

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この研究は、基本的な科学研究開発プログラムを通じて、国立研究財団の韓国 (NRF) 科学省、ICT および将来計画 (NRF 2014R1A1A2057527 と NRF 2016R1D1A1B03934418) によって資金を供給によって支えられました。

1. 貫通穴アルミ板とマグネット アレイの作製
<ol><li>2 50 mm × 50 mm を準備 (または大きい) アルミ板。各板の厚さは、ビーズの直径の半分は、300 μ m だった。</li>
	<li>突進速度と主軸回転速度は 8000 RPM の 30 mm/s の Φ550 μ m マイクロ ドリル ビット CNC の回転式切削機を用いたアルミ プレートの 1 つで 30 x 30 貫通穴配列を形成します。各ホール (センター) の間の距離 (図 1 a 図 2 a、私) 1 mm であった。</li>
	<li>1.2 (図 1 a 図 2 a、 ii) で説明したのと同じ手順を使用して、他のアルミ板に Φ750 μ m 貫通穴の 30 x 30 配列を形成します。</li>
	<li>お互い粘着テープを使用して、2 つのプレートを添付し、両方アルミ板の 4 つのコーナーのそれぞれで Φ3 mm の位置合わせ穴を形成します。</li>
	<li>その表面をきれいにする 12 時間 15% 硫酸でアルミ板を浸します。アルミニウムの表面に酸化アルミニウムの薄い層は、耐腐食性、ので穴の直径と、板の厚さはこの酸処理によって変更されません。</li>
	<li>(0.363 N の磁気強度) と 1 mm ネオジム磁石 x 1 x 1 の 30 × 30 の配列を形成します。各マグネットが隣国に反対の極性であることを確認します。磁石配列の散乱や破損を防ぐため、両面テープ (図 2 a、 iii との挿入図 2) を使用した磁石配列の下に 30 × 30 mm のアルミ板を取り付けます。</li>
</ol>2. ビーズ捕捉過程
<ol><li>合わせ、2 枚のアルミ板をスタック (トップ プレート: 750 μ m 穴板、底板: 550 μ m 穴プレート) (図 1 b) 各プレートの 4 つのコーナーで準備された位置合わせ穴を使用します。</li>
	<li>位置合わせ穴に M3 ボルトを挿入して一緒に 2 つのプレートをロックし、(図 1 b) のナットとボルトで固定します。</li>
	<li>準備磁石配列 (図 1 b 2 b、 2 c) のアルミ板アセンブリをスタックします。スタッキング プロセス中に磁石の配列と、アルミ板の穴の配列を合わせます。粘着テープを使用して、磁石の配列の位置を修正します。</li>
	<li>場所 Φ600 mm SUJ2 鋼の十分な数のリヤカバー組立にビーズし、アクリル (又は非金属) を使用してビーズを操作プレート ビーズが同時にそれぞれの穴 (図 1 c 1 d、および1e) しながらトラップになるような穴に提出していない余分なビーズを削除します。</li>
	<li>不要な散乱と閉じ込められたビーズ (図 1 f) の転位を避けるためにトップ プレートを慎重に取り外します。</li>
</ol>3. 凹マイクロウェル作製
<ol><li>シャーレに上記手順 2.1 から 2.5 で生産された凹面マイクロウェル金型を移動します。</li>
	<li>ポリジメチルシロキサン (PDMS) モノマーと製造元の手順19によると硬化剤を混ぜて PDMS モノマー: 硬化剤比率 10:1。</li>
	<li>PDMS 混合物に閉じ込められた任意の泡を削除する、デシケーター、真空ポンプを使用して解消ガス PDMS 混合物。</li>
	<li>凹マイクロウェル金型に PDMS を流し込むと再び 3.3 (図 1 階) で説明したのと同じ手順を使用して解消をガス。</li>
	<li>ビーズ埋め込み PDMS 基板 (図 1 g) を形成する 2 h 80 ° C でホット プレートに PDMS の混合物を焼きます。</li>
	<li>金型 (図 1 g) から硬化 PDMS 基板を取り外します。削除プロセスで金型から PDMS 基板をデタッチする洗浄瓶を利用したメタノールをスプレーします。</li>
	<li>2 mm マグネット × Φ15 を使用して、PDMS 基板 (図 1 h) から閉じ込められた鋼ビードを削除します。このプロセスは、PDMS 基板からビーズを抽出する十分に強力な磁石が使えます。</li>
</ol>4. 回転楕円体文化
<ol><li>本研究では 24 ウェル プレートに搭載される Φ14 mm 生検パンチを用いた凹面マイクロウェル パターン PDMS 基板をカットします。</li>
	<li>結果 Φ14 mm PDMS 基板 121 ° C、15 psi でオートクレーブ滅菌器で滅菌します。</li>
	<li>24 well プレートに滅菌の PDMS 基板を配置します。</li>
	<li>マイクロウェル表面への細胞接着を防ぐために一晩に 4% (w/v) プルロニック F-127 ソリューション全体の PDMS 基板をコートします。コーティング プロセス中に内包凹マイクロウェル ピペッティングか超音波洗浄器を使用して、空気の泡を削除します。</li>
	<li>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) を使用して、3 回 F-127 ソリューションをフラッシュします。</li>
	<li>PDMS 基板上 (2 x 10 の6セルを含む) の培 (ダルベッコ変更イーグル培地) 溶液 1 mL をシードします。ターゲットの回転楕円体のサイズおよび/またはターゲット セルの種類によると、播種密度を変更できることに注意してください。ここでは、脂肪由来幹細胞 (ASC) が使用されました。</li>
	<li>マイクロウェル (図 3) でなく閉じ込められた任意の余分な細胞を除去する 1000 μ L ピペットを使用して媒体の 1 mL を吸引します。</li>
	<li>36.5 ° C、湿度で細胞をインキュベート > 95% と 5% CO2条件。本研究で使用する Asc、場合セルを 48 時間で回転楕円体に集約します。</li>
</ol>

