Name: CRISPR/Cas9 複合体の前核注入による遺伝子組み換えゴールデン ハムスターの生産 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-09T12:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 12 s
Description: 学ぶ CRISPR/Cas9複合体の前核注入による遺伝子組み換えゴールデンハムスター生産法。環境に敏感なハムスター胚に対応した独自プロトコルで、疾患モデル動物の開発に貢献する技術を習得できます。

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この出版物で報告された研究は、国立研究所のアレルギーおよび感染症 (NIAID) の健康の国民の協会 (ZW) に受賞番号 1R41OD021979 の下で、次世代 BioGreen 21 からの研究助成金にサポートされていたプログラムは、韓国の許可なし。PJ01107704 (ZW) に no を与える。(IK) を PJ01107703。内容は著者の責任と BioGreen 21 の国立衛生研究所の公式見解を必ずしも表さない。博士ニコラス Robl は、原稿の編集を感謝いたします。

このプロトコルで説明する手順は、機関動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) ユタ州立大学によって承認された (IACUC プロトコル: 2484)。このプロトコルで使われるハムスターが大人 (6-10 週齢) LVG ひずみシリアのハムスター。すべてのハムスターは、ユタ州立大学 Bioinnovation センターでビバリウムで収容されます。部屋の温度は 23 ° C に設定されて、湿度が 40-50% に設定されて、ライト サイクルの設定 14:00 (光: 暗い)。可能な限り、胚操作と surugical の手順は生殖不能の技術と実行必要があります。
1. sgRNA Cas9/sgRNA Ribonucleoproteins (RNP) 等
<ol><li>(材料表、補足 1) 合成キットのマニュアルに記載の in vitro転写の手順に従って sgRNAs を合成します。</li>
	<li>Ribonucleoproteins を組み立て、1 μ g の sgRNA と Cas9 の 2 μ g をミックス ミックス 10-15 分の室温で孵化させなさい。PN 注射用 100 ng/μ L Cas9 と 10 mM TE バッファー (RNase フリー、材料表) と sgRNA を 50 ng/μ L の濃度で実用的なソリューションを作る。</li>
</ol>2. 精管切除の準備
注: 精管切除は、6-8 週齢で男性ハムスターに実行されます。手術は 10-14 日前に最初の交配を実施しなければなりません。不妊は、肥沃な女性と交配から失敗した妊娠によって確認されます。精管男性は、少ない性的にアクティブになる前に 1 年間通常使用できます。
<ol><li>ケタミン ・ キシラジンの 40 mg/kg (ケタミン) と (キシラジン) 10 mg/kg の用量で腹腔注入による男性を麻酔します。ペダル反射 (つま先ピンチ) の欠如によって麻酔を確認します。</li>
	<li>乾いたティッシュ ペーパーで背臥床で鎮静のハムスターを置きます。リンス腹部手術を交互に防腐剤治療の 3 つのラウンドには、70% アルコールとポビドン ヨードのソリューションをスクラブします。</li>
	<li>開始 1.5 cm 半ば線 (図 1 a) からそれぞれの側に 1 cm を拡張する包皮に頭蓋手術ハサミで縦切開を確認します。皮膚、皮下組織、リネアを切開腹膜腔 (図 1 b) にアクセスするアルバ。</li>
	<li>精巣および脂肪質のティッシュを強制的に陰嚢の尾側面に穏やかな圧力を適用します。鉗子で精管を優しくつかみ、慎重に vas から血管の鉗子 (図 1 c) の 2 番目のセットを区切ります。</li>
