Name: ミトコンドリア由来ペプチド治療時に ERK の活性化のための細胞レベル下の分別 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: 学ぶミトコンドリア由来ペプチド刺激によるERK活性化の細胞内局在解析法。SH-SY5YおよびHEK293細胞を用いてリン酸化タンパク質のシグナル伝達経路を解明し、ミトコンドリア生物学への理解を深めます。

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この作品は、SJK、高齢化研究プログラムでエリソン/遠く員によって支えられた、グレン財団賞と NIH の PC への許可 (1P01AG034906、1R01GM 1R01ES 090311 020812)。映画の中にすべての著者が表示されます。

1 セルにペプチド治療 <ol><li>プレート 200 万 SH SY5Y または HEK293 細胞 (2 x 10 6) 10 cm に皿、2 日間のそれらを育てる</li> <li>(省略可能) 次の日、無血清ダルベッコとセルを洗浄して &#39; s 更新。イーグル培地 (DMEM) メディアの一度と無料 DMEM 治療血清無料メディアで実行する必要がある場合は一晩血清 incubate</li>。
	<li>3 日目、0.2 μ m フィルター、蒸留水、1 mM 原液としてそれらを再構成 S14G humanin ペプチドを溶解します 。
	注: ペプチドは、ペプチド (例えば、全体の電荷) のシーケンスの特性によって決定されることができます、場合は市販されているペプチドに製造元が提供可能性があります適切な溶媒で溶解する必要があります。たとえば、S14G humanin、SHLP2、および SHLP6、および MOTS c は水に溶かします。因数の凍結を避けるために、解凍サイクル適切なボリューム (例えば、50 μ L) 中のペプチド。解凍後、それらを使用しないでもう一度</li>。
	<li>に予め温めておいた血清含有の約数または血清の自由な媒体 50 mL コニカル管、室温 1 mM 原液使用濃度 (例えば、1 μ M、10 μ M) に参加することを追加します</li>。
	<li>1.4 のステップから 6 mL ペプチド ソリューションとメディアを交換しますセル間インキュベート時間の適切な量と。 。
	注: ERK をアクティブにあなたの条件に応じてインキュベーション時間を選択します</li>。
</ol> 2。細胞質と核の細胞レベル下の分別 <ol><li>10 mL の氷冷 PBS で 2 回細胞を洗浄、5 ml の氷冷 PBS のプレートから細胞をこすり、細胞懸濁液を 15 mL の円錐管に転送します</li>。
	<li>4時 5 分 500 x g で細胞を遠心分離機 ° C</li>
	<li>PBS を吸引し、氷、分別バッファーの 200 μ L でペレットを再停止 (10 mM HEPES pH 7.6, 3 mM MgCl 2、10 mM KCl, 5% (v/v) グリセロール 1% 非イオン性界面活性剤 (C 13 H 22 O (C 2 H 4 O) =n) プロテアーゼ/ホスファターゼの抑制剤). 
	注: のリン酸化状態で蛋白質を維持するには、ホスファターゼ阻害剤同様のプロテアーゼ阻害剤をたてに追加するか、サンプルがまったくの氷で保たれるべきである回します。凍結と融解を繰り返しサンプルのサイクルは避けるべきであります。-80 でそれらを固定する前に少量 (例えば 50 μ g) に割り切れるサンプル ° C</li>
	<li>15 分間氷の上再懸濁のペレットをインキュベートし、4時 5 分 250 × g で遠心分離 ° C</li>
	<li>細胞質画分として清を収集し、核分画用ペレット</li>。
	<li>は、細胞残渣および 4 ° C で 10 分間、18,000 × g で他の汚染物質を削除し、新しい微量遠心チューブに上清を転送上清を遠心分離機します。これは細胞質分画.</li>
	<li>200 μ L 冷たい洗浄バッファーでペレットを再懸濁します (10 mM HEPES pH = 7.6, 1.5 mM MgCl 2, 420 mM の NaCl、25% (v/v) グリセロール、0.2 ミリメートルの EDTA、プロテアーゼ/ホスファターゼの抑制剤) と 250 x g で 4 ° C で 5 分間遠心</li>
	<li>上澄みを除去し、100 μ L 冷たい、核抽出バッファーでペレットを再懸濁します (20 mM HEPES pH = 7.6, 1.5 mM MgCl 2, 420 mM の NaCl、25% (v/v) グリセロール、0.2 ミリメートルの EDTA、プロテアーゼ/ホスファターゼの抑制剤) と超音波照射 10 回 (5 s、10 sオフ、30% アンプです。)氷の</li>
