Name: 海綿神経刺激とラットの海綿静脈洞部の圧力の記録 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-23T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: 学ぶ海綿神経刺激と海綿静脈洞部圧力記録の簡易手術法。シリコン接着剤を用いた神経電極複合体の分離技術により、ラットを用いた勃起機能障害の病態生理学研究と新規治療法の評価が可能となる再現性の高い方法です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

著者の謝辞があります。

動物は、制度のガイドラインに従って南デンマーク大学動物医療施設に収容されました。ケアと実験動物の使用のための健康の国民の協会ガイドに従ってすべての動物実験を行った。これは、急性、生存非手術です。
1. チューブ、電極、および外科手術用器具の準備
<ol><li>次の顕微鏡機器を使用: 外科はさみ、斜めマイクロはさみ、ティッシュ鉗子、デュモン #7 のペアと #5 湾曲したマイクロ鉗子、マイクロ針ホルダーとリトラクター。 注:急性の手順としては、器具を滅菌する必要はありません。使用後は、清掃し、70% のエタノールのヒントを拭いてください。</li>
	<li>70% エタノールでチューブを浸漬し、滅菌の 0.9% でフラッシュ使用前に 100 U/mL と塩化ナトリウム。空気の泡システムに導入することを避けるために満たされた管を残します。</li>
	<li>ICP 測定用カテーテルをするポリエチレン (PE)-50 チューブの 20-30 cm の長さ部分をカットします。管は湿し水の圧力を減らすためにできるだけ短くを確認します。</li>
	<li>針が途中で中断されるまで、滅菌 24 G 針サイドにサイドを曲げます。Cru を陰茎に挿入するため PE チューブの遠位端にベベル部分を接続します。他は半分圧トランスデューサーに接続するためのハブに挿入します。ヘパリン生食液 (100 U/mL) システムを入力します。</li>
	<li>バイポーラのテフロン被覆電極をするためには、カット 2 125 μ m 銀は同じ長さにワイヤーします。テーブルの端にワイヤーを接続し、それらをまとめてスレッドのテープの一部を使用します。その後、黒い板に電極を接続します。</li>
	<li>テフロンに小さな切開を行い、#5 マイクロ鉗子を使用する電極の先端をテフロン コーティングの 4-5 の mm 長さ。ヒントをも長さを達成して、メスの刃の鈍端のまわりの端を曲げ、フックを作成するメスで切った</li>
	<li>上向きフックと黒のプレートの端に少し拡張エンドと電極をテープします。10 s とラップ接着剤バブル電極フックから 1-2 mm のプラスチック板にシリコン接着剤を混ぜます。</li>
	<li>(図 1) を使用する前に約 5 分間乾燥すること。刺激への接続を許可するもう一方の端の長いセクションからテフロンをストリップします。 注:再先端のフックをやって、電極を何回も使用できます。</li>
</ol>2. 動物の準備
<ol><li>動物を麻酔した後、腹部、首、会陰の下半分を剃る。70% アルコール ポビドン ヨードが 3 回続くと動物をスクラブします。ラットを仰臥位で温水外科パッドに配置します。獣医眼軟膏を適用し、キャリアとして 2.5% イソフルランと 0.8 L/分の酸素と鼻の円錐形に麻酔を切り替えます。 注:イソフルラン麻酔の許容可能なレベルを達成するために酸素のレベルを調整します。</li>
</ol>3. 術前準備
<ol><li>手術顕微鏡下で全体の手術の手順: 3.15 X から 20 X までの倍率で十分です。手袋を使用し、手術中のクリーンな環境を維持します。ドレープにラットを配置します。</li>
</ol>4. 坐骨海綿体筋解離 ICP 測定用