	<li>ループを形成するための鉗子で、輸精管を保持します。赤、それまで炎のもう一つの鉗子の先端を加熱し、輸精管のループを削除するそれを使用します。脂肪質のティッシュと精巣は腹部に挿入します。同じ手順を反対側の輸精管を削除します。</li>
	<li>まず皮膚を縫合し続いて筋を縫合します。動物が回復するまで暖かいパッド 30 分の檻の中に動物を配置します。それは通常の活動を再開するまでは、動物を観察します。</li>
</ol>3. ドナー/受信者ハムスター準備スケジュール
<ol><li>監視および記録の発情周期。 メモ: 雌ハムスター分娩後すぐに維持安定した 4 日間の発情周期があります。発情期の最初の日に女性は、不透明、黄色および粘着性の膣分泌物 (図 2 a) によって識別できます。4 日目の発情期の雌は、透明、粘着性粘液 (図 2 b) によって識別できます。</li>
	<li>ドナー ハムスターの過剰排卵処置のため性的に成熟した女性を superovulate (> 6 週間) 妊馬血清性腺刺激ホルモン (PMSG; 50 IU/ml に溶解後 PBS) の IP 注入による発情周期の最初の日に (表 1) 9-12 の間。 注: PMSG は発情周期の同期ではなく、排卵を誘発します。</li>
	<li>80 - PMSG (日 4、6-8 日)、注射後 84 h は、交配のため男性とケージの中で女性を配置します。ハムスター交尾の交配は発生しませんがプラグと、交配を見てでわれわれの成功を保証します。</li>
	<li>精管男性と発情期の 4 日目の性的成熟した雌を交尾によって偽妊娠女性を準備します。ドナーとレシピエントの女性を準備するためのタイム スケジュールは、表 2のとおりです。 注: 真の妊娠した女性は、受信者、すなわち女性のコートの色を同じ色の肥沃な男性とつや消しの黄金色と区別としても使用できます。胚移植から派生した子犬は、コートの色に基づいて識別できます。真の妊娠した女性を使用して潜在的な利点は内生に作り出された胚が正常妊娠を確認し、インプラントの注入 PN 胚を助ける受信者として真の妊娠した女性を使用して潜在的な欠点は注入のための胚を内生的に対抗するため注入 PN 胚必要に生産します。</li>
</ol>4. 受精卵分離
<ol><li>培地を準備 (HECM-9; レシピは補足 2 に記載されて)、マッキアナンと Bavister12で前述のよう。</li>
	<li>1 日 PN 注入前に、受精卵料理 (25 μ L/ドロップ) と HECM 9 と 35 mm ディッシュのフタで PN 噴射ドロップ (100 μ L) 処理を準備します。鉱物油と媒体の滴を取り上げてください。次の条件の下で一晩インキュベーター中バランス: 37.5 ° C、10% CO25% O2 85% N2湿度 100%。</li>
	<li>PN 注射予定日 HECM 9 が付いている胚フラッシュ皿 (1 皿/ドナー ハムスター) を準備し、インキュベーターに使用するまですべての料理を格納します。</li>
	<li>CO2と排卵のハムスターを安楽死させます。</li>
	<li>卵管の分離<ol>
<li>手術用覆布またはティッシュ ペーパーで背の臥床で euthanized メスのハムスターを置き、70% エタノールを噴霧して腹部を準備します。</li>
		<li>しっかり皮膚を押しながら正中線で腹部の筋肉層と切開を行います。腹部の臓器を公開する腹膜を切開します。</li>
		<li>微細鉗子で子宮の角の 1 つを持ち、腹部から組織を撤回します。Mesometrium と脂肪組織から子宮を区切ります。卵管と子宮 (子宮の一部を含む) の接合部に隣接する卵管と卵巣 2 番目のカットとカットをします。同じフラッシュ皿に 2 つの卵管を配置します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>フラッシュおよび受精卵を収集<ol>
