Name: インスリン刺激に対するグルコース取り込み測定と応答インビトロ培養ヒト初代筋管 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: 学ぶインスリン刺激下でのグルコース取り込み測定法。ヒト初代筋管細胞を用いて、基礎状態と刺激状態のグルコース取り込みを定量化し、筋代謝におけるインスリン感受性を評価する。

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著者らは、財政支援のために、ラジオバイオロジーサービス（Lyon-Sud病院）およびFond National Suisse（FNS）のAnneCharriéを認める。

1.細胞培養培地および溶液の調製<ol><li> 培地の調製 <ol><li>グルタミン（2mM）、​​ペニシリン/ストレプトマイシン（最終5μg/ mL）、2％ウシ胎児血清（FCS）および2％血清代替物を含むHam&#39;s F-10培地を補充することによって、増殖培地（PM）を調製する。 </li><li>グルタミン（2mM）、​​ペニシリン/ストレプトマイシン（最終5μg/ mL）、および2％FCSを添加したダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）を補充することによって分化培地（DM）を調製する。 </li></ol></li><li> グルコース取り込み溶液の調製 注意：放射性物質の取り扱いは、許可された要員が制限された管理区域内でのみ許可されています。材料および廃棄物は、適切な手順、ガイドラインおよび現地法に従って処理する必要があります。 <ol><li> X-ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水（X-DPBS）を調製するために、0.2％（w / v）（最終濃度）のウシ血清アルブを含むDPBS（BSA）を含む。溶液を0.2μmフィルターで濾過する。 4℃で保存する。 </li><li>冷たい2-デオキシ-D-グルコース（2dG）溶液を調製するために、16.4mgの2dGを秤量し、10mLの蒸留水に可溶化して10mMの溶液を得る。 4℃で保存する。 </li><li>放射標識した2dG（2dG *）溶液を得るために、600μLの冷2dGおよび6μLの放射性標識[ 3 H] 2dGを5400μLのX-DPBSに加える。 注：最終濃度は1 mM 2dGで、標識は1μCi/ mLです。 <ol><li>放射標識した2dG *溶液の20μLアリコート（TC20）を脇に置いてください。 </li></ol></li></ol></li><li> インキュベーション混合物の調製 <ol><li>サイトカラシンB混合物については、2μLの20mMサイトカラシンBを2mLの放射性標識2dG *溶液に加える。 注：サイトカラシンBのストック溶液はジメチルスルホキシド（DMSO）中10mg / mLである。 </li><li> DMSO混合物については、残りの4mLの放射性標識2dG *溶液に4μLのDMSOを加える。 </li></ol&gt; </li></ol> 2.ヒト一次筋細胞の培養<ol><li> ヒト筋肉衛星細胞による6ウェルプレートの播種 注：凍結バイアル（250,000個の細胞を含む）から社内（詳細は、参考文献24を参照）または市販のヒト筋肉衛星細胞を使用してください。単一条件下でのグルコース取り込みの測定に必要な1つの6ウェルプレートを得るために、以下の手順を250,000個の細胞について行う。 <ol><li>事前に加温した水（37℃）中の自家製24凍結バイアルまたはヒト筋肉衛星細胞の商業用調製物を急速に解凍し、バイアル内に小さな氷塊が残るまで急速に解凍する。 </li><li>あらかじめ温めた（37℃）PM10mLを入れた50mLプラスチックチューブに直接注ぎます。 </li><li> 500×gで5分間遠心分離し、上清を捨てる。 </li><li> 18mLの予熱したPMで細胞ペレットを静かに再懸濁する（42,000個の細胞を得るために3mLの培地）。 6ウェルプレート（9.6cm 2 ）の各ウェルに3mLを分配する。 注：プレートの6つの個々のウェルは、受動輸送阻害（ウェル1および2）、基底速度（ウェル3および4）およびインスリン刺激速度（ウェル5および6）についてグルコース取り込みの重複測定を実施する必要がある。 6）。異なる治療法が必要な場合は、6ウェルプレートを繰り返します。 </li><li>細胞が90％コンフルエンスに達するまで標準培養条件（37℃、5％CO 2 ）でインキュベートする。 注：このステップは、細胞バッチによって48〜72時間かかります。このステップでは媒体を交換しないでください。 </li></ol></li><li> 筋細胞の分化 <ol><li> PMを除去し（48-72時間後）、予熱したDM（ウェル当たり3mL）と交換する。 37℃、5％CO 2でインキュベートする。 注：分化は、細胞が整列し、多核化された安定した状態に達するまでに5日間かかります。通常、プライマリ筋管を1g / Lのグルコース培地で培養する。したがって、培養中のグルコース枯渇を避けるために、3mLの培地でプレートを満たして、常に十分なグルコース基質が細胞に利用可能であることを確認してください。 </li><li> 2日ごとにDM培地を交換する。 