<ol><li>メス、ストレートのはさみを使用し、デュモン #7: マイクロ鉗子 1 cm を垂直にする陰茎のベースのレベルから開始して、下方 (図 2 a) を拡張する正中皮膚切開 5 mm 外側。Q ティップを使用し、陰嚢 (図 2 b) に横方向の筋膜を慎重に分離します。筋膜を切り裂く後、リトラクターを添付し、坐骨結節 (図 2) を見つけるに綿の先端-スワップで触診。</li>
	<li>坐骨海綿体筋、可視化されるまでこのポイントの脂肪組織の内側を通して解剖 (図 3 a)。デュモン #7 曲線マイクロ鉗子のペアを使用し、縦筋を分離します。逃げずは、明るい白い構造 (図 3 b) として表示されます。マイクロ鉗子、マイクロはさみを使用して、適切にそのコース (図 3) を参照してくださいに逃げずを公開します。</li>
	<li>システム設定のキャリブレーション後陰茎 cru (図 4) に並列実行されるかどうかを確かめて、会陰部皮膚からチューブを挿入します。場所の行を残して、切開の生理食塩水で潤いを保ちます。</li>
</ol>5 刺激に対する CN 郭清
<ol><li>2 cm 下げると、正中線、メス、ストレートのはさみおよびマイクロ ピンセットのペアを使用して最初、皮膚を通して腹部切開を確認します。一致する白線に沿って筋膜切開を作成するアルバと基になる筋肉組織、膀胱と前立腺を公開します。</li>
	<li>リトラクターを良い露出を達成するために使用します。綿棒を使用して主要な骨盤神経節 (MPG) 明確に可視化を取得する脂肪組織から前立腺と CN、前立腺 (図 5) の背側面に実行しています。</li>
	<li>Mpg ファイルと CN の可視化後、慎重に斜めマイクロはさみ (図 6 a)、2-5 mm、mpg ファイルに遠位神経を覆う筋膜を切開します。#5 マイクロ鉗子の使用、無料の 4 mm 長い部分 (図 6 b) にそれの下に神経の両側にテイッシュ、神経 (図 6 c) の下で 9-0 縫合糸をスライドさせます。</li>
	<li>バイポーラ電極 (図 7 b) 神経の周りのフックの配置を容易にする縫合 (図 7 a) の助けを借りて、少し神経を昇格させます。アシスタント混在させるインシュリンの先端で 2 液シリコン接着剤神経 5 s. ドライ用の針し、フックと神経 (図 7 c, d) の周辺に接着剤を適用しなさい乾燥して接着剤を許可する約 1 分の電極を少し引いて、神経を高く保ちます。</li>
	<li>任意の引っ張るか、または電極のねじれを避けるために右側のリトラクターを除いて、リトラクターを削除します。切開を生理食塩水に浸漬と一般の生理食塩水ガーゼで露出した臓器を濡れています。</li>
</ol>6. 海綿体 ICP 測定用穿刺
<ol><li>リトラクターを使用して逃げずの可視化を復元します。Cru を歪めるだろう、坐骨海綿体筋に、リトラクターを接続ことを確認します。</li>
	<li>針を添付し、逃げずにそれを導入する前にヘパリン生理食塩水でチューブをフラッシュします。保持引き伸ばされ、片方の手でデュモン #7 曲線マイクロ鉗子を使用して逃げず (非利き手)、逃げず、筋肉の残りの部分の挿入点の遠位。ストレート微細鉗子その他の支配的な手で針を保持し、それを導入する海綿体 (図 8) のコースと平行します。</li>
	<li>5-8 mm 針を海綿体に押し込みます。チューブをフラッシュおよび cru を押して回線 (図 9) をテストします。漏れがないことを確認します。偶発的な線を引いて避けるためテープでテーブルにチューブを固定します。リトラクターを削除します。</li>
</ol>7. CN の刺激
<ol><li>録画プログラム (例えばスパイク 2) と海綿静脈洞部と平均動脈圧を連続記録を実行しています。</li>
	<li>CN 刺激の刺激 (例えばSD9 草楽器を参照テーブルの材料) の次のパラメーターを設定: 電流 1.5 mA、周波数 16 Hz、3 V で電圧とパルス幅の 1 分の刺激を最小限に抑えて 5 女史適用 50 s刺激間に残り。 注:最初の刺激は通常減少応答 (図 10) になります。</li>
</ol>

