Name: プラズマ凝固体内大動物モデルの肝臓組織の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-08-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 23 s
Description: 学ぶプラズマ凝固法による肝臓組織の評価。ブタモデルを用いて赤外線サーモグラフィーとレーザードップラーで微循環・凝固深度・温度を測定し、臨床肝切除術における止血効果を解析する方法です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者の謝辞があります。

原則研究所動物ケアの (健康の国民の協会文書編 8、2011) と同様、動物研究のドイツの立法によって支配される規則に従っていた。政府の動物の世話のオフィス (Landesamt für Natur 環 und Verbraucherschutz ノルトライン ・ ヴェストファーレン州、レックリングハウゼン、ドイツ) から公式許可します。
1. 動物
<ol><li>オープンケージで収容 (25-30 kg) 女性ドイツ在来種豚を使用します。</li>
	<li>5 動物群 (アルゴン ・ ヘリウム) を使用します。</li>
	<li>実験する前に、少なくとも 1 週間、環境に順応する動物を許可します。水への無料アクセスと手術前に 24 h の高速動物。</li>
</ol>2. 麻酔
<ol><li>Premedicate (15 mg/kg 体重 [BW]) ケタミン ・ キシラジン (10 mg/kg BW)、アトロピン (0.1 mg/kg BW) 筋肉内注射と動物麻酔導入前に 10 分。</li>
	<li>22 ゲージ カニューレの耳静脈に配置によって末梢静脈アクセスを設立します。</li>
	<li>プロポ フォール 2 mg/kg の静脈注射による麻酔を誘導します。</li>
	<li>仰臥位で動物を置き、2 cm。 皮下組織の鈍的準備を通じ検索静脈の長さの頸静脈の溝に縦切開を実行します。セルジンガー ワイヤー、カニューレを挿入します。</li>
	<li>カニューレを撤回し、ガイドワイヤー 14 神父カテーテルを挿入します。ガイドワイヤーを撤回します。拡張機能にカテーテルを接続し、ストラップや縫合糸でカテーテルを固定します。</li>
	<li>舌を抜くし、まっすぐ喉頭鏡を挿入します。喉頭鏡のヒントを使用して、喉頭蓋をプルダウンします。声帯からチューブを挿入します。声門下カフを配置し、膨らませます。</li>
	<li>36 と 42 の mm Hg の間呼気終末部分炭素二酸化炭素の張力を維持する 40% 酸素 20 26 呼吸/分で 10 ml/kg の一回換気量と換気します。</li>
	<li>1 1.5% の濃度でイソフルランと 3-4 μ g/kg/h の濃度でフェンタニル麻酔を維持します。</li>
	<li>4 mL/kg の初期速度で乳酸リンゲル液を供給/h、8 mL/kg の持続注入率を開腹後増加/h。</li>
</ol>3. 手術とプラズマ凝固
<ol><li>標準的な手術台に仰臥位に動物を配置します。</li>
	<li>標準的な手術の消毒薬を適用することによって皮膚を消毒 (2-プロパノール 45 g/100 g、1-プロパノール 10 g/100 g、ビフェニル-2-オール 0.2 g/100 g) を 3 回手術綿棒。</li>
	<li>剣状突起からメスと恥骨へ広い正中開腹を実行し、手術リトラクターをインストールします。</li>
	<li>プラズマ凝固装置のスイッチは、使用キャリアガスによって、アルゴンまたはヘリウムのガスのボトルを開きます。3 L/分に応じて選択凝固デバイス出力へのガス流を調整します。 注: プラズマ凝固の両方の気高いガス、アルゴンまたはヘリウムを使用できます。凝固効果はほぼ同等です。詳細については文献7を参照してください。</li>
	<li>上記7として左肝葉でプラズマ凝固を実行します。チタン金型 (正方形開口 1 × 1 cm2) を使用して、凝固ゾーンを標準化します。5 凝固プローブ距離 1 cm で s。それぞれ異なる電源設定と凝集は、短い間隔 5 mm (図 1) の凝集と並行実行できます。</li>
	<li>肝臓の収穫のため肝臓にすべての靭帯接続を分割します。分離し、門脈と胆管の長い部分を残して優れた十二指腸曲げ上肝椎弓根を分割します。大静脈上と下の肝臓を分割し、器官を取得します。</li>
	<li>肝臓を採取後、豚は 0.16 g/kg BW ペントバルビ タールの投与によって安楽死されました。</li>
	<li>バースト圧力実験のための鋭いはさみで左の内側の肝葉の半分を切除します。プラズマ凝固させ、カット面 (100 w 出力) またはフィブリン (図 2) でカット表面をシールします。</li>
</ol>4. 微小循環測定
注: レーザー ドップラー分光は、赤血球の移動によるドップラー シフトの測定を通じて組織の血流を確認できます。レーザー信号移動赤血球の数と相関します。レーザー ドップラー分光法は臨床使用 (例えば移植医学) とされている複数回15を検証します。
