2017年7月26日
Toll様受容体(TLR)シグナル伝達は、多くのヒト炎症性疾患の病態生理学において重要な役割を果たし、生物活性ナノ粒子によるTLR応答の調節は、多くの炎症状態において有益であると予想される。 THP-1細胞ベースのレポーター細胞は、TLRシグナル伝達の新規インヒビターを同定するための多目的で堅牢なスクリーニングプラットフォームを提供する。
このスクリーニング手順の全体的な目標は、Toll様受容体シグナル伝達を阻害できる新規の生理活性ナノ粒子を特定することです。この方法は、自然免疫細胞のToll様受容体シグナル伝達を標的とする新規ナノ阻害剤を物理的に同定するのに役立ちます。この手法の主な利点は、高速で堅牢であり、レポーター細胞システムを使用して簡単に実行できることです。
この技術の応用は、Toll様受容体シグナル伝達がこれらの疾患の病因に関与していることがわかっているため、多くの炎症性疾患の治療にまで及びます。この方法は、金ナノ粒子に対する高度なスクリーニングを提供できますが、他のナノ粒子システムや治療用小分子、バイオロジーにも適用できます。この手順を開始するには、テキストプロトコルに概説されているように培地を準備します。
次に、100ミリリットルの超高純度エンドトキシンフリーの水をきれいな125ミリリットルのガラスフラスコに加えます。分泌された胚性アルカリホスファターゼ基質粉末を1袋加え、溶液が完全に溶解するまで穏やかに渦巻かせます。摂氏37度で1時間インキュベートし、基質が完全に溶解することを確認します。
0.2マイクロメートルのメンブレンを使用して、溶液をろ過します。使用する準備ができるまで摂氏4度で保管してください。次に、25ミリリットルの超高純度エンドトキシンフリー水が入った50ミリリットルの遠心分離チューブに、ルシフェラーゼ基質粉末の1袋を追加します。
粉末が完全に溶解した後、使用する準備ができるまで摂氏4度で最大1週間保管してください。次に、テキストプロトコルに概説されているように、他のすべての試薬のストック溶液を調製します。細胞を培養して調製した後、培養フラスコから遠心チューブに移します。
細胞をGの300倍で5分間スピンダウンします。次に、それらをR-10培地に1 X 10の濃度で1ミリリットルあたり6細胞に再懸濁します。PMA溶液のアリコートを細胞懸濁液に添加し、最終濃度が50ナノグラム/ミリリットル
になるようにします。細胞懸濁液を滅菌試薬リザーバーに注ぎます。マルチチャンネルピペットを使用して、100マイクロリットルの細胞懸濁液を96ウェル平底培養プレートの各ウェルに移します。細胞培養インキュベーターで摂氏37度で24時間インキュベートします。
この後、真空吸引器を使用して、培地を慎重に取り出します。倒立顕微鏡を使用して細胞をチェックし、誘導されたマクロファージがウェルの底に付着していることを確認します。各洗浄でウェルあたり100マイクロリットルのPBSを使用して細胞を2回穏やかに洗浄します。
次に、100マイクロリットルの新鮮なR-10培地を各ウェルに加えます。レポーターアッセイを行う前に、細胞を摂氏37度のインキュベーターで2日間休ませます。まず、テキストプロトコルに概説されているように、最適なLPS用量を決定します。
次に、180 マイクロリットルの温めた Quanti-Blue 溶液を、新しい 96 ウェル平底プレートの各ウェルに加えます。次に、各サンプルから20マイクロリットルの上清をプレートに移します。摂氏37度で1〜2時間インキュベートして、色がピンクから濃い青に発達するのを待ちます。
光学密度が1を超えたら、プレートリーダーを使用して655ナノメートルでの吸収を決定します。IRF活性化の分析を開始するには、各サンプルから10マイクロリットルの新鮮な上清を新鮮な96ウェルの透明な平底の白いプレートに移します。自動注入を使用して、各ウェルに50マイクロリットルのルシフェラーゼ溶液を追加します。
次に、すぐに発光をウェルごとに収集して線量反応曲線を作成し、ナノ粒子スクリーニングに最適なLPS濃度を決定します。次に、1.5ミリリットルのエッペンドルフチューブ内の20容量のペプチド-GMPハイブリッド溶液をGの18,000倍で30分間遠心分離します。上清を慎重に捨てます。
ハイブリッドを1本の新しいチューブに移し、1ミリリットルのPBSで2回洗浄します。この後、洗浄したハイブリッドを1容量のR-10培地に再懸濁します。濃縮ハイブリッドとR-10培地を含むLPSを等量混合し、ハイブリッドとLPSの最終濃度がそれぞれ100ナノモルと10ナノグラム/ミリリットルになるようにします。