<ol><li>Eckhard, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEckhard%2C+C+%22Untersuchungen+%C3%BCber+die+Erektion+des+Hundes+In%3A+Beitr%C3%A4ge+zur+Anatomie+und+Physiologie%22">Untersuchungen über die Erektion des Hundes In: Beiträge zur Anatomie und Physiologie</a>. , Vol. Band III Giessen: Ferber 123-166 (1863).</li>
<li>Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W., Mostwin, J. L., Walsh, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+as+a+model+for+the+study+of+penile+erection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The rat as a model for the study of penile erection.</a> J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).</li>
<li>Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+characterization+of+a+bio-assay+of+erectile+function+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model.</a> J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).</li>
<li>Martinez-Pineiro, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+model+for+the+study+of+penile+erection%3A+pharmacologic+and+electrical-stimulation+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Urol%22%5BJournal%5D)">Rat model for the study of penile erection: pharmacologic and electrical-stimulation parameters.</a> Eur Urol. 25 (1), 62-70 (1994).</li>
<li>Hayashi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+FK1706+on+erectile+function+following+bilateral+cavernous+nerve+crush+injury+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The effect of FK1706 on erectile function following bilateral cavernous nerve crush injury in a rat model.</a> J Urol. 176 (2), 824-829 (2006).</li>
<li>Burnett, A. L., Becker, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunophilin+ligands+promote+penile+neurogenesis+and+erection+recovery+after+cavernous+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Immunophilin ligands promote penile neurogenesis and erection recovery after cavernous nerve injury.</a> J Urol. 171 (1), 495-500 (2004).</li>
<li>Yamashita, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+injury-related+erectile+dysfunction+following+nerve-sparing+radical+prostatectomy%3A+a+novel+experimental+dissection+model%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Urol%22%5BJournal%5D)">Nerve injury-related erectile dysfunction following nerve-sparing radical prostatectomy: a novel experimental dissection model.</a> Int J Urol. 16 (11), 905-911 (2009).</li>
<li>Burnett, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GGF2+is+neuroprotective+in+a+rat+model+of+cavernous+nerve+injury-induced+erectile+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">GGF2 is neuroprotective in a rat model of cavernous nerve injury-induced erectile dysfunction.</a> J Sex Med. 12 (4), 897-905 (2015).</li>
<li>Lin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoparticle+Improved+Stem+Cell+Therapy+for+Erectile+Dysfunction+in+a+Rat+Model+of+Cavernous+Nerve+Injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Nanoparticle Improved Stem Cell Therapy for Erectile Dysfunction in a Rat Model of Cavernous Nerve Injury.</a> J Urol. 195 (3), 788-795 (2016).</li>
<li>Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K., Choudhary, R., Bodakhe, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+erectile+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Animal models of erectile dysfunction.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 76, 43-54 (2015).</li>
<li>Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+as+an+animal+model+for+male+erectile+function+evaluation+in+sexual+medicine+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research.</a> J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).</li>
<li>Cellek, S., Bivalacqua, T. J., Burnett, A. L., Chitaley, K., Lin, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+pitfalls+in+some+of+the+experimental+studies+in+erectile+function+and+dysfunction%3A+a+consensus+article%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Common pitfalls in some of the experimental studies in erectile function and dysfunction: a consensus article.</a> J Sex Med. 9 (11), 2770-2784 (2012).</li>
<li>Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigative+models+in+erectile+dysfunction%3A+a+state-of-the-art+review+of+current+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models.</a> J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).</li>
<li>Mullerad, M., Donohue, J. F., Li, P. S., Scardino, P. T., Mulhall, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+sequelae+of+cavernous+nerve+injury+in+the+rat%3A+is+there+model+dependency%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Functional sequelae of cavernous nerve injury in the rat: is there model dependency.</a> J Sex Med. 3 (1), 77-83 (2006).</li>
<li>Albersen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injections+of+adipose+tissue-derived+stem+cells+and+stem+cell+lysate+improve+recovery+of+erectile+function+in+a+rat+model+of+cavernous+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Injections of adipose tissue-derived stem cells and stem cell lysate improve recovery of erectile function in a rat model of cavernous nerve injury.</a> J Sex Med. 7 (10), 3331-3340 (2010).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