<ol><li>レーザー レーザードップラー血流計や分光光度計に切り替えます。フラットのプローブを使用します。</li>
	<li>流れと速度の基準測定値を取る。保存または値に注意してください。</li>
	<li>前述の下 3.5 凝固を実行します。</li>
	<li>速度とメジャー流凝固サイトにフラットのプローブを配置します。もう一度、保存または値に注意してください。</li>
	<li>凝固装置装置のすべての電源設定について繰り返します。</li>
</ol>5. 温度測定
<ol><li>(サーモグラフィ カメラ、ノートブック、および赤外線温度計) にシステムを切り替え、測定を実行する前に少なくとも 1 時間を実行します。</li>
	<li>フォーカスを調整し、凝固敷地サーモグラフィ カメラのフレームを表示します。20 よりも大きい温度解像度 1024 x 768 ピクセルの空間分解能で検出できる赤外線シーケンス mK。考慮する凝固や周囲の組織の地域-熱伝達によって影響を受ける-ビューの途中であります。 注: それは可能な限り最適な空間解像度のフレームのピクセル数を含める必要があります。</li>
	<li>2 分にわたって肝表面にプラズマ凝固装置、サーモグラフィ カメラで凝固プロセスを記録します。</li>
	<li>サーモグラフィー解析ソフトウェアで画像を分析: 興味の領域を定義します。 注: ソフトウェアは、時間をかけて対応する平均温度のコースを計算します。</li>
</ol>6. 凝固深度測定
<ol><li>シャープはさみ左内側肝葉を収穫します。</li>
	<li>1 cm の厚さで凝固サイトを切除します。さらなる処理のため 3 mm 厚の経度方向のセグメントにカットします。</li>
	<li>一晩で中立的な 10% の 4 ° C で修正組織サンプルは、ホルマリンをバッファリングします。パラフィン 2 ° C、融点以上に加熱し、スライスを埋め込みます。一晩プロセス。</li>
	<li>ヘマトキシリン ・ エオシン染色を実行します。<ol>
<li>Deparaffinize し、その後を 2 に浸すことによって組織をメタンハイド レート x キシレン 100% エタノール (エタノール)、95% エタノール、70 %etoh, 脱イオン H2O 2 分。</li>
		<li>3 分のマイヤーのヘマトキシリン液と組織標本を染色します。</li>
		<li>今、5 分間水道水ですすいでください。</li>
		<li>エオシン溶液 3 分間で組織を染色します。</li>
		<li>3 分の 2 の x EtOH 95%、キシレンですすいでください。メディアを標準マウントをマウントします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>(顕微鏡接続カメラ、イメージング ソフトウェア) のシステムに切り替えます。40 倍の倍率ですべてのセクションを表示します。</li>
	<li>40 倍の倍率でオブジェクト マイクロメータのイメージを取る。再目的ウィンドウでボタンを押します。手動校正を選択します。入力 0, 1 mm] ダイアログ ボックスでは、100 μ m のマイクロメータ イメージ上に線を描画し、OK を押します。</li>
	<li>ビューで長さを選択 > 解析コントロール > アノテーションや測定ウィンドウ。マウスを使って凝固余白に肝臓表面から測定します。エクスポートまたは結果に注意してください。同じスライド上の別の場所で測定を繰り返します。 注: 凝固深度は、通常肝細胞コードと縮められた細胞質、核濃縮核出血ゾーンと壊死のゾーン間のシャープなマージンによって通常の肝組織から簡単に区別できます。</li>
	<li>2 つの測定の平均値を計算します。</li>
</ol>7. バースト圧力測定
<ol><li>スイッチ (自動ポンプ、圧力計) のシステム。ステップ 3.7 によると肝臓のサンプルを準備します。 注: 3 方法活栓を介して接続された 2 つの並列ポンプを使用します。シングル ポンプで 1,500 の mm Hg の最大圧力が得られません。</li>
	<li>触覚の茎にはさみで門脈、肝動脈、胆管を分離します。門脈を喀鉗子でクランプし、4-0 monofil 縫合糸で結紮します。総肝動脈 overholt 鉗子をクランプし、4-0 monofil 縫合糸で結紮します。</li>
	<li>Ch 16 カテーテルを胆管に挿入し、2-0 絹縫合糸で結紮します。圧力計 (図 3) と三方活栓をインストール、自動ポンプにカテーテルを接続します。</li>
	<li>生理食塩水で灌流注射器を満たしなさい。</li>
	<li>99 mL/h の配信率の自動ポンプを開始します。</li>
	<li>漏れとレコードの破裂圧力の肝カット面と圧力計を監視します。 注: を漏れの簡単に認識、特許の青は生理食塩水 (2 mL 特許ブルー + 18 mL 生理食塩水) を追加できます。圧力計の圧力の損失の時に気付いて、破裂圧力を確認しやすいです。</li>
</ol>