<ol><li>Fennema, E., Rivron, N., Rouwkema, J., van Blitterswijk, C., de Boer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spheroid+culture+as+a+tool+for+creating+3D+complex+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Spheroid culture as a tool for creating 3D complex tissues.</a> Trends Biotechnol. 31 (2), 108-115 (2013).</li>
<li>Djordjevic, B., Lange, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hybrid+spheroids+as+a+tool+for+prediction+of+radiosensitivity+in+tumor+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Indian+J+Exp+Biol%22%5BJournal%5D)">Hybrid spheroids as a tool for prediction of radiosensitivity in tumor therapy.</a> Indian J Exp Biol. 42 (5), 443-447 (2004).</li>
<li>Takezawa, T., Yamazaki, M., Mori, Y., Yonaha, T., Yoshizato, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+and+immuno-cytochemical+characterization+of+a+hetero-spheroid+composed+of+fibroblasts+and+hepatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Morphological and immuno-cytochemical characterization of a hetero-spheroid composed of fibroblasts and hepatocytes.</a> J Cell Sci. 101 (3), 495-501 (1992).</li>
<li>Gottfried, E., Kunz-Schughart, L. A., Andreesen, R., Kreutz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brave+little+world%3A+spheroids+as+an+in+vitro+model+to+study+tumor-immune-cell+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Brave little world: spheroids as an in vitro model to study tumor-immune-cell interactions.</a> Cell Cycle. 5 (7), 691-695 (2006).</li>
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</ol>

著者はある利益相反を開示します。

この製造方法を直面する大きな課題は、アルミ板のスルーホール配列でビーズの安全な固定だった。このような課題を解決するために 30 × 30 磁石配列の形で磁気力は確実に、図 6と7で示すように、ビーズを固定する使用されました。反対の極性である磁石配列の磁気磁束密度はそれぞれ磁石表面の中心に最強です。磁気力の強さは、磁束密度に依存するため、彼らは位置で開催された、各磁石の上面の中心にビーズが導かれました。一本の大型磁石 (5 cm × 5 cm × 1 cm) を使用した場合ビーズ、特に極端な穴は、外にあるものは高い強度磁場が磁石の端に作成に惹かれる傾向があります。大きい磁石を使用して別の問題は、ビーズがくっついて自然に小さなビーズ チェーン (図 8 a) を作成します。
トップ プレート (750 μ m 穴) の役割は、ビーズをトラップするピット形状を提供することでした。このピット構造のため (プロトコル 2.4 と図 1 cと1...