<li>解剖顕微鏡の下で #5 ・ デュモン鉗子で子宮角の側を把握し漏斗の端から卵管の内腔に自家製針 (図 3) を挿入し、HECM 9 媒体の 300-400 μ L で卵管をフラッシュします。</li>
		<li>すぐに、受精卵を収集し、処理皿 HECM 9 媒体で 2 回洗ってください。開発のこの段階で、受精卵のすべては卵丘細胞から裸する必要があります。</li>
		<li>インキュベーター (37.5 ° C, 10% CO2, 5% O2 85% N2と 100% 湿度) の光への露出を最小限に抑えるためのコレクションの直後に、受精卵を配置します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. PN 注入
<ol><li>氷の上の Cas9/sgRNA RNP を解凍し、全体の PN 注入プロセスの間に氷の上複合体を維持します。</li>
	<li>Cas9/sgRNA RNP 液の射出実験直前に注射針をロードします。Cas9/sgRNA RNP ソリューションを格納筒に注射針の後端を置き、Cas9/sgRNA RNP ソリューションを毛管作用によって針を記入します。</li>
	<li>注入皿や針を準備します。ホルダーの針のベンドの 〜 3 mm 以内に鉱物油とホルダー ピペットを入力します。皿の底に水平方向針の先端とガラスシリンジでホルダーを配置し、吸引して媒体に針の先端を塗りつぶします。ホルダーの反対側 10-15 ° の角度で注射針を設定します。</li>
	<li>PN 注入<ol>
<li>受精卵を識別し、針とホルダーを良い吸引を適用します。理想的には、男性と女性の前核は、同じ焦点距離とホルダーに平行にあります。</li>
		<li>注射針でゾーナと男性の前核 (3 ポジション) を浸透します。</li>
		<li>一度、前核うねり核が針に付着するを防止し、前核の損傷を避けるためにすぐに注射針を撤回します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. 受精卵は偽妊娠ハムスターに転送します。
<ol><li>(上記の精管切除のセクションで説明した方法と同じ) 偽妊娠ハムスターの麻酔し、腹臥床の手術用覆布または乾いたティッシュ ペーパーにそれを置きます。</li>
	<li>目の乾燥を防ぐため、布や光から目を保護するために紙で頭をカバーする動物の目に目の潤滑剤を適用します。体の外側面を削って準備、ポビドン ヨード ・ スクラブと 3 回 70% エタノール スクラブの 3 回を適用することによって続いてボディの各側面の約 4 cm × 4 cm の皮膚領域。2 cm の縦切開 2 cm 尾側最後の肋骨 (図 4 a、 4 bに示すように)、動物の背中の両側にします。</li>
	<li>鉗子で脂肪パッドをつかんで、卵管と子宮が表示されますまで丁寧に引き抜きます。クランプ、止血剤と脂肪パッドと脊椎 (図 4 c) 背脂肪パッドを反映します。子宮管胚移植 (図 4 d) 30 g 針に攻め込むことができるような生殖器官を配置します。</li>
	<li>新しい皿 HECM 9 注入受精卵を洗います。新しいガラス ピペットを使用 (直径: 150 ~ 200 μ m) 10-15 受精卵を読み込めません。いくつかの気泡が続く真珠のチェーンとして、受精卵を配置します。ステップ 6.3 からオープン イク管にピペットを挿入し、受精卵を卵管に転送するピペットに優しく吹きます。最初の空気の泡が卵管管 (図 4e) に解放されるまでを吹いてを継続します。</li>
	<li>脂肪質のパッドを離し、腹部に組織します。同じプロセスによって挿入された胚のもう一つの卵管管にほぼ同じ数 (10-15) を転送します。</li>
	<li>筋肉と 2 層で皮膚を縫合します。手術後の鎮痛法としてブプレノルフィン塩酸 (0.5 mg/kg) を皮下管理します。ハムスターをケージに戻るし、回復のための暖かいパッドにケージを置きます。動物が麻酔から完全に回復したとき、動物の部屋にケージを返します。手術後の鎮痛薬は、再び 6 時間後を与えられています。</li>
</ol>