<ol><li>Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+plasma+scalpel%3A+comparison+of+tissue+damage+and+wound+healing+with+electrosurgical+and+steel+scalpels%5BTitle%5D)+AND+%22ArchSurg%22%5BJournal%5D)">A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels.</a> ArchSurg. 111, 392-397 (1976).</li>
<li>Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+laparoscopic+haemostasis+using+an+argon+beam+coagulator+for+blunt+traumatic+splenic+injury%5BTitle%5D)+AND+%22EurJSurg%22%5BJournal%5D)">Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury.</a> EurJSurg. 167, 316-318 (2001).</li>
<li>Frilling, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+a+new+carrier-bound+fibrin+sealant+versus+argon+beamer+as+haemostatic+agent+during+liver+resection%3A+a+randomised+prospective+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Langenbecks+ArchSurg%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial.</a> Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).</li>
<li>Raiser, J., Zenker, M. <a target="_blank" href="http://iopscience.iop.org/article/10.1088/0022-3727/39/16/S10/pdf">Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art.</a> J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).</li>
<li>Farin, G., Grund, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technology+of+argon+plasma+coagulation+with+particular+regard+to+endoscopic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22EndoscSurgAllied+Technol%22%5BJournal%5D)">Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications.</a> EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).</li>
<li>Grund, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argon+plasma+coagulation+%28APC%29%3A+ballyhoo+or+breakthrough%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Endoscopy%22%5BJournal%5D)">Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough?</a> Endoscopy. 29, 196-198 (1997).</li>
<li>Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argon+and+helium+plasma+coagulation+of+porcine+liver+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J+Int+Med+Res%22%5BJournal%5D)">Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue.</a> J Int Med Res. , (2017).</li>
<li>Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argon+beam+coagulation+is+superior+to+conventional+techniques+in+repair+of+experimental+splenic+injury%5BTitle%5D)+AND+%22JTrauma%22%5BJournal%5D)">Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury.</a> JTrauma. 31, 717-720 (1991).</li>
<li>Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+argon+beam+coagulator+provides+rapid+hemostasis+of+experimental+hepatic+and+splenic+hemorrhage+in+anticoagulated+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22JTrauma%22%5BJournal%5D)">The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs.</a> JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).</li>
<li>Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+argon+plasma+coagulation+in+skin+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Dermatology%22%5BJournal%5D)">Application of argon plasma coagulation in skin surgery.</a> Dermatology. 197, 152-157 (1998).</li>
<li>Carus, T., Rackebrandt, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collateral+tissue+damage+by+several+types+of+coagulation+%28monopolar%2C+bipolar%2C+cold+plasma+and+ultrasonic%29+in+a+minimally+invasive%2C+perfused+liver+model%5BTitle%5D)+AND+%22ISRNSurg%22%5BJournal%5D)">Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model.</a> ISRNSurg. , 518924(2011).</li>
<li>Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+measurement+of+gastric+mucosal+microcirculation+using+a+combined+laser+Doppler+flowmeter+and+spectrophotometer%5BTitle%5D)+AND+%22DisEsophagus%22%5BJournal%5D)">Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer.</a> DisEsophagus. , (2008).</li>
<li>Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+the+Micro-Lightguide+O2C+for+the+quantification+of+tissue+ischemia+in+diabetic+foot+ulcers%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Care%22%5BJournal%5D)">The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers.</a> Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).</li>
<li>Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesive+strength+of+fibrinogen-coated+collagen+patch+or+liquid+fibrin+sealant+in+an+experimental+liver+resection+model+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Surg+Res+Eur+Chir+Forsch+Rech+Chir+Eur%22%5BJournal%5D)">Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs.</a> Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).</li>
<li>Knobloch, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcirculation+of+the+sternum+following+harvesting+of+the+left+internal+mammary+artery%5BTitle%5D)+AND+%22ThoracCardiovascSurg%22%5BJournal%5D)">Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery.</a> ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).</li>
<li>Kanzler, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendation+for+severity+assessment+following+liver+resection+and+liver+transplantation+in+rats%3A+Part+I%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I.</a> Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).</li>
<li>Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+in+swine+optimizing+a+laboratory+model+to+optimize+translational+research%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesist%22%5BJournal%5D)">Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research.</a> Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).</li>
<li>Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomic+Peculiarities+of+Pig+and+Human+Liver%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant+Off+J+Middle+East+Soc+Organ+Transplant%22%5BJournal%5D)">Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver.</a> Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).</li>
<li>Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+spectrometry+%28O2C+device%29+of+intraoperative+microperfusion+predicts+organ+function+after+kidney+transplantation%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study.</a> Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).</li>
<li>Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radiofrequency+ablation+of+porcine+liver+in+vivo%3A+effects+of+blood+flow+and+treatment+time+on+lesion+size%5BTitle%5D)+AND+%22AnnSurg%22%5BJournal%5D)">Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size.</a> AnnSurg. 227, 559-565 (1998).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