注：この時点から、筋管は最大7日間安定であり、有意な変化はなく、グルコース取り込み測定はいつでも実施できる。 </li></ol></li><li> 筋細胞治療（オプション） 注：一次筋管は、インスリン刺激およびグルコース取り込み測定前に、修飾（薬剤試験、シグナル伝達経路の阻害剤/活性化剤など ）を誘導するために数日間治療することができる。筋肉細胞は、インスリン感受性に影響を与える可能性のある治療に提出することができ、グルコース取り込み測定は、この影響を定量化する。例えば、筋肉細胞と飽和脂肪酸パルミテートとのインキュベーションはインスリン抵抗性を促進し、細胞はinsulinはグルコース摂取を刺激した。 <ol><li> 10％BSA（脂肪酸を含まない）および0.5mLのパルミテート（PALM）を添加したDM 12mLを調製する。 10％BSA（脂肪酸を含まない）のみを補充した12mLのDMを調製する。 </li><li>ヒト初代筋管を有する2つの6ウェルプレートを調製し、セクション2.1および2.2（分化の5日間）で記載されているようにそれらを培養する。 </li><li> 5日目に、2mLのPBSで各ウェルを洗浄する。 1枚のプレートに、PALMを含むDM 2mLを加える。他のプレートに、DMのみを含有する2mLのBSAを加える。 </li><li> 37℃、5％CO 2で48時間インキュベートする。 </li></ol></li></ol> 3.インスリン刺激<ol><li> 2mLのPBSで分化した筋肉細胞を2回洗浄する。 </li><li>注意深くPBSを除去し、血清がなくなるまで3時間（37℃、5％CO 2 ）FCSを含まないDM3mLと共にインキュベートする。 </li><li>すべてのウェルの培地をFCSなしで3 mLのDMに交換する。ウェル5および6に100nMインスリンを加える。 </li><li>ヒト筋管培養をインキュベートする1時間（37℃、5％CO 2 ）。 </li></ol> 4.グルコース取り込み<ol><li>インスリン刺激の1時間後、ウェルをX-DPBSで2回洗浄する（1回の洗浄につき1mL）。 </li><li>サイトカラシンB混合物1 mLをウェル1と2に加え、1 mLのDMSO混合物をウェル3〜6に加える。15分間インキュベートする（37℃、5％CO 2 ）。インキュベーションの終わりに、すぐにプレートを氷上に置く。 </li></ol> 5.細胞溶解<ol><li>氷冷PBS 1mLで細胞を2回洗浄する。 </li><li> 600mMの50mM NaOHで各ウェルの細胞を溶解する。氷上で5分間インキュベートし、緩やかな軌道回転で穏やかに混合する。 注：ライセートの粘性が高すぎる場合は、NaOH 1.5 mLまで希釈してください。 </li><li>ピペットを使用して、細胞ライセートを再懸濁して回収する。 </li></ol>放射性標識グルコースの測定<ol><li> 400μLの各細胞溶解物を液体シンチレーション計数バイアルに入れる。ネガティブコントロールバイアルに400を準備する50mM NaOH、50μLの50mM NaOH、およびTC2020μLを含む陽性コントロールバイアル（ステップ1.2.3.1から）。 </li><li> 4mLの液体シンチレーション溶液を各バイアルに加える。キャップを閉じ、各バイアルを完全に混和させます（1-2秒）。 </li><li>各バイアルを液体シンチレーションカウンターに入れ、製造元の指示に従って放射能を測定する。各シンチレーションバイアルの分当たりのカウント数（CPM）を10分間記録する。 注：CPM = &quot;分崩壊&quot;× &quot;カウント効率&quot;。 </li></ol> 7.グルコース取り込み速度<ol><li>残りのライセート（ステップ5.2の200μL）を使用して、タンパク質濃度を測定します。 Bradford 25または同等の方法を用いて、各細胞溶解物のタンパク質濃度を決定する。各ウェルの総タンパク質量（Q）をmgで計算する。 </li><li> TC1（放射標識2dG *1μLの値）を得るには、TC20のCPM値を20で割ります。 </li><li>各バイアルについて、tグルコース取り込み速度は以下の通りである： <img alt="式" src="/files/ftp_upload/55743/55743eq1.jpg" /> 注：Rはpmol / mg / minで測定されます。井戸1〜2に対するRの平均は、受動輸送速度R pを与える。井戸3-4のRの平均は基礎総輸送率R btを与える。ウェル5-6のRの平均は、インスリン刺激総輸送速度R itを与える。 <ol><li>以下のように、基礎アクティブ輸送速度（R ba ）を計算する： <img alt="式" src="/files/ftp_upload/55743/55743eq2.jpg" /></li><li>インスリン刺激された活性輸送速度（R ia ）を以下のように計算する： <img alt="式" src="/files/ftp_upload/55743/55743eq3.jpg" /> 注：筋管のようなインスリン応答細胞では、グルコース取り込み速度は、通常、R ba 、R ia 、およびR ia / R baのような倍率のインシュリン刺激の3つの値によって表される。 </li></ol></li></ol>

