2018年6月29日
カンキツグリーニングは柑橘類の作物に影響を与える世界的に特に破壊的な病気です。ここで紹介は単純なメソッドを使用して PCR およびカンキツ葉組織のゲノム DNA 抽出カンキツグリーニング病原体、カンキツグリーニング病病原細菌属の正確かつ正確な同定のため
この手順の全体的な目標は、柑橘類の葉組織中の柑橘類の緑化病原体Candidatus liberibacter spp.を正確に検出することです。この方法により、柑橘類の農家や研究者は、柑橘類の緑化の原因となる病原体の存在を迅速かつ正確に特定できます。
手順のデモンストレーションは、私の研究室の大学院生であるIan Palmerです。この方法は、効率的で費用対効果が高く、定量分析に適応できます。さらに、最小限のレベルの実験室の経験と機器で実施することができます。
まず、きれいなハサミを使って柑橘類の木から新鮮な葉を丸ごと切り取り、きれいなプラスチックのサンドイッチバッグに入れます。次に、乳鉢と乳棒を冷やし、少量の液体窒素を加えます。次に、はさみを使用して、約1平方インチのサイズの葉組織の小片を切り取ります。
葉片を乳鉢に入れて、すぐに凍らせます。液体窒素が蒸発し、細かい緑色の粉末が残るまで、乳鉢で葉の組織をすばやく粉砕し始めます。次に、金属ヘラを液体窒素で10〜15秒間冷やします。
次に、冷たいヘラを使用して、1.5MLのマイクロ遠心チューブで乳鉢から粉砕された組織をすくい取ります。1000MLのピペットを使用して、600MLの核溶解溶液をサンプルに加えます。次に、サンプルを1〜3秒間ボルテックスします。
チューブを摂氏65度で、水浴中で15分間インキュベートします。インキュベーション期間が終了したら、10MLのピペットを使用して3MLのRNA溶液をライカテに追加し、RNAを除去します。次に、チューブの内容物を2〜5回反転させて混合します。
キャビネットインキュベーターで摂氏37度で15分間インキュベートします。15分後、200MLのタンパク質沈殿溶液をサンプルに加えます。チューブを高速で20秒間ボルテックスします。
次に、サンプルを13000Gで3分間遠心分離します。遠心分離の過程で、室温で維持された600MLのイソプロパノールを新しい1.5MLのマイクロ遠心チューブに加えます。遠心分離が終了したら、遠心分離チューブから上清を慎重に取り出し、イソプロパノールの入ったチューブに移します。
ペレットを捨てます。DNAが糸のような鎖のように見えるように、チューブを反転させます。次に、サンプルを13000Gで室温で1分間遠心分離します。
遠心分離後に上清をデカントします。次に、ペレットに600MLの70%エタノールを加えます。チューブを数回反転させてペレットを洗浄します。
チューブを13000Gで1分間遠心分離します。遠心分離が終わったら、上清を慎重に吸引します。次に、吸収紙の上で蓋を開けた状態でチューブを反転させ、15分間風乾します。
乾燥したら、ペレットに100MLのDNA再水和液を加えます。DNA懸濁液を摂氏65度で水浴中で1時間インキュベートします。ミキシング中に定期的にチューブを軽くたたきます。
マイクロキュベットに精製水1MLを加えます。分光光度計で水を空白として読み取ります。次に、マイクロキュベットに1MLのサンプルを追加します。
マイクロキュベットを分光光度計に置き、DNA濃度を求めます。すべての試薬と100ナノグラムのゲノムDNAを50MLのPCRチューブに追加してPCR反応を構成します。チューブを静かにフリックして試薬を混合し、その後、すばやく遠心分離します。
PCRチューブをサーモサイクラーに入れ、プログラムを実行します。アガロースゲルを調製するには、0.4グラムのアガロース粉末を秤量します。次に、アガロース粉末を200MLの三角フラスコに加え、1X TAEバッファーで容量を50MLに調整します。
アガロース混合物を強火で約1.5分間電子レンジで加熱します。アガロースが完全に溶解するまで30秒ごとに振とうします。次に、臭化エチジウム1ミリリットルあたり2.5ミリグラムの10ミリグラムを液体アガロースに加えます。
次に、フラスコを振って臭化エチジウムを混合し、液体アガロースゲルを水平なゲル型にすばやく注ぎます。すぐに標準の12歯ジェルコームを挿入します。ゲルを室温で約20分間冷ましてから、ゲルコームを取り外します。
次に、固化したゲルを1X TAEバッファーで満たされた電気泳動ユニットに入れます。増幅したDNAサンプルと5 MLのDNAを、後でゲル上の別々のウェルにロードします。電気泳動ユニットを一定の90ボルトで35分間始動します。
次に、電気泳動ユニットからゲルを取り出します。次に、ゲルをUVトランスイルミネーターの上に置きます。トランスイルミネーターのゲルバンディングパターンを302ナノメートルで撮影します。
グリーニング細菌を同定するために、感染したサンプルと非感染サンプルの両方から得られたPCR増幅ゲノムDNAを電気泳動します。ゲル中で500塩基対に対応するこれらのバンドは、CL asiaticas細菌におけるLas16SリボソームDNAの特定の領域の存在を示している。これらのバンドは700塩基対に対応するため、LAA2/LAJ5の存在を示しており、細菌の16SリボソームβオペロンDNA配列にインサートが存在します。
400塩基対のこれらの異なるバンドは、柑橘類のF-box遺伝子のみの増幅を示しており、これは内部増幅制御を指しています。結果が有効であると考えるには、このバンドの存在が必要です。それどころか、400塩基対にバンドしか存在せず、500塩基対と700塩基対に他のバンドがないことは、健康な柑橘類の組織を示しています。
このテクニックを習得すると、適切に実行すれば約4時間で完了します。この手順は、存在する病原体の量を検出するためのRTQPCRなど、より定量的な方法の実行を可能にするように適合させることができます。
完全なトランスクリプトを表示し、数千本の科学動画にアクセス
本記事では、柑橘類の葉組織において柑橘類グリーニング病の病原体であるCandidatus liberibacter spp.を正確に検出する方法を紹介します。この手順ではPCRおよびゲノムDNA抽出を用いており、農家や研究者が迅速に同定することを可能にします。
Candidatus liberibacter spp.のような植物病原体を早期かつ特異的に検出することは、作物の損失を軽減し、農業サプライチェーンを保護するために極めて重要です。このPCRベースの手法により、葉組織中のカンキツグリーニング病病原体を迅速かつ費用対効果高く特定することが可能となり、適時な介入判断を支援します。拡張性のある診断ツールを提供することで、柑橘類生産企業の病害管理戦略における予測の信頼性を向上させます。
本手法は初期探索の段階に位置づけられ、植物病原体研究において、メカニズム解析やトランスレーショナル研究へと進む前の仮説検証および生物学的リスク低減を支援します。