長い時間16肝臓手術の齧歯動物モデルが確立されます。大動物モデルがある特定の利点を提供するにもかかわらず、: 人間のための標準的な手術機器を適用できる、手術手技、臨床使用に匹敵する、標準的な臨床的評価方法は、顕微鏡の装置は必要ありません実験に移ります。特別な実験室試験方法 (図 10) を必要とせず標準臨床血液検査が実施されることができます。
豚は、自分の生理機能によく似た人間17呼吸循環の研究のための適切な実験動物です。サイズ、分節構造および組織学の類似性のため豚がまた実験的肝手術18標準実験動物の一つです。プラズマ凝固は、利点 (人間の生理と標準的な臨床機器の評価に類似)7のためブタのモデルで評価した.手術方法と対照をなして学管理を容易に推定することはできません。特に気道管理困難な17</sup...

アルゴン プラズマ凝固法 (APC) は、三十年1,2以上の腹部手術で広く使われている楽器です。肝臓のシールによる主要な肝切除後の出血3を防ぐために表面をカット後、二次止血の達成のための標準的な技法です。プラズマ凝固法は、高周波電気焼灼器、イオン化されたガスのアークを介して電気エネルギーを提供の特殊な形式です。モノポーラ電熱止血を提供し、この非接触技術組織4に固執する電極を防止する利点があります。イオン化されたガスのビームは自動的に最低の電気抵抗の領域に送られます、抵抗上昇乾燥のため他の地域がまだ乾燥して離れになっています。これは凝固5,6の制服の限られた深さを生成します。凝固効果に影響する要因は活性化凝固装置とプローブから組織までの距離の電源設定の時間します。ヘリウムは別のキャリア ガスをプラズマ凝固7に使用することができます。最近の臨床研究に集中して成績ではなく、機能的な組織学的所見3,8,9,生体外で調査10 に焦点を当てた実験中または分離臓器11実験。
基になるプロトコルにより、豚の人間の標準的な装置を使用して臨床応用に近い大規模な動物モデルのプラズマ凝固法の効果に関する研究: 微小循環がレーザーのドップラー流量計による非侵襲的評価と分光光度計、この表示12,13の標準的な臨床ツールです。凝固過程での温度変化は、赤外線放射温度計とサーモグラフィ カメラで監視されます。凝固の深さは、組織学的ヘマトキシリン ・ エオシン組織サンプルの採取後のセクションを染色で測定されます。二次止血のための他の手段との比較、バースト圧力実験を行った。血圧を除外する explanted 器官で実施されますが前述のテクニック14とは対照的に関連した効果。プラズマ凝固のローカル影響の調査の説明に加えてブタモデルで標準的な血液検査を実施することもできます。

<table><tbody><tr><td>キシラジン 20 mg/mL</td><td>Vetoquinol GmbH</td><td>キシラパン</td><td></td></tr><tr><td>ケタミン 100 mg/mL</td><td>Ceva GmbH</td><td>セバ ケタミン注射</td><td></td></tr><tr><td>アトロピン 100 mg / 10 mL</td><td>フランツ博士 K&ouml;hler Chemie GmbH</td><td>Atropinsulfat K&ouml;hler 100mgアンプ</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Fresenius Kabi GmbH</td><td>Propofol 1% MCT Fresenius</td><td></td></tr><tr><td>Fentanyl</td><td>KG Rotexmedica GmbH</td><td>フェンタニル 0.5mg Rotexmedica</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbot GmbH</td><td>Forene 100% (V/V) 250 mL</td><td></td></tr><tr><td>リンゲル乳酸溶液</td><td>Baxter Deutschland GmbH</td><td></td><td>ナトリウム 131mmol/l、カリウム 5 mmol/l、カルシウム 2 mmol/l、クロライド 111 mmol/l、乳酸 29 mmol/l</td></tr><tr><td>外科的ディファクタラント</td><td>Sch&uuml;lke &Mayr