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</ol>

著者は何も開示することはない。

グルコース取り込みは、細胞培養およびそれらがグルコースの使用にどのように影響するか、および細胞がインスリンに応答する能力に対する活性化剤または阻害剤を試験するための重要な生物学的測定値である。本明細書に記載の方法は、迅速かつ信頼性が高いことが示されており、健康な被験者および/または代謝亢進の患者6,7,10,12,21,26,27,36,37からの初代筋管を用いた多くの研究で広く使用されている。唯一の6ウェルプレートでは、総基底輸送、基底能動輸送、およびインスリン刺激能動輸送のために、二重に速度を得ることができる。これらの3つの値は、インビトロで培養された筋肉細胞のインスリン感受性を完全に表す。 <p cla初代筋肉細胞は、コラーゲンでコーティングされたプレート上で日常的に培養される。 C2C12またはL6のような細胞株を使用する場合、コーティングされていないプレートを使用することができる。インスリン反応を最大にするためには、できるだけ低い基礎状態を得るために刺激前に筋肉細胞からインスリンを枯渇させることが重要である。このプロトコールで示される3時間のインキュベーション時間は、インスリンおよび/または血清飢餓時...

骨格筋は哺乳類の最大のグルコース沈着物であり、グルコースの恒常性に大きく寄与する。このインスリン応答性組織は、インスリン刺激によって誘発されるグルコース取り込みの主要部位である1 。 2型糖尿病では、インスリン抵抗性が骨格筋を含むいくつかの組織で観察され、正常な血糖濃度を上回る。したがって、対象が対象における欠陥を特徴付けることであるか、対象を改善しようとする治療の効率を評価することであろうと、この組織およびその細胞のインスリン感受性のレベルを決定することが重要である。ヒトまたは動物の被験者において、インスリン感受性を評価するための金標準的技法は高インスリン血糖上昇クランプである。 DeFronzoによって1979年2月に導入され、 3 、 4年以降に変更されたこの方法は、全身を正常な血中グルコース濃度を維持するためにインスリン刺激下で灌流されるグルコースの速度として測定される組織のインスリン応答性。 インスリン感受性の探索は、インビトロ筋肉モデルを用いて細胞レベルで行うこともでき、インスリン刺激に対する細胞の生物学的応答を定量化するための有効かつ信頼できるツールである（5,6,7）。実際に、グルコース取り込み測定は、インスリン刺激に対する細胞の生物学的応答、インスリンの受容体への結合、GLUT4に富む小胞の転座、細胞内シグナル伝達およびリン酸化カスケードを定量化します8 。 これは、分化した筋管が代謝特性を含むドナー表現型の多くの特徴を維持するので、ヒトの試料では大きな関心事である患者に観察された障害および障害9,10,11,12。筋管は、グルコーストランスポーター15および細胞インスリンシグナル伝達機構16の発現を含む、骨格筋13,14と構造的、代謝的および表現型の類似性を示す。したがって、一次筋管におけるグルコース取り込みの測定は、ドナーの筋表現型を特徴付けること、または介入（薬物、栄養、または身体活動）が筋細胞におけるインスリン感受性に及ぼす影響を調査することと関連がある。 培養筋管におけるグルコース取り込みの測定はまた、インスリン感受性を改変する実験を行う際の信頼できるツールである 17,18 。 インビトロ </モデルはインスリン反応性を改善する可能性のある化合物の試験に適しているか、または獲得または誘発されたインスリン抵抗性を防止または逆転させることができる19,20,21,22,23。 ここでは、ヒトの筋管を培養し、分化させ、細胞のグルコース取り込み速度を測定するための詳細なプロトコールを記載する。この方法は、実験室での準備、共同作業、または市販の供給業者に由来するものであれ、ヒト筋前駆細胞の任意の供給源に適用可能である。マウスおよびラット由来のC2C12およびL6のような不死化筋肉細胞株もまた、このプロトコール7によるグルコース取り込み測定に使用することができる7 。 我々は、放射性標識された[ 3 H] 2dGを用いて、基礎およびインスリン刺激状態の速度を定量化するための詳細なプロトコルを提供する。 T彼は標識されたグルコースアナログを使用することにより、出発物質が減少したグルコースの侵入を正確に測定することができ、これは一次細胞を扱う際の共通条件である。修飾されたグルコース分子は、代謝経路に入ることができず、したがって、細胞内に蓄積し、全細胞放射能による信頼できる定量を可能にする。実験条件には、グルコース輸送阻害剤（サイトカラシンB）の使用が含まれ、インスリンの有無にかかわらず測定が行われる。この組み合わせにより、グルコース活性侵入速度の決定、ならびにインスリン応答指数の倍数変化の計算が可能になる。この方法は、1回のインキュベーション時間中に1回のインスリン投与量で示されるが、プロトコールは、用量反応または時間経過実験のために容易に改変することができる12 。