	<li>4 ° C で 10 分間 18,000 × g で遠心します。</li>
	<li>は、新しい微量遠心チューブに上清を転送します。これは核分画.</li>
	<li>BCA アッセイを用いたタンパク質の量を定量化するため</li></ol>
 3. 粗ミトコンドリア分画 <ol><li>各 10 cm 皿 10 mL の氷冷 PBS のセルを洗浄、5 mL の氷冷 PBS を追加および細胞スクレーパーを使用してセルをデタッチします 。
	メモ: 西部のしみが付くことのミトコンドリアの良好な収率を取得するセルの 3 つの 10 cm 皿を使用しています</li>。
	<li>細胞懸濁液を 15 mL の円錐管に転送し、1 つ 15 ml の円錐管に 3品 10 cm からすべて結合します</li>。
	<li>4時 10 分 600 x g で細胞を遠心分離機 ° C</li>
	<li>、PBS を吸引し、冷たいミトコンドリア分離バッファーの 1 mL にペレットを再中断 (10 mM トリス-モップ 1 mM グリコールエーテルジアミン四酢酸/トリス、200 mM ショ糖、ph 調整 = 7.4).</li>
	<li>氷の四フッ化エチレン樹脂コーティング杵と 2 mL ホモジナイザーの 25 のストロークを持つ細胞をホモジナイズしてください 
	注: この手順は、ミトコンドリアの整合性を維持し、ミトコンドリア画分の収量を最大化するために重要です。セル タイプごとにストローク数を最適化する必要があります。手順を開始する前に、ホモジナイザーを precool.</li>
	<li>微量遠心チューブにホモジュネートを転送し、核と切れ目のない細胞を削除する 4 ° C で 10 分間 600 × g で遠心分離機します</li>。
	<li>、上澄みを集め、新しい遠心管にそれを転送、4時 10 分 7,000 x g で遠心分離機のそれ ° C 
	注: ペレットが緩んで、注意して上澄みを集め、ペレットを邪魔しないようにします</li>。
	<li>は、上澄みを除去、再ペレットを冷たいミトコンドリア分離バッファー 200 μ l を中断し、ソリューションを新しい微量遠心チューブに転送します。4時 10 分 7,000 x g でチューブを遠心分離機 ° C</li>
	<li>ペレットを洗浄する 3.8 手順を繰り返します。この手順では、新しい微量遠心チューブに上清を転送する必要はありません</li>。
	<li>洗浄のペレットから上澄みを除去し、50 μ L RIPA バッファーのミトコンドリアを含む餌を再停止します</li>。
	<li>加温 10 分間氷の上の懸濁液</li>
	<li>4時 15 分 16,000 x グラムの懸濁液を遠心分離機 ° C</li>
	<li>は、新しい微量遠心チューブに上清を転送します。これはミトコンドリアの一部です</li>。
	<li>BCA アッセイを用いた蛋白質量を定量化します</li>。
</ol> 4。リン酸化型特異タンパク質ウエスタンブロット <ol><li>SDS ポリアクリルアミド ゲル電気泳動 (あらかじめ作られた 8-16% ゲル) を行い、PVDF 膜 4 に蛋白質を転送します</li>。
	<li>インキュベート TBST で 5 %bsa を用いた膜 (0.1% ポリソルベート 20) 背景非特異的結合部位をブロックする室温で 30 分間 。
	注: リン酸化タンパク質検出用 BSA ないミルクの膜をブロックします。ミルクにはカゼイン、豊富なリン蛋白質、高い非特異的シグナルの結果が含まれています</li>。
	<li>4 ° C で一次抗体 (抗-リン-ERK1/2) と膜を一晩インキュベートします</li>。
	<li>次の日洗って tbst 膜 (0.1% ポリソルベート 20) 室温で 5 分間を 3 回します</li>。
	<li>膜二次抗体 (抗家兎 HRP) 室温で 1 時間インキュベートします</li>。
	<li>Tbst 膜を洗って部屋の温度で 5 分間を 3 回 (0.1% ポリソルベート 20).</li>
	<li>ECL ソリューションと膜をインキュベートし、画像解析装置の膜をイメージします</li>。
	<li>室温で 5 分間 3 回 tbst 膜の洗浄 15 分の除去バッファーと膜のストリップ</li>
	<li>4.7 4.2 反合計 ERK1/2 抗体を使用して手順を繰り返します</li>。
	<li>、各分画の純度を確認する SDS ページを実行し、各コンパートメントを (例えば、核、細胞質の GAPDH とミトコンドリアの TOM20 ラミン B1) のマーカーを認識する抗体を用いた immunoblots を実行します</li>。
</ol>

