Name: トランス内部細胞のキメリズム率が高いため、胚性幹細胞の大量注入 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 53 s
Description: 学ぶ、胚性幹細胞を用いたキメラマウス作製の効率化手法。胚の向きを変えるだけで、追加機器不要でキメリズム率を向上させ、遺伝学研究のタイムライン短縮に貢献します。

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この研究は、NIH、国立環境衛生研究所の学内研究プログラムによって [一部] 支えられました。統計分析のために Shyamal Peddada 感謝します。私たちはまた彼の継続的なサポートやアドバイスをこの原稿とフランコ DeMayo のレビュー ハンフリー八尾、ゲイリー鳥と結城荒尾を感謝したいと思います。

すべての操作はマウスを NIEHS ノック中核施設の通常の操作の一部として行われました。すべてのマウスが、12:12 で保たれた h: 明暗サイクル NIH 31 と水の食事をしたとアドリブ。動物のケアおよび使用委員会の国立環境衛生研究所に従ってすべての実験を行った。
1. 動物の準備
<ol><li>ドナー マウス、B6 を繁殖 (Cg)-Tyr < c 2 j > B6 に当然のことながら年齢の 8-10 週で/J 雌マウス (Cg)-Tyr < c 2 j >/J 生後 8、26 週齢の雄マウス。視覚的に次の朝 (E0.5) のプラグを確認します。</li>
	<li>受信者のマウス、6 と 9 週齢の雌マウス自然精管スイスウェブ スター マウスを飼育しているスイスのウェブスターを繁殖させます。視覚的に次の朝 (E0.5) のプラグを確認します。</li>
</ol>2 ES 細胞作製
<ol><li>129 硼素 AB2.2 ES 細胞で 15 に DMEM で細胞の培養 %fbs、1% のグルタミン、1% ペン/連鎖球菌および 0.1% の β-メルカプトエタノール。ES 細胞供給の指示に、その推奨されるプロトコルを使用して他のすべての ES 細胞を培養します。</li>
</ol>3. 胚のコレクション
<ol><li>
動物解剖
	<ol>
<li>60 mm の料理をいくつか、5 マウス プラス 3 余分な 10 mL ブラストメディア コレクション (BCM) あたりおよそ 1 (10 %fbs の DMEM)、1 つ 4 ウェルあたり 0.5 mL BCM も皿と。37 ° c、5% CO2平衡します。</li>
		<li>B6 を安楽死させる (Cg)-Tyr < c 2 j > 10% の流量と CO2窒息を使用して E3.5 で/J 雌マウス。</li>
		<li>安楽死させる後、仰臥位の位置にマウスを配置、70% エタノールで十分に腹部を濡れています。</li>
		<li>できるだけ大きく開口部を作り、腹部の中間点で最初だけ、皮膚切開を行います。次にできるだけ大きく切開を再度作る腹部壁を開きます。 削減または排除毛皮汚染注意: 2 つの手順でこれを行うことができます。</li>
		<li>鈍い鉗子が付いて卵巣の脂肪パッドを押し、卵巣から始まる卵巣、卵管、子宮、脂肪組織を最小限に保つために余分な世話を慎重に取り外します。1 つの単一ユニットとして、または次の手順の変更なしで、個々 の角と子宮を削除します。</li>
		<li>除去した後、コレクションのブラスト媒体を含む 60 mm ディッシュに子宮を配置します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
胚が除去
	<ol>
<li>BCM でいっぱい 10 mL 注射器を準備し、25 G 針と合います。</li>
		<li>一度に 1 つの子宮 BCM の持株皿からそれらを削除、余分な血液を削除し、低倍率を解剖顕微鏡の下で 60 mm ディッシュに配置組織にそれらのしみ。</li>
		<li>ゆっくりと慎重に、鉗子を解離性大 (近くに輸卵管) 遠位端のすぐ下の子宮を保持している間並列可能な平面としての子宮の中心に針を挿入します。鉗子の先端を指し示す針を挿入します。</li>