<table><tbody><tr><td>ヒト初代筋細胞</td><td>ヒト骨格筋生検からのハウス</td><td>調製 ヒト骨格筋生検からのハウス調製</td><td>利用できない場合は、市販のソースを使用してください</td></tr><tr><td>ヒト一次筋細胞</td><td>プロモセル</td><td>C-12530</td><td>関連培地C23060およびC23061</td></tr><tr><td>6ウェルプレート</td>で培養する必要があります <td>コーニング</td><td>356400</td><td>バイオコート コラーゲン I マルチウェルプレート</td></tr><tr><td>ハムのF10</td><td>Dutscher</td><td>L0145-500</td><td>1 g / Lグルコース</td></tr><tr><td>グルタミン</td><td>Dutscher</td><td>X0551-100</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン100x</td><td>サーモフィッシャー科学</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>血清代替品UltroserG</td><td>Pall France</td><td>15950.017</td>テキスト<td>の血清代替品</td></tr><tr><td>DMEM低グルコース</td><td>Dutscher</td><td>L0064-500</td><td>1 g / Lグルコース</td></tr><tr><td>子牛胎児血清</td><td>Eurobio</td><td>CVFSVF00-01</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水</td><td>Dutscher</td><td>L0625-500</td><td>には、mg2+ (0.5 mM) と Ca2+ (0.9 mM)</td></tr> <tr><td>インスリン溶液 ヒト</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I9278</td><td></td></tr><tr><td>2-デオキシ-D-グルコース&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6134</td><td></td></tr><tr><td>アルブミンウシ</td><td>euromedex</td><td>04-100-812-E</td><td></td></tr><tr><td>脂肪酸を含まない BSA</td><td>Roche</td><td>10,775,835,001</td><td></td></tr><tr><td>パルミテート</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P0500</td><td></td></tr><tr><td>デオキシ-D-グルコース、2-[1,2-3H (N)]</td><td>PerkinElmer</td><td>NET328A001MC</td><td>比活性: 5 - 10 Ci (185-370GBq)/mmol, 1 mCi (37MBq</td></tr><tr><td>Cytochalasin)B</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>c2743</td><td></td></tr><tr><td>PICO PRIAS VIAL 6 mL</td><td>PerkinElmer</td><td>6000192</td><td></td></tr><tr><td>ultima gold MW CA&nbsp;</td><td>パーキンエルマー</td><td>6013159</td><td>シンチレーション液体</td></tr><tr><td>b&ecirc;タカウンター&nbsp;</td><td>パーキンエル</td><td>マー2900TR</td><td></td></tr></tbody></table>