次に、マクロファージ培養プレートから培地を取り出します。100マイクロリットルのハイブリッドLPS混合物を各ウェルに、各条件に対して3回の繰り返しで加えます。ネガティブコントロールとLPSコントロールを含めます。
摂氏37度で24時間インキュベートします。次に、各ウェルの培地を別々の遠心分離チューブに移します。チューブをGの18, 000倍、摂氏4度で30分間遠心分離します。
上清を新しい96ウェルの丸い底板に移します。これらのサンプルでレポーターアッセイを開始するには、新しい96ウェル平底プレートの各ウェルに180マイクロリットルの予熱済みQuanti-Blue溶液を加えます。次に、各サンプルから20マイクロリットルの上清をこのプレートに移します。
37°Cで1〜2時間インキュベートし、濃い青色が光学密度1を超えるまで成長させます。この後、プレートリーダーを使用して、655ナノメートルでの吸収を記録します。次に、各サンプルから10マイクロリットルの新鮮な上清を96ウェルの透明な平底の白いプレートに移します。
自動インジェクターを使用して、各ウェルに50マイクロリットルのルシフェラーゼ溶液を追加し、すぐにウェルごとに発光を記録します。次に、潜在的な候補の阻害効果を検証し、テキストプロトコルに概説されているTLR特異性を評価します。この研究では、NF-Kappa B AP1の活性化は、LPSによるTLR-4の活性化がNF-Kappa B AP1の活性化とSEAPの生成をもたらすSEAP比色アッセイによって検出されます。
放出されたSEAPは基板を変換し、刺激時に放出されるSEAPの量に比例した色の変化を引き起こします。これは、655ナノメートルの吸光度を測定することで定量化されます。次に、LPSを介したIRFの活性化により、ルシフェラーゼが発現し、基質が触媒されて発光が生じました。
これらの用量反応から、1ミリリットルあたり10ナノグラムの最適なLPS濃度が決定され、以前に確立されたペプチド-GMPハイブリッドのライブラリーをスクリーニングします。このことから、NF-Kappa B AP1とIRFの両方について、LPSトリガーの活性化を阻害する強力な能力について、ハイブリッドのグループが特定されます。この阻害活性の検証は、LPSの濃度が増加すると、ハイブリッドの阻害効果が予想通り減少することを示しています。
その後、阻害活性を確認するためにイムノブロッティングを行います。リードハイブリッドは、p65リン酸化を減少させ、I-Kappa Bα分解を阻害し、IRF3リン酸化を遅らせることが見られ、リードハイブリッドP12がLPSを介したTLR-4シグナル伝達を阻害できることが確認されています。さらなる調査では、P12はTLR-2およびTLR-5を介したNF-Kappa B AP1シグナル伝達、およびTLR-3を介したIRF活性化も減少させることが明らかになり、P12が複数のTLR経路に対して強力な阻害活性を有することが示唆されています。
この手順に続いて、スクリーニング結果を検証し、偽陽性の発見を避けるために、イムノブロッティングや細胞毒性アッセイなどの他の手段を実施する必要があります。この技術は、その開発後、ナノメディシンの分野の他の研究者が、次世代の情報治療薬として、Toll様受容体シグナル伝達におけるナノ阻害剤を探求する道を開きました。
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本記事では、toll-like receptor (TLR) シグナル伝達を抑制する新規の生物活性ナノ粒子の同定を目的としたスクリーニング手順について解説します。この手法では、迅速かつ堅牢で実施が容易なTHP-1細胞ベースのリポーターシステムを利用しており、炎症性疾患における治療への応用に適しています。
このスクリーニング法は、食細胞である免疫細胞におけるToll様受容体シグナル伝達を調節する生理活性ナノ粒子の迅速な同定を可能にし、抗炎症療法の開発における重要な課題を解決します。NF-κB/AP-1およびIRFという2つの経路におけるTLR阻害を評価する、レポーターベースの高スループットアッセイを提供することで、免疫学に焦点を当てた創薬プログラムにおける初期段階のターゲットリスク低減およびリード化合物の同定を支援します。本アプローチはナノ粒子ライブラリーのスクリーニングに直接適用可能であり、低分子化合物にも拡張できるため、免疫調節候補物質のメカニズム検証のためのスケーラブルなプラットフォームを提供します。
本手法は、ターゲットの検証からリード化合物の同定に至る創薬のディスカバリー・コンティニュアムに適合しており、リード最適化や前臨床開発への投資前に、go/no-go判断の根拠となるメカニズム的な知見を提供します。