本研究の第一の目標は、ICP 録音のため陰茎 cru カニュレーションの簡略化された手術手技と電気刺激の CN の分離を記述するためだった。紹介した手術を簡素化し、CN の刺激で ICP の上昇の再現可能な録音を提供する海綿体の解剖に変更。1 cm 縦切開で指導として明白な坐骨結節を使用して、陰茎のベースの外側を実現坐骨海綿体筋や精巣白膜の良好な露出。この手順より速く (15 分未満) 文学と原因最小限の組織混乱2,3,4に記載しました。
現在使われている CN 刺激法は、フック、リフティング、含まれています、応用10各電気前に CN の乾燥です。この手法では、それぞれの刺激のための同じである条件は限りません。また、神経のリフティング マイクロマニピュレーターの使用を必要とし、ストレッチと neuropraxia につながる神経の解放を繰り返します。...

実験動物の勃起機能のin vivo研究はエックハルト1の先駆的な実験的な作品で 1863 年創業。骨盤神経の電気刺激は、犬の増加の ICP を誘導するために使用されました。20 世紀を通して似たような実験的プロトコルは犬、猿、猫、ウサギなどの大型動物で使用されました。ラットにおける勃起機能評価最初 1989年2クインランらによって開発されました。メソッドは以来変更、いくつか他のグループ3の4によって更新されます。今日では、ラットは最も広く勃起不全の病理を勉強し、新たな治療法の選択肢を評価するための動物モデルを使用します。頸動脈, 測定 ICP、陰茎の cru のカニュレーションと CN の刺激の直線を使用して、ICP の増加を誘発する全身の血圧を記録、手続きの主な手順が含まれます。いくつかの研究は、モデルを改良した、再現性、問題が残る場合、変数の結果は、異なる研究室で報告されています。いくつかの落とし穴をまだ保持します。
前の記事5,6,7,8,9,10は、陰茎海綿体のカニュレーションの degloving の完全陰茎露出の使用をについて説明します。これは操作として最適なアプローチではなく、破壊的な郭清は、勃起機能に不可欠な構造に傷害を引き起こします。神経刺激が実験結果に影響を与えることができる複数の要因のために最適ではないが、CN の郭清は記述10、11にしました。CN 刺激の手法は、神経の周りに置き、バイポーラ フック電極上を引っ張ってくると刺激の前に神経を乾燥、周囲の組織から神経を持ち上げる含まれています。これは神経の損傷や電気の漏電、減少応答または代替経路など、骨盤底筋、膀胱の刺激による誘導で虚偽の増加の結果と胃腸の様々 な程度につながることができます。管12。これらすべての要因は、再現性を制限します。
私たちの研究の中に両方の深さと麻酔の種類である ICP に深遠な効果を観察しました。ペントバルビ タール ナトリウム、ケタミン ・ キシラジンまたはケタミン/ミダゾラム注射イソフルラン/酸素吸入、麻酔剤です。
ここで簡略化された手術法を説明、実験的プロトコルの標準化をサポートするためのデータを提供します。

<table><tbody><tr><td>アドソン鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11006-12</td><td></td></tr>デュ<tr><td>モン#7鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11271-30</td><td></td></tr>デュ<tr><td>モン#5鉗子</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11273-20ToughCut</td><td></td></tr><tr><td>メイヨーシザー</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>14110-15</td><td></td></tr><tr><td>ミニチュアバンナススプリングシザー</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>15006-09</td><td></td></tr><tr><td>超微細止血</td>ファイン<td>サイエンスツール</td><td>13020-12</td><td></td></tr><tr><td>Crile止血</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>13004-14</td><td></td></tr><tr><td>Kwik-SIL接着剤</td><td>ワールド精密機器</td><td>KWIK-SIL</td><td></td></tr><tr><td>テフロンコーティング銀線0.125mm</td><td>ワールド精密機器</td><td>AGT0510</td><td></td></tr><tr><td>弾性ワイヤーリトラクター</td><td>カスタムメイド</td><td></td><td></td></tr><tr><td>メスの刃</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>10023-00</td><td></td></tr><tr><td>PE-50 チューブ</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>64-0753</td><td></td></tr><tr><td>23 G ニードル</td><td>クルウス</td><td>121272</td><td></td></tr><tr><td>SD-9 スクエアパルス スティミュレーター</td><td>ソマトコ</td><td>1077/183</td><td></td></tr><tr><td>血圧トランスデューサーとケーブル</td><td>ワールド プレシジョン インスツルメンツ</td><td>BLPR2</td><td></td></tr><tr><td>ラウコトゥップ コットンチップ アプリケーター</td><td>Lohmann-Raucher</td><td>11966</td><td></td></tr><tr><td>Pro-ophta Ocular Sticks</td><td>Lohmann-Raucher</td><td>16515</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0,9 % 100 mL</td><td>地元の薬局</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td>地元の薬局</td><td></td><td></td></tr><tr><td>25 mL シリンジ</td><td>オーデンセ大学病院</td><td></td><td></td></tr><tr><td>獣医眼軟膏 - Viscotears</td><td>地元の薬局</td><td></td><td></td></tr><tr><td>銀線&nbsp;</td><td>Science Products GmbH、ハイデルベルク、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>シリコン接着剤&nbsp;</td><td>Kwik-Sil、World Precision Instruments、サラソタ、フロリダ州、米国</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