インスリン刺激に対するグルコース取り込み測定と応答<em&gt;インビトロ</em&gt;培養ヒト初代筋管

Glucose Uptake Measurement and Response to Insulin Stimulation in In Vitro Cultured Human Primary Myotubes

骨格筋は哺乳類の最大のグルコース沈着物であり、グルコースの恒常性に大きく寄与する。筋肉細胞のインスリン感受性の評価は、筋肉のグルコース代謝を調査し、代謝変化を特徴づけることに専念した全ての研究において重要な関連性を有する。筋肉細胞では、グルコーストランスポーター4型（GLUT4）タンパク質がインスリンに応答して原形質膜に移行し、細胞内にグルコースが大量に入る。グルコース取り込み速度を増加させることによって筋肉細胞がインスリンに応答する能力は、インスリンに対する筋細胞感受性を定量化するための標準的な指標の1つである。ヒト初代筋管は、細胞がインスリン感受性を含むドナー表現型の多くの特徴を維持するので、適切なインビトロモデルである。このin vitroモデルは、インスリン反応性に影響を与える可能性のある化合物の試験にも適しています。分化した筋管におけるグルコース取り込み速度の測定は、インスリン感受性。 この方法では、ヒト初代筋肉細胞をインビトロで培養して分化した筋管を得、インスリン刺激ありおよびなしでのグルコース取り込み速度を測定する。我々は、放射性標識[ 3 H] 2 - デオキシ-D-グルコース（[ 3 H] 2dG）を用いて、受動的および能動的グルコース輸送速度を定量化するための詳細なプロトコルを提供する。活動的な基礎およびインスリン刺激速度ならびに刺激の倍を定量するための計算方法が提供される。

3日目に、筋芽細胞はコンフルエントに達する（ 図1A ）。この段階の筋芽細胞は、典型的には単核細胞である。培地を交換し、8日目に分化を完了させた（ 図1B ）（プロトコールセクション2）。分化の5日後、筋管は整列され、典型的には多核体形成される。グルコース取り込み速度測定の前に、ヒト初代筋管にパルミテートまたはBSAのみの処理を施した。細胞を、BSA（PALM）またはBSA単独（BSA）中のパルミチン酸塩0.5mMと共に48時間インキュベートした。インスリン刺激を行い（プロトコールセクション3）、グルコース取り込みを測定した（プロトコールセクション4）。 図2は、対照条件（BSA）および治療条件（PALM）におけるグルコース取り込み速度を示す。サイトカラシンBとインキュベートした筋管で非特異的取り込みを定量する。基礎およびインスリン刺激によるグルコース取り込み速度をBSAおよびPALで比較する...

この方法では、ヒト初代筋細胞をin vitroで培養して分化した筋管を得、グルコース取り込み速度を測定する。我々は、放射性標識[ 3 H] 2 - デオキシ-D-グルコースを用いて、基礎およびインスリン刺激状態における速度を定量化するための詳細なプロトコルを提供する。

Skeletal muscle is the largest glucose deposit in mammals and largely contributes to glucose homeostasis. Assessment of insulin sensitivity of muscle ...