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</ol>

ピンカス ・ コーエンは株主とコンサルタント、円は CohBar 株式会社のコンサルタントとして役立った CohBar、株式会社ケルビン

ここでは、我々 は実証 humanin ペプチドを介した ERK1/2 活性化は、2 つの異なる細胞型と活性 ERK1/2 の細胞内局は条件 (例えばペプチド、時点、およびセルの線量によって異なることがあります。型)。それはその humanin を示されている 2 つの異なる受容器22,23, humanin の異なる用量の要件と同様に、2 つの細胞間シグナル伝達に違いを説明するかもしれない信号。これの生理学的意味が完全に研究されていないが、それは HN に依存して応答する組織の 1 つの可能なメカニズムを示唆している可能性があります。
ERK1/2 のリン酸化は、ERK1/2 のシグナル伝達に重要な役割を果たしている、ERK1/2 のリン酸化状態はダイナミックな変化を示しています。ERK1/2 で特定の条件/刺激下でリン酸化されるときを検索する条件を最適化することが重要です。このため、異なる刺激条件 (例えば、線量および媒体) ...

新興の研究は、ミトコンドリア由来ペプチド (MDPs) がより, および代謝の1,2,3で重要な役割を果たすことを示しています。MDPs の存在下での信号伝達経路を理解する MDPs は様々 な機能を調節するメカニズムへの洞察力をくれます。最初の識別された民主党、humanin、細胞外シグナル調節キナーゼ 1/2 (ERK1/2) を増加する示されているバインド4,5その受容体をリン酸化します。しかし、ERK1/2 活性化の下流の効果はまだエコイノベーションです。
ERK1/2 カスケードは、さまざまな増殖、細胞遊走、細胞代謝、生存、およびアポトーシス6,7,8を含む細胞プロセスで重要な仲介者として機能します。すべてを調整するには、これらの明瞭な細胞プロセス、アクティビティ、ERK1/2 の細胞内局しっかりとホスファターゼと足場蛋白質9,10によって規制されました。翻訳後修飾に加えて ERK1/2 の動的往復もそのシグナル伝達関数、アクティビティ、および特異性11,12を調節します。ERK1/2 は主に細胞質13でローカライズされます。一連のアンカーと足場蛋白質の細胞小器官の表面や細胞質13で拡散の骨格要素の ERK1/2 を維持するため。刺激、ERK1/2 リン酸化、ERK1/2 核、ミトコンドリア、ゴルジ体、リソソーム14,を含む他の細胞内コンパートメントへの転流をできるようにそのアンカリングのタンパク質から解離になります。15,16。
Humanin ERK1/2 シグナル伝達経路をアクティブに知られているが、合計のセル lysates においてのみ ERK1/2 の活性化です。リン酸化 ERK1/2 は包括的な理解を提供するために必要な ERK1/2 内局その波及効果, 両方の細胞内局在の解析とのレベルの合計の重大な役割を果たしているので前述のようhumanin ERK1/2 活性化の下流ターゲットのアクティブ化。
アクティブ ERK1/2 ターゲット細胞内小器官を理解するには、リン酸化 ERK1/2 ウェスタンブロッティング続いて細胞レベル下の分別を行った。このメソッドは、これは標準的な実験装置および試薬を活用して簡単に実装することができます。孤立した細胞内コンパートメントは、高純度、結果を素直に解釈することができます。ERK1 染色/2 似たような結果が生じる。ただし、特定の細胞内コンパートメントは視覚化する、特別な固定・透過方法を必要とする比較的難しいです。ERK1/2 レベル細胞レベル下コンパートメントによって異なり、全体のセル lysates を見ている時、この変化が原因で、偽陽性と偽否定的な信号。したがって、ERK1/2 ローカリゼーションの理解も、イムノブロット分離細胞レベル下コンパートメントを使用してくれます。
メソッドの汎用性により、他 MDPs STAT3 など他のシグナリング分子の転流を含む他の興奮剤の効果を調査するためのプロトコルの変更です。最近発見された小さな humanin のようなペプチド (SHLPs) は 16S rRNA 地域どこ humanin がエンコードされていると HN17と比較して似ていますが、異なるプロパティがあるからエンコードされます。たとえば、SHLP2 と SHLP3 は 8 h humanin 内局在 ERK1/2 の異なるペプチドへの応答で審査 5 分以内 ERK1/2 がアクティブになりますを与える私たちこれらのペプチドの生物学のよりよい理解後、ERK1/2 をアクティブにします。出現の証拠は、シグナル分子の細胞内の局在が彼らの下流の効果の重要な役割を果たしていることを示した。例えば、STAT3 が伝統的静止期細胞の細胞質でローカライズされる主に知られているが、それがサイトカイン18への応答における遺伝子発現をアクティブにする核に移行します。STAT3 はまたミトコンドリアに移行し、TCA サイクル、ATP 生産19を調節します。オートファジー規制に関する STAT3 の異なる細胞内局は、さまざまな方法20でオートファジーを変調します。たとえば、核 STAT3 は転写オートファジー関連遺伝子の発現制御し、オートファジーの変調器として機能します。細胞質の STAT3 恒常オートファジー シグナル分子との相互作用によってオートファジーを抑制します。ミトコンドリア STAT3 阻害し、酸化ストレス誘導されるオートファジーを抑制することによって mitophagy を防ぐことができます。したがって、この細胞レベル下コンパートメントの分離方法は他シグナリング分子、ERK1/2 の役割を理解するために重要です。