海綿神経刺激とラットの海綿静脈洞部の圧力の記録

Cavernous Nerve Stimulation and Recording of Intracavernous Pressure in a Rat

海綿神経 (CN) の刺激および海綿静脈洞部の圧力 (ICP) の測定は、テストおよび評価の勃起不全の治療に広範囲に使用されています。ただし、使用される方法によって異なります所、落とし穴がまだ存在します。本研究の目的は、信頼性と再現性のあるモデルを提供する手技を記述するためだった。坐骨結節に挿入、その時点坐骨海綿体筋を公開すると、陰茎の cru は、最小限の郭清と勃起機能に関与する構造への損傷 cannulated でした。持ち上げると、乾燥を必要とせず、CN の繰り返しの刺激電極神経複合体を分離する 125 μ m バイポーラ銀電極と生体適合性のシリコン接着剤を使用して達成されました。このメソッドはストレッチと神経を乾燥を減らすことによって neuropraxia を防ぎ電気的なリークを否定し、代替経路の刺激を防止する神経の完全な分離を提供します。

使用推奨される刺激の設定でこのプロトコルのイソフルラン 2.0% 酸素吸入麻酔下で 0.8 L/分必要があります結果が図 11および図12に示すように、背中合わせに複数があります。75 〜 80 ミリメートル Hg。図 13間刺激応答を示しています同じ安定した応答に 20 分刺激に 73 〜 77 ミリメートル水銀テスト行 ICP 測定で安定してチューブをフラッシングと cru (図 9) で軽くたたくことによって。ベースラインに戻って急速な応答は、うまく配置されたラインの特徴です。逃げずの整合性が破損している (図 14) を刺激するとテストが低いピーク圧力と、フラッシュと、タッピング後ベースラインに戻って遅い応答および減少応答で発生します。また、ヘパリン生理食塩水フ...

本研究は、手術手順の簡略化と神経電極の絶縁の海綿状の神経刺激を実行する方法について説明します。 海綿静脈洞部圧力測定とシリコーン接着剤を使用して複雑な。

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for ...

この方法の全体的な目標は、海綿体内圧力記録のための陰茎骨管カニューレ挿入の簡略化された外科的技術と、電気刺激のための海綿状神経の解剖と分離を説明することです。この実験プロトコルは、勃起不全の病態生理学を研究し、新しい治療法をテストするために使用できます。この手法の主な利点は、再現性があり、高速で、信頼性が高いことです。このチュートリアルで説明されている主要な落とし穴に対処し、排除しました。この方法は勃起不全への洞察を提供することができますが、生体適合性シリコーン接着剤による神経電極複合体の分離は、末梢神経の電気刺激に適用でき、他の臓器の生理学的検査を可能にします。この手順を開始するには、動物に麻酔をかけた後、腹部と会陰の下半分を剃ります。70%アルコールとポビドンヨードで動物を交互に3回こすります。その後、ラットを加熱した手術用パッドの上に仰臥位に置きます。目に軟膏を塗り、ラットを2.5%イソフルランを含む鼻円錐を介して麻酔をかけます。.次に、手術用顕微鏡でドレープを使用して、すべての外科的処置を行います。続いて、陰茎の基部の高さから始めて下方に伸びる正中線の横方向に5ミリリットルの1センチメートルの皮膚切開を行います。Qチップを使用して、陰嚢の外側の筋膜を慎重に分離します。筋膜を解剖した後、一対の開創器を使用して皮膚の端と睾丸を引き戻し、綿の先端の綿棒による触診を使用して坐骨結節を特定します。坐骨海綿体筋が見えるまで、脂肪組織を内側に解剖します。一対の鉗子を使用して、筋肉を縦方向に分離し、アルブギニア内膜を露出させます。チュニカ・アルブギネアは明るい白い構造として現れます。システムの設定をキャリブレーションした後、会陰部の皮膚にチューブを挿入し、陰茎の襟骨と平行に走っていることを確認します。次に、ラインを所定の位置に残し、切開部を生理食塩水で湿らせます。この手順では、皮膚を通して腹部の正中線を2センチメートル下まで切開します。膀胱と前立腺を露出させるために、linea albaに沿って筋膜を通して一致する切開を作成します。リトラクターを使用して、良好な露出を達成します。次に、綿の先端の綿棒を使用して、前立腺を脂肪組織から分離します。リトラクターを調整し、前立腺の背側側面で実行中のMPGとCNが明確に視覚化されるまで解剖を完了します。MPGとCNの位置を特定したら、MPGから2〜5ミリメートル遠位の神経を覆う筋膜を慎重に切開します。次に、神経の両側とその下に組織を広げて、4ミリメートルの長さの部分を解放し、次に縫合糸を神経の下に滑り込ませます。縫合糸の助けを借りて神経をわずかに持ち上げ、バイポーラ電極のフックを神経の周りに配置しやすくします。アシスタントに、2液型シリコーン接着剤をインスリン針の先端と5秒間混合させます。神経を乾かし、フックと神経の周りの領域