		<li>鉗子針に子宮を保持するためにいくつかの圧力を適用し、BCM の子宮の角を約 1 mL を追放します。 注: 注意が必要この段階で注射器にあまりにも多くの圧力により、メディアの手に負えないストリームを引き起こすのでよく料理を残してします。</li>
		<li>60 mm ディッシュあたり最大 5 全体子宮子宮をフラッシュした後のコレクションまでインキュベーターに料理を配置します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
胚のコレクション
	<ol>
<li>手描きガラス ピペットと口のピペットなどの器具を使って、25 X 35 X と設定、切り裂くスコープ下で胚盤胞を収集します。(図 1)。 注: 口ピペット装置で構成されフレキシブル チューブの 30-40 cm、内径 5 mm 未満を挿入、1 000 μ L ピペット チップ、最初のポイント 1 つの端に、あるガラス ピペットを貼る。シリンジ フィルターを添付 1 cc シリンジ バレルと、口の部分として機能するないのプランジャーのもう一方の端に追加します。</li>
		<li>インキュベーターから料理を削除し、格子パターンを用いた胚の料理のすべての部分を確認します。胚を選んだが個別にし、セカンダリの皿に BCM のドロップを配置。</li>
		<li>すべての料理から収集した後新鮮な BCM のドロップで胚をもう一度洗うし、注射を待つ 4 よく皿に入れます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 胚の注入
<ol><li>注射針の確認に基づいて個別に ES 細胞をピックアップします。<ol>
<li>5-7 mL 注入メディアを追加することによって注入皿を準備 (DMEM、10 %fbs と 20 mM HEPES) ガラス下部注入皿に。注射は、部屋の温度で行われます。</li>
		<li>空気またはオイル マイクロインジェクターを使用して、ES 細胞を描画する、注射針に真空を適用します。セル間可能な限り小さなスペースとして保つために世話をします。ここでは、または注入の手順では、ES 細胞をカウントします。</li>
		<li>細胞、滑らかな表面と液胞など明らかな欠陥なしの一般集団と比較してサイズの小さい媒体は、ES 細胞を選択します。 注: ES 細胞集団は形態学的品質で大きく変化して使用される標準は、それらを調整する必要があります。</li>
	</ol>
</li>
	<li>約 15 の ES 細胞 (図 1) で胚を注入します。<ol>
<li>ホールディング ピペットを添付 2 番目の空気マイクロインジェクターにチップし、ホルダーの口近く胚の位置します。ホルダーに胚をセキュリティで保護するために真空を適用します。</li>
		<li>Z 軸の上下ホールディング ピペットを移動して、胚は正にこの帯で細かいピント合わせに続いて、スライドして調整します。次に、注射針の Z 軸を先端近くの ES 細胞は、フォーカスに調整します。</li>
		<li>上部または下部、ICM の目的の位置に回転で注射針から優しく押して今胚を調整します。</li>
		<li>帯と ICM または企業が制御のプッシュを使用して、絨毛を注射針を挿入します。胞胚腔が崩壊しないようにするため注射針のガラスシリンジにわずかな圧力を適用されます。</li>
		<li>針、胞胚腔に侵入して、一度は、ES 細胞を胚の胞胚腔に転送するマイクロインジェクターから圧力を適用します。針の傾斜面として簡単に一時停止は、細胞を維持しながら、正常に戻ります胚で圧力を許可する胚を終了を開始します。 注: 参照グループの ES 細胞を通常投与、次の伝統的な ES 細胞注入プロトコル9ICM に触れないように世話します。ES 細胞も、直接を通じて、ICM (TICM) (図 2、補足映画) 針を進めて、ICM を注入しました。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. eEmbryos の転送
<ol><li>製造の手順ごとの非外科的胚転送デバイスを使用して E2.5 をスイスウェブ スター マウスの胚を転送します。麻酔や手術後の特別なケアは、この非外科的処置は必要ありません。家のマウス胚と配信とその後離乳後個別に。</li>
</ol>