GmbH</td><td>Kodan Tinktur forte gef&auml;RBT 1L 104804</td><td></td></tr><tr><td>電動顕微鏡</td><td>Nikon Instruments Europe Eclipse</td><td>TE2000-E</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡カメラ</td><td>Nikon Instruments Europe</td><td>Digitalsight DS-Qi1Mc</td><td></td></tr><tr><td>イメージングソフトウェア</td><td>Nikon Instruments Europe</td><td>NIS elements Vers. 4.40</td><td></td></tr><tr><td>Plasma coagulator</td><td>S&ouml;リングGmbH</td><td>CPC-1000</td><td></td></tr><tr><td>アルゴンガス</td><td>Linde AG</td><td>アルゴン4.8&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>ヘリウムガス</td><td>Linde AG</td><td>ヘリウム 4.8</td><td></td></tr><tr><td>O2C</td><td>LEA Medizintechnik GmbH</td><td>O2C バージョン 1212</td><td>LF-2またはLF-3プローブ付き</td></tr><tr><td>赤外線温度計</td><td>Voltcraft</td><td>VOLTCRAFT IR 260-8S</td><td></td></tr><tr><td>サーモグラフィーカメラ</td><td>InfraTec GmbH</td><td>VarioCAM HDヘッド 820</td><td></td></tr><tr><td>サーモグラフィー分析ソフトウェア</td><td>InfraTec GmbH</td><td>IRBIS 3</td><td></td></tr><tr><td>メイヤーのヘマトキシリンソリューション</td><td></td><td>メルク 1.09249</td><td></td></tr><tr><td>Eosinソリューション</td><td>VWRインターナショナルGmbH</td><td>メルク1.09844</td><td></td></tr><tr><td>ローラーポンプ マスターフレックス L / S イージーロード</td><td>コールパーマー 楽器会社</td><td>モデル7518-10</td><td></td></tr><tr><td>パフューザーポンプ</td><td>B. ブラウン メルスンゲンAG</td><td>パフューザー セキュラ FT</td><td></td></tr><tr><td>デジタル圧力計</td><td>グライジンガー電子</td><td>GMH 3161</td><td></td></tr><tr><td>パフューザーシリンジ、50 mL</td><td>B. ブラウン メルズンゲン AG</td><td>REF 8728810 F</td><td></td></tr><tr><td>パフューザー ライン、タイプ IV スタンダード、PVC ルアーロック</td><td>B. ブラウン メルズンゲン AG</td><td>REF 8722960</td><td></td></tr><tr><td>3 ウェイ ストップコック、ディコフィックス C35C</td><td>B. ブラウン メルズンゲン AG</td><td>REF 16494 C</td><td></td></tr><tr><td>シルク 2-0. 3 メートル</td>法 <td>Resorba</td><td>REF H5F</td><td></td></tr><tr><td>Vicryl 4-0 Sutupak</td><td>Ethicon</td><td>V1224H</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0.9 %</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