<table><tbody><tr><td>p44/42 MAPK (ERK1/2)</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>9102</td><td>希釈 1:1,000</td></tr><tr><td>リン酸化-p44/42 MAPK (ERK1/2)(Thr202/Tyr204)</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>4370</td><td>希釈 1:1,000</td></tr><tr><td>ラミン B1</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>12586</td><td>核マーカー、希釈 1:1,000</td></tr><tr><td>GAPDH</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>5174</td><td>細胞質マーカー、希釈 1:2,000</td></tr><tr><td>Tom20</td><td>Santa cruz</td><td>SC-17764</td><td>ミトコンドリアマーカー、希釈 1:2,000</td></tr><tr><td>抗ウサギ-HRP 標識</td><td>細胞シグナル伝達</td><td>7074</td><td>希釈 1:30,000</td></tr><tr><td>RIPA 溶解および抽出バッファー</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>89900</td><td></td></tr><tr><td>100 mm 培養皿</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>12556002</td><td></td></tr><tr><td>HNG ペプチド</td><td>Genescript</td><td></td><td></td></tr><tr><td>25mmsylingeフィルター</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>09-719A</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma</td><td>M8266</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P9333</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Sigma</td><td>G9012</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>BP151-100</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma</td><td>3609</td><td></td></tr><tr><td>MOPS</td><td>Sigma</td><td>M1254</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>シグマ</td><td>E3889</td><td></td></tr>ショ<tr><td>糖</td><td>シグマ</td><td>S7903</td><td></td></tr><tr><td>トリスベース</td><td>サーモフィッシャー科学</td><td>BP152-1HCL</td><td></td></tr><tr><td></td><td>シグマ</td><td>H1758</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>ロンザ</td><td>17-512F</td><td></td></tr><tr><td>セルスクレー</td><td>パーFALCON</td><td>353085</td><td></td></tr><tr><td>Halt&trade;プロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤カクテル (100X)</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>78440</td><td></td></tr><tr><td>Thomas Pestle Tissue Grinder Assemblies with Smooth Pestles</td><td>Thomas Scientific</td><td>3432S90</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>BP337-500</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>ThermoFisher SCIENTIFIC</td><td>BP1600-100</td><td></td></tr><tr><td>8-16% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels</td><td>BIO RAD</td><td>4561104</td><td></td></tr><tr><td>Mini Trans-Blot Module</td><td>BIO RAD</td><td>1658030</td><td></td></tr><tr><td>Trans-Blot Turbo Transfer</td><td>System BIO RAD</td><td>1704150</td><td></td></tr><tr><td>Trans-Blot Turbo RTA Mini PVDF Transfer Kit</td><td>BIO RAD</td><td>1704272</td><td></td></tr><tr><td>Clarity Western ECL Blotting Substrates</td><td>BIO RAD</td><td>1705060</td><td></td></tr><tr><td>Restore Western blot stripping buffer</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>21059</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコのモディファイドイーグルミディアム</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>ソニケーター、メデル:FB120</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>695320-07-12</td><td></td></tr></tbody></table>

