2017年7月13日
本発明者らは、集団ベースアッセイにおいて可溶性化合物に対するCaenorhabditis elegansの選好を自動的に分析することができる行動記録設定およびプロトコルを提示する。この記事では、ビヘイビアチェンバーの構築、ビヘイビアアッセイプロトコル、およびビデオ分析ソフトウェアの使用について説明します。
この行動記録のセットアップとプロトコルの全体的な目標は、マルチカメラビデオ取得システムを使用して、C Elegansの可溶性化合物に対する集団ベースの化学感覚の好みを定量化し、続いて自動ビデオ分析を行うことです。この方法は、遺伝的変異体のより迅速で標準化された行動解析を可能にすることにより、C Elegansの神経生物学研究を促進することができます。この手法の主な利点は、同じ条件下で複数の反復を同時に分析できると同時に、可溶性手がかりに対する線虫集団の応答の時間的ダイナミクスを監視できることです。
ビヘイビアチャンバーアセンブリをデモンストレーションするのは、この研究室のスタッフサイエンティストであるクリストファー・クローニンです。まず、付属のテキストプロトコルで説明されているように、ファブリックカバー、カメラマウントバー、コーナーブラケット、押し出しバー、およびカメラマウントアセンブリを準備します。センターバーに取り付けられたエンドバーから始めて、カメラスタンドとホルスターをカメラマウントアセンブリに取り付けます。
次に、ビヘイビアチャンバーフレームを組み立てます。正方形のポリエステルシートに4本、1フィートの押し出しアルミニウムバーを取り付けることから始めます。1本のバーを生地シートのオムニの2つのTナットにスライドさせ、バーを生地の幅に沿って中央に配置します。
留め具を締めて、生地シートを各バーに固定します。正方形のポリエステルシートを作業面に広げ、4本の取り付けられたアルミニウムバーを上にします。次に、8つのコーナーブラケットを4本のアルミニウムバーの上面に滑り込ませます(各バーの両端に1つずつ)。
コーナーブラケットをバーに配置し、ブラケットの垂直脚をバーの端と同じ高さにして固定し、ネジをTナットに締めて所定の位置に固定します。各コーナーで、1フィートのアルミニウム押し出しを直立させ、押し出しを2つのコーナーブラケット脚のTナットに滑り込ませます。次に、留め具を締めて直立バーを水平バーに固定し、隣接する2本の水平バーを結合します。
H字型カメラマウントアセンブリの緩いTナットをフレームの支柱に滑り込ませます。Hを完全に滑り込ませて、フレームの各コーナーにあるコーナーブラケットの上に置きます。4つのコーナーブラケットネジを締めて、カメラマウントアセンブリを所定の位置に固定します。
次に、その最後の4つの1フィート押出アルミニウムバーを使用して、チャンバーの最下層を組み立てます。ブラケットの脚がバーの端と同じ高さになるようにコーナーブラケットを配置し、ネジを締めて所定の位置に固定します。次に、直立したチャネルに緩いTナットを付けて、フレームの支柱の間にバーを滑り込ませます。
コーナーブラケットの上端が支柱の開放端から1インチ下になるようにバーを配置し、コーナーブラケットのネジを締めて所定の位置に固定します。次に、4枚の長方形のポリエステルシートのTナットを直立した押し出しバーのチャネルにスライドさせてチャンバーの側面を覆い、留め具を締めて所定の位置に固定します。チャンバーの内部にアクセスするためのドアとして一方の側を選択し、チャンバーの最下層にある2つのネジとTナットを取り外します。
各コーナーの上端にプラスチック製のキャップを取り付けて、完成したフレームの足として機能します。フレームの右側を上にして、スライドごとに2つのパネルホルダーをフレームスペースレイヤーの内側に挿入し、ひねって所定の位置に固定します。次に、パネルホルダーの上に12 x 12インチの透明なアクリル片を置き、アッセイプレート用のステージを提供します。
最後に、カメラとステージテンプレートを、付属のテキストプロトコルで説明されているように配置します。実験の前日に、空の35mmプレートを28枚、平らな面に5枚以下で積み重ねて置きます。各アッセイプレートに5ミリリットルの線虫増殖培地寒天を充填し、アッセイプレートを蓋を外して直立させて乾燥させ、室温で一晩待ちます。
実験当日は、バックライトをONにし、パソコンを起動して、顕微鏡カメラの動画撮影ソフトを起動してください。顕微鏡カメラをコンピューターに接続し、ソフトウェアウィンドウの上部にある番号付きのカメラのサムネイルをクリックして、カメラのライブフィードを表示します。ビデオ録画の設定を調整するには、カメラフィードの左上隅にあるビデオフォーマットメニューをプルダウンし、MJPG 1280x1024を選択します。
次に、ビデオフォーマットメニューの横にあるフォルダメニューをプルダウンし、ビデオファイルを保存するフォルダを選択します。カメラフィードの右上隅にある自動露出アイコンをクリックし、自動露出をオフにします。次に、自動露出アイコンのすぐ右にあるLEDアイコンをクリックして、内蔵の顕微鏡カメラのLEDをオフにします。