プラズマ凝固体内大動物モデルの肝臓組織の評価

Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo

プラズマ凝固焼灼の一形態としては、後の段階で出血を防ぐために主要な肝切除後大きい肝カット表面をシールする何十年も肝臓手術で使用されます。プラズマ凝固肝組織の厳密な効果は単に不十分検討しました。ブタのモデルでは、臨床応用に近い凝固効果を調べることができます。組み合わせたレーザー ドップラー流量計、分光光度計ドキュメント微小循環は非侵襲的、組織深さ 8 mm で凝固時変更臨床印象を超えて止血について定量的な情報を提供します。凝固過程で評価サーモグラフィ カメラと赤外線温度計前およびポスト凝固凝固サイトで温度、ガス ビーム温度の測定デバイスの上限のしきい値のために可能ではないです。凝固の深さは、ヘマトキシリン ・ エオシン オブジェクト マイクロメータの校正後染色標本の顕微鏡は測定し、電源設定凝固深度の関係について正確な情報を与えます。シール効果を胆管に調査する大きな血管をシールするプラズマ凝固装置のため不可能です。バースト圧力実験を血圧を除外する explanted 臓器に関連した効果。

微小循環:次のプラズマ凝固止血診断装置を利用したは、微小循環の変化によって発揮できます。142.7 ± 76.08 のベースライン値から毛細血管血流 (任意の単位 (AU) として表示) が減少 57.78 ± 49.57 AU 25 W デバイス、出力 48.5 ± 7.26 で AU AU 5.04 ± 1.31 と 50 W で 100 W (図 4) で AU。
温度:凝固のサイトで温度をサーモグラフィ カメラ (図 5) で測定しました。些細だけ温度変化は赤外線温度計を使って文書化されました。32.42 ± の基準温度を示した 2.27 ° c.25 W で凝固後気温は 33.33 ± 1.81 の ° c.50 W レーザー凝固をもたらした 31.17 ±...

実験的肝組織体内のプラズマ凝固法を評価するためにプロトコルをご紹介します。ブタのモデル レーザードップラー微小循環を検討、組織凝固深度を測定、凝固サイト赤外線放射温度計とサーモグラフィ カメラとダクトのシール効果で温度は圧力によって文書化されます。実験。

Plasma coagulation as a form of electrocautery is used in liver surgery for decades to seal the large liver cut surface after major hepatectomy to prevent ...