回転楕円体の形に育った細胞が二次元平面文化1より体内の実質組織のようです。この利点を考えると、回転楕円体の使用は、細胞相互作用2,3、免疫活性化4薬剤のスクリーニングの5、および分化6の研究を改善するために適用されています。さらに、種類の細胞を組み込んだ回転楕円体は最近 organoids (近く生理三次元 (3 D) 組織) 人間開発と病気7を勉強する場合に便利であるに適用されています。いくつかの方法は、回転楕円体を生成する使用されています。最も簡単な方法には、細胞がお互いとフォーム回転楕円体で集約することなど、非粘着表面の使用率が含まれます。シャーレは、ウシ血清アルブミン、プルロニック F-127、またはその表面の非粘着8、9にする疎水性ポリマー (例えばポリ 2 hydroxyethl メタクリル酸) と扱うことができます。スピナー フラスコ法は、回転楕円体10,11の大量生産の別のよく知られている手段です。このメソッドは、細胞懸濁液の基板に接続されなることからそれらを防ぐために攪拌によって開催しています。代わりに、浮遊細胞の集計フォーム回転楕円体を。非粘着表面メソッドとスピナー フラスコ法の両方回転楕円体の大量に生産することができます。しかし、彼らは追跡と同様、回転楕円体のサイズを制御し、各回転楕円体の監視の難しさを含む制限が適用されます。別の回転楕円体の製造方法、このような問題のための救済策としてすなわち、ハンギング ドロップ法採用12をすることができます。これは、培養皿のふたの下に細胞懸濁液の滴を入金を含みます。これらの低下は 15 に 30 μ L のサイズでは通常、約 300 に 3000 細胞13を含んでいます。フタを逆さにすると、滴は表面張力によって場所に保持されます。各ドロップで微小重力環境には、無料の液体空気インターフェイスで単一スフェロイドを形成する細胞が集中しています。ここでは絞首刑の利点ドロップの方法は、トレースおよび非粘着表面とスピナー フラスコ法を基準にして、各回転楕円体を監視するは簡単ですが、よく制御された粒径分布が提供しています。ただし、このメソッド 1 つの欠点をした回転楕円体と生産プロセス自体の大量生産が過度に労働集約型。
マイクロウェル アレイはフラットの多くのマイクロ サイズ井戸プレート直径 100 から 1000 μ m に至るまで。マイクロウェルを用いた回転楕円体の生産主義は非粘着表面法に似ています。利点は、マイクロウェル提供で簡単にまた、それぞれの単一の回転楕円体を監視する簡単ながら回転楕円体サイズを制御できるよう、セルまたは回転楕円体を分離するマイクロウェルの間のスペースであるという事実があります。マイクロウェルの数が多い、高速回転楕円体の生産も可能です。マイクロウェルの別の利点は、さまざまな形状のフォームの井戸にオプション (六面体、円筒形、三角プリズム) ユーザーのユニークな実験的目的にもよります。一般に、ただし、三次元 (3 D) の凹面 (または半球状) の形状は制服サイズ単一回転楕円体の生産に最適であるとみなされます。したがって、凹面マイクロウェルの有用性について報告されています14胚性幹細胞の心筋への分化を調べるものなど多くの細胞生物学研究15, クラスターの膵島細胞のインスリン分泌、肝細胞16、および腫瘍回転楕円体17の薬剤耐性の酵素活性は。
残念なことに、しばしばマイクロウェルの作製必要専門のマイクロパターニング設備;従来のフォトリソグラフィを用いた反応性イオン エッチングによる方法は、プラズマとイオンビーム装置を必要としながら露出と施設整備を必要とします。このような機器は、複雑な製造プロセスと共に提示するエントリに高い障壁マイクロ テクノロジーへのアクセスを持っていない人の生物学者のため高価です。これらの問題を克服するためと他のコスト効果の高い方法はようリソグラフィ18 (凍結水滴を使用) を氷の柔軟な膜法14 (真空、スルーホール基板、膜を使用) が提案されています。ただし、これらのメソッドは、パターン サイズ、高アスペクト比の達成と大面積マイクロウェルの生産を制御することは困難であることなどの重大な欠点も発生します。
上記の問題を克服するために我々 は、スルーホール基板、スチール ビーズと磁石配列を利用した新規凹マイクロウェル作製法を提案しています。このメソッドを使用して、凹球面マイクロウェルの何百もを磁気力アシストのセルフロック メタリック ビーズ (図 1) のメカニズムを利用して加工できます。製造プロセスは非常にいくつかの高価で複雑な設備の使用を含む、多くの高度なスキルを要求しません。などでも熟練者は簡単にこの工法を引き受けることができます。提案手法を示すためには、ひと脂肪由来幹細胞は、回転楕円体を生成する凹面マイクロウェルで培養しました。