<ol><li>Cong, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+Genome+Engineering+Using+CRISPR%2FCas+Systems%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Multiplex Genome Engineering Using CRISPR/Cas Systems.</a> Science. 339 (6), 819-823 (2013).</li>
<li>Mali, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-guided+human+genome+engineering+via+Cas9%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RNA-guided human genome engineering via Cas9.</a> Science. 339 (6), 823-826 (2013).</li>
<li>Friedel, R., Seisenberger, C., Kaloff, C., Wurst, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EUCOMM+the+European+Conditional+Mouse+Mutagenesis+Program%5BTitle%5D)+AND+%22Brief+Funct+Genomic+Proteomic%22%5BJournal%5D)">EUCOMM the European Conditional Mouse Mutagenesis Program.</a> Brief Funct Genomic Proteomic. 6 (3), 180-185 (2007).</li>
<li>Austin, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+knockout+mouse+project%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">The knockout mouse project.</a> Nat Genet. 36 (9), 921-924 (2004).</li>
<li>Coleman, J. L., Brennan, K., Ngo, T., Balaji, P., Graham, R. M., Smith, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Knockout+and+Reporter+Mouse+Line+Generation+and+Breeding+Colony+Establishment+Using+EUCOMM+Conditional-Ready+Embryonic+Stem+Cells%3A+A+Case+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Endocrinol+%28Lausanne%29%22%5BJournal%5D)">Rapid Knockout and Reporter Mouse Line Generation and Breeding Colony Establishment Using EUCOMM Conditional-Ready Embryonic Stem Cells: A Case Study.</a> Front Endocrinol (Lausanne). 30, 105(2015).</li>
<li>Nagy, A., Rossant, J., Nagy, R., Abramow-Newerly, W., Roder, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+completely+cell+culture-derived+mice+from+early-passage+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Derivation of completely cell culture-derived mice from early-passage embryonic stem cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 90 (18), 8424-8428 (1993).</li>
<li>Eggan, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Male+and+female+mice+derived+from+the+same+embryonic+stem+cell+clone+by+tetraploid+embryo+complementation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Male and female mice derived from the same embryonic stem cell clone by tetraploid embryo complementation.</a> Nat Biotechnol. 20 (5), 455-459 (2002).</li>
<li>Eggan, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hybrid+vigor%2C+fetal+overgrowth%2C+and+viability+of+mice+derived+by+nuclear+cloning+and+tetraploid+embryo+complementation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Hybrid vigor, fetal overgrowth, and viability of mice derived by nuclear cloning and tetraploid embryo complementation.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 98 (11), 6209-6214 (2001).</li>
<li>Eakin, G. S., Hadjantonakis, A. K., Papaioannou, V. E., Behringer, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+potential+and+behavior+of+tetraploid+cells+in+the+mouse+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Developmental potential and behavior of tetraploid cells in the mouse embryo.</a> Dev Biol. 288 (1), 150-159 (2005).</li>
<li>Huang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+production+of+mice+from+embryonic+stem+cells+injected+into+four-+or+eight-cell+embryos+by+piezo+micromanipulation%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Efficient production of mice from embryonic stem cells injected into four- or eight-cell embryos by piezo micromanipulation.</a> Stem Cells. 26 (7), 1883-1890 (2008).</li>
<li>Poueymirou, W. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((F0+generation+mice+fully+derived+from+gene-targeted+embryonic+stem+cells+allowing+immediate+phenotypic+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">F0 generation mice fully derived from gene-targeted embryonic stem cells allowing immediate phenotypic analyses.</a> Nat Biotechnol. 25 (1), 91-99 (2007).</li>
<li>Behringer, R., Gertsenstein, M., Nagy, K. V., Nagy, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBehringer%2C+R+%22Manipulating+the+Mouse+embryo%22">Manipulating the Mouse embryo</a>. , 4th edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press. NY. (2014).</li>
<li>Pease, S., Saunders, T. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPease%2C+S+%22Advanced+Protocols+for+Animal+Transgenesis%22">Advanced Protocols for Animal Transgenesis</a>. , Springer-Verlag. Berlin Heidelberg. (2011).</li>
<li>Young, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+mechanical+stimulation+on+the+reprogramming+of+somatic+cells+into+human-induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res+Ther%22%5BJournal%5D)">Effects of mechanical stimulation on the reprogramming of somatic cells into human-induced pluripotent stem cells.</a> Stem Cell Res Ther. 8 (1), 139(2017).</li>
</ol>