この手順の全体的な目的は、ヒト primary muscle cells におけるインスリン刺激によるグルコース取り込みを測定することです。この手法は、筋細胞のインスリン感受性など、筋肉代謝分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。この技術の主な利点は、ホルモン刺激に応答した筋細胞の実効的な生物学的効果を定量化できることです。実験を開始するために、Ham's F-10 Mediumに2%の胎児牛血清（FCS）、2%の血清代替物、2 millimolesのグルタミンのほか、1 mLあたり5 microgramsのペニシリン・ストレプトマイシンを添加して、増殖培地（PM）を調製します。次に、Dulbecco's Modified Eagle Medium（DMEM）に2%のFCS、2 millimolesのグルタミン、および1 mLあたり5 microgramsのペニシリン・ストレプトマイシンを添加して、分化培地（DM）を調製します。X Dulbecco's Phosphate Buffered Saline（XDPBS）を調製するには、0.2% w/vのウシ血清アルブミンを含むDBPS溶液を作成します。溶液を0.2 µmフィルターでろ過します。その後、XDPBSを4 °Cで保存します。冷たい2DG溶液を調製するには、16.4 mgの2DGを量り取り、10 mLの蒸留水に溶解させて10 mM溶液を作成します。溶液を4°Cで保存します。次に、冷やした2DG 600 µLと放射標識2DG 6 µLをXDPBS 400 µLに加え、放射標識2DG溶液を作成します。放射標識2DG溶液を20 µL分取して取り分けておきます。サイトカラシンB混合液を作成するには、20 millimolarのサイトカラシンB 2 µLを、放射標識2DG溶液 2 mLに加えます。DMSO混合液を作成するには、DMSO 4 µLを、残りの放射標識2DG溶液 4 mLに加えます。凍結保存されたヒト筋肉サテライト細胞のバイアルを、バイアル内に小さな氷塊が残るまで、あらかじめ温めておいた水中で急速に融解させます。次に、細胞を10 mLの予熱済みPMを含む50 mLプラスチックチューブに直接移します。500 ×gで5分間、チューブを遠心分離します。その後、上清を除去します。細胞ペレットに18 mLの予熱済みPMを加え、細胞を穏やかに再懸濁します。6ウェルプレートの各ウェルに3 mLずつ分注します。細胞を37°C、5%CO2条件下で48〜72時間、細胞密度が90%コンフルエンスに達するまでインキュベートします。48〜72時間後、PMを除去し、1ウェルあたり3mLの予熱したDMに交換します。その後、標準的な条件下で細胞をインキュベートします。DM培地を2日ごとに交換します。最適なインスリン反応を得るためには、培養した筋細胞が完全に分化した状態に達していることが重要です。分化していない細胞では、グルコース取り込みに対するインスリン刺激が弱いか、あるいは全く認められない場合があります。分化した筋細胞を2 mLのPBSで2回洗浄します。次に、PBSを慎重に取り除き、血清飢餓状態にするため、FCSを含まないDM 3 millilitersで細胞をインキュベートします。続いて、すべてのウェルの培地をFCSを含まないDM 3 millilitersに交換します。ウェル5と6に100 nanomolesのインスリンを添加します。次に、ヒト筋管細胞の培養物をインキュベートします。インスリン刺激から1時間後、各ウェルを1 mLのXDPBSで2回洗浄します。ウェル1と2に1 mLのサイトカラシンB混合液を、ウェル3から6に1 mLのDMSO混合液を加えます。37°C、5%CO2条件下で15分間インキュベートします。インキュベーション終了後、直ちにプレートを氷上に置きます。氷冷したPBS 1mLで細胞を2回洗浄します。各ウェルの細胞に50 millimolar 水酸化ナトリウム 600 µLを加えて溶解させます。細胞を氷上で5分間インキュベートし、低速のオービタル回転で緩やかに混合します。ピペットを使用して、細胞溶解液を再懸濁し回収します。各細胞溶解液 400 µL を液体シンチレーション計数用バイアルに加えます。50 mM 水酸化ナトリウム 400 µL を用いて陰性対照バイアルを、TC20 20 µL を用いて陽性対照バイアルを準備します。次に、各バイアルに液体シンチレーション溶液 4 mL を加えます。キャップを閉め、各バイアルを1〜2秒間十分に混合します。各バイアルを液体シンチレーションカウンターに挿入し、製造元の指示に従って放射能を測定します。各シンチレーションバイアルの1分間あたりのカウント数を10分間記録します。3日目に撮影した光学顕微鏡画像から、筋芽細胞がコンフルエントに達し、通常は単核であることがわかります。培地を交換し、8日目になると分化が完了し、筋管が整列して通常は多核となります。コントロール群と処理群におけるグルコース取り込み率を算出しました。BSA条件下では、インスリンによってグルコース輸送が著しく増加します。ヒト筋管細胞のインスリンに対する反応を倍率変化（fold change）として表すと、パルミチン酸で処理した筋管細胞ではインスリンに対する反応が低下していることが明確にわかります。このビデオを視聴することで、グルコース取り込み速度の測定を通じて筋細胞のインスリン感受性を調べる方法を十分に理解できるはずです。

glucose-uptake-measurement-response-to-insulin-stimulation-in-vitro

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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学ぶインスリン刺激下でのグルコース取り込み測定法。ヒト初代筋管細胞を用いて、基礎状態と刺激状態のグルコース取り込みを定量化し、筋代謝におけるインスリン感受性を評価する。

インスリン刺激に対するグルコース取り込み測定と応答

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