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</ol>

ZW は学バイオ、llc で金銭的な利益を生物医学研究と農業のアプリケーションのための遺伝子組み換え動物の作成に特化したバイオ テクノロジー会社。

良いひと疾患のモデルとしてシリアのハムスターの可能性を悪用する、我々 は、CRISPR/Cas9 複雑なハムスターのゲノムを対象とするを提供するため PN 注入プロトコルを開発しました。PN 注入プロトコルには、胚培養培地、温度、光13の波長などいくつかのキーの変数が最適化されます。また、ハムスターの遺伝子ターゲティングを正常に実施するために従う必要がありますいくつかのハムスター固有動物取り扱い手順があります。たとえば、性的成熟雌ハムスターは外因性ホルモン (例: PMSG) と同期することはできません安定の 4 日発情周期を持ちます。こうしてそれぞれの雌の発情周期を正確に追跡は、過剰排卵処理および偽妊娠準備のため重要です。30-60 の受精卵には、彼女は正常に排卵がある場合、女性から作ることが出来ます。正常な排卵を達成するために脂肪の種特異的な沈着を考慮する必要が。特にそれら以上 12 週齢、雌のハムスターは、注射針は、ホルモン注射を実行するときに、脂肪パッドを充分に浸透させるのに正しく配置する必要がありますこのような過剰な腹部の脂肪を持っている傾向があります。腹腔内へ...

黄金のシリアのハムスター (ん) は、生物医学研究のための最も広く使用されている齧歯動物のひとつです。米国農務省によると約 100,000 ハムスターが動物福祉法 (http://www.aphis.usda.gov; アクセスで覆われて種総研究所動物使用量の 13% を表す、2015 年にはアメリカ合衆国で使用されました。2017 年 3 月 10 日)。
ハムスターは、人間の病気の多数の研究では他の齧歯動物をいくつかの利点を提供しています。BOP 治療は主にラットおよび肺の甲状腺腫瘍、肝腫瘍を誘発するたとえば、ハムスターで誘導される N nitrosobis(2-oxopropyl) アミン (BOP) の病理膵膵管癌は人間の膵臓の腫瘍のようマウス1。ハムスターはアデノ ウィルスのレプリケーションをサポートする唯一の小さい齧歯動物であるため、またアデノ ウイルスによる腫瘍溶解性ベクトルおよび抗アデノ ウイルス薬2,3,4のテストに最適なモデルです。高脂血症の研究では、前記のハムスター モデルはマウスおよびラット上の優位性を提供しています別の例です。人間やハムスターが脂質代謝経路で偉大な類似を表わすし、両種コレステリル エステル転送タンパク (CETP)、脂質代謝、CETP が不在のマウスとラットの5において中心的な役割を担う遺伝子を運ぶ。また、ハムスターはエボラ ウイルス6への露出に続く人間の症状の代表的な出血性疾患を開発します。ハムスターは、また動脈硬化症7、口腔癌8、および炎症性 myopathies9の勉強に最適なモデルです。最近では、それがハムスターをアンデス ウイルスに高い感受性がアンデス ウイルス感染症10のみ齧歯動物モデルを提供するハンタ ウイルス肺症候群のような疾患を発症、実証もされています。
我々 は最近、ハムスターに CRISPR/Cas9 システムを適用することに成功しているし、遺伝子のいくつかの行を生産している信頼性の高い小さな齧歯動物モデルがない利用可能な人間の病気を研究する新しい遺伝的動物モデルの満たされていない必要性に対処するためハムスター11を設計されています。ハムスターの受精卵は、他の種で開発された PN の注入のプロトコルが適してなど環境調査に非常に敏感です。したがって、我々 はハムスター ハムスター胚体外を処理するための特別な要件に対応するため PN 注入プロトコルを開発しました。ここでは、CRISPR/Cas9 システムと受信者の女性に挿入された胚の転送を 1 つのガイド RNA (sgRNA) の準備から、付属の手順を使用して詳細な PN の注入手順をについて説明します。

<table><tbody><tr><td>Cas9</td><td>Invitrogen</td><td>B25640</td><td>1 &mu;g/&mu;L (~6.1 &mu;M)</td></tr><tr><td>GeneArtTM Precision Synthesis Kit</td><td>Invitrogen</td><td>A29377</td><td>sgRNA合成用</td></tr> ヒト<tr><td>血清由来アルブミン</td><td>Sigma</td><td>A1653</td><td>培養培地用</td></tr><tr><td>イルミネーター</td><td>ニコン</td><td>NI-150</td><td>胚移植用</td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>ニューブランズウィック</td><td>ギャラクシー 14S</td><td>胚培養用</td></tr><tr><td>マイクロフォージ</td><td>ナリシゲ</td><td>PB-7</td><td>注射針の作製に</td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>ECLIPSE Ti-S</td><td>マイクロインジェクション用</td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>invitrogen</td><td>SMZ745T</td><td>胚移植用</td></tr><tr><td>鉱物油</td><td>Sigma</td><td>M1840</td><td>暗闇で保管</td></tr><tr><td>PMSG</td><td>Sigma</td><td>G4877-2000IU</td><td>超排卵用</td></tr></tbody></table>