ミトコンドリア由来ペプチド治療時に erk の活性化のための細胞レベル下の分別

Subcellular Fractionation for ERK Activation Upon Mitochondrial-derived Peptide Treatment

ミトコンドリア由来ペプチド (MDPs) は、ミトコンドリアのゲノムの他の知られている遺伝子の中で小型の開いたリーディング ・ フレームによってエンコードされているペプチドの新しいクラスです。MDPs は、アポトーシスからニューロンを保護する、代謝マーカーの改善、化学療法から細胞を保護するなどの生物学的効果のさまざまながあります。Humanin 発見される最初の民主党、民主党の家族の間で最も研究のペプチド。膜受容体と humanin の下流のシグナル伝達経路を慎重に特徴づけられています。MOTS c など SHLP1 6 追加 MDPs を最近発見されているし、シグナリング メカニズムは解明することいません。ここでこれらのペプチドの機能を決定する細胞文化ベース手法について述べる。特に、西部のしみとの組み合わせでのセル分別の技術の活性化の定量及び重要なシグナル伝達分子の転流を可能にします。セル分別の他の方法がありますが、ここで説明は簡単でわかりやすい方法です。さらにこれらのペプチドとその他の治療薬の作用メカニズムを解明するため、これらのメソッドを使用できます。

ここに示す手順を使用して、我々 は 1 μ M、100 μ M と SH SY5Y HEK293 細胞を扱わ S14G humanin、強力な humanin のアナログ21、それぞれに完成でメディア (図 1A 図 1 の指定された期間B). 木202/Tyr204総蛋白抽出物から、ERK1/2 の全体とリン酸形を検討します。S14G humanin の治療は、その規制木202/Tyr204サイトで ERK1/2 のリン酸化の増加を示した。ERK1/2 の細胞レベル下のローカリゼーションは、その特異性を得ることに特にそのシグナル伝達関数で重要な役割を果たしています。S14G humanin 媒介 ERK1/2 活性化の対象を理解するには、合計の細胞内分...

このプロトコルでは、ミトコンドリア由来ペプチドと細胞を刺激し、シグナル伝達カスケードとリン蛋白質の局在化を評価する方法について説明します。

ミトコンドリア由来ペプチド治療時に ERK の活性化のための細胞レベル下の分別

Mitochondrial-derived peptides (MDPs) are a new class of peptides that are encoded by small open reading frames within other known genes of the ...