著者は開示する競合する興味を持ってないです。

ICM の妨害につながることを死亡、実際には、現在の胚盤胞マイクロインジェクション プロトコルはまだこの12,13の警告それが長く考えられてしまった。我々 がここで示されているものは、マイクロインジェクション ICM を通して胎児に悪影響はないとキメラの収量を増加させます。
この効果の正確なメカニズムは特定されていません。ただし、機械的破壊、ICM および付随のウズラは ES 細胞統合次のマイクロインジェクション新しく形成された ICM の発生率を増やす必要があります。Ips の分野の最近の研究は、機械的刺激により人間 iPSC14をプログラムし直すことを示しています。ICM 多能性の状態に、区別するために始まった可能性がある潜在的な胚盤胞ドナーの頭 start' を削除のセルを返すの効果を持つことが機械操作にマウス胚の ICM で同様の効果がある場合派生セル萌芽期ティッシュの形成に。最後に、ES 細胞を遺伝子、mic...

約 25 年間、遺伝子ターゲットのマウスの作成は生殖系列キメラを送信の世代のため、胚盤胞 ES 細胞インジェクション段階でしばしばボトルネックによって妨げ、ゆっくりとしたプロセスをされています。CRISPR/Cas91,2 ES 細胞と高スループット ES のターゲットを含む、最近の進歩は携帯サイト制作のような生成コンソーシアム、遺伝子組み換え ES 細胞の生成/可用性を改善しています。ただし、生殖巣キメラの生成は、これらの ES 細胞3,4から遺伝子改変マウスの作成にボトルネック残ります。高スループット ES 細胞世代プロジェクトは、生殖系列キメラの作成に成功のために重大である ES 細胞質の高い変動に悩まされています。さらに、一般利用の ES 細胞株の高い異数性と生殖系列キメラ主務5の困難な生産の知られています。
いずれか高いキメラとマウスを作成するための多くの方法が開発されている、または完全に ES 細胞マウス6,7,8,9,10。これらの各システムは、独自のメリットが、また自分の欠点があります。非効率的、四倍体キメラ、マウス由来 100 %es 細胞の生成間の世代でありザイモグラム行5,6に一般に限られました。桑実胚に注入する新しい方法は、100% に近づいている高パーセントキメラをもたらすが、一般的に重要な追加機器 (レーザーまたは piezos) とトレーニング10,11が必要です。研究所は、これらの技術が既に場所で、この新しい手法が必要場合がかもしれません。
本研究の目的は、後続のマウスのコロニーを確立する突然変異体の対立遺伝子の生殖細胞感染の機会が増え、キメラ世代の率を高めるための一般的な技法と容易に利用可能な機器を使用する方法を見つけることだった。

<table><tbody><tr><td>ES細胞注射針</td><td>Humagen</td><td>MSC-20-0</td><td></td></tr><tr><td>NSETデバイス</td><td>Paratechs</td><td>60010</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco (life technologies)</td><td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco (life technologies)</td><td>10439-024</td><td>ロットは、ES細胞の適合性について個別にテストする必要があります。</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>&#946;-メルカプトエタノール</td><td>Sigma</td><td>M7522</td><td></td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>ライカ</td><td>マイクロマニピュレーター</td><td></td></tr><tr><td>マイクロインジェクター</td><td>Eppendorf AG</td><td>Cell Tram Air 5176</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>DM IRB</td><td></td></tr><tr><td>4 ウェルディッシュ</td><td>Thermo Scientific</td><td>176740</td><td></td></tr><tr><td>60 mm皿</td><td>Sarstedt</td><td>83.3901</td><td></td></tr><tr><td>B6(Cg)-Tyr<c-2J>/J</td><td>Jackson Labs, Bar Harbor, Maine, USA</td><td>000058</td><td></td></tr><tr><td>Swiss Webster mice</td><td>Taconic, USA</td><td>Tac:SW</td><td></td></tr><tr><td>Injection Dish</td><td>MatTek Corp.</td><td>P50G-0-30-F</td><td></td></tr></tbody></table>

トランス内部細胞のキメリズム率が高いため、胚性幹細胞の大量注入

Trans-inner Cell Mass Injection of Embryonic Stem Cells Leads to Higher Chimerism Rates

ES 細胞の方法論による遺伝子改変マウスの作成の効率を上げるために、現在の胚盤胞の注入のプロトコルへの適応を提案する.単純な回転胚とトランス内部細胞塊 (TICM) を注射が追加の機器の 50% 31% からキメラマウスの割合を増加またはさらに特殊な訓練を行った。26 の異なるクローンを近交系し、9 ヶ月の期間にわたって 35 合計クローンを注入しました。伝統的な注入技術と TICM 間妊娠率や胚の回収率に有意差はありませんでした。したがって、注入プロセスと胚盤胞の単純なポジショニングと ICM を注入することですべての主要な変更、なし胞胚腔腔に ES 細胞を解放可能性があります向上できますキメラの生産、その後量生殖。

ランダム効果として細胞株を扱う、混合効果線形モデルのソフトウェア (例えば SAS (バージョン 9.2)) のデータを分析していました。各解析転送胚とセルの行の数を制御します。生存仔数の制御も 2 番目の分析。
この研究のため各 ES 細胞とクローンは従来の両方が注入されたと TICM テクニック、交互にそれぞれの胚の後 2 つの方法。注入後、胚が皿の上分離し、一般的に受容雌あたり 12 〜 15 の胚間の移動によりグループ化されます。はっきりと見える胞胚腔はありませんでした胚は透明帯に欠けていたまたは microinjected ES 細胞、胞胚腔を入力していない場合は、この実験から排除されました。
検討した最初のデータは妊娠率でした。図 3のように、妊娠率は対照群から...