<table><tbody><tr><td>CNC回転彫刻機</td><td>ローランドDGA</td><td>EGX-350</td><td></td></tr><tr><td>マイクロドリルビット</td><td>HAM Pr&auml;zision</td><td>30-1301 TA&</td><td>Phi; 0.55 and 0.75 mm</td></tr><tr><td>硫酸 98%</td><td>Daejung</td><td>7683-4100</td><td>洗浄用アルミニウム板. 蒸留水で15%溶液で希釈</td></tr><tr><td>ネオジム磁石</td><td>スーパーマグネテ</td><td>W-01-N</td><td>1 x 1 x 1 mm</td></tr><tr><td>ベアリングボール</td><td>アガミモデリング</td><td>SUJ2</td><td>&Phi; 600 &mu;m鋼ビーズ</td></tr><tr><td>ポリジメチルシロキサン (PDMS)</td><td>Dowcorning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>Pluronic F-127</td><td>Sigma Aldrich</td><td>p2443</td><td>リン酸緩衝生理食塩水で4%(w / v)溶液に希釈</td></tr><tr><td>ダルベッコ修正イーグルス培地 (DMEM)</td><td>ATCC</td><td>30-2002</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水 (D-PBS)</td><td>ATCC</td><td>30-2200</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>ATCC</td><td>30-2020</td><td></td></tr><tr><td>脂肪由来間葉系幹細胞</td><td>ATCC</td><td>ATCC PCS-500-011</td><td></td></tr></tbody></table>

ペアになっているビーズと磁石配列変数の凹面形状とマイクロウェルを成形

A Paired Bead and Magnet Array for Molding Microwells with Variable Concave Geometries

回転楕円体の文化体内が提供されることで、細胞挙動を理解するための便利なツール-三次元環境のようです。様々 な回転楕円体製造方法など非粘着表面、スピナー フラスコ、ハングの低下、およびマイクロウェルは、細胞間相互作用、免疫活性化、薬剤のスクリーニング、研究で使用されている幹細胞分化と器官毛細世代。これらのメソッドの中で三次元の凹状ジオメトリを持つマイクロウェルは科学者や技術者、回転楕円体の大きさの均一生成と個々 の回転楕円体の応答をすることができますしやすさの利点を与え注目を集めています。監視。高アスペクト比の達成との生産のパターンのサイズを制御することの難しさなどの重大な欠点にもかかわらず、柔軟な膜や氷リソグラフィの使用などコスト効果の高い手法が提案されている、これらの技術が発生します。マイクロウェルの大きい区域。これらの問題を克服するために堅牢な高コストの複雑な設備を必要とせず凹マイクロウェルの作成法を提案する.この方式では、30 x 30 貫通穴配列数百マイクロ メートル オーダー鋼ビーズおよび 3 × 3 cm ポリジメチルシロキサン (PDMS) 基板で 900 マイクロウェルを作製する磁気力。細胞生物学的応用の手法の適用性を示すためには、3 日間脂肪幹細胞を培養し、私たちマイクロウェル プラットフォームを使用して回転楕円体を正常に生成します。さらに、磁気力が貫通孔に鋼のビーズをトラップに使用されたという、メカニズムを調査する静磁場シミュレーションを行った。提案されたマイクロウェル作製方法が薬剤のスクリーニング、組織再生、幹細胞の分化、癌転移など多くの回転楕円体に基づく細胞研究に適用することと考えています。