crispr/cas9 複合体の前核注入による遺伝子組み換えゴールデン ハムスターの生産

Production of Genetically Engineered Golden Syrian Hamsters by Pronuclear Injection of the CRISPR/Cas9 Complex

前核 (PN) 注入法 1 セル段階の胚の前核に外国の遺伝物質を導入するマウスで設立。導入された遺伝物質が胚のゲノムに統合し、次の母親を促進する挿入された胚の転送外国の遺伝情報を持つトランスジェニック動物を生成します。マウスで成功、PN の注入は、他の多くの動物種で正常に適用されています。最近では、PN の注入は正常に遺伝子変更と試薬を紹介に雇われているいくつかの研究室でサイト固有の遺伝的改変を達成し、農場の動物種の CRISPR/Cas9 システムなどの活動。PN 注入による遺伝子改変動物を生産するマイクロインジェクション技術の特別なセットを習得しただけでなく研究者を理解しなければならない繁殖生理学と対象種の動作それぞれの種プレゼント ユニークなので課題。たとえば、シリアのハムスター胚がユニークな PN 注入技術では不可能だったこの種当社グループによる最近の進歩までその体外要件の処理します。私たち種変更 PN 注入プロトコルで、いくつかの遺伝子ノックアウト (KO) の生産でノック (KI) ハムスターは、人間の病気に正常に使用されている成功しました。ここでハムスター、胚の処理条件、胚転送プロシージャの受精卵に CRISPR/Cas9 複雑なを提供するため PN 注入手順を説明、遺伝子を生成するために必要な畜産変更ハムスター。

遺伝子組み換えのハムスターの生産に記載されているプロトコルの効率によって異なります次の 2 つの重要なステップの結果: 受信者の女性と目的遺伝子の組み換えライブ仔犬の数の出生率。出生率は胚の質の直接結果、PN 注入および胚転送プロシージャを実行する個々 のスキル。操作の胚の発達の可能性が損なわれないように、細心の注意は、ハムスターの胚の体外処理中に必要です。我々 は定期的に偽受信者女性と 60-80% の出生率を達成します。表 3 RAG1ノックアウト実験から出生率を示しています (偽妊娠女性は使用された)、 stat2 のマニュアル ページノックアウト実験 (真の妊娠黒人女性が使用された; 出生率がこの場合として算出した、リットルの生産比率ゴールデン子犬)。
注入 PN 胚由来遺伝子組換えの子犬の割合は、前核にオクターリピートと Cas9/sgRNA ribonu...

クラスター化の前核 (PN) 注射は定期的に短い回文繰り返し (CRISPR) を空間、CRISPR 関連タンパク質 9 ヌクレアーゼ (CRISPR/Cas9) システムは非常に効率的な遺伝子組み換えゴールデン ハムスターの製造方法。ここで、遺伝子ノックアウト ハムスター CRISPR/Cas9 システムの生産のための詳細な PN 注入プロトコルについて述べる。

CRISPR/Cas9 複合体の前核注入による遺伝子組み換えゴールデン ハムスターの生産

The pronuclear (PN) injection technique was first established in mice to introduce foreign genetic materials into the pronuclei of one-cell stage embryos. ...