ここで新しい機器を使用せずキメラを増産するためのプロトコルを提案する.胚の注入のための簡単な方向の変更は生産、胚の数を増やすし、潜在生殖するタイムラインを削減できます。

In an effort to increase efficiency in the creation of genetically modified mice via ES Cell methodologies, we present an adaptation to the current ...

この修正された手順の全体的な目標は、追加コストや長いトレーニング期間を負担することなく、キメラの生産を増やすことです。この方法は、特にES細胞が最適でない場合に、ラボがキメラ生産をより効率的に行うのに役立ちます。この手法の主な利点は、追加の機器や専門的なトレーニングを必要としないことです。今日、その手順を実演するのはトーマス・ハグラーです。彼は生物学者であり、コアラボで働く大学院生です。胚を採取するには、子宮を実験組織で拭き取って余分な血液を取り除き、臓器を新しい60ミリメートル皿に低倍率解剖顕微鏡で入れます。解剖鉗子を使用して子宮を卵管の近くに注意深く優しく保持し、10ミリリットルのブラスト収集培地が入った10ミリリットルの注射器に取り付けられた25ゲージの針を、鉗子の先端のすぐ向こうの子宮の中心にできるだけ平行な平面で挿入します。鉗子に圧力をかけて針を子宮内に固定し、子宮角を通して約1ミリリットルの培地を静かに洗い流します。すべての胚盤胞が排出されたら、マウスピペット装置を組み立て、マウスピペットを使用して、個々の胚を2番目の60ミリメートル皿内のブラストコレクション培地の1滴に移します。次に、各胚を2滴目のブラストコレクション培地で洗浄し、胚を注入するまで4ウェル皿に移します。まず、マイクロインジェクターを使用して、注射針に真空を塗布します。注射針と胚ホルダーピペットを取り付けた注射顕微鏡の下にES細胞の皿を置きます。注射を成功させるには、顕微鏡を適切にセットアップするために時間をかけることが不可欠です。これには、針の適切な量のメディアとz軸の正しい位置合わせが含まれます。マイクロインジェクターを使用して、注射針に真空を塗布します。細胞間のスペースをできるだけ少なくして、胚の皿から明らかな欠陥のない滑らかな表面の小から中型の胚細胞を引き込みます。少なくとも15個の細胞を収集した後、ホルダーの開口部の近くに胚を配置します。真空を適用して胚をホルダーに固定し、保持ピペットを上下に動かして、胚がスライドにちょうど触れるまでz軸を調整します。透明眼球のゾーンに微細に焦点を合わせ、針の先端近くの胚細胞に焦点が合うまで注射針のz軸を調整します。必要に応じて、注射針を使用して、内部細胞塊が注射に適した位置になるまで胚盤胞を穏やかに転がします。しっかりと制御されたプッシュを使用して、注射針を透明眼のゾーンから内部細胞塊に挿入し、注射針のマイクロインジェクターにわずかな圧力を加えて、胚盤胞が崩壊するのを防ぎます。針が胚盤線を貫通したら、マイクロインジェクターに圧力をかけてすべての胚性幹細胞を胚に移し、針の斜角が胚から出始めると少し一時停止して、細胞を保持したまま胚の圧力を正常に戻します。すべての胚盤胞が注入されたら、非外科的胚移植装置を使用して、製造元の指示に従って胚を胚期2.5スイスウェブスターマウスに送達し、各移植後、送達およびその後の離乳を通じてマウスを個別に収容します。この代表的な実験では、トランス細胞内細胞塊を注入した群と対照群の間で妊娠率は変わらず、各群から同数の子犬が離乳まで生き残った。特に、離乳時のマウスの数は変化しなかったが、トランスインナーセル質量注入群の子犬の数は、対照注射群と比較して毛色のキメラ現象を示した。この技術の最も優れた点は、キメラでのより大きな生産を促進するために、胚の向きを単純に変更するだけでよいことです。顕微鏡の適切なセットアップが不可欠です。顕微鏡とマニピュレーターが適切に設置され、適切にメンテナンスされていないと、注入プロセスは機能しません。胚注入に不慣れな方は、繰り返し学ぶしかないでしょう。初心者にとって、胚の取り扱いは手順の最も難しい部分になる傾向があります。胚を1つの皿から別の皿に効率的に移動できることは、実験の最も重要な部分です。このビデオを見た後、標準の注入技術を簡単に変更するだけで、キメラ生産の効率を高める方法についてよく理解できるはずです。