凸モールドとマイクロウェル パターンを正常に手順 2.1 に 3.7 で作製しました。(図 4)。商業鋼のビーズは、30 x 30 貫通穴配列に閉じ込められました。ビーズは、ビーズと対応する貫通孔 (図 4 a) を隙間なくしっかりと開催されました。作製した凹面マイクロウェルの形状は凹面の 600 μ m の直径で、半球状スチール ビーズ (図 4 b) と同じであります。隣接マイクロウェルからの距離が 1 mm (センター)、貫通孔のそれと同じだった凹マイクロウェル (図 4 c) の断面図を示しています。24 well プレートに置かれた、Φ14 mm 凹マイクロウェル基板には、120 以上マイクロウェル (図 4 d) が含まれています。
<p class="jo...

この原稿は、高コストの複雑な設備を必要とせず凹マイクロウェルの作成の堅牢なメソッドを紹介します。磁気力、スチール ビーズ、貫通穴の配列を使用して、いくつかの百マイクロウェルは 3 cm × 3 cm ポリジメチルシロキサン (PDMS) 基板に形成されました。

A spheroid culture is a useful tool for understanding cellular behavior in that it provides an in vivo-like three-dimensional environment. Various ...

この手法の全体的な目的は、磁力支援による自己ロック機能を持つ金属ビーズを利用して、凹型の球状マイクロウェルを作製することです。こんにちは、私は中央大学でティーチングアシスタントを務めているGi Hun Leeです。私たちの研究室では、バイオ計測機器の開発、培養、および新規マイクロ構造に関する研究を推進するため、さまざまなマイクロスケールのデバイスやプラットフォームの作製に取り組んでいます。私たちの研究関心の一つは、3次元環境でこれを収縮させるための新しいマイクロデバイスおよび手法の開発です。私たちはこれを3次元培養と呼んでいます。3次元培養は、従来の2次元平面培養よりも実際の組織に近いため、3次元的な応答を理解する上で非常に有用です。フラスコやチューブ、ドラムネット、マイクロ波など、さまざまな飛散生成手法が試みられてきました。これらの手法の中でも、凹型マイクロ法は3D生成を行うための非常に強力なツールです。マイクロ波のあらゆるピッチをそれぞれモニタリングでき、球状のサイズと分布を制御することが可能です。ここでは、ビーズと小型磁石のアレイを用いて凹型マイクロウェアを製作する方法を提案します。この手法を用いることで、磁力によって静止ビーズを補助するメカニズムにより、100個の凹型マイクロウェアを製作することが可能です。各凹部におけるプロセスは異なっており、反復的な提案スケールは存在しません。まず、CNCロータリーエングレーバーを用いて、230×30個のスルーホールアレイを持つアルミニウムプレートを作製しました。このプレートは、以降のセクションで説明するように、ビーズのガイドロールとしての役割を果たします。プレートは異なる径のドリルビットで穴あけ加工されており、穴径の小さい方のプレートを下側に配置しました。プレートの位置を合わせるため、外側のコーナー部分にも穴を開けます。次に、2枚のプレートの位置を合わせ、重ね合わせ、穴に3本のボルトを挿入して固定し、ナットで締め付けます。前述の通り、ビーズをガイドウェル内に固定できるように、穴の小さい方のプレートを下側に配置することが製造上の重要なポイントとなります。次のステップは、30×30のネオジウム磁石アレイを準備することです。まず、磁石を手作業で分離し、2×2のアレイに配置します。その後、ピンセットを使用して、それらをより大きなアレイに整列させます。適切なマグネットアレイを作成するためには、各マグネットが隣接するものとは逆の極性である必要があります。さらに、アレイの破損や散乱を防ぐため、両面テープを用いてマグネットアレイの底面にアルミニウムプレートを貼り付けます。これで、作成した各パーツをマイクロウェル型に組み立てる準備が整いました。マグネットアレイを普通のテープを用いて底板に慎重に取り付けます。この際、マグネットアレイの磁石が下を向くように取り付けることが重要です。アルミニウムプレートとマグネットアレイが正しく配置された後、プレートアセンブリの上にスチールビーズを配置します。