このプロトコルの全体的な目的は、CRISPR/Cas9複合体の前核注入法による遺伝子組換えゴールデンシリアンハムスターの作製に関する詳細な手順を視聴者に提供することです。私たちがゴールデンシリアンハムスターで開発したこの前核注入プロトコルにより、本種における遺伝子工学が可能になります。この技術は、動物モデル開発の分野に大きく貢献するものです。ハムスター胚は環境に対して極めて敏感であるため、ハムスター胚の特殊なニッチに適応した独自の前核注入プロトコルを開発しました。この技術の開発は、遺伝子操作されたハムスターモデルを初めて作製できることから、ヒト疾患のモデリングにおける大きな前進となります。本実験では、前核（PN）注入の1日前に、HECM-9培地を用いて接合子操作用ディッシュおよび35 mmディッシュの蓋にPN注入用ドロップを準備します。培地滴をミネラルオイルで覆います。滴とHECM-9培地のバランスを整えるため、37.5 degrees celsiusで一晩インキュベートします。PN注入の日当日に、HECM-9を用いて胚洗浄用ディッシュを準備します。必要になるまでインキュベーターで保管します。輸卵管を単離するために、安楽死させた超排卵誘発後のメスハムスターを、手術用ドレープの上に背臥位で配置します。腹部を70% ethanolで洗浄します。次に、正中線上の皮膚と腹筋層をしっかりと固定し、腹部末端に沿って切開します。腹腔内臓器を露出させるため、腹膜を切開します。続いて、微小鑷子を用いて子宮角の一方を把持し、組織を腹腔外へ牽引します。子宮を広間膜および脂肪組織から分離します。1回目の切開を卵管と卵巣の間に行い、2回目の切開を卵管と子宮の接合部の隣で、子宮の一部を含めるように行います。卵管を同じシャーレに入れます。解剖顕微鏡下で接合子を回収するには、Dumontピンセット（5番）を用いて子宮角の側面を把持します。自家製ニードルを漏斗部側から卵管腔内に挿入します。その後、300〜400 µLのHECM-9培地で卵管をフラッシュします。フラッシング後、直ちに接合子を回収し、ハンドリングディッシュ内でHECM-9を用いて2回洗浄します。この発生段階では、すべての接合子から卵丘細胞が除去されているはずです。その後、光への曝露を避けるため、注入を行うまで接合子をインキュベーター内に安置します。注入の準備として、Cas9-sgRNA RNPを氷上で解凍します。注入の直前に、注入用ニードルの後端をRNP溶液が入ったチューブに入れ、毛細管現象によってニードル内に溶液を満たします。次に、ホルダーピペットにミネラルオイルを、ニードルの曲がり部分から約3mmまで満たします。ホルダーをマイクロインジェクターにセットし、ホルダーピペットの先端がディッシュの底に対して水平になるように配置します。吸引により、ニードルチップに培地を満たします。次に、注入用ニードルをホルダーとは反対方向に10～15度の角度でセットします。続いて、接合子を特定し、ホルダーニードルを用いて軽く吸引します。わずかに大きい雄性前核と雌性前核は、なるべく同じ焦点範囲内にあり、ホルダーに対して平行に並んでいる状態が好ましい。注入針を3時の位置に合わせ、透明帯と雄性前核を貫通させる。前核が膨らんだら、核が針に付着して損傷することを防ぐため、速やかに注入針を抜去する。Cas9/sgRNAシステムを用いたSTAT2およびRAG1遺伝子の遺伝子ターゲティング効率は、レシピエント雌の生存出生率および目的の遺伝子改変を持つ生存子数によって評価されます。子のPCR制限断片長多型解析（PCR-RFLP）によるジェノタイピング結果から、遺伝子ターゲティングの効率が示されます。レーン1は両アレルがターゲティングされたアレルを示し、レーン3および7は単一アレルまたはモザイク状にターゲティングされたアレルを示しています。この技術により、研究者がヒト疾患の新しい遺伝子組換えハムスターモデルを開発する道が開かれました。このビデオを視聴することで、CRISPR/Cas9複合体の前核注射による遺伝子組換えゴールデンシリアハムスターの作製方法について、十分に理解することができるはずです。

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学ぶ CRISPR/Cas9複合体の前核注入による遺伝子組み換えゴールデンハムスター生産法。環境に敏感なハムスター胚に対応した独自プロトコルで、疾患モデル動物の開発に貢献する技術を習得できます。

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