この方法は、アルゴンとヘリウムのプラズマ凝固のエネルギー設定深度関係とプラズマ凝固プロセス自体に関する臨床肝臓手術の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、大型動物モデルが臨床応用と類似しており、特別な機器を必要としないことです。赤外線サーモグラフィーは、温度分布と温度減衰を監視するだけでなく、呼吸数とパイを監視するためにも使用できます。さらに、炎症過程は赤外線サーモグラフィーによって監視することができます。手順を実演するのは、私たちのグループの技術者であるPascal Paschendaです。手順を開始する少なくとも1時間前に、サーモグラフィカメラノートブックと赤外線温度計のスイッチを入れてください。機器の準備ができたら、麻酔をかけた25〜30キログラムの雌のジャーマンランドレースブタを標準的な手術台の上に仰臥位に置き、標準的な手術用綿棒を使用して、標準的な手術用消毒剤で手術部位を3回消毒します。次に、メスを使用して、剣状突起から恥骨までの広い正中線開腹術を行い、肝臓組織を露出させるために外科的開創器を取り付けます。ベースラインの微小循環測定を取得するには、レーザードップラー流量計と分光光度計のスイッチを入れ、フラットプローブを使用して流量と速度を測定します。次に、プラズマ凝固装置のスイッチを入れ、適切なキャリアガスボトルを開けて、ガス流量を毎分3リットルに調整します。適切な凝固装置の出力電力を選択し、正方形の開口部が1×1平方センチメートルのチタン金型を使用して、凝固ゾーンを標準化します。次に、1センチメートルのプローブ距離を使用して、その領域を5秒間凝固させます。凝固後の微小循環を測定するには、各凝固部位にフラットプローブを配置して、各部位の流れと速度を測定します。各部位の温度を測定するには、サーモグラフィーカメラの焦点を調整し、凝固領域と熱伝達の影響を受ける周囲の組織が視野の中央に位置するように、最初の凝固部位にフレームを設定します。血漿凝固装置による肝臓表面の凝固過程をサーモグラフィーカメラで2分間にわたって記録します。次に、適切なサーモグラフィー解析ソフトウェアを使用して画像シーケンスを解析します。破裂圧力を測定するには、まず自動ポンプと圧力計のスイッチを入れます。次に、肝臓への靭帯接続をすべて分割し、上十二指腸屈曲の上の肝茎を分割し、門脈と総胆管の長い部分をそのまま残します。次に、肝臓の上下に大静脈を分割して、臓器を回収できるようにします。鋭利なハサミを使用して、左内側肝葉の半分を切除し、血漿が切断面を凝固させます。肝茎の門脈、総肝動脈、胆管を分離します。オーバーホールド鉗子を使用して、門脈をクランプします。次に、モノフィル縫合糸4.0を使用して血管を結紮します。総肝動脈を 2 組のオーバーホールド鉗子でクランプし、別のモノフィル縫合糸 4.0 で動脈を結紮します。フレンチ16カテーテルを総胆管に挿入し、2.0シルク縫合糸で管を結紮します。そして、カテーテルを自動ポンプに接続します。圧力計付きの三方活栓を取り付け、大量の注射器に生理食塩水を入れます。毎時99ミリリットルの吐出速度で自動ポンプを始動します。次に、肝臓の切断面と圧力計の漏れを監視し、破裂圧力を記録します。この代表的な実験では、毛細血管の血流は、デバイスの出力電力が25ワットでベースラインから約60%、50ワットで66%、100ワットで約100%減少しました。プラズマ凝固中またはプラズマ凝固後の温度変化は観察されませんでした。血漿凝固は、正常な肝実質と容易に区別できる壊死の表在性ゾーンを作成します。ヘリウムプラズマ凝固後、凝固深さは、印加されたプラズマデバイスの出力電力に直接相関して大幅に増加します。外植された左内側肝葉の切断面で実施された破裂圧力測定は、ヘリウムまたはアルゴン血漿凝固後に差を示さないことに注意してください。これらの技術を使用して、最後に局所凝固効果を定量化し、血漿凝固の胆管シール効果を推定します。これらの技術は、人間の患者と同様の手術環境でのビリオと止血のさまざまな手段を比較するためにも使用できます。さらに、血漿凝固のヘモおよびビリオスタティック効果は、同じモデルで主要な肝切除術の後に適用できます。このビデオを見れば、大動物モデルにおけるアルゴンとヘリウムのプラズマ凝固の主な影響を評価する方法について十分に理解できるはずです。

assessment-plasma-coagulation-on-liver-tissue-large-animal-model

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

このビデオでは、肝細胞を単離する前にコラゲナーゼ溶液を使用して門脈をマウスの肝臓灌流する手順について説明しています。...