trans-inner-cell-mass-injection-embryonic-stem-cells-leads-to-higher

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

ハード絨毛膜とソフト胚による、メダカ胚の操作は、ゼブラフィッシュにおけるよりも複雑です。このビデオでは、キメラの生産のためのイメージングと細胞移植のためにアガロースに取付け、dechorionation含むメダカ胚を操作する方法のためのステップバイステップの手順を示しています。これらの手順は、脊椎動物のゲノム機能の遺伝的解剖のためにそれらの補完的な機能をフルに活用するために実験室でのメダカとゼブラフィッシュを使用するために不可欠です。...

キメラの生成のためのメダカ胚および細胞移植のDechorionation

ファインチップを使用すると、我々はニワトリの体節や神経管のサブドメインにプラスミドDNAを注入するマイクロピペット。プラスミドの濃度は、単一のトランスフェクションされた細胞を生成するために調整されます。私たちは、その後、細胞はクローン集団に発展することができます。...

鶏胚における単一細胞のトランスフェクション

私たちは、体細胞核移植（SCNT）を介してエピジェネティックなリプログラミングが事前定義されたT細胞受容体（TCR）特異性を有するマウスモデルを生成するためのツールと​​して使用できることをここに示しています。これらtransnuclearマウスは、内因性プロモーターの制御下での内因性遺伝子座から対応するTCRを発現する。...

に対する事前定義されたT細胞受容体の特異性をもつTransnuclearマウストキソプラズマ SCNTを介して取得

彼らは多能性のための標準的なテストを通過した時、誘導多能性幹細胞（IPSC）ラインを生成することはあっても発生能の異なる行が生成されます。ここでは、所有している完全な多能性としてIPSC行を定義性IPSC、から完全に由来するマウスを作製するためのプロトコルを記述する...

人工多能性幹細胞に由来するマウスの作製

私たちは、初期のマウス胚の定義された部位に培養細胞を移植し、そのin...

早期着床後のマウス胚への細胞やDNAの正確​​ローカライズ転送する方法

ここでは、Tfap2c、Gata3、Eomes、Ets2の10日間の過剰発現により、マウス胚性線維芽細胞を完全に機能的で安定した栄養膜幹細胞に直接変換するためのプロトコルを紹介します。...

栄養膜幹細胞へのマウス胚性線維芽細胞の直接変換するためのプロトコル

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マウス モデルにおける静脈内投与と胎嚢内子宮内移植

この方法では胚の心臓組織は外科的 microdissected、解離、蛍光標識、そして宿主胚性組織に注入です。これは個人または組織レベル発達組織下異所性血行力学的条件、および/またはパラクリン/juxtacrine...

鳥胚胚心筋細胞の生体内注入にマイクロインジェクション ベース システム

この論文の全体的な目標は、ニワトリ胚への外因性物質の卵管細胞内注入 において...

オヴォで ニワトリ胚における血管内注射

ここでは、胚性幹細胞を用いた遺伝子改変マウスモデル、特に大型DNAノックイン(KI)の開発のためのプロトコルを紹介します。このプロトコルは、CRISPR/Cas9ゲノム編集を使用して調整されているため、従来の相同組換えを介した直鎖状DNAターゲティング法と比較して、KI効率が大幅に向上します。...

CRISPR/Cas9を介した胚性幹細胞における高効率遺伝子ターゲティングによる遺伝子操作マウスモデルの開発

学ぶ、胚性幹細胞を用いたキメラマウス作製の効率化手法。胚の向きを変えるだけで、追加機器不要でキメリズム率を向上させ、遺伝学研究のタイムライン短縮に貢献します。

トランス内部細胞のキメリズム率が高いため、胚性幹細胞の大量注入

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