cavernous-nerve-stimulation-recording-intracavernous-pressure

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

頭蓋骨内の圧力を記録するための新たな手法が記載されています。低侵襲の方法では、正確に重要な脳外傷を引き起こすことなく、麻酔ラットの頭蓋内圧（ICP）を測定する光ファイバ圧力検出システムを使用しています。技術は、実験モデルの広い範囲で使用することができます。...

光ファイバ圧力トランスデューサを使用したラットの硬膜外頭蓋内圧測定

出典: Sanchez, C. A., et al.ラットへの慢性移植のための末梢神経刺激電極の作製J. Vis.

ラットにおける慢性移植末梢神経カフ電極による迷走神経刺激

このビデオでは、尺骨神経に電気刺激を加え、最適な信号を得るために電極を調整し、神経機能を評価するために刺激を増やすことにより、ラットの複合筋活動電位(CMAP)を記録する手順を示しています。この方法により、神経疾患における末梢神経機能のin...

ラットにおける化合物筋活動電位のin vivo測定

このビデオは、海綿体内の血圧変化を研究するために、麻酔をかけたラットの海綿体神経の分離と刺激を示しています。...

海綿体内圧を測定するためのラットの海綿状神経刺激の実施

軸索興奮性のテクニックは、病態と不可逆的な変性イベントの前に生体の変化を調べるための強力なツールを提供します。この原稿は、麻酔下ラットの尺骨神経のこれらのテクニックの使用方法を示します。...

生体内で軸索興奮性のテストでラットの尺骨神経の電気生理学的測定

Intracavernosal 圧記録 (ICP) は、実験動物の勃起機能を評価する重要な方法です。ここでは、ICP の記録手順の crura ペニスを catheterizing とラットの海綿状の神経を電気刺激により詳細なプロトコルを示す.

齧歯動物で勃起機能評価 Intracavernosal 圧記録

小さなげっ歯類で使用するために慢性的に埋め込まれた末梢神経カフ電極を構築するための既存のアプローチは、多くの場合、特殊な機器および/または高度な訓練を受けた人員を必要とします。このプロトコルでは、慢性的に埋め込まれたカフ電極を作製するためのシンプルで低コストのアプローチを示し、ラットにおける迷走神経刺激(VNS)の有効性を実証する。...

ラットの慢性移植のための末梢神経刺激電極の調製

このプロトコルは、同時のトランス脊髄直流刺激を用いたラット腰椎モトニューロンの生体内細胞内記録について説明する。この方法により、膜の特性を測定し、脊髄のアノーダルまたは陰極分極化の前後にモトニューロンのリズミカルな発火を記録することができます。...

生体内でのトランス脊髄直流刺激時の型同定されたラット脊髄モネニューロンの細胞内記録

本プロトコルは、ラットの腹部迷走神経に電極アレイを埋め込むための外科的技術と、埋め込まれたデバイスを使用した慢性電気生理学的検査および刺激の方法を説明する。...

覚醒ラットにおける腹部迷走神経刺激および記録研究のための移植手術

我々は、興奮毒性媒介性脳損傷に関与する分子メカニズムを調べるために使用できる脳切片モデルを開発した。この技術は、生存可能な成熟した脳組織を生成し、部分的に無傷の神経回路、細胞間相互作用、およびシナプス後区画を維持しながら、実験に必要な動物の数を減少させる。...

脳Microslicesの興奮毒性刺激<em&gt;インビトロ</em&gt;脳卒中のモデル

学ぶ海綿神経刺激と海綿静脈洞部圧力記録の簡易手術法。シリコン接着剤を用いた神経電極複合体の分離技術により、ラットを用いた勃起機能障害の病態生理学研究と新規治療法の評価が可能となる再現性の高い方法です。

海綿神経刺激とラットの海綿静脈洞部の圧力の記録

さらに動画を探す