本論文で使用したビーズは、直径600 micronのSUJ 2鋼球です。アライメント工程は非常にシンプルです。アセンブリの上に十分な数のビーズを投入し、アクリルプレートを用いて余分なビーズを取り除きます。底部の磁石がビーズを捕捉し、ビーズがアルミニウムプレートの穴に入ります。穴に収まらなかった過剰なビーズは、スクレイピング工程で除去されます。過剰なビーズの除去には別の磁石を使用します。ビーズがガイドウェル内に適切に収まったら、トッププレートを取り除きます。この工程において、ビーズが脱落し、位置がずれる場合があります。その場合は、ピンセットを使用してビーズを手動で穴に戻してください。これで、凹型マイクロウェルモールドの準備が完了しました。プラットフォームを別のペトリ皿に移動させ、次のステップの準備をします。PDMSモノマーと硬化剤を10対1の比率で混合し、製造元の指示に従ってPDMSを調製します。PDMS混合物内に閉じ込められた気泡を除去するため、混合物をデシケーターに入れ、約1時間脱気します。これが完了したら、脱気したPDMS混合物を凹型のマイクロウェル型に注ぎ、再度脱気します。次に、ホットプレートを用いてPDMS混合物を80 °Cで2時間焼き付け、埋め込み式のPDMSサブトレイを形成します。以降の工程は細心の注意を払って行う必要があります。取り外し作業を容易にするため、サブトレイにメタノールを注ぎ、周辺のPDMSサブトレイを順次取り除きます。この際、きれいに取り外せるよう、メタノールが隙間に十分に浸透していることをメーカーが確認する必要があります。その後、PDMSサブトレイをアルミプレートから分離させますが、サブトレイを剥がす前にエッジ部分をカットするとより容易に行えます。最後に、PDMSサブトレーからビーズを取り除きます。取り出す前に、サブトレーをしばらくの間伸ばして曲げることで、ビーズとPDMSサブトレーの間の結合を緩めます。実際のビーズの回収は非常に簡単であり、大型の磁石を用いて行うことができます。凹型のマイクロウェルの作製が完了し、細胞培養に使用できる状態になりました。このPDMSプラットフォームが細胞培養に適しているかを確認するため、以下の手順で検証を行いました。まず、直径14 mmの生検パンチを用いて、凹型マイクロウェルパターンを形成したPDMSサブトレイを切り出しました。PDMSサブトレイを滅菌後、24ウェルプレートに配置します。次に、細胞がマイクロウェルの表面に付着するのを防ぐため、PDMSサブトレイ全体を4% Pluronic F-127溶液で一晩コーティングします。コーティング工程において、マイクロウェル内に閉じ込められた気泡がある場合は、ピペッティングまたは超音波洗浄機を用いて除去してください。気泡が残っていないことを確認した後、約200万個の細胞を含む細胞培地溶液1 mLをPDMSサブトレイに播種します。次に、1000 µLピペットを用いて培地を吸引し、マイクロウェルに捕捉されなかった過剰な細胞を除去します。これで、細胞をインキュベーターに入れる準備が整いました。マイクロウェルパターンの凸型が正常に作製され、30×30の貫通孔アレイに市販のスチールビーズが捕捉されました。ビーズと対応する貫通孔の間にガスが介在せず、ビーズが強固に固定されました。作製された凹型マイクロウェルの形状は直径 600 microns の凹半球状であり、これはスチールビーズの直径と同一です。凹型マイクロウェルの断面図から、隣接するマイクロウェルとの距離は 1 millimeter であり、これは貫通孔の間隔と同一であることがわかります。脂肪由来幹細胞を凹型マイクロウェル内で培養しました。直径14 mmの凹型マイクロウェルアレイに200万個の細胞を播種しました。24時間後、細胞は凝集してスフェロイドを形成しました。マイクロウェルアレイ内で形成されたスフェロイドの平均直径は185.68 micronsでした。3日目には、細胞の凝集が進みましたが、スフェロイドの平均直径は147 micronsまで減少しました。本手順に従うことで、コスト効率が高く比較的簡便な方法で100個の凹型球状マイクロウェルを作製することが可能です。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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