In vivoマウス肝灌流:門脈を介してげっ歯類の肝臓に溶液を注入する方法

肝臓の免疫細胞の安定した生体内高解像度イメージングは困難です。ここでは、マウス肝臓内の免疫細胞の遊走と細胞間相互作用を、インテンシブケアモニタリングと組み合わせた生体内多光子レーザー走査型顕微鏡法と組み合わせた長時間(約6時間)にわたって研究するための高感度で信頼性の高い方法を提供します。...

CXCR6.Gfpレポーターマウスを使用して、健康で罹患肝臓における免疫細胞の長期生体内多光子顕微鏡イメージング

外傷患者の死亡原因の重要な原因である制御不能な出血は、マウスモデルにおける標準的な肝臓裂傷を用いてモデル化することができる。このモデルは一貫した失血、生存率をもたらし、止血剤の試験を可能にする。この記事では、この貴重なモデルを実行するためのステップバイステップのプロセスを提供します。...

リアルタイム血行動態モニタリングを用いたマウスの肝梗塞モデルによる制御不能出血性ショック

ここでラットのポータル高血圧症候群を特徴付けるために門脈圧、内臓の血流、血行などの循環パラメーターの侵襲的な測定のための詳しいプロトコルについて述べる。...

肝硬変ラットにおけるポータル高血圧症侵襲血行動態評価

重要な肝ドナー不足があるし、肝ドナーの条件が展開されています。常温体外肝灌流 (NEVLP) は評価し臓器の機能を変更しました。本研究は NEVLP のモデルラットを示します、保存肝傷害を軽減するために、ペグインターフェロン...

Ex Vivo常温肝灌流の小さな動物モデル

さらに生体内で部分的な肝、将来工学を勉強するための前提条件としてラット生体内単一肝葉潅流モデルの新しい手術手技を確立します。...

ラットでの肝部分工学生体内での基盤として新しい手術手技

このプロトコルは、マウスから実行可能な精密カット肝スライスを製造するための簡単で信頼性の高い方法を提供します。このエクスビボ組織サンプルは、ラボ組織培養条件下で複数回維持することができ、肝臓病理生物学を調べる柔軟なモデルを提供する。...

肝臓生物学のEx Vivoモデルとしてのマウス精密カット肝臓スライス

麻酔をかけたマウスにおける精製尾静脈切除(TVT)出血モデルは、血友病出血の評価のための敏感な in vivo...

完全麻酔血友病Aマウスにおける尾静脈切除出血モデル

自家血栓を使用した肺塞栓症の低侵襲ラットモデルを確立するための詳細な方法論について説明します。梗塞領域を定量化し、肺動脈樹を視覚化するための追加の方法も提供されています。...

自家血栓を用いた肺塞栓症の低侵襲ラットモデルの確立

ランゲンドルフ装置に関するほとんどの研究は、大型哺乳類のシステムの複雑さが増すため、小動物モデルを使用しています。ここでは、ヒトを含むさまざまな種で使用でき、比較的簡単にデータを取得できる大型動物モデル用のランゲンドルフシステムについて説明します。...

大型動物モデルの絶縁型ワーキングハートシステム

学ぶプラズマ凝固法による肝臓組織の評価。ブタモデルを用いて赤外線サーモグラフィーとレーザードップラーで微循環・凝固深度・温度を測定し、臨床肝切除術における止血効果を解析する方法です。

プラズマ凝固体内大動物モデルの肝臓組織の評価

さらに動画を探す