この実験の全体的な目標は、ミトコンドリア由来ペプチドで刺激された細胞に関与する下流のシグナル伝達カスケードを特定することです。この方法は、ミトコンドリア由来のペプチド分野における重要な疑問、例えば、どのようなシグナル伝達経路が関与しているのか、どこで起こるのかといった疑問に答えることができます。この手法の主な利点は、簡単で比較的簡単に実行できることです。この手法のアイデアを最初に思いついたのは、ヒューマニン媒介ERKシグナル伝達を調べたときで、下流の事実に関する情報は限られていました。サブスケールカーシャー法は、ヒューマニン媒介シグナルの役割についてより深いアイデアを与えてくれました。3日目にめっきし、2回10回から6回に洗浄した後、SH-SY5YまたはHEK293細胞をテキストプロトコルに従って。S14G ヒューマニンペプチドをゼロポイント 2 ミクロンろ過蒸留水に溶解します。そして、それらを1ミリモルのストックソリューションとして再構成します。予め加温した血清含有培地または無血清培地を15ミリリットルの円錐管に分注し、室温のヒューマニンペプチドストック溶液を加えて作業濃度を上昇させます。直ちに細胞内の培地を6ミリリットルのペプチド溶液と交換してください。そして、細胞を適切な時間インキュベートします。10ミリリットルの氷冷PBSを使用して、細胞を2回洗浄します。次に、5ミリリットルの氷冷PBSで細胞をプレートからこすり落とします。そして、細胞懸濁液を15ミリリットルの円錐管に移します。細胞をGの500倍、摂氏4度で5分間遠心分離します。ペレットを200マイクロリットルの氷冷分画緩衝液に再懸濁し、氷上で15分間インキュベートします。チューブをGの250倍、摂氏4度で5分間遠心分離します。次に、上清を細胞質画分として収集し、ペレットを核画分用に保持します。上清を遠心分離機にかけ、Gの18000倍、摂氏4度で10分間、細胞の破片やその他の汚染物質を除去します。次に、上清を新しいマイクロ遠心チューブに移します。これがシチゾール画分です。ペレットを200マイクロリットルの氷冷洗浄緩衝液に再懸濁し、溶液をGの250倍、摂氏4度で5分間遠心分離します。上清を取り除き、100マイクロリットルの氷冷核抽出バッファーを使用してペレットを再懸濁します。次に、サンプルを氷上で10回超音波処理します。サンプルを再度遠心分離します。次に、上清を新しい微量遠心チューブに移します。粗ミトコンドリア画分を単離するには、10ミリリットルの氷冷PBSを使用して、各10センチメートル皿の細胞を洗浄します。次に、氷冷したPBSを5ミリリットル加え、セルスクレーパーを使用して細胞を分離します。細胞懸濁液を1本の15ミリリットルの円錐管に移します。次に、細胞をGの600倍、摂氏4度で10分間遠心分離します。PBSを吸引し、1ミリリットルの氷冷ミトコンドリア分離バッファーを使用してペレットを再懸濁します。次に、ポリテトラフルオロエチレンでコーティングされた乳棒を氷上に置き、2ミリリットルのホモジナイザーを25回ストロークして細胞を均質化します。ホモジネートをマイクロ遠心チューブに移し、サンプルをGの600倍、摂氏4度で10分間遠心分離して、核と壊れていない細胞を取り除きます。次に、上清を回収し、新しいマイクロ遠心チューブに移し、Gの7000倍、摂氏4度の溶液を10分間遠心分離します。上清を除去した後、ペレットを200マイクロリットルの氷冷ミトコンドリア分離バッファーで再懸濁し、溶液を新しいマイクロ遠心チューブに移します。チューブをGの7000倍、摂氏4度で10分間遠心分離します。洗浄を繰り返した後、15マイクロリットルのRIPAバッファーを使用してペレットを再懸濁し、懸濁液を氷上で10分間インキュベートします。次に、サンプルをGの16000倍、摂氏4度で15分間遠心分離します。ミトコンドリア画分である上清を新しいチューブに移します。テキストプロトコルに従ってウェスタンブロッティングを定量し、実施します。このビデオで紹介した手順を用いて、HEK293細胞とSH-SY5Y細胞は、強力なヒトニンアナログである100マイクロモルのS14 Gヒューマニンで後退しました。そして、全タンパク質抽出物からのテアニン202、チロシン204におけるERK12の総型およびリン酸化型を分析した。ここで見られるように、S14Gヒューマニン治療は、ERK12とその調節テアニン-202、チロシン-204部位のリン酸化の増加を示しました。S14Gヒューマニンを介したERK12活性化の標的を理解するために、S14Gヒューマニン処理後の全およびリン酸化ERK12の細胞内局在を解析しました。これらのウェスタンブロットに示されているように、HEK293細胞では、リン酸化ERKは細胞質と核の両方で増加しましたが、ミトコンドリアでは増加しませんでした。しかし、SH-SY5Y細胞では、リン酸化ERKが細胞質核とミトコンドリアで減少しました。S14Gヒューマニン媒介ERKリン酸化は、細胞タイプや条件によって異なる役割を果たす可能性があることを示唆しています。一度習得すれば、細胞核分画は1時間で、ミトコンドリア分画は適切に行えば1時間30分で行うことができます。この手順を試みるときは、すべてのサンプルを氷上に保つことを忘れないでください。この手順に続いて、シグナル伝達分子の下流の標的を理解するために、共免疫沈殿法や質量分析などの他の方法を実行できます。