隣接する設定のアイコンをクリックして、モノクロを選択します。コントラストを最大化し、明るさを調整します。ステージプレートの位置合わせテンプレートの上にソリューション配置テンプレートを位置合わせし、カメラフィードの左側にあるタイムラプスビデオ録画アイコンをクリックします。
デュレーションに 5 秒、インターバルに 1 秒を入力して、1 秒あたり 1 フレームで 5 秒のキャリブレーション ビデオを録画します。5ミリリットルのガラスピペットを使用して、1.2ミリリットルの線虫増殖培地バッファーを同期線虫のプレートに加え、プレートを穏やかに攪拌してワームをバッファーに置換します。プレートからバッファーをピペットで取り出し、バッファー中のワームを清潔なマイクロ遠心チューブに分注します。
チューブを1〜2分間放置して、ワームが底に落ち着くようにします。次に、プラスチック製のピペットチップを使用して、チューブの底にある凝集したワームのペレットを乱さずに、チューブからできるだけ多くの洗浄バッファーを取り除きます。チューブに1ミリリットルのきれいな線虫増殖培地緩衝液を補充し、洗浄手順をさらに2回繰り返します。
次に、解剖顕微鏡のステージの上に溶液配置テンプレートをテープで貼り付けます。次に、プレート位置合わせテンプレートの両側に両面テープのストリップを配置します。アッセイプレートの周囲をプレートアライメントテンプレートの円に合わせ、テンプレートがプレートの底部に付着するまで押し下げます。
次に、アッセイプレートテンプレートメンバーマーカーを解剖顕微鏡上の溶液配置テンプレートメンバーマーカーに位置合わせします。次に、P2ピペットを使用して、1マイクロリットルのM13バッファーをそれぞれ象限1と4に配置します。新しいチップを使用して、1マイクロリットルの10ミリモルCuCl2溶液をそれぞれ象限2と3に配置します。
ガラスパスツールピペットを使用して、溶液滴が寒天に完全に吸収されたら、洗浄した線虫をアッセイプレートに移します。円形処理領域の上下の領域にワームを一滴垂らします。組織を4回折り、鈍いエッジを使用してアッセイプレート上の余分な洗浄バッファーを吸収します。
アッセイプレートをビヘイビアチャンバー内の顕微鏡カメラの下に配置して、テンプレートコーナーの数を揃えます。2〜3分待って、線虫がアッセイプレートに順応するまで待ちます。次に、カメラフィードの左側にあるタイムラプスビデオ録画アイコンをクリックし、持続時間に10分、インターバルに1秒を入力して、1フレーム/秒の10分間のビデオを録画します。
最後に、[開始]をクリックしてビデオ録画を開始します。各ビデオ フレームについて、プリファレンス インデックス関数は、各関心領域内のワーム ピクセルの数をカウントし、関心領域内のピクセルの総数のうち 1 つのピクセルの割合を計算します。ここでは、さまざまな遺伝子型と治療の組み合わせについて得られた選好指数値を示します。
正の選好指数値は治療への魅力を示し、負の選好指数値は反発を示します。M13バッファー溶液を対照領域と実験対象領域の両方に置いた場合、0.02の選好指数が得られ、空間バイアスがないことが実証されました。このグラフは、N2線虫が銅イオンを強く避け、選好指数が0.67になったことも示しています。
さらに、感覚繊毛形成に欠陥のあるosm-3、およびASHを介した侵害受容反応に欠陥のあるocr-2変異体は、銅イオンに対する回避の減少と軽度の引力さえ示しました。このプロトコルを試行する際には、高速に作業するだけでなく、スムーズかつ一貫して作業することが重要です。記録セットアップとアッセイプロトコルは、異なるC Elegansの感覚品種間の相互作用から生じる集団ベースの行動反応を特徴付けるために容易に適合させることができます。
本記事では、個体群ベースのアッセイにおいて線虫Caenorhabditis elegansを解析するための、行動記録セットアップおよびプロトコルを紹介します。行動チャンバーの構築、行動アッセイプロトコル、および自動解析のためのビデオ解析ソフトウェアの使用方法について詳しく解説します。
本手法により、C. elegansにおける個体群レベルの化学感覚反応のハイスループットかつ標準化された定量化が可能となり、初期段階のターゲットバリデーションおよび表現型スクリーニングを支援します。ビデオキャプチャと解析を自動化することで、実験的なばらつきを抑え、遺伝子や化合物のスクリーニングキャンペーンにおけるスループットを向上させます。このアプローチは定量的な好みの指数(PI)を出力するため、神経活性ターゲットのメカニズム的なリスク低減や、リード化合物同定における予測信頼性の向上に寄与します。
本手法は、遺伝的な摂動と化合物の応答を橋渡しする定量的な行動表現型を提供することで、初期の創薬ワークフローに統合され、標準化されたマルチプレックススクリーニングを通じてリード化合物の同定を支援します。