subcellular-fractionation-for-erk-activation-upon-mitochondrial

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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呼吸と酸化的リン酸化により、細胞生存率に関連するミトコンドリア機能に対するプロテインキナーゼC（PKC）アイソザイムの活性化の効果を説明する。アプローチは、選択的に初代細胞培養や細胞のミトコンドリアの機能とエネルギー状態を決定するために種々のアッセイにおけるPKCアイソザイムを過剰発現するアデノウイルスの手法を適応します。...

腎細胞内のミトコンドリアの機能と細胞生存率の評価を過剰発現するプロテインキナーゼCアイソザイム

この手順では、成体マウスの脳ミトコンドリア関連のER膜またはMAMSとMAMSとミトコンドリア調製物からスフィンゴ糖脂質に富むマイクロドメイン画分から単離する方法を示しています。...

ミトコンドリア関連のER膜（MAMS）とスフィンゴ糖脂質マイクロドメインエンリッチド（GEMS）：マウス脳から単離

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培養細胞およびマウス組織から単離とミトコンドリアの機能解析

ここでは、(細胞周期)キナーゼのミトコンドリア局在を研究する方法と、その亜ミトコンドリア位置と潜在的なミトコンドリア基質/標的を決定する方法を概説します。タンパク質のミトコンドリアへの強制発現は、目的のタンパク質のミトコンドリア局在の機能的影響を研究するための有用なツールを提供します。...

ミトコンドリア局在と原子力細胞周期キナーゼ、Cdk1のの機能を研究するための実験的アプローチ

プロテインキナーゼは高度に進化したシグナリング酵素であり、細胞間および細胞内シグナル伝達にとって重要な足場である。本発明者らは、細胞シグナル伝達調節の解明を助ける信頼できる方法である放射性標識アデノシン三リン酸（[γ- 32 P] ATP）の使用によるキナーゼ活性を測定するためのプロトコールを提示する。...

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出芽酵母サッカロミセスセレビシエにおけるサブソキアドタンパク質の局在化の評価

本プロトコルは、ニューロンK-Cl共輸送体KCC2の機能と活性を研究するためのウェスタンブロッティング技術の適用を強調しています。このプロトコルは、ウェスタンブロッティング による...

ウェスタンブロッティングを用いたニューロンK-Cl共輸送体KCC2の機能と活性の研究

RASopathyiesは、RAS-MAPK経路の過剰活性化によって引き起こされる多系統遺伝性症候群です。検証を待っている潜在的に病原性の多様体が次々と出現する一方で、前臨床のエビデンスが乏しいため治療が制限されています。ここでは、Teen-reporter ZebrafishのライブFRETイメージングにより、RASopathy関連ERK活性化レベルとその薬理学的調節を胚発生時に試験および交差検証するためのin...

ライブFRET顕微鏡法および免疫蛍光法による初期ゼブラフィッシュヌーナン症候群モデルにおけるERK活性調節を評価するための効率的なプロトコール

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ミトコンドリア由来ペプチド治療時に ERK の活性化のための細胞レベル下の分別

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